呼吸运动实验
呼吸运动实验报告分析
一、实验目的本次实验旨在通过观察和记录家兔的呼吸运动，分析呼吸运动的调节机制，探讨影响呼吸运动的各种因素，以及呼吸运动在生理和病理状态下的变化。
二、实验原理呼吸运动是机体进行气体交换的重要生理过程，由呼吸肌的舒缩运动和神经系统的调节共同完成。
呼吸运动的主要调节机制包括中枢神经系统调节、外周化学感受器调节、肺牵张反射调节等。
三、实验方法1. 实验动物：选用健康成年家兔作为实验动物。
2. 实验器材：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、生理盐水、20%氨基甲酸乙酯等。
3. 实验步骤：（1）麻醉家兔，背位固定，剪去颈部与剑突腹面的被毛。
（2）切开颈部皮肤，分离气管，插入气管插管。
（3）分离出双侧迷走神经，穿线备用。
（4）连接张力传感器、引导电极和计算机采集系统，记录呼吸运动。
（5）观察并记录正常呼吸曲线。
（6）增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
（7）剪断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
（8）注射生理盐水，观察呼吸运动的变化。
（9）注射乳酸，观察呼吸运动的变化。
四、实验结果与分析1. 正常呼吸曲线家兔正常的呼吸曲线呈周期性变化，曲线上升阶段为吸气，下降阶段为呼气。
吸气时肺扩张，剑突软骨上升，拉着剑突软骨的细线放松；呼气时肺缩小，剑突软骨下降，细线紧绷。
2. 增加无效腔后的呼吸运动增大气道长度后，家兔的呼吸张力增强，呼吸频率增加。
增加的气道长度等于增加的无效腔，气道加长使得呼吸阻力增大，呼吸加深加快。
3. 剪断双侧迷走神经后的呼吸运动剪断双侧迷走神经后，家兔呈现明显的慢而深的呼吸。
这是因为迷走神经中含有肺牵张反射的传入纤维，肺牵张反射中的肺扩张反射的生理作用在于阻止吸气过长过深，促使吸气及时转为呼气，从而加速了吸气和呼气动作的交替，调节呼吸的频率和深度。
当剪断双侧迷走神经以后，中断了左右两侧的肺牵张反射的传入道路，肺扩张反射的生理作用就被完全消除，故呈现明显的慢而深的呼吸。
呼吸的小实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解呼吸的基本原理和过程。
2. 探究呼吸对人体的作用和重要性。
3. 通过实验验证呼吸对人体生理功能的影响。
二、实验原理呼吸是人体进行气体交换的重要生理过程，通过呼吸系统吸入氧气，排出二氧化碳，维持人体正常生理功能。
实验中，我们将通过观察人体在不同呼吸方式下的生理变化，验证呼吸对人体的重要性。
三、实验材料1. 实验对象：志愿者（20名，男女各10名，年龄18-25岁，身体健康）2. 实验器材：秒表、血压计、心率计、呼吸测量仪、氧气浓度计、二氧化碳浓度计四、实验方法1. 实验分组：将志愿者分为四组，每组5人。
2. 实验步骤：a. 第一组：正常呼吸组。
志愿者正常呼吸，记录1分钟内的呼吸次数、心率、血压、氧气浓度和二氧化碳浓度。
b. 第二组：深呼吸组。
志愿者进行深呼吸，记录1分钟内的呼吸次数、心率、血压、氧气浓度和二氧化碳浓度。
c. 第三组：屏气组。
志愿者尽力屏住呼吸，记录1分钟内的呼吸次数、心率、血压、氧气浓度和二氧化碳浓度。
d. 第四组：过度呼吸组。
志愿者进行过度呼吸，记录1分钟内的呼吸次数、心率、血压、氧气浓度和二氧化碳浓度。
3. 数据处理：将每组实验数据进行分析，比较不同呼吸方式下的生理指标变化。
五、实验结果1. 正常呼吸组：- 呼吸次数：每分钟16-20次- 心率：每分钟60-100次- 血压：收缩压90-120mmHg，舒张压60-80mmHg - 氧气浓度：21%- 二氧化碳浓度：0.04%2. 深呼吸组：- 呼吸次数：每分钟10-15次- 心率：每分钟70-90次- 血压：收缩压85-110mmHg，舒张压55-75mmHg - 氧气浓度：22%- 二氧化碳浓度：0.03%3. 屏气组：- 呼吸次数：0次- 心率：每分钟100-120次- 血压：收缩压120-140mmHg，舒张压80-100mmHg - 氧气浓度：18%- 二氧化碳浓度：0.05%4. 过度呼吸组：- 呼吸次数：每分钟25-30次- 心率：每分钟50-70次- 血压：收缩压70-95mmHg，舒张压45-65mmHg- 氧气浓度：23%- 二氧化碳浓度：0.02%六、实验分析1. 正常呼吸组：在正常呼吸下，人体生理指标稳定，氧气浓度和二氧化碳浓度处于正常范围。
呼吸运动实验报告
呼吸运动实验报告实验目的：通过呼吸运动实验观察和验证人类的呼吸运动规律及其影响因素。
实验原理：呼吸运动是人体进行气体交换的重要生理过程之一。
在正常情况下，呼吸运动分为吸气和呼气两个过程。
吸气时，肺内压力降低，胸腔扩张，从而使空气进入肺部；呼气时，肺内压力增加，胸腔收缩，将空气排出体外。
实验材料：呼吸运动实验箱、呼吸带、呼吸运动传感器、计数器。
实验步骤：1. 将呼吸运动传感器固定在胸部，确保其与呼吸运动实验箱相连。
2. 在实验箱内放置呼吸带，并将呼吸带固定在胸部。
3. 将呼吸运动传感器与计数器相连。
4. 呼吸运动实验开始后，观察计数器数据的变化，并记录下吸气和呼气的次数及时间等相关数据。
5. 改变实验条件，如呼吸频率、呼吸深度等，再次进行实验，观察记录数据。
实验结果：根据实验步骤中记录的吸气和呼气的次数及时间数据，可以绘制不同条件下的呼吸运动曲线图。
呼吸运动曲线图的特点如下：1. 吸气过程一般较为短暂，时间较呼气过程短。
2. 呼气过程一般较为持续，时间较吸气过程长。
3. 吸气和呼气的幅度一般相等，但也会受到呼吸频率和深度的影响。
实验讨论：1. 呼吸频率和呼吸深度对呼吸运动的影响：实验中改变呼吸频率和呼吸深度可以观察到呼吸运动曲线的变化。
当呼吸频率增加时，呼吸运动曲线中的吸气和呼气次数相对增加，呼吸运动速度加快。
当呼吸深度增加时，呼吸运动曲线的幅度增大，呼吸运动的强度增加。
2. 呼吸运动的规律性：正常情况下，呼吸运动具有一定的规律性。
吸气和呼气的次数一般保持相对稳定，吸气和呼气的时间一般保持适当的比例。
3. 呼吸运动的调节机制：呼吸运动受到中枢神经系统的调节。
神经系统通过感受器感知到体内各种化学物质浓度的变化，然后发出指令来调节呼吸运动的频率和深度，以保持体内氧气和二氧化碳的平衡。
4. 呼吸运动与心血管系统的关系：呼吸运动与心血管系统密切相关。
通过呼吸运动的变化，可以影响心脏的收缩和舒张，进而调节血液循环。
呼吸运动实验报告
一、实验目的1. 掌握呼吸运动的基本原理和调节机制。
2. 通过实验观察呼吸运动的生理现象，加深对呼吸运动调节的理解。
3. 掌握呼吸运动的测定方法和相关实验技能。
二、实验原理呼吸运动是人体进行气体交换的重要生理过程，它是由呼吸肌在神经系统的支配下进行的有节律性的收缩和舒张造成的。
呼吸运动的基本原理是：当肺容积增大时，肺内压力降低，外界气体进入肺内；当肺容积减小时，肺内压力升高，肺内气体排出体外。
呼吸运动的调节主要受神经系统和体液因素的影响。
三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：呼吸机、气管插管、注射器、橡皮管、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、麻醉机、生理盐水、20%氨基甲酸乙酯等。
四、实验方法与步骤1. 实验动物麻醉：将家兔放入麻醉机内，注入20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。
2. 气管插管：将气管插管插入家兔气管，连接呼吸机，调节呼吸参数。
3. 分离气管：将气管分离干净，连接张力传感器，观察呼吸运动曲线。
4. 分离双侧迷走神经：分离出双侧迷走神经，穿线备用。
5. 记录膈肌放电：将引导电极插入膈肌，连接计算机采集系统，观察膈肌放电情况。
6. 观察并分析肺牵张反射：通过调节呼吸参数，观察肺牵张反射对呼吸运动的影响。
7. 观察并分析化学因素对呼吸运动的影响：通过注射不同浓度的CO2和N2，观察化学因素对呼吸运动的影响。
五、实验结果与分析1. 观察呼吸运动曲线：呼吸运动曲线呈现周期性变化，上升阶段为吸气，下降阶段为呼气。
通过调节呼吸参数，可以观察到呼吸频率、呼吸深度和呼吸节律的变化。
2. 观察肺牵张反射：当肺容积增大时，呼吸运动曲线上升，肺容积减小时，呼吸运动曲线下降。
肺牵张反射对呼吸运动有调节作用，当肺容积增大时，肺牵张反射使吸气运动减弱，肺容积减小时，肺牵张反射使呼气运动减弱。
3. 观察化学因素对呼吸运动的影响：注射CO2后，呼吸运动曲线上升幅度增大，频率加快；注射N2后，呼吸运动曲线上升幅度减小，频率减慢。
呼吸运动调节实验报告
一、实验目的1. 掌握呼吸运动调节的基本原理和方法。
2. 观察血液中化学因素（PCO2、PO2、[H]）改变对呼吸运动（呼吸频率、节律、通气量）的影响及机制。
3. 学习气管插管术和神经血管分离术。
二、实验原理呼吸运动是呼吸中枢在中枢神经系统和体液因素调节下，通过呼吸肌节律性运动使胸廓节律性地扩大或缩小，从而实现吸入氧气和排出二氧化碳的过程。
呼吸运动调节机制主要包括化学因素调节、神经调节和体液调节。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、气管插管、注射器、橡皮管、刺激电极、生理盐水、棉线、纱布等。
四、实验步骤1. 家兔麻醉：取一只家兔，称重后，用剪刀剪去耳缘静脉上的毛。
用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25%氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉。
2. 气管插管：在兔颈部进行气管插管，连接呼吸传感器，记录呼吸频率和通气量。
3. 呼吸运动调节实验：a. 观察正常呼吸曲线：记录家兔在正常条件下的呼吸频率、节律和通气量。
b. 观察CO2吸入对呼吸运动的影响：通过气管插管向家兔吸入一定浓度的CO2，观察呼吸频率、节律和通气量的变化。
c. 观察N2吸入对呼吸运动的影响：通过气管插管向家兔吸入一定浓度的N2，观察呼吸频率、节律和通气量的变化。
d. 观察无效腔增大对呼吸运动的影响：通过手术方法扩大家兔的无效腔，观察呼吸频率、节律和通气量的变化。
e. 观察肺牵张反射对呼吸运动的影响：剪断家兔双侧迷走神经，观察呼吸频率、节律和通气量的变化。
4. 实验结束：完成所有实验步骤后，将家兔恢复至正常状态，进行解剖观察。
五、实验结果与分析1. 正常呼吸曲线：家兔在正常条件下的呼吸频率约为60-80次/分钟，节律均匀，通气量适中。
2. CO2吸入对呼吸运动的影响：吸入CO2后，家兔呼吸频率明显加快，节律变浅，通气量增加。
这是因为CO2是一种化学刺激物质，能够刺激中枢神经系统，使呼吸中枢兴奋，从而增加呼吸频率和通气量。
呼吸运动调节实验报告
呼吸运动调节实验报告
目录
1. 实验目的
1.1 呼吸运动调节的意义
1.2 实验原理
1.2.1 正常呼吸过程
1.2.2 呼吸调节机制
1.2.3 实验设备
1.2.4 实验步骤
1.3 实验结果分析
1.3.1 实验现象观察
1.3.2 数据收集与分析
1.4 实验结论及意义
1. 实验目的
开展呼吸运动调节实验，探究呼吸运动对人体的重要性及呼吸调节的相关机制。
1.1 呼吸运动调节的意义
研究呼吸运动调节的意义，有助于更深刻地理解呼吸系统在维持人体正常功能中的重要性。
1.2 实验原理
1.2.1 正常呼吸过程
通过呼吸运动，人体吸入氧气，排出二氧化碳，完成气体交换，维持细胞健康。
1.2.2 呼吸调节机制
呼吸调节包括神经调节和化学调节两种主要机制，分别负责响应不同的生理需求。
1.2.3 实验设备
实验中使用的设备包括呼吸频率计、肺活量计等，用于记录和测量呼
吸运动数据。
1.2.4 实验步骤
详细介绍实验中的步骤，包括准备实验材料、进行实验操作等。
1.3 实验结果分析
1.3.1 实验现象观察
观察实验过程中呼吸运动的变化，记录并分析相关数据。
1.3.2 数据收集与分析
对实验结果进行数据收集和分析，探讨呼吸运动对人体的影响。
1.4 实验结论及意义
总结实验结果，阐述呼吸运动调节对人体健康和生理功能的重要性。
呼吸运动评估实验报告
一、实验目的1. 了解呼吸运动的基本原理和生理机制。
2. 掌握呼吸运动评估的方法和步骤。
3. 分析呼吸运动评估结果，评估受试者的呼吸功能。
二、实验原理呼吸运动是机体与外界环境进行气体交换的重要生理过程，主要由呼吸肌的收缩和舒张引起。
评估呼吸运动有助于了解呼吸系统的功能状态，对呼吸系统疾病的诊断、治疗和康复具有重要意义。
三、实验材料1. 受试者：20名年龄、性别、体重相似的志愿者。
2. 实验仪器：呼吸功能测试仪、肺功能测试仪、血压计、体温计等。
3. 实验试剂：生理盐水、消毒液等。
四、实验方法1. 受试者安静休息10分钟，记录基础血压、心率、体温等生理指标。
2. 使用呼吸功能测试仪，记录受试者的呼吸频率、潮气量、每分钟通气量、肺活量等指标。
3. 使用肺功能测试仪，记录受试者的第一秒用力呼气量（FEV1）、第一秒用力呼气量与用力肺活量的比值（FEV1/FVC）等指标。
4. 对受试者进行体格检查，观察胸廓、呼吸肌等部位的形态和功能。
五、实验步骤1. 受试者取舒适体位，平静呼吸。
2. 使用呼吸功能测试仪，记录受试者的呼吸频率、潮气量、每分钟通气量、肺活量等指标。
3. 使用肺功能测试仪，记录受试者的FEV1、FEV1/FVC等指标。
4. 对受试者进行体格检查，观察胸廓、呼吸肌等部位的形态和功能。
5. 对受试者进行问卷调查，了解其吸烟史、职业暴露史等。
六、实验结果1. 受试者的呼吸频率、潮气量、每分钟通气量、肺活量等指标均在正常范围内。
2. 受试者的FEV1、FEV1/FVC等指标均在正常范围内。
3. 受试者的胸廓形态、呼吸肌功能良好。
七、实验讨论1. 本实验结果表明，受试者的呼吸功能良好，无明显的呼吸系统疾病。
2. 呼吸运动评估是了解呼吸系统功能状态的重要手段，对呼吸系统疾病的诊断、治疗和康复具有重要意义。
3. 在进行呼吸运动评估时，应注意以下几点：- 选择合适的评估方法和步骤。
- 确保受试者安静、舒适。
- 准确记录各项指标。
生理实验报告_呼吸运动
一、实验目的1. 观察并记录呼吸运动的生理现象。
2. 探讨呼吸运动的调节机制，包括神经和体液调节。
3. 分析影响呼吸运动的各种因素。
二、实验原理呼吸运动是机体进行气体交换的重要生理过程，由呼吸中枢控制，通过神经和体液调节，使呼吸运动适应机体的生理需求。
呼吸运动包括吸气、呼气两个过程，其调节机制涉及呼吸中枢、化学感受器、肺牵张反射等多种因素。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、气管插管、注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布3. 实验试剂：生理盐水、20%氨基甲酸乙酯四、实验步骤1. 麻醉与固定：取一只家兔，称重后，用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25%氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉。
麻醉成功后，将家兔背位固定于手术台上。
2. 颈部手术：剪去颈部与剑突腹面的被毛，切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管。
分离出双侧迷走神经，穿线备用。
3. 呼吸运动记录：用橡皮管插管一个侧管通过马利氏气鼓连于压力转能器，然后与生物机能实验系统或二道生理记录仪相应端口连接。
气管插管的另一侧管口开口于大气，调整其口径使记录的呼吸运动有一定幅度。
再调节生理机能系统或二道生理记录仪的放大倍数、记录速度，使描记的呼吸曲线疏密及振幅均匀适宜。
4. 观察指标：记录呼吸频率和幅度。
5. 实验分组：- 对照组：观察正常呼吸运动。
- CO2吸入组：向气管插管内注入一定量的CO2，观察呼吸运动的变化。
- 乳酸吸入组：向气管插管内注入一定量的乳酸，观察呼吸运动的变化。
- 迷走神经切断组：切断家兔双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
五、实验结果与分析1. 对照组：呼吸运动规律，呼吸频率和幅度稳定。
2. CO2吸入组：呼吸频率加快，幅度增大，表明CO2对呼吸运动有刺激作用。
3. 乳酸吸入组：呼吸频率加快，幅度增大，表明乳酸对呼吸运动有刺激作用。
呼吸运动模型实验报告
一、实验目的1. 通过模型实验，了解呼吸运动的基本原理。
2. 掌握呼吸运动模型的使用方法。
3. 分析影响呼吸运动的各种因素，如胸廓容积、肺内压、呼吸肌的收缩与舒张等。
二、实验原理呼吸运动是指在中枢神经系统的控制下，通过呼吸肌的收缩与舒张，使胸廓节律性地扩大或缩小，从而实现肺的通气。
呼吸运动分为吸气相和呼气相，吸气相时，胸廓容积增大，肺内压降低，气体进入肺内；呼气相时，胸廓容积减小，肺内压升高，气体排出肺外。
三、实验材料1. 呼吸运动模型一套2. 气泵3. 气球4. 橡皮膜5. 量筒6. 记录纸7. 计时器四、实验步骤1. 将呼吸运动模型组装好，确保各部件连接牢固。
2. 将气球充满气体，固定在模型上，模拟肺。
3. 将橡皮膜固定在模型上，模拟膈肌。
4. 将气泵连接到模型上，控制气体的进出。
5. 启动气泵，观察并记录呼吸运动过程。
五、实验现象与分析1. 吸气相：当气泵启动后，气球逐渐膨胀，表示肺内气体进入肺内；同时，橡皮膜顶部下降，表示膈肌收缩，胸廓上下径扩大，胸廓容积增大。
2. 呼气相：当气泵关闭后，气球逐渐收缩，表示肺内气体排出肺外；同时，橡皮膜顶部上升，表示膈肌舒张，胸廓上下径减小，胸廓容积减小。
六、影响呼吸运动的因素1. 胸廓容积：胸廓容积增大，肺内压降低，气体进入肺内；胸廓容积减小，肺内压升高，气体排出肺外。
2. 肺内压：肺内压降低，气体进入肺内；肺内压升高，气体排出肺外。
3. 呼吸肌的收缩与舒张：膈肌收缩，胸廓容积增大，肺内压降低，气体进入肺内；膈肌舒张，胸廓容积减小，肺内压升高，气体排出肺外。
七、实验结论1. 呼吸运动是中枢神经系统控制下，通过呼吸肌的收缩与舒张，使胸廓节律性地扩大或缩小，从而实现肺的通气。
2. 影响呼吸运动的因素有胸廓容积、肺内压、呼吸肌的收缩与舒张等。
3. 通过呼吸运动模型实验，可以直观地了解呼吸运动的基本原理和影响因素。
八、实验注意事项1. 实验过程中，注意观察呼吸运动现象，确保实验顺利进行。
内科呼吸运动实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握呼吸运动的基本原理和调节机制。
2. 观察呼吸运动的主要影响因素，如CO2、O2、胸内压等。
3. 学习使用呼吸监测仪器，记录和分析呼吸运动数据。
二、实验原理呼吸运动是机体进行气体交换的重要生理过程，其调节机制主要涉及神经系统和体液系统。
呼吸中枢位于大脑皮层、间脑、桥脑、延髓和脊髓等部位，通过神经传导和体液调节共同控制呼吸运动的深度和频率。
本实验旨在通过观察和分析呼吸运动的变化，探讨呼吸运动的调节机制。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：家兔、生理盐水、CO2、O2、乳酸、麻醉剂、气管插管、呼吸传感器、生理信号采集处理系统、注射器、橡皮管、刺激电极等。
2. 实验仪器：手术台、常用手术器械、生物机能实验系统、二道生理记录仪、呼吸传感器、止血钳等。
四、实验方法1. 实验分组：将实验分为对照组和实验组，每组10只家兔。
2. 麻醉与手术：对家兔进行全身麻醉，进行颈部急性手术，记录家兔呼吸运动的方法。
3. 呼吸监测：采用呼吸传感器直接记录家兔的呼吸频率与幅度。
4. 观察指标：（1）吸入增加CO2的气体：观察呼吸频率和幅度的变化。
（2）吸入O2气体：观察呼吸频率和幅度的变化。
（3）静脉注射乳酸：观察呼吸频率和幅度的变化。
（4）增大无效腔：观察呼吸频率和幅度的变化。
5. 数据处理：采用统计学方法对实验数据进行分析。
五、实验结果与分析1. 吸入增加CO2的气体：实验结果显示，吸入增加CO2的气体后，家兔的呼吸频率和幅度均明显增加。
这是由于CO2通过血脑屏障进入脑脊液中，刺激呼吸中枢，使呼吸运动加强。
2. 吸入O2气体：实验结果显示，吸入O2气体后，家兔的呼吸频率和幅度无明显变化。
这表明O2对呼吸运动的调节作用较弱。
3. 静脉注射乳酸：实验结果显示，静脉注射乳酸后，家兔的呼吸频率和幅度明显增加。
这是由于乳酸改变了血液中的pH值，刺激外周化学感受器和中枢化学感受器，使呼吸运动加强。
4. 增大无效腔：实验结果显示，增大无效腔后，家兔的呼吸频率和幅度明显增加。
生物呼吸运动实验报告
一、实验目的1. 观察生物呼吸运动的基本现象。
2. 掌握呼吸运动的生理学原理。
3. 分析影响呼吸运动的主要因素。
4. 探讨呼吸运动调节的生理机制。
二、实验原理呼吸运动是生物体通过呼吸系统完成气体交换的过程，包括吸气、呼气、屏气等阶段。
呼吸运动的调节涉及呼吸中枢、神经、体液等多种因素。
通过观察不同条件下的呼吸运动变化，可以了解呼吸运动的生理学原理和调节机制。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：活体鱼类、家兔、豚鼠等。
2. 实验仪器：解剖显微镜、呼吸流量计、生理盐水、注射器、剪刀、镊子等。
四、实验步骤1. 鱼类呼吸运动观察：- 将活体鱼类置于解剖显微镜下，观察其鳃盖运动和鳃丝的血液流动。
- 记录鱼类呼吸频率、幅度和节律。
2. 家兔呼吸运动观察：- 家兔麻醉后，将其固定在解剖台上。
- 使用呼吸流量计观察家兔的呼吸流量变化。
- 改变实验条件（如提高二氧化碳浓度、降低氧浓度等），观察呼吸运动的变化。
3. 豚鼠呼吸运动观察：- 豚鼠麻醉后，将其固定在解剖台上。
- 使用生理盐水浸泡豚鼠的肺组织，观察肺泡的结构和呼吸运动。
- 改变实验条件，观察肺泡结构和呼吸运动的变化。
五、实验结果与讨论1. 鱼类呼吸运动观察：- 观察到鱼类鳃盖运动与鳃丝血液流动同步，说明鱼类通过鳃进行气体交换。
- 呼吸频率、幅度和节律在不同条件下有所变化，可能与水温、氧气浓度等因素有关。
2. 家兔呼吸运动观察：- 观察到家兔的呼吸流量随二氧化碳浓度升高而增加，随氧浓度降低而增加。
- 提高二氧化碳浓度或降低氧浓度时，家兔呼吸频率和幅度增加，说明二氧化碳和氧气是调节呼吸运动的重要因素。
3. 豚鼠呼吸运动观察：- 观察到豚鼠肺泡在呼吸运动过程中扩张和收缩。
- 改变实验条件后，肺泡结构发生变化，呼吸运动也随之改变。
六、结论1. 呼吸运动是生物体通过呼吸系统完成气体交换的过程，涉及呼吸中枢、神经、体液等多种因素。
2. 二氧化碳和氧气是调节呼吸运动的重要因素，二氧化碳浓度升高或氧浓度降低可导致呼吸运动加快。
运动呼吸调节实验报告
一、实验目的1. 了解人体在运动过程中呼吸调节的生理机制。
2. 掌握运动呼吸调节实验的方法和步骤。
3. 分析不同运动强度对呼吸频率、深度和肺通气量的影响。
二、实验原理运动过程中，人体需要大量氧气以满足肌肉代谢需求，同时产生大量二氧化碳。
呼吸调节系统通过调节呼吸频率、深度和肺通气量，保证氧气和二氧化碳的交换，维持人体内环境稳定。
三、实验材料1. 实验对象：健康成年人（男女各10名）。
2. 仪器设备：心率表、呼吸频率计、肺功能仪、运动平板、计时器等。
3. 实验药品：无。
四、实验方法1. 实验分组：将受试者随机分为两组，每组5名，分别进行低强度运动和高强度运动。
2. 实验步骤：（1）受试者静坐休息5分钟，记录呼吸频率、深度和肺通气量。
（2）低强度运动：受试者在运动平板上以60%最大心率进行运动，持续5分钟，记录呼吸频率、深度和肺通气量。
（3）高强度运动：受试者在运动平板上以80%最大心率进行运动，持续5分钟，记录呼吸频率、深度和肺通气量。
（4）受试者静坐休息5分钟，记录呼吸频率、深度和肺通气量。
五、实验结果1. 低强度运动组：（1）呼吸频率：运动前为12次/分钟，运动后为20次/分钟。
（2）呼吸深度：运动前为6cm，运动后为8cm。
（3）肺通气量：运动前为3L/min，运动后为5L/min。
2. 高强度运动组：（1）呼吸频率：运动前为12次/分钟，运动后为25次/分钟。
（2）呼吸深度：运动前为6cm，运动后为10cm。
（3）肺通气量：运动前为3L/min，运动后为8L/min。
六、实验讨论1. 运动过程中，人体呼吸频率、深度和肺通气量均随运动强度的增加而增加，以适应运动对氧气和二氧化碳的需求。
2. 低强度运动时，呼吸调节主要通过增加呼吸频率来实现；高强度运动时，呼吸调节则通过增加呼吸频率和深度来实现。
3. 运动过程中，呼吸调节受神经系统和体液因素的共同调控。
神经系统通过调节呼吸中枢的兴奋性，影响呼吸频率和深度；体液因素如二氧化碳、氢离子等，通过刺激化学感受器，调节呼吸中枢的兴奋性。
呼吸运动调节实验报告（五篇）
呼吸运动调节实验报告（五篇）第一篇：呼吸运动调节实验报告呼吸运动的调节【实验目的】1、学习呼吸运动的记录方法2、观察血液理化因素改变对家兔呼吸运动的影响3、了解肺牵张反射在呼吸运动调节中的作用【实验对象】家兔重量：1.9kg【实验器材和药品】哺乳动物手术器械（主要用到手术刀、组织剪、止血钳、玻璃分针、），兔手术台，生物信号采集处理系统，呼吸换能器，气管插管，20%氨基甲酸乙酯溶液，生理盐水，橡皮管，N 2 气囊，CO 2 气囊等。
【实验方法与步骤】1.取家兔并称重，由家兔腹腔缓慢注入20%氨基甲酸乙酯溶液10ml，（因注射过程中出现差错，后补注入20%氨基甲酸乙酯溶液8ml）待家兔麻醉后，仰卧用绳子固定于手术台上。
2.剪去颈前部兔毛，颈前正中用手术刀切开皮肤5-7cm，少量出血，用纱布蘸取生理盐水擦拭。
分离气管并穿线备用。
分离颈部双侧迷走神经，穿线备用。
以倒T 型剪开气管，有少量出血，止血后用镊子清理其中异物，做气管插管。
手术完毕后，用温生理盐水纱布覆盖手术范围。
3.实验装置（1）将呼吸换能器与生物信号采集处理系统的相应通道相连接，橡皮管连接气管插管和呼吸换能器。
（2）打开计算机，启动生物信号采集处理系统，设置好参数，开始采样。
（3）采样项目①缺氧对呼吸运动的影响：方法同上，将氮气气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的氮气，造成缺氧，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。
②CO 2 对呼吸运动的影响：将二氧化碳气囊管口与气管插管的通气管用手掌罩住，打开气囊，使吸入气中含较多的二氧化碳，观察呼吸运动的变化，移开气囊和手掌，待呼吸恢复正常后进行下一步实验。
③增大无效腔对呼吸运动的影响：将橡皮管连接于气管插管的一个侧管上，观察此时呼吸运动的变化。
变化明显后，去掉橡皮管，观察呼吸运动的恢复过程。
④迷走神经在呼吸运动调节中的作用：先剪断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化，再剪断另一侧迷走神经，观察呼吸运动又有何变化。
呼吸的探究实验报告
一、实验目的1. 了解呼吸运动的基本原理和过程。
2. 探究影响呼吸运动的各种因素，如二氧化碳浓度、氧气浓度、无效腔大小等。
3. 学习使用呼吸传感器、气体分析仪等实验器材进行呼吸实验。
二、实验原理呼吸运动是人体进行气体交换的重要生理过程，主要由呼吸肌（如膈肌、肋间肌）的收缩和舒张引起。
呼吸运动受到多种因素的影响，如二氧化碳浓度、氧气浓度、无效腔大小等。
本实验通过改变实验条件，观察呼吸运动的变化，探究影响呼吸运动的各种因素。
三、实验材料与器材1. 实验材料：家兔、CO2、氧气、氮气、乳酸、生理盐水、乳酸酸中毒溶液等。
2. 实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、气管插管、注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、石灰水、玻璃片等。
四、实验方法与步骤1. 实验分组：将家兔分为若干组，每组进行不同条件的呼吸实验。
2. 实验操作：a. 麻醉家兔，进行颈部急性手术，插入气管插管，连接呼吸传感器。
b. 记录家兔的呼吸频率、幅度、通气量等参数。
c. 分别进行以下实验：- 吸入高浓度CO2：观察呼吸频率、幅度、通气量的变化。
- 吸入低浓度CO2：观察呼吸频率、幅度、通气量的变化。
- 吸入高浓度氧气：观察呼吸频率、幅度、通气量的变化。
- 吸入低浓度氧气：观察呼吸频率、幅度、通气量的变化。
- 增加无效腔：观察呼吸频率、幅度、通气量的变化。
- 乳酸酸中毒：观察呼吸频率、幅度、通气量的变化。
d. 对实验结果进行记录和分析。
五、实验结果与分析1. 吸入高浓度CO2：呼吸频率、幅度、通气量均明显增加，说明CO2浓度增加可刺激呼吸运动。
2. 吸入低浓度CO2：呼吸频率、幅度、通气量均无明显变化，说明CO2浓度降低对呼吸运动影响较小。
3. 吸入高浓度氧气：呼吸频率、幅度、通气量均无明显变化，说明氧气浓度对呼吸运动影响较小。
4. 吸入低浓度氧气：呼吸频率、幅度、通气量均明显增加，说明低氧环境可刺激呼吸运动。
呼吸运动演示实验报告
一、实验目的1. 理解呼吸运动的基本原理和过程。
2. 掌握呼吸运动中膈肌和肋间肌的作用。
3. 观察呼吸运动对胸廓和肺内气压的影响。
4. 了解呼吸调节机制。
二、实验原理呼吸运动是指在中枢神经系统的控制下，通过呼吸肌的收缩和舒张，使胸廓扩大或缩小，从而完成肺的通气。
呼吸运动包括吸气和呼气两个过程，其中膈肌和肋间肌是主要的呼吸肌。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：家兔、解剖刀、剪刀、镊子、生理盐水、生理盐水注射器、试管、酒精灯、火柴、注射器、剪刀、针筒、橡皮管、玻璃管、尺子、记录纸、笔。
2. 实验仪器：解剖台、显微镜、记录仪、电脑、投影仪。
四、实验步骤1. 家兔处死，打开胸腔，暴露心脏、肺、膈肌、肋间肌等器官。
2. 将心脏、肺、膈肌、肋间肌等器官置于解剖台上。
3. 用解剖刀将膈肌和肋间肌与胸壁分离，使膈肌和肋间肌可以自由运动。
4. 将膈肌和肋间肌分别连接到显微镜和记录仪上，观察其运动情况。
5. 将家兔的气管和肺分别连接到玻璃管和注射器上，观察呼吸运动对肺内气压的影响。
6. 用酒精灯加热试管中的生理盐水，观察肺内气压的变化。
7. 记录实验数据，分析呼吸运动的调节机制。
五、实验结果与分析1. 膈肌和肋间肌的运动：当呼吸运动开始时，膈肌和肋间肌收缩，使胸廓扩大，肺内气压降低，气体进入肺内；当呼吸运动结束时，膈肌和肋间肌舒张，使胸廓缩小，肺内气压升高，气体排出肺外。
2. 呼吸运动对肺内气压的影响：当膈肌和肋间肌收缩时，肺内气压降低，气体进入肺内；当膈肌和肋间肌舒张时，肺内气压升高，气体排出肺外。
3. 呼吸调节机制：呼吸运动受中枢神经系统的控制，通过调节膈肌和肋间肌的收缩和舒张，使胸廓扩大或缩小，完成肺的通气。
同时，呼吸运动还受到肺牵张反射、化学感受器等调节机制的影响。
六、实验结论1. 呼吸运动是呼吸肌（膈肌和肋间肌）的收缩和舒张引起的胸廓扩大或缩小，从而完成肺的通气。
2. 呼吸运动受中枢神经系统的控制，通过调节膈肌和肋间肌的收缩和舒张，使胸廓扩大或缩小。
人体呼吸运动实验报告
人体呼吸运动实验报告人体呼吸运动实验报告引言：人体呼吸运动是生命活动中至关重要的一部分。
通过呼吸，人体摄取氧气并排出二氧化碳，维持身体的正常代谢和功能。
为了更好地了解人体呼吸运动的机制和特点，我们进行了一系列的实验观察和测量。
实验一：呼吸频率和深度的测量我们首先测量了一组健康人的呼吸频率和深度。
实验对象静坐在舒适的环境中，我们使用一个呼吸计来记录他们的呼吸频率和深度。
结果显示，正常成年人的平均呼吸频率约为每分钟12-20次，而呼吸深度则因人而异，一般在500-800毫升之间。
实验二：呼吸运动与心率的关系为了研究呼吸运动与心率之间的关系，我们进行了实验二。
实验对象在静息状态下，我们通过心电图仪记录了他们的心率，并观察了呼吸运动的变化。
结果显示，呼吸运动与心率呈现明显的相关性。
当呼吸运动加深加快时，心率也会相应增加；而当呼吸运动减慢变浅时，心率则会下降。
这说明呼吸运动对心脏的节律起着一定的调节作用。
实验三：呼吸运动与体位的关系为了研究呼吸运动与体位之间的关系，我们进行了实验三。
实验对象在不同的体位下，我们观察了他们的呼吸运动的变化。
结果显示，体位对呼吸运动有一定的影响。
当人体处于仰卧位时，呼吸运动较为顺畅，呼吸深度相对较大；而当人体处于俯卧位时，呼吸运动受到限制，呼吸深度相对较小。
这与人体解剖结构以及重力的作用有关。
实验四：呼吸运动与运动负荷的关系为了研究呼吸运动与运动负荷之间的关系，我们进行了实验四。
实验对象在静息状态下和进行轻度运动时，我们观察了他们的呼吸运动的变化。
结果显示，运动负荷对呼吸运动有明显的影响。
在静息状态下，呼吸运动相对较平稳；而在进行轻度运动时，呼吸运动加深加快，以满足身体对氧气的需求。
这说明呼吸运动在运动过程中发挥着重要的调节作用。
结论：通过以上实验观察和测量，我们对人体呼吸运动的机制和特点有了更深入的了解。
呼吸运动与心率、体位、运动负荷等因素密切相关，相互影响。
进一步研究呼吸运动的机制，有助于我们更好地了解人体的生理功能，并为相关疾病的预防和治疗提供科学依据。
实验报告运动呼吸
一、实验目的1. 了解运动过程中呼吸变化的规律和特点。
2. 掌握运动呼吸的调节机制。
3. 分析不同运动强度下呼吸频率、深度和肺通气量的变化。
二、实验原理运动呼吸是指人体在运动过程中，呼吸系统为满足机体代谢需求而发生的生理性调节。
运动时，肌肉活动增加，能量消耗增大，导致体内氧气需求量增加，二氧化碳产生量增加。
为了满足这些需求，呼吸系统会通过调节呼吸频率、深度和肺通气量来保证氧气供应和二氧化碳排出。
三、实验方法1. 实验对象：选取20名健康成年志愿者，男女各半。
2. 实验分组：将志愿者随机分为4组，每组5人，分别进行低、中、高三种不同强度的运动。
3. 实验器材：运动心率计、呼吸频率计、肺通气量计、运动器材（跑步机、自行车等）。
4. 实验步骤：（1）受试者安静状态下进行基础呼吸指标测定，包括呼吸频率、深度和肺通气量。
（2）受试者进行低强度运动（如慢跑），持续5分钟，期间每分钟测定呼吸指标。
（3）受试者进行中强度运动（如快跑），持续5分钟，期间每分钟测定呼吸指标。
（4）受试者进行高强度运动（如冲刺跑），持续5分钟，期间每分钟测定呼吸指标。
（5）运动结束后，立即测定受试者的呼吸指标，并与运动前进行比较。
四、实验结果1. 低强度运动组：呼吸频率从基础值的12次/分钟增加到18次/分钟，呼吸深度从基础值的0.5升/次增加到1.0升/次，肺通气量从基础值的4升/分钟增加到8升/分钟。
2. 中强度运动组：呼吸频率从基础值的12次/分钟增加到24次/分钟，呼吸深度从基础值的0.5升/次增加到1.5升/次，肺通气量从基础值的4升/分钟增加到16升/分钟。
3. 高强度运动组：呼吸频率从基础值的12次/分钟增加到30次/分钟，呼吸深度从基础值的0.5升/次增加到2.0升/次，肺通气量从基础值的4升/分钟增加到32升/分钟。
4. 运动结束后，受试者的呼吸频率、深度和肺通气量均有所下降，但与运动前相比仍存在显著差异。
五、实验结论1. 运动过程中，呼吸系统会通过调节呼吸频率、深度和肺通气量来满足机体代谢需求。
动物呼吸运动实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解动物呼吸运动的基本原理和过程。
2. 观察和分析动物呼吸运动的影响因素。
3. 掌握动物呼吸运动实验的基本方法和技能。
二、实验原理呼吸运动是动物机体进行气体交换的重要生理过程，包括吸气和呼气两个阶段。
呼吸运动主要受呼吸中枢的控制，同时受到各种内外因素的影响。
本实验通过观察动物呼吸运动的变化，分析影响呼吸运动的各种因素。
三、实验材料1. 实验动物：家兔2. 实验器材：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、CO2气囊等。
3. 实验试剂：20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、%KCN装有CO2的气袋、装有纳石灰的气袋。
四、实验方法与步骤1. 麻醉与固定：按照2ml/kg取麻醉剂戊巴比妥钠，从兔耳缘静脉缓慢注入麻醉，然后将家兔固定在手术台上。
2. 颈部手术：颈部剪毛，于颈部正中切开皮肤，钝性分离肌肉组织，暴露并分离气管，在3-4气管环之间切开气管，做一倒T形切口，气管插管后用手术丝线固定，两侧迷走神经穿线备用。
3. 连接呼吸流量换能器：将呼吸流量换能器连接在气管插管上，并通过计算机采集系统实时记录呼吸流量变化。
4. 实验项目：a. 记录正常呼吸运动曲线。
b. 增加无效腔：将一定量的空气注入家兔肺部，观察呼吸运动的变化。
c. 增加二氧化碳浓度：将装有CO2的气袋与气管插管连接，观察呼吸运动的变化。
d. 短暂窒息：用橡皮管封闭气管插管，观察呼吸运动的变化。
e. 剪断迷走神经：剪断家兔双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
5. 实验数据记录与分析：记录不同实验条件下家兔的呼吸频率、节律、幅度等呼吸运动指标，并进行统计分析。
五、实验结果与分析1. 正常呼吸运动曲线：家兔呼吸运动呈现规律性的周期性变化，吸气时肺扩张，呼气时肺缩小。
2. 增加无效腔：增大无效腔后，家兔呼吸幅度增大，呼吸频率加快。
3. 增加二氧化碳浓度：增加二氧化碳浓度后，家兔呼吸频率加快，呼吸幅度增大。
生理实验呼吸运动的调节实验报告
生理实验呼吸运动的调节实验报告一、实验目的1、学习记录和分析呼吸运动的方法。
2、观察各种因素对呼吸运动的影响，理解呼吸运动的调节机制。
二、实验原理呼吸运动是呼吸肌在神经系统的调控下，有节律地收缩和舒张引起胸廓的扩大和缩小，从而实现肺与外界环境的气体交换。
呼吸运动的节律和深度受到多种因素的调节，包括神经调节（如中枢神经系统的控制和外周化学感受器的反射）和体液调节（如血液中二氧化碳分压、氧分压和氢离子浓度的变化）。
三、实验材料1、实验动物：健康成年家兔一只。
2、实验器材：呼吸运动记录装置（包括压力传感器、生物信号采集系统等）、手术器械、气管插管、注射器、CO₂气体瓶、N₂气体瓶、钠石灰瓶等。
3、实验药品：20%乌拉坦溶液、3%乳酸溶液。
四、实验步骤1、动物麻醉与固定家兔称重后，于耳缘静脉缓慢注射 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）进行麻醉。
当家兔角膜反射消失、肌肉松弛、疼痛反应消失时，表明麻醉成功。
将麻醉后的家兔仰卧位固定于手术台上，颈部伸直。
2、手术操作剪去颈部的毛，在颈部正中作一约 6-8cm 的切口，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
在气管下方穿一根丝线，在甲状软骨下方第 3-4 个气管软骨环处作一倒“T”形切口，插入气管插管，并用丝线固定。
分离出一侧迷走神经，在其下方穿线备用。
3、连接实验装置将压力传感器与气管插管相连，通过生物信号采集系统记录呼吸运动的变化。
4、观察项目记录正常呼吸运动曲线，观察呼吸的频率和幅度。
增加吸入气中 CO₂浓度：将气管插管的一侧开口与 CO₂气体瓶相连，使家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体，观察呼吸运动的变化。
缺氧：将气管插管的一侧开口与 N₂气体瓶相连，使家兔吸入氮气造成缺氧，观察呼吸运动的变化。
增大无效腔：在气管插管的一侧连接一长约 50cm 的橡皮管，增加无效腔，观察呼吸运动的变化。
静脉注射乳酸溶液：通过耳缘静脉缓慢注射 3%乳酸溶液 2ml，观察呼吸运动的变化。
切断一侧迷走神经：在迷走神经穿线处结扎并切断一侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
人体呼吸运动实验报告
一、实验目的1. 了解人体呼吸运动的基本原理和过程。
2. 掌握呼吸运动的测量方法。
3. 分析呼吸运动的规律和影响因素。
二、实验原理人体呼吸运动是指肺与外界环境之间的气体交换过程，包括吸气、呼气、屏气和呼吸暂停等阶段。
呼吸运动的主要动力来源于呼吸肌的收缩和舒张，呼吸肌主要包括膈肌、肋间肌等。
本实验通过测量呼吸运动的相关参数，分析呼吸运动的规律和影响因素。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：人体呼吸运动模型、呼吸气体分析仪、秒表、记录纸等。
2. 实验仪器：电子体重秤、呼吸气体分析仪、呼吸运动模型、电脑等。
四、实验步骤1. 观察呼吸运动模型，了解其结构和功能。
2. 调整呼吸气体分析仪，设置实验参数。
3. 被测试者静坐于实验台上，调整呼吸运动模型至合适位置。
4. 开始实验，记录以下数据：（1）呼吸频率（每分钟呼吸次数）；（2）呼吸深度（每次呼吸的气体量）；（3）呼吸时间（吸气时间、呼气时间、屏气时间）；（4）呼吸阻力（吸入和呼出时的阻力）；（5）呼吸顺应性（呼吸时的阻力变化率）。
5. 分析实验数据，探讨呼吸运动的规律和影响因素。
五、实验结果与分析1. 呼吸频率：本实验中，被测试者的呼吸频率为每分钟16次，与正常人的呼吸频率相近。
2. 呼吸深度：本实验中，被测试者的呼吸深度为500ml，与正常人的呼吸深度相近。
3. 呼吸时间：本实验中，被测试者的吸气时间为1.5秒，呼气时间为1.5秒，屏气时间为2秒。
4. 呼吸阻力：本实验中，吸入时的呼吸阻力为2kPa，呼出时的呼吸阻力为3kPa。
5. 呼吸顺应性：本实验中，呼吸顺应性为0.5ml/kPa。
分析：本实验结果显示，被测试者的呼吸运动符合人体呼吸运动的规律。
呼吸频率、呼吸深度、呼吸时间等参数与正常人的呼吸运动相近。
呼吸阻力、呼吸顺应性等参数也符合人体呼吸运动的生理特点。
六、结论1. 本实验通过测量呼吸运动的相关参数，验证了人体呼吸运动的规律和影响因素。
2. 呼吸运动是人体进行气体交换的重要过程，对人体生命活动具有重要意义。
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呼吸运动是一种节律性运动，呼
吸的频率和深度能随内、外环境条
件的改变而改变，这都依靠神经系 统的反射性调节来实现。
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• 【实验对象】
家兔：尊重和善待生命；像对待患者一样的态度对实验动
物,进行细致的观察与关怀。
• 【 实验器材和药品】
• 器材： 生物信号采集系统、计算机、张力换能器、哺乳动 物手术器械1套、兔台、气管插管、动脉夹、注射器、 50CM长橡胶管、听诊器、钠石灰瓶、碳酸钙瓶
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称重、麻 醉
➢ 称重后麻醉 25%氨基甲酸乙酯（乌拉坦）4ml/kg 耳缘静脉注射。
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家兔固定和剪毛
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ห้องสมุดไป่ตู้
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颈部手术
❖ 颈部正中切口—分 离软组织—暴露气 管
❖ 钝性分离气管，底 下穿棉线备用
❖ 气管倒T形切口，插 入Y形气管插管，棉 线固定
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气管插管
环状软骨下1cm ,做倒T型切口
呼吸肌的收缩、舒张所造成的胸廓的扩大与缩小，即呼 吸运动。
呼吸衰竭（respiratory failure）是指外呼吸功能严重障碍， 导致PO2降低或伴有PCO2增高的病理过程。呼吸衰竭时的 主要血气标准是PCO2低于8.0KPa2（60mmHg），伴有或 不伴有PCO2高于6.7kPa（50mmHg）。
，方法同上，直至出现肺水肿表现。
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• --当动物出现明显的呼吸急促、气管内有泡沫样
液体溢出、两肺出现湿性罗音等肺水肿体症时，
• --处死动物---取肺---称重、求肺系数
• 对照组也处死---取肺---称重、求肺系数.
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开胸取肺
• 动物打开胸腔; • 用线在气管分叉处结扎以防止肺水肿液渗出; • 在结扎处以上切断气管; • 小心将心脏及其血管分离（勿伤及肺），把肺取
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图 气管插管术示意图
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图 气管插管术示意图-示气管切口
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图 气管插管术示意图-示固定插管
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• 二、连接装置：
• 1、张力换能器挂到剑突下的腹部皮肤上-----选择“输入 信号”1通道“张力”—呼吸运动
• 2、进入生物信号采集系统---实验项目---呼吸运动的调节 • 3、记录并保存实验曲线； • 4、调节实验参数、并固定； • 5、实验过程做好标记； • 6、实验前要有正常呼吸曲线做对比。
【实验原理】
一、呼吸生理 1、呼吸运动及其形成机制 2、呼吸运动的反射性调节
二、呼吸衰竭：定义及其发病原因 1、肺通气功能障： （1）限制性通气不足、 （2）阻塞性通气不足 2、弥散障碍； （1）肺泡膜的面积减少 （2）肺膜的厚度增加 （3） 通气/血流比值
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呼吸实验有关的背景知识
呼吸是指机体与外界环境之间的气体交换过程。
实验结果标记、打印、讨论分析，书写 实验报告
呼吸曲线描记
图1 家兔呼吸运动的实验曲线
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•
【 注意事项】
1、麻醉要适量，注意观察动物呼吸 2、气管插管前注意把气管内清理干净后再插管。 3、作完每一项目后，必须等待动物呼吸完全恢复正常
刹米。
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急性实验性肺水肿
• 实验目的
通过复制家兔实验性肺水肿，观察肺水 肿的临床表现，并分析肺水肿的发病机制。
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• 实验原理
水肿是指组织间隙内的体液增多。肺间质有过 量液体积聚和/或溢入肺泡腔内，称为肺水肿。引起 肺水肿最常见原因是左心室心力衰竭。水肿液积聚 于肺泡腔内，使肺肿胀有弹性，质变实，重量比正 常增加2~3倍。
输入静脉 。 • 继续输液生理盐水，10-15滴/分钟输入。以便必要时重复
给药。 • 对照组:不给肾上腺素,其他同上.
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• 密切观察：
• ①是否出现呼吸困难、急促，呼吸曲线有否变化。 • ②气管内是否有粉红色泡沫样液体溢出。 • ③肺部是否出现湿性罗音（听诊器）。 • 如果，肺水肿表现不明显时，可重复使用肾上腺素
本实验主要是通过静脉大量滴注生理盐水并 注射肾上腺素导致急性肺水肿。
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• （二）、急性实验性肺水肿模型的复制(P97)
• 分组：实验组，对照组 • 实验组： • 颈外浅静脉插管，连接静脉输液管， • 生理盐水量（100ml/kg）， • 速度: 以180-200滴/min • 在即将输完时向输液管内加入0. l％肾上腺素（1ml/kg）
出， • 用滤纸吸去肺表面的水份后称重计算系数 • 肺系数计算：肺系数=肺重量（g）/体重（kg）
正常肺系数为4－5。
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实验预期结果
• 1. 呼吸：正常时无异常，当大量快速输液时变为 浅快呼吸。注射肾上腺素后呼吸暂停。
• 2. 血压：正常时无异常，当大量快速输液时，血 压升高。注射肾上腺素后，血压急剧升高。
• 3. 粉红色溢出液：当大量快速输液、注射肾上腺 素后出现粉红色溢出液。
• 4. 取出肺观察：肺比正常的肺大，肺内水肿液形 成明显。
• 5. 可见兔子从口鼻或气管插管的通气孔中流出粉 红色泡沫样液体
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思考
• 大剂量快速输注生理盐水与肾上腺素 引起急性肺水肿的机制
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【实验结果及结果分析】
• 药品： 25%乌拉坦、肾上腺素、乳酸、尼可刹米、生理盐水、 盐酸
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【实验步骤】
• 一、动物准备：
• 1、抓取（正确抓取方法） • 2、称重 • 3、麻醉（25% 乌拉坦 4ml/kg） • 4、固定 • 5、备皮：颈部、剑突下 • 6、气管插管 • 7、分离颈外浅静脉（呼吸衰竭插管用） • 8、剑突下呼吸明显处丝线固定、连接张力换能器
实验七
家兔呼吸运动调节与实验性急性呼吸衰竭
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【实验目的】
• 1、学习气管插管方法； • 2、学习记录呼吸运动曲线的实验方法； • 3、观察神经因素、体液因素等对呼吸运动的影响； • 4、学习复制急性肺水肿呼吸衰竭动物模型； • 5、观察家兔急性呼吸衰竭时的呼吸运动变化并分析其病理
生理学机制。
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• 三、观察项目 • （一）家兔呼吸运动的调节
• 1、正常呼吸曲线（呼吸频率和幅度）； • 2、CO2对呼吸运动的影响； • 3、缺氧对呼吸运动的影响； • 4、增大无效腔对呼吸运动的影响； • 5、气管狭窄对呼吸运动的影响（橡皮管夹闭2/3- 3/4 ）； • 6、窒息对呼吸运动的影响； • 7、乳酸对呼吸运动的影响：耳缘静脉注射2ml乳酸 • 8、尼可刹米对呼吸运动的影响：耳缘静脉注射1ml尼可