GE NOVAGEN 镍柱纯化系统流程
镍柱蛋白纯化
镍柱蛋白纯化镍柱蛋白纯化是一种常用的基于亲和层析的蛋白纯化方法,它通过靶蛋白的亲和性与含有Ni2+离子的镍柱发生相互作用,从而实现靶蛋白的分离与纯化。
本文将介绍镍柱蛋白纯化的基本原理、实验步骤以及注意事项。
基本原理镍柱蛋白纯化基于亲和层析的基本原理。
亲和层析是一种根据靶蛋白的化学或生物特性选择性地捕捉分离靶蛋白的方法。
镍柱蛋白纯化利用含有Ni2+离子的亲和层析介质作为捕捉靶蛋白的载体。
由于Ni2+离子与组蛋白中的组氨酸以及其他氨基酸存在较强的亲和力,镍柱中的Ni2+离子能够与靶蛋白中含有组氨酸或其他靠近组氨酸的官能团结合,实现了靶蛋白的分离纯化。
实验步骤镍柱蛋白纯化的实验步骤如下:1.细胞裂解与分离:首先需要将选择的表达靶蛋白的菌株用化学或机械方法破裂,并从细胞裂解液中分离靶蛋白。
2.杂质去除:利用超速离心等手段,去除裂解液中的大量无关蛋白质,以减少后续纯化的杂质。
3.镍柱柱层析:将镍柱填充到层析柱中,使之平衡,然后将分离的靶蛋白通过柱层析,利用其与镍柱中Ni2+离子的亲和力捕捉纯化。
4.洗脱:通过改变缓冲条件(如pH、盐浓度等),使得捕获靶蛋白的镍柱发生变化,最终使其与捕获的蛋白离开。
5.透析:将洗脱得到的靶蛋白透析回目标缓冲液中,以去除与纯化过程中引入的杂质。
注意事项1.掌握柱层析的平衡、清洗和洗脱条件,以避免蛋白质在分离过程中被损坏。
2.需要选择合适的表达菌株、表达载体以及诱导条件,以提高目标蛋白质的表达水平和纯化效率。
3.超速离心过程中,建议在4°C下高速离心,以避免破坏蛋白质结构。
4.纯化过程中需要掌握蛋白质的稳定状态和活性,以确保最终得到的蛋白质具有高纯度和活性。
镍柱蛋白纯化是一种常用的基于亲和层析的蛋白纯化方法,该方法可以高效地从蛋白质混合物中纯化高丰度、高质量的靶蛋白质。
在实验过程中,需要注意掌握柱层析、表达菌株选择、超速离心和掌握蛋白质的稳定状态和活性等方面的技巧,以获得高质量的纯化结果。
镍柱纯化His
镍柱纯化His-tag蛋白1、我司用于纯化TEV蛋白酶。
2、我司镍柱的直径为d=50mm,底面积S=20cm2,高h=400mm,实际填料高为h=250mm。
所以填料体积为V=500ml3、生产实验步骤(1)用上样缓冲液平衡柱子和重悬细菌上样缓冲液配方(1L体积)40mM Na2HPO4 5.68克10mM NaH2PO4 1.2克0.5M NaCL 29克1% 甘油10mL10mM 咪唑0.18克调节PH7.4平衡柱子缓冲液的体积为柱填料体积的10倍重悬菌缓冲液的体积为菌重量的15倍,如我们有2kg的菌,重悬菌缓冲液的体积为30L。
菌的破碎:破碎两遍,压力为800bar。
菌的过滤:当过滤体积只剩原体积的20%时开始稀释,稀释至的原体积的1/2,即15L。
所以我们要配的上样缓冲液体积为39L。
我们镍柱的上柱速度为20mL/min。
洗柱速度为60mL/min。
(2)用上样缓冲液洗柱子10个体积左右,(即洗至检测仪最低浓度平缓为止)(3)用不同咪唑浓度的冲洗缓冲液冲洗柱子。
冲洗缓冲液的体积为2-5个体积。
(即洗至检测仪最低浓度平缓为止)冲洗缓冲液的配方:(1L体积)例如咪唑浓度为20mM。
40mM Na2HPO4 5.68克10mM NaH2PO4 1.2克0.5M NaCL 29克1% 甘油10mL20mM 咪唑0.18克调节PH7.4(4)用含高浓度的咪唑缓冲液洗脱蛋白。
洗脱缓冲液的配方:(1L体积)例如200mM咪唑。
实际使用可能需要更高浓度。
40mM Na2HPO4 5.68克10mM NaH2PO4 1.2克0.9% NaCL 9克1% 甘油10mL200mM 咪唑0.18克调节PH7.4洗脱蛋白的速度为:20mL/min洗脱时等峰值开始上升时开始接。
峰前后低浓度的蛋白接一起。
中间的接一瓶。
(5)蛋白的储存:蛋白收集后立即1:1加甘油,-20℃保存。
甘油需先预冷,加甘油时由甘油加入蛋白中,边加甘油边搅拌,搅拌时不能产生气泡。
镍柱亲和层析蛋白纯化步骤
镍柱亲和层析蛋白纯化步骤镍柱亲和层析蛋白纯化步骤镍柱亲和层析蛋白纯化步骤
嘿,朋友们!今天咱们来聊聊镍柱亲和层析蛋白纯化的那些事儿。
这可是个超级有趣又神奇的过程哦!
呢,咱们得把准备工作做好。
就像要出门旅行得先收拾行李一样。
咱们得有新鲜干净的镍柱,还有各种试剂和设备都得准备齐全,别到时候手忙脚乱的。
然后呀,就是处理样品啦。
这样品就像是一群调皮的小孩子,咱们得让它们乖乖听话。
把含有目标蛋白的样品处理好,去除那些杂质和不需要的东西,让咱们的目标蛋白能够更加突出。
等它们接触得差不多了,就得开始清洗柱子啦。
这就像是给柱子洗个澡,把那些没有结合上的杂质都冲掉。
用各种缓冲液慢慢地冲洗,把柱子洗得干干净净的。
在整个过程中,咱们可得时刻盯着,就像看着自己心爱的宝贝一样。
注意观察各种现象,看看颜色有没有变化,流速是不是正常。
要是有啥不对劲的,赶紧想办法解决。
呢,收集到的目标蛋白还得进行检测和分析,看看纯度够不够高,质量好不好。
如果一切都很完美,那咱们就可以欢呼庆祝啦!
怎么样,朋友们,镍柱亲和层析蛋白纯化是不是很有趣呀?只要咱们一步一步认真做,就能得到咱们想要的纯净蛋白,为后续的实验打下坚实的基础!加油吧,小伙伴们!。
镍柱使用步骤
纯化酵母表达上清:A泵:结合液Binding buffer pH8.0 1LNaH2PO4 50mM 6.005gNaCl 300mM 58.44g咪唑10mM 0.6808gB泵:洗脱液Eluting buffer pH8.0 1LNaH2PO4 50mM 6.005gNaCl 300mM 58.44g咪唑250mM 17.02g注意:配Binding buffer和Eluting buffer时,要先调pH,再抽滤,防止堵塞操作步骤:1.先打开机器(红色按钮)2.再开电脑3.系统选第二个4.打开软件(桌面上):红绿蓝黄,正方形5.default→点OK6.出现四个窗口,点System Control7.蒸馏水洗A泵、B泵(Manual→pump→pumpwashbasic→pump A on;pump B on→flow 0.5ml/min→execute→装柱子→flow 8ml/min→execute→至基线洗平→pause)8.把A泵放在结合液里,把B泵放在洗脱液里→continue→至基线洗平→end9.点run→选wangyunpeng→OK→选1,2及最后一个→一路next→start→至出现红线→pause10.上样,把柱子卸下来,上清液过0.22μm膜,用注射器把过完后的样品慢慢打进去,防止起泡,把柱子安上,同前面步骤,先flow 0.5ml/min,再flow 8ml/min→continue11.装管圆盘,顺时针转,一般前11个用脏管,12至15用新10ml管,洗脱峰下去之后→end12.用75%酒精(0.22μm膜过滤)洗A泵、B泵,洗平后,用25%酒精(0.22μm 膜过滤)洗A泵、B泵,洗平后→end13.把柱子卸下来,放4℃保存。
GE NOVAGEN 镍柱纯化系统流程
蛋白纯化系统操作流程一、蛋白的诱导:蛋白原核表达1、取菌种接种于含Amp LB固体培养基中(分区划线),37℃培养过夜;2、挑取单克隆接种于5ml含Amp LB液体培养基中,37℃振摇过夜;3、从过夜培养物中取2ml接种于100ml Amp LB液体培养基中,振摇2h(留样1ml);4、加入一定终浓度IPTG,37℃诱导表达4h(留样1ml),离心,弃上清收集细菌。
存入4℃。
二、蛋白表达状态分析(可溶性or包涵体表达)取少量(1ml)诱导菌体沉淀,加入不含变性剂(如盐酸胍,尿素等)PBS(150μl),超声裂解。
分离上清和沉淀,分别SDS-PAGE电泳。
三、蛋白的纯化纯化前准备1.推荐在中性至弱碱性条件下(pH 7-8)结合重组蛋白。
磷酸盐buffer是常用的缓冲液,Tric-Cl在一般情况下可用,但要注意它会降低结合强度。
2.避免在buffer中包含EDTA或柠檬酸盐等螯合剂3.若重组蛋白以包涵体形式表达,在所有的buffer中添加6 M 盐酸胍或8 M 尿素注:1.包含尿素的样品可直接进行SDS-PAGE分析,若样品中包含盐酸胍,在SDS-PAGE前则需先用含有尿素的buffer进行透析2.除利用咪唑洗脱蛋白,其它方法,如低pH 值法等可被应用,详见说明书Bingding buffer 中咪唑的浓度在洗涤时所用的Bingding buffer 中咪唑浓度越大,重组蛋白纯度越高。
但过高的咪唑浓度将导致蛋白的洗脱。
合适的咪唑浓度需要优化。
Buffer 的准备所用的水及化学物质须是高纯度的。
Buffer 在使用前需经0.45 μm滤膜过滤所用高纯度的咪唑需在280nm 处无吸光度或吸光度极低推荐bufferBingding buffer:20 mM 磷酸盐0.5 M NaCl20- 40 mM 咪唑pH 7.4 (咪唑浓度是蛋白依赖的,可变!)Elution buffer :20 mM 磷酸盐0.5 M NaCl500 mM 咪唑pH 7.4 (咪唑浓度是蛋白依赖的,可变!)样品准备样品需被充分溶解。
0005 镍柱纯化-已修订
NI 柱纯化重组Xxx 实验参考1摘要:通过对粗蛋白进行了NI 柱的纯化制备,得到精蛋白,达到80%以上的纯度。
2实验材料:2.1待纯化:Xxx ,菌种:10 g2.2层析柱:填料型号:Ni Sepharose™ 6 Fast Flow; GE; 规格:1 cm 2 * 2cm2.3柱纯化缓冲液:BufferA :20 mM PB ,500 mM NaCl ,20 mM Imidazole ,pH :7.8BufferB :20 mM PB ,500 mM NaCl ,500 mM Imidazole ,pH :7.83实验步骤:3.1破菌:将菌体按照1:20的比例,重悬在A 液中,冰浴并打匀,超声破碎,14000r/min,4度离心,收上清,粗蛋白液以及柱纯化缓冲液经0.45 µm 滤膜过滤待用(粗蛋白的缓冲液要和BufferA 保持一致)。
3.2平衡:设置柱流速为 1 cm/min ,水5CV ,BufferB 清柱子,5CV ;再用BufferA 平衡柱子10CV 。
3.3上样:过滤后的粗蛋白液上样1 cm/min ,上样后用 BufferA 冲洗柱子20个柱体积。
3.4洗脱:5 ml/min 的BufferB5%,30%,50%,100%梯度洗脱。
(可优化)4 纯化制备实验结果:SDS-PAGE 电泳检测,其结果如下:15%SDS-PAGE 凝胶,25mA 恒流电泳,上样量:20µl ,1 2 3 4 5 6 Marker(1:.样品 2:流穿 3:5%BufferB 4:30%BufferB 5:50%BufferB 6:100%BufferB ) 纯化后将目标蛋白 重组X 蛋白 透析到合适的缓冲液中,4℃暂时存放,-20℃长期贮存。
5 纯化前准备:1. 推荐pH 7-8结合蛋白,PB 是常用的缓冲液.Tric-HCl 不可超过100 mM,它会降低结合强度。
2. 避免在buffer 中包含EDTA 或柠檬酸盐等螯合剂。
ge镍柱说明书
ge镍柱说明书
1、对于一般的预装柱(Crude系列除外),上样前,样品需要使用0.22μm、0.45μm滤膜进行过滤或者离心处理,以避免样品中有细胞碎片等固体物质,堵塞柱子。
2、如果细胞裂解后非常粘稠,需考虑是否因为DNA、RNA这类核酸物质过多,需要加入核酸酶去除,以降低样品粘稠度,提高上样速度及洗脱效果。
3、柱子使用过程中,不能超过填料的压力,以免填料被压塌。
4、每次使用后,可使用5-10倍柱体积的纯水或者结合缓冲溶液对柱子进行清洗。
(如果出现载量严重下降或者压力增加,需考虑彻底清洗)。
蛋白过镍柱纯化的原理和步骤
蛋白过镍柱纯化的原理和步骤是什么** Ni柱中的氯化镍可以与有HIs(组蛋白)标签的蛋白结合,也可以与咪唑结合。
步骤是:过柱子前可以选择Ni柱重生,也就是往柱子里倒氯化镍,一个柱长体积就行了,然后平衡柱子,拿你自己的buffer,给蛋白提供最适的环境。
我一般平衡4个柱长,然后蛋白上样,你可以让他自己挂,这样挂柱子的效果好一些,如果流速太慢,可以加个恒流泵,但是一定不能太快,太快挂柱效果差,当然你也可以选择循环挂柱,就是恒流泵的一头接你装蛋白的烧杯,从柱子中留下来的液体还用同一个烧杯接回去。
挂完之后,按理想来讲,你的蛋白在Ni柱中与Ni就结合了,杂蛋白多数在烧杯里,留下来了,当然肯定有少量杂蛋白也挂上了。
这时候你要梯度洗脱,拿咪唑和你的buffer配,一般从0、20mM、40mM......100mM这样洗脱(当你不知道你的蛋白大概在什么时候出来的时候)我指的是咪唑的终浓度。
咪唑加入之后,会和蛋白争夺与Ni的结合位点,杂蛋白、你的目的蛋白,会在不同的浓度被洗脱下来,洗完之后,你可以用200mM咪唑洗柱子,清理一切蛋白,然后平衡几次(怎么平衡?),是否选择重生你自己定咯~然后放上20%乙醇保存柱子就可以咯~过的蛋白用不同的管子收下,然后SDS-page检测在哪个管子里。
**楼上说的基本对,但基本上里面填料时硫酸镍,因此柱子可以和碱性蛋白结合,组蛋白标签一般是6个组氨酸(碱性氨基酸)。
在蛋白上样后,带有组氨酸标签的蛋白特异性结合到柱子里,其他的杂蛋白流出。
这时候再用咪唑洗脱,梯度洗脱,咪唑竞争性结合到硫酸镍上,目的蛋白就被洗脱了,这时候收集浸出液,那么里面就是你要的目的蛋白,然后透析掉咪唑就行了。
现在的柱子大多是预装柱,也就是不用自己填柱,就是装好镍的傻瓜柱,也不贵,上样,洗脱,基本两个步骤就结束了。
剩下的看你怎么处理了。
可以参考楼上的。
不会再问。
GE_NOVAGEN_镍柱纯化系统流程
GE_NOVAGEN_镍柱纯化系统流程一、准备工作1.检查设备:确保GE_NOVAGEN_镍柱纯化系统的各个组件都完好无损,并清洁。
2.准备培养细胞:根据实验需要选择合适的宿主菌并进行培养,然后诱导目标蛋白的表达。
3.细胞收获:在适当的生长时间后,收获细胞,并用适当的缓冲液洗涤细胞。
二、细胞破碎和溶解1.细胞破碎:使用机械或非机械方法将细胞完全破碎,以释放细胞内的蛋白。
2.清理细胞碎片:通过离心将细胞碎片与异物分离,并收集上清液。
3.细胞溶解:将上清液中的细胞溶解物加入耐高盐浓度的洗液中,使其溶解。
三、准备镍柱1.激活镍柱:用约10倍体积的洗液洗涤镍柱,再用洗液含有约10mMIMAC金属络合剂的溶液激活镍柱。
2.平衡镍柱:使用洗液平衡镍柱,去除多余的IMAC金属络合剂。
四、药剂梯度洗脱1.样品加载:将溶解的蛋白样品加入已经平衡的镍柱中,让其与镍离子发生亲和作用。
2.洗脱1:使用洗脱缓冲液1洗脱非特异性结合的污染物。
3.洗脱2:使用洗脱缓冲液2洗脱静电相互作用或非特异性结合的蛋白。
4.洗脱3:使用洗脱缓冲液3洗脱大多数蛋白质,包括特异结合的目标蛋白。
五、浓缩和纯化1.浓缩:使用浓缩装置将洗脱得到的目标蛋白浓缩到所需浓度。
2.电泳分析:取一定量的浓缩蛋白样品进行SDS-凝胶电泳,以观察蛋白质的纯度。
3.特异性结合洗脱:如果目标蛋白与镍离子的亲和力较强,可使用一些共价或可逆的螯合剂来释放蛋白。
六、储存和分析1.储存:将纯化的蛋白样品用合适的缓冲液储存,通常在低温条件下保存。
2.分析:使用不同的分析方法,如聚丙烯酰胺凝胶电泳、质谱分析、活性测定等,对纯化得到的蛋白质样品进行分析和表征。
GE_NOVAGEN_镍柱纯化系统是一种简单、高效的蛋白质纯化方法。
通过对镍柱的激活和平衡,使目标蛋白与镍离子发生亲和作用,然后通过药剂梯度洗脱和浓缩纯化目标蛋白。
这种方法广泛应用于蛋白质纯化领域,并且在细胞工程和生物技术研究中具有重要意义。
ni柱纯化原理
ni柱纯化原理ni柱纯化1. 介绍•ni柱纯化是一种常用的蛋白质纯化方法,通过利用镍离子与His 标签之间的亲和力,选择性地纯化含有His标签的蛋白质。
•这种方法可以高效、快速地纯化目标蛋白质,通常用于重组蛋白质的纯化。
2. 原理•ni柱纯化基于镍柱对His标签的高亲和性。
His标签是一种6个氨基酸残基组成的多肽序列(His-His-His-His-His-His或简写为His6),常被插入到表达载体的N端或C端。
•His标签的镍亲和作用利用了镍离子(Ni2+)与His残基之间的配位键结合,形成稳定的复合物。
•在ni柱纯化中,预先将镍离子固定在柱子上,样品通过柱子时,目标蛋白质中的His标签与镍离子形成复合物,其余非目标蛋白质则不会结合,并通过洗脱步骤被去除。
•最后,目标蛋白质通过改变镍离子的条件(例如改变pH或添加竞争性络合剂)来解离并收集。
3. 实施步骤ni柱纯化的实施步骤如下:1.准备工作–根据目标蛋白质的His标签位置选择适当的表达载体。
–准备细胞培养,将目标蛋白质表达至适当的细胞中。
–收获细胞,并通过裂解方法将蛋白质释放到裂解液中。
2.镍柱校准–使用柱子校准试剂进行镍柱的校准,以确保有效的纯化结果。
3.样品加载–将裂解液加入到预先平衡并固定了镍离子的柱子中。
–让样品在柱子中与镍离子结合形成复合物。
4.柱子洗脱–使用洗脱缓冲液,通过改变镍离子的条件来去除非目标蛋白质。
这可以包括改变pH值、添加竞争性络合剂等。
5.elution–使用特定的洗脱缓冲液,使目标蛋白质与镍离子的络合物解离,从而纯化目标蛋白质。
6.分析和保存–对纯化后的目标蛋白质进行分析,例如SDS-PAGE和Western blot等。
–将纯化后的蛋白质保存在适当的条件下,以确保其稳定性和活性。
4. 结论•ni柱纯化是一种常用的蛋白质纯化方法,通过利用镍离子与His 标签之间的亲和力,选择性地纯化含有His标签的蛋白质。
•这种方法可以高效、快速地纯化重组蛋白质。
镍柱子纯化表达蛋白的具体步骤
镍柱子纯化表达蛋白的具体步骤,注意事项1、过柱前的注意事项:a、样品必须澄清、无颗粒物,否则会堵塞柱子、缩短其使用寿命;b、包含体洗涤的最后一步及溶解时所用的Buffer中不能含EDTA、DTT、2ME;c、确保样品及Binding Buffer中有适量的NaCl,以防止杂离子与Ni离子竞争;2、过Ni柱的操作步骤:a、用去离子水洗涤,洗去20%的乙醇、除尽基质中的空气,并能防止下一步中Ni离子沉淀;b、5×柱体积的Charge Buffer(50mM NiSO4)充电;c、5×柱体积的去离子水洗涤,去游离的Ni离子;d、10×柱体积的Binding Buffer(20mM Tris-HCl,0.5M NaCl,5mM咪唑,pH8.0)平衡;e、上样(手工上样,样品体积应根据目的蛋白的浓度来确定);f、20×柱体积的Washing Buffer(20mM Tris-HCl,0.5M NaCl,20-50mM咪唑,pH8.0)洗涤,至无蛋白检出,收集流出液;g、Elution Buffer(20mM Tris-HCl,0.5M NaCl,500-1000mM咪唑,pH8.0)洗脱,每次1ml,应呈现正态分布(两边稀,中间浓);h、10×柱体积的Binding Buffer洗涤。
此时,即可用于纯化同种蛋白,很少需要重新充电。
注:同种蛋白纯化5~10次后,应进行strip和re-charge。
3、柱的清洗与保存:a、去Ni离子:a、5×柱体积的Strip Buffer(20mMTris-HCl,0.5M NaCl,50mM EDTA,pH7.4)洗涤;b、10×柱体积的去离子水洗涤。
b、去沉淀的蛋白质:a、5×柱体积的0.5M NaOH装满柱子,静置0.5~2hr;b、去离子水洗涤,至流出液的pH值为7。
c、保存:20%乙醇洗涤,再加20%乙醇保存于4℃。
镍柱纯化系统
蛋白纯化系统操作步骤Introduction镍柱纯化系统是为纯化在细菌、昆虫和哺乳动物细胞表达的,带有6个组氨酸标签的重组蛋白而设计的。
这个系统设计了镍柱琼脂糖对串联排列的6-His 残基有高度的亲和力和选择性。
镍柱纯化系统包括了纯化缓冲液和在非变性、变性和杂合条件下的纯化蛋白树脂。
产生的蛋白可有许多用途。
变性与非变形条件判断预纯化的蛋白是变性或非变性条件依靠蛋白的溶解性和保留应用的生物活性。
蛋白质纯化步骤:第一步:确定在非变性或杂合条件下纯化。
第二步:制备相应的缓冲液。
第三步:按相应条件进行细菌裂解。
第四步:制备相应条件下的纯化柱。
第五步:按相应条件纯化。
第六步:柱清洗和保存。
第一步:确定在变性或杂合条件下纯化Native Condition如果你的蛋白是可溶性的(裂解后在上清中)并且保有应用蛋白的生物活性,用非变性条件Denaturing Condition如果你的蛋白是不可溶性的(裂解后在沉淀中)或者你下游的应用不依靠蛋白的生物活性,用变性条件。
如果你的蛋白是不可溶性的但是你想保留蛋白的生物活性,用杂合步骤。
在变性条件下制备溶菌产物和柱子然后在洗涤的洗脱中用非变性缓冲液使蛋白再折叠。
注意这种步骤并不可以使所有蛋白复性。
第二步:制备相应的缓冲液参见不同条件下的具体情况第三步:细胞裂解液的制备非变性条件:1. 收集50ml细菌培养液(5000rpm,5min),重悬于8ml的非变性结合缓冲液中。
2. 加入8mg的溶菌酶,然后冰上孵育30min。
3. 用超声破碎仪,在高强度的破碎下,每次10-second ,10-second 一个时间间隔,共六次。
在冰浴中操作。
4.可选步骤:如果裂解液非常粘稠,加入RNase A (10 μg/m l) and DNase I (5 μg/ml) ,冰上孵育10-15min,可选择地,用注射器针头反复抽吸几次。
5. 3,000 × g for 15 minutes 弃去细胞碎片,上清转移到另一个试管中。
high镍柱纯化步骤
High镍柱纯化通常是用于蛋白质的纯化,以下是一般的High镍柱纯化步骤:
1.平衡柱子:使用结合缓冲液(通常是磷酸盐缓冲液或Tris 缓冲液)
平衡High 镍柱,确保柱子中的镍离子与缓冲液中的配体充分结合。
2.上样:将含有目标蛋白质的混合物加载到柱子上。
柱子通常具有
较大的载量,可以处理较大量的蛋白质样品。
3.洗涤:使用洗涤缓冲液(通常是含有低浓度咪唑或其他竞争配体
的缓冲液)洗涤柱子,以去除未结合的杂质。
4.洗脱:使用洗脱缓冲液(通常是含有高浓度咪唑或其他竞争配体
的缓冲液)洗脱目标蛋白质。
洗脱缓冲液中的咪唑或竞争配体可以与镍离子结合,从而取代结合在柱子上的目标蛋白质。
5.收集洗脱液:收集洗脱液中的目标蛋白质,通常使用离心或过滤
等方法进行浓缩和纯化。
需要注意的是,High 镍柱纯化的具体步骤可能会因柱子的类型、目标蛋白质的特性以及实验条件的不同而有所差异。
在进行High 镍柱纯化之前,建议仔细阅读柱子的使用说明和相关文献,以确保获得最佳的纯化效果。
此外,还可以根据实际情况进行优化和改进,例如调整缓冲液的组成、pH 值和洗脱条件等。
镍柱蛋白纯化
镍柱蛋白纯化一、原理镍柱里面含有琼脂糖微球体,在琼脂糖鳌合介质的作用下微球体与Ni2+发生螯合,螯合后的Ni2+能与HIS上的咪唑环发生特殊的相互作用,从而实现蛋白质的分离。
影响蛋白质/多肽与金属离子鳌合力大小的因素主要是蛋白质表面可结合的氨基酸(种类、数目和分布)、金属离子的种类和密度、层析条件(pH、盐的种类和浓度、添加剂等)二、缓冲液的配制(500ml PH=7.4)Binding buffer: PB 50mlNacl 14.625g20mM咪唑 1.8g (5~50mM)Washing buffer: PB 50 mMNacl 14.625g5mM 0.45g10 mM 0.9g15 mM 1.35g20 mM 1.8g40Mm 3.6gElution buffer: PB 50mlNacl 14.625g100 mM 9g200mM 18g400mM咪唑 45g600mM咪唑 63g三、操作步骤此步骤过镍柱的所有溶液、上清蛋白都要先用滤膜过滤,所有液体过镍柱的速度要严格控制2.5ml /min,中间镍柱不能进气泡1、5倍镍柱体积去离子水洗涤,去除空气和20%乙醇(5ml /min)2、5~10倍镍柱体积Binding buffer平衡3、上蛋白样品4、5倍镍柱体积Wsahing buffer 洗脱杂蛋白(HIS标签含有6个组氨酸,结合能力强于含有单个组氨酸的杂蛋白),此步骤设洗脱梯度5、5倍镍柱体积Elution buffer洗脱目的蛋白,此步骤设洗脱梯度6、5倍体积去离子水清洗掉缓冲液7、20%乙醇保存于 4℃注意:洗脱可能会把金属离子和蛋白质的复合物一起洗下来四、镍柱重生(介质使用约3-20次,具体与原料来源、样品体积等有关)1.镍柱用去离子水清洗2.5倍镍柱体积EDTA 重生镍柱(20 mM PB + 0.5 M NaCl +50 mM EDTA,pH 7.4)3.5倍体积 Binding buffer 平衡4.5倍体积去离子水清洗5.20倍体积 1M NaoH 洗涤6.水洗至中性7.5倍柱体积挂镍8.用5倍体积以上的纯水清洗层析柱,去除游离的金属离子9.20% 乙醇保存 4℃五、注意事项1、推荐在中性至弱碱性的条件下(PH 7~8)结合重组蛋白,磷酸盐Buffer是常用的缓冲液,Tric-cl在一般情况下可用,但要注意它会降低结合强度2、避免在Buffer中包含EDTA或柠檬酸盐等螯合剂3、若重组蛋白以包涵体形式表达,在所有Buffer中添加6M盐酸胍或8M尿素4、避免缓冲液中有高浓度的供电子基团,如:NH4,甘氨酸,精氨酸,Tris5、各种Buffer中不能含有高浓度的强还原剂,比如DTT,防止二价NI被还原6、不能含有离子型的去垢剂,比如SDS,防止Ni流失7、Buffer里可加入甘油,防止蛋白之间由于疏水相互作用而发生聚集沉淀,甘油浓度可高达50%8、Buffer中Nacl浓度应在300 Mm ~2M之间9、可加入非离子型去垢剂友情提示:本资料代表个人观点,如有帮助请下载,谢谢您的浏览!。
镍柱纯化蛋白的原理及步骤
镍柱纯化蛋白的原理及步骤
嘿,朋友们!今天咱来好好聊聊镍柱纯化蛋白这个超酷的事儿!
镍柱纯化蛋白的原理就像是一个精准的“抓捕行动”!你可以想象一下,蛋白就像是一群各具特点的“小家伙”,镍离子呢,就像是一个个有着特殊魔力的“小陷阱”。
那些带有特定标签的蛋白,会像被磁铁吸引一样,乖乖地被镍离子给“抓住”。
比如说,就好像一群小朋友中,只有带着特定标志的小朋友会被特定的游戏区域吸引进去一样!这是不是超级神奇呀?
那镍柱纯化蛋白具体是怎么操作的呢?首先啊,咱得把含有目标蛋白的溶液准备好,这就好比是把“小家伙们”聚集起来。
然后呢,让这个溶液慢慢地流过镍柱,嘿嘿,这时候,那些带有标签的蛋白就会紧紧地被镍柱上的镍离子抓住啦。
这就像是小鱼游进了渔网一样,跑不掉咯!接下来,咱可以用一些特殊的溶液去冲洗镍柱,把那些杂七杂八的蛋白给洗掉,就像把其他不是我们想要的小朋友请出去一样。
最后呢,用一种能让蛋白和镍离子“松开手”的溶液,把我们心心念念的目标蛋白给洗脱下来,哇,大功告成啦!就像终于从游戏区域得到了我们最想要的那个奖品!
总之,镍柱纯化蛋白这个过程真的超级有趣又超有用!大家赶紧去试试看吧!哎呀,我都等不及要再去玩一把这个“蛋白纯化游戏”啦!。
镍柱纯化原理
镍柱纯化原理镍柱纯化是一种常用的化学分离技术,它通过吸附剂对混合物中的目标物质进行选择性吸附和分离,从而实现对目标物质的纯化。
镍柱纯化原理主要包括吸附、洗脱和再生三个步骤,下面将对这三个步骤进行详细介绍。
首先是吸附步骤。
在镍柱纯化中,吸附剂是起着关键作用的物质,它能够选择性地吸附目标物质,并将其从混合物中分离出来。
吸附剂的选择通常是根据目标物质的特性来确定的,比如镍柱纯化中常用的吸附剂有硅胶、活性炭等。
当混合物通过镍柱时,目标物质会被吸附剂吸附住,而其他杂质则会被通过。
接下来是洗脱步骤。
在吸附步骤之后,我们需要将吸附在吸附剂上的目标物质从吸附剂上洗脱下来。
这一步通常通过改变溶剂的性质或者浓度来实现。
在镍柱纯化中,我们可以使用不同极性的溶剂来实现目标物质的洗脱,比如可以先用极性较小的溶剂洗脱掉杂质,再用极性较大的溶剂洗脱目标物质。
通过这样的洗脱过程,我们可以将目标物质从吸附剂上完全洗脱下来。
最后是再生步骤。
在镍柱纯化中,吸附剂通常可以被多次使用,因此在洗脱完成后,我们需要对吸附剂进行再生,以便下一轮的使用。
再生通常是通过改变溶剂的性质或者温度来实现的,比如可以使用高温或者特定的溶剂来将吸附在吸附剂上的目标物质彻底洗脱,从而使吸附剂恢复吸附能力。
综上所述,镍柱纯化原理包括吸附、洗脱和再生三个步骤,通过这些步骤我们可以实现对混合物中目标物质的纯化分离。
镍柱纯化技术在化学、生物制药等领域有着广泛的应用,它为我们提供了一种高效、可靠的分离纯化方法,为科研和生产提供了重要的技术支持。
镍柱纯化原理
镍柱纯化原理镍柱纯化是一种常用的金属离子纯化方法,主要用于从含镍废水或废气中去除镍离子,以达到净化环境和回收资源的目的。
镍柱纯化原理是基于镍离子在特定条件下与固定相发生化学反应的基础上,通过吸附、离子交换等机理将镍离子从废水或废气中去除。
下面将详细介绍镍柱纯化的原理及操作过程。
首先,镍柱纯化的原理是基于固相萃取技术,利用固定相对镍离子进行选择性吸附和分离。
通常采用的固相材料是以有机合成树脂为主要成分的离子交换树脂。
这种树脂具有一定的孔隙结构和表面活性基团,能够与镍离子发生化学反应,将其固定在树脂上。
在实际操作中,将含镍废水或废气通过镍柱,镍离子会优先与树脂表面的活性基团发生化学吸附,从而实现镍离子的分离和纯化。
其次,镍柱纯化的原理还涉及到离子交换机理。
离子交换树脂是一种在水溶液中能够与金属离子进行交换的材料。
在镍柱纯化过程中,镍离子会与树脂上的功能基团进行离子交换,从而被固定在树脂上,而废水中的其他金属离子则不会被固定,实现了镍离子的选择性吸附和分离。
最后,镍柱纯化的操作过程包括吸附、洗脱和再生三个步骤。
吸附阶段是指将含镍废水或废气通过镍柱,使镍离子被树脂吸附固定的过程。
洗脱阶段是指用洗脱剂将镍离子从树脂上洗脱出来,得到浓缩的镍溶液。
再生阶段是指通过调整洗脱剂的条件或者利用酸碱溶液对树脂进行再生,使树脂恢复到吸附镍离子的状态,以便进行下一轮的吸附操作。
总之,镍柱纯化是一种高效的镍离子纯化方法,其原理基于固相萃取和离子交换机理,通过选择性吸附和分离实现了镍离子的纯化。
在实际应用中,需要根据具体情况选择合适的固相材料和操作条件,以达到最佳的纯化效果。
希望本文对镍柱纯化原理有所帮助,谢谢阅读。
纯化系统操作准则(三篇)
纯化系统操作准则1、工作前,穿好工作服、防砸鞋,戴好耳塞、工作帽等。
2、查看交接班记录,面对面接班,了解设备运行状况和故障处理情况。
3、.查阅两台纯化器原始记录,确定各自工作状态,检查再生气旁通阀是否全关;4、待预冷系统工作稳定后,对需工作的纯化器充压至0.65MPa;5、检查各切换截止阀是否漏气,并调整好各纯化器工作状态,投入运行;6、调整稳定再生气流量和温度。
7、停止:1)系统泄压后,关闭各切换截止阀;2)停止纯化器工作,及加热器电源;3)纪录好纯化器工作状态。
8、加热器的操作:1)启动:先通气、后通电,并控制好加热温度;2)停止:先断电、后断气,再停止电源。
9、操作中注意事项1)再生阶段,应及时调整再生气流量在规定要求内。
2)再生加温结束以控制出口温度达到规定值为标志,其加温时间作为参考。
吹冷阶段结束以吹冷到比空气进口温度高5-10℃作为结束标志。
3)电加热器严禁不通气就启动电源,严格控制电加热器出口温度超限,有效保护电加热器。
4)严格控制好均压,放压速度,绝对禁止用再生气出口阀以较快速度泄压。
10、交接班:1)打扫岗位环境卫生,保持空压机地面及各设备操作台面无灰尘、无油污、干净整洁、现场各物品按标识摆放整齐有序;2)面对面交班,介绍本班设备运行状况和故障处理情况。
11、作业记录:1)空压岗位机组运行记录;2)岗位巡检记录;3)日常点检表;4)交接班记录。
纯化系统操作准则(二)纯化系统是工业生产过程中常用的一种设备,它主要用于将原始物质经过一系列的物理和化学处理,去除其中的杂质,提高纯度,使得物质达到所需的纯净度要求。
为了确保纯化系统的正常运行和操作过程中的安全性和稳定性,制定一套完善的操作准则是非常重要的。
下面将详细介绍纯化系统操作准则,包括设备准备、操作流程、安全措施等方面。
一、设备准备1.1 检查设备状况:在操作纯化系统前,需要检查设备是否完好,各个部件是否正常运转,有无泄漏现象等。
镍柱分离纯化
镍柱分离纯化固定金属离子亲和柱主要用于金属螯化离子。
位于许多蛋白中的组氨酸残基将会和许多金属离子,例如锌。
铜,镍,铁等形成复合物。
因此,该柱料能选择性螯合一些具有组氨酸残基的蛋白质。
但是半胱氨酸和咯氨酸残基也能和固定化金属螯和。
但是亲和力比组氨酸要弱。
所以,结合的强度是和缓冲液的PH和金属离子决定的。
金属螯和柱料主要是由亚氨基的乙酰乙酸成分耦联琼脂糖柱料,借助醚长生7个原子的空间。
全部容量:24-30um的含有zn的干胶柱料结构:6%的高铰链的琼脂糖柱料大小:45-165um平均微粒:90um直流速度:25度/0.1MPa/30倍柱床/5厘米高度/每小时可达700厘米最大压强:0.3MPaPH变化:长期3-13短期2-14化学稳定:通用含水缓冲液0.01M盐酸,1.0M NAOH, 20%乙醇(保存7天)物理性质:可以忽略在PH或者离子变化下的体积变化耐热性能:121度下0.1M乙酸钠作用半小时金属螯和柱料保存于事先填充于20%乙醇。
所以要搅拌驱除20%乙醇溶液。
换成去离子水。
比例是25%去离子水和75%处理胶。
处理金属螯和柱料:1 平衡所有用到的材料于室温。
2 搅拌金属螯和柱料3 倒水进柱子,驱除气体。
用无离子水液封几厘米。
4 将金属螯和柱料连续倒进柱子,用玻璃棒支撑柱壁防止气泡形成。
5 然后立即用无离子水液封,装上柱盖,连接上泵。
6 打开柱子底部的开关,然后调节泵的流速。
通常是不超过0.3MPa的。
7 经过一个稳定的柱床填鸭后,维持填压速度为3个柱床。
使用adaptor1 经过上溯填鸭后,关闭柱床下面开关,移开上面的薄膜,小心的加上去离子水进行液封。
2 一定角度插入adaptor,确保没有气泡。
3 确保所有的连接都没有问题,柱子/泵/样品接受器4 倾斜插入活塞确保没有气泡和管道充满液体。
利用活泵正反向的流动确保没有气泡。
5 固定adaptor,打开柱子开关,开始缓冲液的流动。
先以填鸭的速度直到柱床稳定后。
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蛋白纯化系统操作流程
一、蛋白的诱导:蛋白原核表达
1、取菌种接种于含Amp LB固体培养基中(分区划线),37℃培养过夜;
2、挑取单克隆接种于5ml含Amp LB液体培养基中,37℃振摇过夜;
3、从过夜培养物中取2ml接种于100ml Amp LB液体培养基中,振摇2h(留样1ml);
4、加入一定终浓度IPTG,37℃诱导表达4h(留样1ml),离心,弃上清收集细菌。
存入4℃。
二、蛋白表达状态分析(可溶性or包涵体表达)
取少量(1ml)诱导菌体沉淀,加入不含变性剂(如盐酸胍,尿素等)PBS(150μl),超声裂解。
分离上清和沉淀,分别SDS-PAGE电泳。
三、蛋白的纯化
纯化前准备
1.推荐在中性至弱碱性条件下(pH 7-8)结合重组蛋白。
磷酸盐buffer是常用的缓冲液,
Tric-Cl在一般情况下可用,但要注意它会降低结合强度。
2.避免在buffer中包含EDTA或柠檬酸盐等螯合剂
3.若重组蛋白以包涵体形式表达,在所有的buffer中添加6 M 盐酸胍或8 M 尿素
注:
1.包含尿素的样品可直接进行SDS-PAGE分析,若样品中包含盐酸胍,在SDS-PAGE前则
需先用含有尿素的buffer进行透析
2.除利用咪唑洗脱蛋白,其它方法,如低pH 值法等可被应用,详见说明书
Bingding buffer 中咪唑的浓度
在洗涤时所用的Bingding buffer 中咪唑浓度越大,重组蛋白纯度越高。
但过高的咪唑浓度将导致蛋白的洗脱。
合适的咪唑浓度需要优化。
Buffer 的准备
所用的水及化学物质须是高纯度的。
Buffer 在使用前需经0.45 μm滤膜过滤
所用高纯度的咪唑需在280nm 处无吸光度或吸光度极低
推荐buffer
Bingding buffer:20 mM 磷酸盐
0.5 M NaCl
20- 40 mM 咪唑pH 7.4 (咪唑浓度是蛋白依赖的,可变!)Elution buffer :20 mM 磷酸盐
0.5 M NaCl
500 mM 咪唑pH 7.4 (咪唑浓度是蛋白依赖的,可变!)
样品准备
样品需被充分溶解。
过柱前经0.45 μm滤膜过滤。
样品以pH 7.4 binding buffer 溶解。
勿用强酸强碱调节pH 值,否则将可能导致沉淀。
重力纯化法Ni-NTA Column 准备
1. 温和地颠倒瓶中的Ni-NTA Agarose 数次。
2. 吸取2ml的树脂加入15ml离心管中,使树脂在重力(5–10 minutes)或低速离心(5 minute at 500 × g),轻柔的吸出上清。
3. 加入5ml的无菌蒸馏水,温和的颠倒柱子3min,离心5 minute at 500 × g,轻柔的吸出上清。
4. 用bingding buffer 重复第3步。
5. 在Ni 柱中加入等体积的bingding buffer,制成50%的slurry
样品与Ni 柱结合
1.每1ml 50%的slurry中加入4ml 的样品。
1ml 50%的slurry 可结合20mg His-蛋白
2.将混合物室温,低速振荡孵育1h
Buffer 洗涤及洗脱
1.离心5 minute at 500 × g,轻柔的吸出上清。
上清保存放在4℃for SDS-PAGE
analysis。
2.用1 ml Binding Buffer洗涤柱子,在摇床上温和的振荡2min,然后低速离心5 minute
at 500 ×g,小心吸出上清,重复该步一次。
上清保存放在4°C for SDS-PAGE
analysis。
3.用0.5 ml Elution buffer洗脱柱子,方法同4。
重复该步三次。
分管收集4次洗脱
液,存放在4°C for SDS-PAGE analysis。
纯化柱的再生:
如果纯化同一种蛋白,Ni-NTA resin不需要再生,可以重复使用5-7次。
1.用5倍柱体积的含50 mM EDTA,20 mM 磷酸盐,0.5 M NaCl pH 7.4的buffer
洗涤柱子,洗去螯合的镍离子。
2.用5倍柱体积的bingding buffer洗涤柱子
3.用5倍柱体积的无菌去离子水洗涤柱子
4.用0.5倍柱体积的含0.1 M 的NiSO4的无菌水溶液装填
5.用5倍柱体积的无菌去离子水洗涤柱子
6.用5倍柱体积的bingding buffer洗涤柱子
7.加入20%的乙醇4-30℃长期保存。
在某些情况下,一些物质如变性蛋白或脂质在再生过程中不能被洗脱,可采用
Cleaning-in-Place 方法,具体见说明书。