家兔缺氧实验报告
家兔缺氧性实验报告
家兔缺氧性实验报告本实验旨在通过对家兔进行缺氧性实验，探究缺氧对家兔的生物学影响及其机制。
实验原理：缺氧是指在环境氧气供应不足的情况下，生物体无法满足氧气需求的状态。
在一定范围内，缺氧对生物体造成一系列生物学效应。
在本实验中，将使用家兔作为实验对象，通过暂时封闭的方法限制氧气供应，观察和分析家兔在缺氧状态下的行为表现、生理变化以及相关机制。
实验步骤：1. 准备工作：确保实验环境卫生、温湿度稳定。
2. 安置家兔：将家兔放置在缺氧实验箱中，确保其舒适度和安全性。
3. 缺氧处理：关闭实验箱中的通风设备，使氧气供应不足，保证家兔长时间处于缺氧状态。
4. 观察记录：观察家兔在缺氧状态下的行为表现，如呼吸急促、精神不振等。
定期记录家兔的生理变化，如体温变化、心率变化等。
5. 采样分析：在缺氧实验结束后，采集家兔的血液、组织等样本，进行生化指标分析和组织学观察，进一步了解缺氧对家兔生物学的影响机制。
实验结果与讨论：1. 行为表现：在缺氧实验过程中，家兔呈现出明显的焦虑和不适感，表现为异常的活动性、呼吸急促、呼吸困难等。
这些行为表现是家兔为了适应缺氧环境所做出的反应，体现了有限氧气供应下生物体的应激反应。
2. 生理变化：在缺氧状态下，家兔的生理功能将受到一定程度的影响。
实验结果显示，缺氧会导致家兔体温升高，心率加快，血液中的乳酸浓度升高。
这些变化可能是为了增加氧气运输和供应，以应对缺氧环境下的生理需求。
3. 影响机制：缺氧引起的生物学变化可能涉及多个机制。
首先，缺氧会导致细胞呼吸和氧化磷酸化受阻，影响能量供应。
其次，缺氧会激活一系列适应性反应通路，如神经内分泌系统、血管系统等，以促进氧气供应和分配。
此外，缺氧还可能引起氧自由基的产生，增加氧化应激反应，对细胞和组织造成损伤。
4. 实验局限：本实验仅在动物实验条件下进行，结果可能与人体在缺氧情况下的生理反应存在差异。
此外，本实验未考虑缺氧时间和缺氧程度对实验结果的影响，需进一步研究。
兔呼吸运动的调节实验报告
兔呼吸运动的调节实验报告实验报告题目：兔呼吸运动的调节实验报告摘要：在这次实验中，我们研究了兔呼吸运动的调节。
通过研究不同条件下兔的呼吸运动数据，我们发现呼吸中枢对血氧和二氧化碳浓度变化的敏感性很高，在不同条件下，呼吸中枢的反应存在差异。
通过这次实验，我们加深了对呼吸中枢的理解，也探索出了更深入的研究方向。
介绍：兔是一种常见的实验动物，近年来被广泛应用于生理实验中。
它们有着较大的体型和易于饲养的特点，同时其呼吸系统的特点也使其成为研究呼吸调节的理想实验动物。
在呼吸系统的控制中，呼吸中枢的作用至关重要。
呼吸中枢负责控制呼吸的频率和深度，以保持动物体内氧气和二氧化碳的平衡。
实验方法：我们选取了5只健康的兔子，安置在实验舱内，同时将呼吸信号和动物内部二氧化碳、氧气等生理指标的数据传感器插入兔子甲状腺下动脉、肺动脉等处进行数据采集。
通过多种条件下的实验，我们分别研究了以下几个问题：1.慢性缺氧对兔的呼吸运动的影响2.动物在睡眠中对呼吸的调节变化3.兔子在紧急情况下的呼吸变化结果：1.慢性缺氧对兔的呼吸运动的影响当兔体内氧气浓度下降至一定程度时，呼吸中枢开始发生反应，加快呼吸频率，以提高兔身体的氧气供应。
在长时间的慢性缺氧作用下，呼吸中枢适应了这种状态，使兔子在缺氧情况下仍能保持相对稳定的呼吸频率和深度。
2.动物在睡眠中对呼吸的调节变化在兔子睡眠时，呼吸中枢对二氧化碳的敏感性下降，此时呼吸频率和深度均有所降低。
这与人类在睡眠时的呼吸调节情况十分相似。
3.兔子在紧急情况下的呼吸变化当兔子感到危险时，呼吸中枢会迅速发出指令，使呼吸频率和深度加快，以增加兔子体内氧气的供应量，以应对可能出现的危机情况。
讨论：通过实验我们发现呼吸中枢对血氧和二氧化碳浓度的变化十分敏感，在不同的条件下会有不同的调节反应。
这些发现为我们深入研究呼吸调节提供了新的方向。
总结：本次实验研究了兔呼吸运动的调节，得出了一些重要的结论。
这些结论不仅对兔呼吸调节的研究有所帮助，也为相关领域的研究工作提供了有用的信息。
家兔窒息模型实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 熟悉家兔窒息模型的制作方法。
2. 掌握观察家兔窒息过程中的生理反应。
3. 分析家兔窒息模型的适用性和局限性。
二、实验原理家兔窒息模型是通过人为制造家兔呼吸功能障碍，使其出现窒息现象，从而研究呼吸系统疾病的发生、发展和治疗。
实验中，采用不同窒息方法（如封闭气管、阻断氧气供应等）模拟临床呼吸系统疾病，观察家兔的生理反应，为临床诊断和治疗提供理论依据。
三、实验材料1. 实验动物：健康成年家兔（体重2.0-2.5kg）10只。
2. 实验仪器：解剖显微镜、手术刀、手术剪、镊子、气管插管、注射器、生理盐水、生理盐水溶液、麻醉药物、心电图仪、血气分析仪等。
3. 实验药品：生理盐水、麻醉药物、抗胆碱能药物、抗生素等。
四、实验方法1. 麻醉：将家兔放入实验箱中，用麻醉药物（如戊巴比妥钠）进行全身麻醉，待家兔进入麻醉状态后，进行气管插管。
2. 建立窒息模型：采用以下两种窒息方法：（1）封闭气管法：用手术刀和手术剪在气管前壁做一小切口，用气管插管插入气管，封闭气管后，观察家兔的生理反应。
（2）阻断氧气供应法：用夹子阻断家兔鼻孔，使其无法呼吸，观察家兔的生理反应。
3. 观察指标：记录家兔窒息过程中的心率、血压、呼吸频率、血氧饱和度、心电图等生理指标。
4. 治疗与复苏：对窒息的家兔给予抗胆碱能药物、抗生素等治疗，观察治疗效果。
五、实验结果1. 封闭气管法：（1）生理指标：窒息初期，家兔心率、血压、呼吸频率均明显升高；窒息中期，生理指标急剧下降，出现呼吸抑制、心跳停止等现象；窒息晚期，家兔死亡。
（2）治疗效果：给予抗胆碱能药物、抗生素等治疗，部分家兔恢复呼吸和心跳，但仍出现不同程度的心律失常、血压下降等现象。
2. 阻断氧气供应法：（1）生理指标：窒息初期，家兔心率、血压、呼吸频率均明显升高；窒息中期，生理指标急剧下降，出现呼吸抑制、心跳停止等现象；窒息晚期，家兔死亡。
（2）治疗效果：给予抗胆碱能药物、抗生素等治疗，部分家兔恢复呼吸和心跳，但仍出现不同程度的心律失常、血压下降等现象。
兔呼吸设计实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解家兔呼吸系统的基本结构和功能。
2. 掌握呼吸运动的基本原理和调节机制。
3. 通过实验观察和记录家兔呼吸活动的变化，分析影响呼吸运动的各种因素。
二、实验原理呼吸运动是动物体内气体交换的重要过程，由呼吸肌（肋间肌和膈肌）在神经系统控制下进行的有节律的收缩和舒张造成。
呼吸运动受到多种因素的影响，如二氧化碳分压、氧气分压、pH值、温度、神经和体液调节等。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：兔体手术台、常用手术器械、张力传感器、引导电极、计算机采集系统、气管插管、注射器、橡皮管、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、CO2、乳酸、棉线、纱布等。
四、实验方法与步骤1. 麻醉家兔：将家兔置于兔体手术台上，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。
2. 气管插管：剪去家兔颈部与剑突腹面的被毛，切开颈部皮肤，分离气管并插入气管插管。
3. 连接呼吸监测系统：将气管插管与张力传感器、引导电极、计算机采集系统连接，开始记录呼吸活动。
4. 观察和记录呼吸活动：观察家兔呼吸频率、呼吸幅度和呼吸曲线的变化，并记录实验数据。
5. 影响呼吸运动的实验：a. 增加无效腔：通过增加气管插管长度模拟增加无效腔，观察呼吸活动变化。
b. 增加CO2浓度：通过向家兔呼吸系统中注入CO2，观察呼吸活动变化。
c. 增加乳酸浓度：通过向家兔呼吸系统中注入乳酸，观察呼吸活动变化。
d. 剪断双侧迷走神经：剪断双侧迷走神经，观察呼吸活动变化。
6. 实验结束：实验结束后，拔除气管插管，对家兔进行复苏处理。
五、实验结果与分析1. 家兔正常呼吸活动：家兔呼吸频率约为60-80次/分钟，呼吸幅度约为10-20mmHg。
2. 增加无效腔：增加无效腔后，家兔呼吸频率增加，呼吸幅度减小。
3. 增加CO2浓度：增加CO2浓度后，家兔呼吸频率和呼吸幅度明显增加。
4. 增加乳酸浓度：增加乳酸浓度后，家兔呼吸频率和呼吸幅度无明显变化。
5. 剪断双侧迷走神经：剪断双侧迷走神经后，家兔呼吸频率和呼吸幅度无明显变化。
家兔呼吸运动的调节实验报告
家兔呼吸运动的调节实验报告家兔呼吸运动的调节实验报告引言：呼吸是生物体生命活动中不可或缺的过程之一。
对于家兔这类哺乳动物来说，呼吸运动的调节对其生存和适应环境至关重要。
本次实验旨在探究家兔呼吸运动的调节机制，以增进我们对生物体呼吸系统的理解。
实验方法：1. 实验材料准备：本次实验所需材料包括家兔、呼吸频率计、呼吸深度计、氧气浓度计、二氧化碳浓度计等。
2. 实验步骤：首先，将家兔置于实验室的呼吸室中，确保环境温度和湿度适宜。
然后，使用呼吸频率计和呼吸深度计来测量家兔的呼吸频率和呼吸深度。
接下来，使用氧气浓度计和二氧化碳浓度计来测量家兔所处环境中的氧气和二氧化碳浓度。
3. 实验记录：记录家兔在不同环境条件下的呼吸频率、呼吸深度以及环境中的氧气和二氧化碳浓度。
实验结果：通过实验记录的数据，我们得出以下结论：1. 温度对家兔呼吸运动的调节有显著影响。
在较高温度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度明显增加，以促进体内热量的散发。
而在较低温度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以减少体内热量的散失。
2. 湿度对家兔呼吸运动的调节也有一定影响。
在较高湿度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度增加，以帮助散发体内的湿气。
而在较低湿度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以减少体内水分的流失。
3. 氧气浓度对家兔呼吸运动的调节非常重要。
在较低氧气浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度明显增加，以增加氧气的摄入量。
而在较高氧气浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以避免氧中毒。
4. 二氧化碳浓度也对家兔呼吸运动的调节产生影响。
在较高二氧化碳浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度明显增加，以增加二氧化碳的排出量。
而在较低二氧化碳浓度下，家兔的呼吸频率和呼吸深度减少，以避免呼出过多二氧化碳。
讨论：通过本次实验，我们可以看到家兔呼吸运动的调节是一个相当复杂的过程。
它受到温度、湿度、氧气浓度和二氧化碳浓度等多个因素的影响。
家兔通过调节呼吸频率和呼吸深度来适应不同的环境条件，以保持体内的氧气和二氧化碳平衡。
家兔缺氧恢复实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察家兔在缺氧环境中的生理反应。
2. 探究不同恢复措施对家兔缺氧恢复的影响。
3. 分析缺氧恢复过程中家兔生理指标的变化。
二、实验原理缺氧是指生物体组织细胞因氧气供应不足而发生的生理、生化变化。
本实验通过人为制造缺氧环境，观察家兔在缺氧状态下的生理反应，以及恢复措施对家兔缺氧恢复的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康成年家兔3只，体重约2kg。
2. 实验器材：气密容器、氧气分析仪、呼吸传感器、麻醉机、注射器、生理盐水、记录仪、分析软件等。
四、实验方法1. 麻醉与监测：将家兔放入麻醉机内，进行全身麻醉。
麻醉成功后，连接氧气分析仪和呼吸传感器，实时监测家兔的氧气浓度和呼吸频率。
2. 制造缺氧环境：将家兔放入气密容器中，逐渐降低容器内的氧气浓度，直至达到缺氧状态（氧气浓度约为5%）。
3. 缺氧恢复实验：a. 实验组：将家兔放入气密容器中，制造缺氧环境，持续30分钟。
然后打开容器，让家兔接触新鲜空气，观察恢复情况。
b. 对照组：将家兔放入气密容器中，制造缺氧环境，持续30分钟。
然后打开容器，让家兔接触新鲜空气，并给予生理盐水注射，观察恢复情况。
c. 干预组：将家兔放入气密容器中，制造缺氧环境，持续30分钟。
然后打开容器，让家兔接触新鲜空气，并给予吸氧治疗，观察恢复情况。
4. 数据采集与分析：记录各组家兔在缺氧恢复过程中的生理指标，如呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等，并使用分析软件进行数据处理。
五、实验结果与分析1. 缺氧状态下，家兔的呼吸频率和心率明显加快，血氧饱和度显著下降。
2. 对照组家兔在恢复过程中，呼吸频率和心率逐渐恢复正常，血氧饱和度有所上升，但恢复速度较慢。
3. 干预组家兔在恢复过程中，呼吸频率和心率恢复速度明显快于对照组，血氧饱和度上升速度更快。
4. 分析结果显示，吸氧治疗对家兔缺氧恢复有显著促进作用，能够有效提高血氧饱和度，改善呼吸和循环功能。
六、实验结论1. 家兔在缺氧环境下会出现呼吸频率和心率加快、血氧饱和度下降等生理反应。
兔呼吸调节_实验报告
一、实验目的1. 观察并记录家兔的呼吸运动，包括呼吸频率、幅度和节律。
2. 研究不同生理因素（如CO2浓度、缺氧、肺牵张反射等）对家兔呼吸运动的影响。
3. 掌握呼吸调节的基本原理和实验方法。
二、实验原理呼吸运动是机体与外界环境进行气体交换的重要生理过程。
呼吸调节主要通过呼吸中枢（位于脑干）和化学感受器（如中枢化学感受器和外周化学感受器）的反射性调节实现。
实验中，通过改变实验条件，观察家兔呼吸运动的变化，可以了解呼吸调节的机制。
三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔（体重约2kg）2. 实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、气管插管、注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布等。
四、实验方法与步骤1. 实验动物准备：将家兔称重后，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。
2. 呼吸运动记录：将家兔固定在手术台上，分离气管并插入气管插管，连接呼吸传感器，记录家兔的呼吸频率、幅度和节律。
3. 生理因素影响观察：a. CO2浓度增加：将CO2气囊连接到气管插管，观察呼吸频率、幅度和节律的变化。
b. 缺氧：将家兔置于低氧环境中，观察呼吸频率、幅度和节律的变化。
c. 肺牵张反射：剪断家兔一侧膈神经，观察呼吸频率、幅度和节律的变化。
4. 数据记录与分析：记录实验过程中呼吸频率、幅度和节律的变化，并进行分析。
五、实验结果与讨论1. CO2浓度增加：当CO2浓度增加时，家兔的呼吸频率和幅度明显增加，说明CO2浓度升高可以刺激呼吸中枢，促进呼吸运动。
2. 缺氧：在低氧环境中，家兔的呼吸频率和幅度也明显增加，说明缺氧可以刺激外周化学感受器，促进呼吸运动。
3. 肺牵张反射：剪断膈神经后，家兔的呼吸频率和幅度无明显变化，说明肺牵张反射在呼吸调节中不起主要作用。
六、实验结论1. CO2浓度和缺氧可以刺激呼吸中枢和外周化学感受器，促进呼吸运动。
2. 肺牵张反射在呼吸调节中不起主要作用。
兔子呼吸调节实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察兔子呼吸运动的基本规律，包括呼吸频率、节律和幅度。
2. 探讨影响兔子呼吸运动的各种因素，如无效腔、二氧化碳浓度、缺氧等。
3. 分析迷走神经在兔子呼吸运动调节中的作用。
4. 掌握气管插管术和神经血管分离术等基本操作。
二、实验原理呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。
在不同生理状态下，呼吸运动所发生的适应性变化有赖于神经系统的反射性调节，其中较为重要的有呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。
因此，体内外各种刺激，可以直接作用于中枢部位或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。
三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔2. 实验器材：生物信号采集处理系统、呼吸流量换能器、CO2气囊、哺乳类动物手术器具一套、兔手术台、气管插管、注射器（10ml、20ml各一只）、橡胶管、纱布、玻钩、手术丝线、麻醉剂、生理盐水等。
四、实验步骤1. 实验动物准备：选择健康成年家兔，称重后进行麻醉。
2. 麻醉与固定：按照2ml/kg取麻醉剂戊巴比妥钠，从兔耳缘静脉缓慢注入麻醉，然后将家兔固定在手术台上。
3. 颈部手术：颈部剪毛，于颈部正中切开皮肤，钝性分离肌肉组织，暴露并分离气管。
在3-4气管环之间切开气管，做一倒T形切口，气管插管后用手术丝线固定，两侧迷走神经穿线备用。
4. 连接仪器：将呼吸流量换能器连接在气管插管上，并连接生物信号采集处理系统。
5. 记录正常呼吸曲线：打开计算机，启动生物信号采集处理系统，点击菜单，进入实验/实验项目”，按计算机提示逐步进入呼吸运动”实验项目，记录家兔正常呼吸曲线。
6. 增加无效腔：通过改变气管插管长度，增加无效腔，观察呼吸曲线的变化。
7. 增加二氧化碳浓度：使用CO2气囊，向气管插管中注入一定浓度的二氧化碳，观察呼吸曲线的变化。
8. 轻度缺氧实验：使用低氧气体，向气管插管中注入一定浓度的氧气，观察呼吸曲线的变化。
9. 剪短迷走神经：剪断一侧迷走神经，观察呼吸曲线的变化。
家兔缺氧实验报告
家兔缺氧实验报告篇一：家兔缺氧实验家兔低张性缺氧[实验目的]：缺氧指组织供氧不足或用氧障碍，从而引起细胞代谢，功能以致形态结构发生异常变化的病理过程。
缺氧分为低张性缺氧，血液性缺氧，循环性缺氧，组织性缺氧四种类型。
本次实验通过复制低张性缺氧动物模型,观察急性缺氧过程中机体的代偿适应性变化,分析其发生机制。
[实验动物]：家兔[实验药品及器材]：BL-410生物机能实验系统，动脉插管,气管插管,缺氧瓶,注射器,注射针头,动脉夹,常规手术器械,血气分析仪,针;1%普鲁卡因,钠石灰,肝素生理盐水。
[实验步骤]：1 、称重，全麻（3%戊巴比妥钠，1 ml/kg）,固定，剪毛。
2 、气管插管，颈总动脉插管，剑突连拉力换能器描记呼吸。
3 、描记正常血压，呼吸（频率/节律），心率，口唇颜色。
4 、将气管插管与缺氧瓶连接，记录缺氧开始后上述指标变化。
〔实验结果〕血压心率呼吸频率呼吸幅度动脉血液颜色粘膜颜色正常缺氧5min缺氧10 min缺氧20 min〔讨论〕：1、缺氧早期，呼吸加深加快，心率加快，粘膜及血液颜色变化不大。
机制如下：本实验中，家兔的呼吸仅与缺氧瓶相通，呼出的CO2被钠石灰吸收，吸入气体的氧分压不断下降，最终导致PaO2下降，当PaO2＜60mmHg的时候，便可以引起如下变化：由于上述机体代偿性改变，PaO2有所恢复，脱氧血红蛋白仍小于5g/dl，故不能出现发绀,血液及粘膜颜色无明显变化。
2．缺氧晚期：PaO2越来越低，过低的PaO2 可抑制呼吸、心血管、神经等系统的功能。
使机体处于失代偿状态，出现呼吸减慢或不规则，血压↓，心率↓此时PaO2↓↓，CaO2↓↓。
脱氧血红蛋白可超过5g/dl,出现发绀（Cyanosis）。
3．由于上分析推出，当吸入气氧分压降低时，PaO2亦降低。
当PaO2＜60mmHg时才会引起组织缺氧，同时引起机体的一系列代偿反应，包括增强呼吸和血压等。
符合低张性缺氧的特点。
篇二：家兔解剖实验报告家兔解剖实验报告14牧医一班组长：吕兴亮组员：李龙，李彦军，刘映宏，马泽，庞婷婷，朱雪芳，李佳龙一、实验目的1、通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点2、掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征。
呼吸缺氧实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧的类型及其对机体的影响。
2. 探讨不同缺氧条件下，机体代偿性反应的机制。
3. 分析影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指机体组织细胞在氧气供应不足的情况下，无法维持正常代谢活动的一种病理状态。
根据缺氧发生的原因，可分为以下几种类型：1. 乏氧性缺氧：指因吸入气体中氧分压降低导致的缺氧。
2. 血液性缺氧：指因血红蛋白携氧能力降低导致的缺氧。
3. 组织中毒性缺氧：指因组织细胞利用氧的能力降低导致的缺氧。
本实验主要研究乏氧性缺氧和血液性缺氧对机体的影响，并探讨影响缺氧耐受性的因素。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠、家兔2. 实验仪器：缺氧瓶、恒温水浴箱、呼吸计、血氧饱和度计、钠石灰、氯丙嗪、生理盐水、亚硝酸钠溶液、美兰等。
3. 实验试剂：氧气、二氧化碳、一氧化碳等。
四、实验方法1. 乏氧性缺氧实验：（1）将小白鼠放入缺氧瓶中，瓶内放入一定量的钠石灰，以吸收二氧化碳。
（2）观察并记录小白鼠的呼吸频率、心率、活动状态等指标。
（3）每隔一定时间，取出小白鼠，测量其血氧饱和度。
2. 血液性缺氧实验：（1）将小白鼠分为两组，一组注射亚硝酸钠溶液，另一组注射生理盐水作为对照组。
（2）观察并记录两组小白鼠的呼吸频率、心率、活动状态等指标。
（3）每隔一定时间，取出小白鼠，测量其血氧饱和度。
3. 缺氧耐受性实验：（1）将小白鼠分为几组，分别给予不同浓度的二氧化碳吸入。
（2）观察并记录小白鼠的呼吸频率、心率、活动状态等指标。
（3）每隔一定时间，取出小白鼠，测量其血氧饱和度。
五、实验结果1. 乏氧性缺氧实验：（1）小白鼠在缺氧瓶中存活时间随着氧分压的降低而逐渐缩短。
（2）呼吸频率、心率逐渐加快，活动状态逐渐减弱。
（3）血氧饱和度逐渐降低。
2. 血液性缺氧实验：（1）注射亚硝酸钠溶液的小白鼠，其呼吸频率、心率、活动状态与对照组相比明显降低。
（2）血氧饱和度明显降低。
3. 缺氧耐受性实验：（1）随着二氧化碳浓度的增加，小白鼠的呼吸频率、心率逐渐加快。
家兔_窒息_实验报告
一、实验目的1. 通过对家兔窒息实验，观察窒息对家兔生理机能的影响，加深对窒息机理的理解。
2. 掌握实验操作方法，提高实验技能。
3. 培养团队协作能力。
二、实验原理窒息是指由于呼吸道阻塞、呼吸困难等原因导致氧气供应不足，引起机体缺氧的一系列生理反应。
本实验通过人为制造家兔窒息状态，观察其生理指标变化，分析窒息对家兔的影响。
三、实验材料1. 实验动物：家兔3只，体重约为2kg。
2. 实验器材：呼吸机、心电监护仪、呼吸气体分析仪、注射器、酒精棉球、生理盐水等。
四、实验方法1. 实验分组：将3只家兔随机分为3组，分别为窒息组、窒息恢复组、对照组。
2. 实验步骤：（1）窒息组：将家兔放入特制的密闭容器中，观察其呼吸频率、心率、血氧饱和度等生理指标的变化。
（2）窒息恢复组：在窒息实验结束后，立即将家兔从密闭容器中取出，观察其生理指标恢复情况。
（3）对照组：不进行窒息实验，仅观察家兔的生理指标。
五、实验结果1. 窒息组：（1）呼吸频率：在窒息过程中，家兔呼吸频率逐渐减慢，直至停止呼吸。
（2）心率：在窒息过程中，家兔心率逐渐加快，直至停止跳动。
（3）血氧饱和度：在窒息过程中，家兔血氧饱和度逐渐下降，直至接近0。
2. 窒息恢复组：（1）呼吸频率：在窒息恢复过程中，家兔呼吸频率逐渐恢复，但仍低于正常水平。
（2）心率：在窒息恢复过程中，家兔心率逐渐恢复，但仍高于正常水平。
（3）血氧饱和度：在窒息恢复过程中，家兔血氧饱和度逐渐上升，但仍低于正常水平。
3. 对照组：（1）呼吸频率、心率、血氧饱和度均处于正常水平。
六、实验分析1. 窒息对家兔生理机能的影响：（1）呼吸系统：窒息导致家兔呼吸频率减慢，直至停止呼吸，说明窒息对呼吸系统有严重影响。
（2）循环系统：窒息导致家兔心率加快，直至停止跳动，说明窒息对循环系统有严重影响。
（3）血液系统：窒息导致家兔血氧饱和度下降，说明窒息对血液系统有严重影响。
2. 窒息恢复过程：（1）呼吸系统：在窒息恢复过程中，家兔呼吸频率逐渐恢复，但仍低于正常水平，说明窒息对呼吸系统有一定影响。
家兔呼吸生理实验报告
家兔呼吸生理实验报告
实验目的：
探究家兔的呼吸生理过程，了解呼吸相关参数对于家兔生存和健康的影响。
实验材料：
家兔、呼吸频率测试仪、心率测试仪、氧气浓度检测仪、呼吸氧气浓度控制器、多功能数据采集系统、实验筒。
实验方法：
1.将家兔放置在实验筒中，使其舒适。
2.连接呼吸频率测试仪、心率测试仪、氧气浓度检测仪、呼吸氧气浓度控制器和多功能数据采集系统。
3.调节呼吸氧气浓度控制器，使家兔的呼吸氧气浓度符合常规标准。
4.记录家兔的呼吸频率、心率、氧气浓度等数据。
5.根据记录的数据，对家兔的呼吸生理过程进行分析和总结。
实验结果：
1.家兔的呼吸频率和心率比人类高很多，分别为60-150次/分钟和150-500次/分钟。
2.氧气浓度对于家兔的生存和健康影响很大，过低的氧气浓度
会使家兔窒息而死。
3.家兔的呼吸过程中会排出大量二氧化碳，如果二氧化碳排出
不及时将会对家兔造成危害。
结论：
家兔的呼吸生理过程与人类有很大不同，家兔需要更高的氧气
浓度来维持正常的生理活动。
此外，家兔的呼吸频率和心率很高，但过高的呼吸频率和心率也会影响家兔的健康。
因此，在家养兔
时应保持室内空气新鲜、氧气浓度正常，并定期监测家兔的呼吸
参数，确保家兔的健康和幸福。
家兔缺氧及抢救
家兔缺氧及抢救目的1..学习低张性缺氧动物模型复制方法2.探索缺氧过程中集体的变化。
实验步骤1， 称重，麻醉，固定2， 颈部手术，分离气管和双侧颈总动脉，气管插管和左侧颈总动脉插管3， 耳缘静脉注射肝素（1ml/kg ）4， 连接BL_420生物机能实验系统5， 描记正常血压，呼吸频率计扣除粘膜颜色6， 动脉夹夹闭右侧净宗动脉10到15S ，观察血压变化7， 接缺氧平与气管插管一侧，观察学研变化8， 当血压降至正常的1/2时进行第二次夹闭，观察血压变化9， 当血压降至真正常1/3时停止缺氧，进行抢救实验结果缺氧早期，呼吸加快加深，心率加快血压升高，粘膜颜色变化不大。
缺氧晚期，PaO2越来越低抑制呼吸，心血管，神经等系统的功能。
是机体处于失代偿状态，出现呼吸减慢或不规则，血压下降。
并出现发绀。
讨论1. 缺氧早期：家兔的呼吸近于缺氧平相通，呼出的CO2被吸收，吸入的气体氧分压不断下降，最终导致PaO2下降，当PaO2<60mmHg 时可引起：PaO2下降——颈动脉体化学感受器---呼吸中枢兴奋——呼吸加快加深---胸内负压升高——回心血量升高——血压升高。
由于上述机体代偿性改变，P a O 2有所恢复，脱氧血红蛋白仍小于5g/dl ，故不出现发绀(cyanosis)，血液及粘膜颜色无明显变化。
2． 缺氧晚期：PaO2越来越低，过低的PaO2 可抑制呼吸、心血管、神经等系统的功能。
使机体处于失代偿状态，出现呼吸减慢或不规则，血压↓、心率↓，此时PaO2↓↓，CaO2↓↓。
脱氧血红蛋白可超过5g/dl ，出现发绀。
3.第一次夹闭血压上升：家兔颈动脉窦压力感受性反射的感受装置是位于颈动脉窦外膜下的感觉神经末梢, 称为颈动脉窦压力感受器。
动脉压力感受器并不是直接感受血压的变化, 而是感受动脉血压对血管壁的机械牵张程度。
经传入神经传入到中枢, 引发一系列的反射活动。
, 夹闭右侧颈总动脉, 由于此时颈动脉窦所感受到的机械牵张减少, 而反射性地引起动脉血压升高, 加上外周阻力增加, 及脑缺血反射等原因使得动脉血压明显升高;二次夹闭时，长期缺氧，集体已经处于失代偿状态，颈动脉窦压力感受器敏感性降低，此时夹闭，血压仪无明显变化。
家兔急性缺氧实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察家兔急性缺氧的症状和生理反应。
2. 探讨急性缺氧对家兔呼吸、循环系统的影响。
3. 了解急性缺氧的救治措施。
二、实验原理急性缺氧是指短时间内因外界环境或机体内部原因导致氧供应不足，引起机体生理功能障碍的一种病理状态。
家兔急性缺氧实验通过人为控制实验条件，模拟急性缺氧环境，观察家兔的生理反应，为临床救治提供理论依据。
三、实验材料1. 实验动物：家兔（体重2-3kg）2只。
2. 实验仪器：呼吸监测仪、血压计、心电图仪、注射器、剪刀、手术刀、酒精棉球、生理盐水等。
3. 实验药品：亚硝酸钠（NaNO2）、氨水、生理盐水等。
四、实验方法1. 将家兔分为实验组和对照组，每组1只。
2. 实验组：向家兔的耳缘静脉注射亚硝酸钠（5mg/kg体重），造成急性缺氧。
3. 对照组：给予生理盐水注射，作为对照。
4. 注射后，分别监测两组家兔的呼吸频率、心率、血压、心电图等生理指标。
5. 观察并记录家兔的症状，如呼吸加快、心率加快、血压下降等。
6. 实验结束后，解剖家兔，观察肺、心脏等器官的病理变化。
五、实验结果1. 实验组家兔注射亚硝酸钠后，呼吸频率明显加快，心率加快，血压下降，心电图显示ST段抬高，T波倒置。
2. 对照组家兔生理指标无明显变化。
3. 解剖观察：实验组家兔肺脏充血、水肿，心脏扩大，心肌纤维变性。
六、实验讨论1. 亚硝酸钠是一种氧化剂，可导致血管扩张，引起急性缺氧。
2. 实验结果显示，急性缺氧对家兔的呼吸、循环系统产生严重影响，表现为呼吸加快、心率加快、血压下降等症状。
3. 实验组家兔的病理变化表明，急性缺氧可导致肺脏充血、水肿，心脏扩大，心肌纤维变性等病理改变。
七、结论1. 家兔急性缺氧实验表明，急性缺氧对家兔的呼吸、循环系统产生严重影响。
2. 及时救治急性缺氧患者，对降低死亡率具有重要意义。
八、实验建议1. 在进行急性缺氧实验时，应严格控制实验条件，确保实验结果的准确性。
2. 实验过程中，应密切观察家兔的症状，及时发现并处理异常情况。
家兔呼吸运动调节实验报告结果
家兔呼吸运动调节实验报告结果一、实验目的本实验旨在观察各种因素对家兔呼吸运动的影响，探讨呼吸运动的调节机制。
二、实验材料与方法（一）实验动物健康成年家兔一只。
（二）实验器材呼吸换能器、生物信号采集处理系统、手术器械、气管插管、动脉插管、注射器、CO₂气体瓶、N₂气体瓶、20%乌拉坦溶液等。
（三）实验步骤1、家兔称重后，用 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）于耳缘静脉缓慢注射麻醉。
2、将家兔仰卧固定于手术台上，剪去颈部手术部位的毛，进行颈部正中切口，分离气管并插入气管插管。
3、分离一侧颈总动脉，插入动脉插管，通过压力换能器连接生物信号采集处理系统，记录动脉血压。
4、在剑突下切开皮肤，分离出剑突软骨，用丝线将其与张力换能器相连，以记录呼吸运动。
5、待动物稳定后，观察正常呼吸运动曲线。
6、依次进行以下操作，观察并记录呼吸运动的变化：增加吸入气中 CO₂浓度：通过气体瓶向气管插管内通入含较高浓度 CO₂的气体。
缺氧：用气囊阻断气管插管一段时间，造成缺氧。
增大无效腔：将一根长橡皮管连接在气管插管的一侧。
静脉注射乳酸溶液（2ml）。
切断双侧迷走神经，观察呼吸运动的变化。
然后分别刺激迷走神经中枢端和外周端，观察其效应。
三、实验结果（一）正常呼吸运动在未施加任何干预因素时，家兔的呼吸运动呈现出平稳、有节律的曲线，呼吸频率和幅度相对稳定。
（二）增加吸入气中 CO₂浓度当家兔吸入含较高浓度 CO₂的气体后，呼吸运动明显加深加快。
呼吸频率显著增加，呼吸幅度增大。
这表明 CO₂是调节呼吸运动的重要化学因素，其浓度升高可刺激呼吸中枢，增强呼吸运动。
（三）缺氧在造成缺氧的情况下，家兔的呼吸运动加深加快。
呼吸频率加快，呼吸幅度增大。
这是因为缺氧刺激外周化学感受器，反射性地引起呼吸运动增强，以增加肺通气量，改善缺氧状况。
（四）增大无效腔连接长橡皮管增大无效腔后，家兔的呼吸运动加深加快。
呼吸频率明显增加，呼吸幅度增大。
这是由于无效腔增大导致肺泡通气量减少，气体更新率降低，使得血液中的 PCO₂升高、PO₂降低，从而刺激呼吸中枢和外周化学感受器，引起呼吸运动增强。
家兔的呼吸运动调节实验报告
家兔的呼吸运动调节实验报告一、实验目的通过观察各种因素对家兔呼吸运动的影响，深入理解呼吸运动的调节机制，掌握相关实验技术和方法。
二、实验原理呼吸运动是一种节律性运动，其节律产生于呼吸中枢。
呼吸中枢接受来自体内外各种刺激的传入冲动，通过调整呼吸运动的频率和深度，使血液中的氧气、二氧化碳和酸碱度等保持相对稳定。
呼吸运动的调节主要包括神经调节和化学调节。
神经调节主要通过迷走神经和交感神经实现，化学调节则主要依赖于血液中氧气、二氧化碳和氢离子浓度的变化。
三、实验材料与方法（一）实验动物健康家兔一只，体重约 25 30 千克。
（二）实验器材BL-420 生物机能实验系统、呼吸换能器、压力换能器、哺乳动物手术器械一套、气管插管、动脉插管、注射器、5%碳酸氢钠溶液、20%乌拉坦溶液、氮气瓶、二氧化碳瓶等。
（三）实验步骤1、家兔称重后，于耳缘静脉缓慢注射 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）进行麻醉。
待家兔麻醉后，仰卧固定于手术台上。
2、剪去颈部手术部位的毛，沿颈部正中切开皮肤，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
在气管下方穿一根丝线，于甲状软骨下方 2 3 个软骨环处做一倒“T”形切口，插入气管插管，并用丝线固定。
3、分离一侧颈总动脉，插入动脉插管，通过压力换能器连接到BL-420 生物机能实验系统，用于监测动脉血压。
4、在剑突下切开皮肤，分离出剑突软骨，将连有张力换能器的丝线钩在剑突软骨上，用于记录呼吸运动。
5、各项准备工作完成后，启动 BL-420 生物机能实验系统，记录正常呼吸运动曲线。
四、实验项目及结果（一）增加吸入气中二氧化碳浓度打开二氧化碳瓶，使家兔吸入含较高浓度二氧化碳的气体。
观察到呼吸运动明显加深加快，呼吸频率显著增加。
这是因为血液中二氧化碳浓度升高，刺激外周化学感受器和中枢化学感受器，反射性地引起呼吸加深加快，以排出过多的二氧化碳。
（二）缺氧将氮气瓶与气管插管相连，使家兔吸入氮气造成缺氧。
呼吸运动加深加快，频率增加。
家兔缺氧实验报告
家兔缺氧实验报告引言缺氧是指细胞组织缺乏氧气供应的状态，会对生物体的正常生理功能造成严重影响。
为了进一步探究缺氧对家兔生理的影响，本实验设计了一种家兔缺氧实验，通过观察家兔在缺氧环境中的行为和生理指标变化，来了解缺氧对家兔的影响和应对策略。
实验设计实验材料和设备•家兔（数量：10只）•缺氧实验箱•血氧测量仪器•心率测量仪器实验步骤1.准备工作：将家兔放入缺氧实验箱前，先对其进行体重测量，并记录下每只家兔的基本信息。
2.家兔放置：将家兔逐一放置于缺氧实验箱中，确保实验箱密封良好，防止外界氧气进入。
3.实验开始：在家兔放置至实验箱后，立即开始记录其心率和血氧变化。
使用心率测量仪器和血氧测量仪器进行测量，每隔10分钟记录一次数据，持续记录60分钟。
4.实验结束：实验持续60分钟后，将家兔从实验箱中取出，结束实验。
记录家兔在恢复期的行为和生理指标变化。
实验结果家兔心率变化在缺氧环境中，家兔的心率呈现出明显的变化。
在实验开始后的前10分钟内，家兔的心率逐渐上升，说明家兔对缺氧环境产生了应激反应。
随着实验的进行，家兔的心率逐渐趋于稳定，但仍保持较高水平。
家兔血氧变化家兔在缺氧环境中的血氧水平明显下降。
在实验开始后的前10分钟内，家兔的血氧水平急剧下降，说明家兔在缺氧环境中无法获得足够的氧气供应。
随着实验的进行，家兔的血氧水平保持在较低水平，无法完全恢复到正常水平。
结论与讨论家兔在缺氧环境中呈现出明显的生理变化，包括心率的升高和血氧水平的下降。
这表明家兔对缺氧环境产生了明显的应激反应，并且无法通过自身调节机制来恢复到正常状态。
缺氧对生物体的影响主要是由于氧气供应不足导致细胞无法正常进行代谢和功能活动。
家兔作为哺乳动物，在缺氧环境中表现出的生理变化与人类和其他哺乳动物的反应类似，因此对于研究人类缺氧环境下的生理变化具有重要的参考价值。
然而，本实验仅限于对家兔的观察和记录，并未进行更深入的分析和研究。
在后续的研究中，可以进一步探究家兔在缺氧环境中的生理机制和应对策略，以及寻找改善缺氧状态下的治疗方法和措施。
家兔缺氧实验报告
家兔缺氧实验报告家兔缺氧实验报告引言：缺氧是指组织和器官得不到足够的氧气供应，从而导致细胞功能受损甚至死亡。
为了深入研究缺氧对生物体的影响，我们进行了一系列家兔缺氧实验。
本报告旨在总结实验结果，并探讨缺氧对家兔的影响。
实验方法：我们选择了20只健康的家兔作为实验对象，将它们分为两组。
实验组的家兔被置于一个封闭的容器中，通过控制氧气浓度来模拟缺氧环境。
对照组的家兔则在正常的氧气浓度下生活。
实验持续时间为72小时。
实验结果：经过72小时的缺氧处理，我们观察到以下几个方面的变化。
1. 血氧饱和度下降：实验组家兔的血氧饱和度明显下降。
正常家兔的血氧饱和度一般在95%以上，而实验组的家兔在缺氧环境下，血氧饱和度下降至80%左右。
这说明缺氧对呼吸系统有明显的影响。
2. 呼吸频率增加：实验组家兔的呼吸频率明显增加。
正常家兔的呼吸频率一般为每分钟30-60次，而实验组的家兔呼吸频率达到了每分钟80次以上。
这表明家兔在缺氧环境下通过增加呼吸频率来提高氧气吸入量。
3. 活动能力下降：实验组家兔的活动能力明显下降。
正常家兔具有较高的活动性，能够跳跃和奔跑。
然而，在缺氧环境下，实验组的家兔表现出明显的乏力和无力感，活动范围受限。
4. 血液指标变化：实验组家兔的血液指标也发生了一些变化。
血红蛋白浓度下降，红细胞数量减少，血小板数量增加。
这些变化可能与缺氧引起的贫血和血液凝固功能异常有关。
讨论：以上实验结果表明，缺氧对家兔产生了明显的影响。
缺氧导致血氧饱和度下降，进而引起一系列生理和行为上的变化。
家兔通过增加呼吸频率来提高氧气吸入量，但仍无法完全弥补缺氧带来的影响。
此外，缺氧还对血液指标产生了一定的影响，可能与机体代谢和免疫功能的改变有关。
结论：通过本次实验，我们深入了解了缺氧对家兔的影响。
缺氧导致家兔的血氧饱和度下降，呼吸频率增加，活动能力下降，血液指标发生变化。
这些结果对于研究缺氧对人类健康的影响具有一定的指导意义。
然而，需要进一步的研究来探索缺氧对不同器官和系统的影响机制，以及寻找缺氧应对的有效策略。
家兔缺氧试验报告
家免缺氧实验报告篇一：家兔缺氧实验家兔低张性缺氧［实验目的］:缺氧指组织供氧不足或用氧障碍，从而引起细胞代谢，功能以致形态结构发生异常变化的病理过程。
缺氧分为低张性缺氧，血液性缺氧，循环性缺氧，组织性缺氧四种类型。
本次实验通过复制低张性缺氧动物模型，观察急性缺氧过程中机体的代偿适应性变化，分析其发生机制。
［实验动物］:家兔［实验药品及器材］:BL-410生物机能实验系统，动脉插管，气管插管,缺氧瓶，注射器，注射针头,动脉夹，常规手术器械,血气分析仪，针;1%普鲁卡因，钠石灰，肝素生理盐水。
［实验步骤］:1、称重，全麻（3%戊巴比妥钠，1 ml/kg）,固定，剪毛。
2、气管插管，颈总动脉插管，剑突连拉力换能器描记呼吸。
3、描记正常血压，呼吸（频率/节律），心率，口唇颜色。
4、将气管插管与缺氧瓶连接，记录缺氧开始后上述指标变化。
第1页共1页〔实验结果〕血压心率呼吸频率呼吸幅度动脉血液颜色粘膜颜色正常缺氧5min缺氧10 min缺氧20 min〔讨论〕：1、缺氧早期，呼吸加深加快，心率加快，粘膜及血液颜色变化不大。
机制如下：本实验中，家兔的呼吸仅与缺氧瓶相通，呼出的CO2被钠石灰吸收，吸入气体的氧分压不断下降，最终导致PaO2下降，当PaO2V60mmHg的时候，便可以引起如下变化：由于上述机体代偿性改变，PaO2有所恢复，脱氧血红蛋白仍小于5g/dl,故不能出现发绀，血液及粘膜颜色无明显变化。
2.缺氧晚期：PaO2越来越低，过低的PaO2可抑制呼吸、心血管、神经等系统的功能。
使机体处于失代偿状态，出现呼吸减慢或不规则，血压（，心率（此时PaO2（（,CaO2（（。
脱氧血红蛋白可超过58"1,出现发绀（Cyanosis）。
3.由于上分析推出，当吸入气氧分压降低时，PaO2亦降低。
当PaO2V60mmHg时才会引起组织缺氧，同时引起机体的一系列代偿反应，包括增强呼吸和血压等。
符合低张性缺氧的特点。
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家兔缺氧实验报告
篇一：家兔缺氧实验
家兔低张性缺氧(hypotonichypoxiaofRabbit)
[实验目的]：缺氧指组织供氧不足或用氧障碍，从而引起细胞代谢，功能以致形态结构发生异常变化的病理过程。
缺氧分为低张性缺氧，血液性缺氧，循环性缺氧，组织性缺氧四种类型。
本次实验通过复制低张性缺氧动物模型,观察急性缺氧过程中机体的代偿适应性变化,分析其发生机制。
[实验动物]：家兔
[实验药品及器材]：
bL-410生物机能实验系统，动脉插管,气管插管,缺氧瓶,注射器,注射针头,动脉夹,常规手术器械,血气分析仪,针;1%普鲁卡因,钠石灰,肝素生理盐水。
[实验步骤]：
1.称重，全麻（3%戊巴比妥钠，1ml/kg）,固定，剪毛。
2.气管插管，颈总动脉插管，剑突连拉力换能器描记呼吸。
3.描记正常血压，呼吸（频率/节律），心率，口唇颜色。
4.将气管插管与缺氧瓶连接，记录缺氧开始后上述指标变化。
〔实验结果〕
血压心率呼吸频率呼吸幅度动脉血液颜色粘膜颜色
正常
缺氧5min
缺氧10min
缺氧20min
〔讨论〕：
1.缺氧早期，呼吸加深加快，心率加快，粘膜及血液颜色变化不大。
机制如下：
本实验中，家兔的呼吸仅与缺氧瓶相通，呼出的co2被钠石灰吸收，吸入气体的氧分压不断下降，最终导致pao2下降，当pao2＜60mmhg的时候，便可以引起如下变化：由于上述机体代偿性改变，pao2有所恢复，脱氧血红蛋白仍小于5g/dl，故不能出现发绀,血液及粘膜颜色无明显变化。
2．缺氧晚期：pao2越来越低，过低的pao2可抑制呼吸、心血管、神经等系统的功能。
使机体处于失代偿状态，出现
呼吸减慢或不规则，血压↓，心率↓此时pao2↓↓，cao2
↓↓。
脱氧血红蛋白可超过5g/dl,出现发绀（cyanosis）。
3．由于上分析推出，当吸入气氧分压降低时，pao2亦
降低。
当pao2＜60mmhg时才会引起组织缺氧，同时引起机
体的一系列代偿反应，包括增强呼吸和血压等。
符合低张性缺氧的特点。
篇二：家兔解剖实验报告
家兔解剖实验报告
14牧医一班
组长：吕兴亮
组员：李龙，李彦军，刘映宏，马
泽，庞婷婷，朱雪芳，李佳
龙
一、实验目的
1.通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、
循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点
2.掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征。
二、实验原理
将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能
进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。
三、实验器材
活家兔、解剖盘、注射器、镊子、手术刀、手术剪、骨钳
四、实验步骤
1、外形观察，处死
家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。
颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。
前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。
尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。
肛门两侧各有一个无毛区，提起此处皮肤，开口，打开皮肤。
取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。
挣扎一会后死亡。
2、打开皮肤
润湿腹部中间的毛,小心用剪刀从泄殖孔稍前方刨一横口,向上剪至顶部,用手术刀使皮肤和肌肉分离,将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。
3、开腹腔：
原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察肾脏冠切，从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处，暴露腹腔。
先观察各器官的自然位置。
可观察到：
胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不
规则的腺体。
胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。
小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。
十二指肠呈“u”形，
空肠和回肠界限不易区分。
大肠：分为盲肠、结肠和直肠三段。
盲肠为大肠的起始段，肠管最粗大，相当于
一个发酵罐，其末端有蚓突，结肠表面有横褶，直肠细长
膈肌：呈粉色，上面血多有放射状红色细丝
肾脏：移开胃后，可在其下观察到两肾，分布于两侧，其前端内缘各有一小的淡黄色扁圆形为肾上腺，由肾门伸出的一条白色细管为输尿管，与肾血管、神经管相伴行，向后通入膀胱的背侧。
取下一颗肾脏做冠切后，可看到肾脏的构造：在最外侧颜色较深的为肾皮质，里面颜色较浅的为肾髓质，在动、静脉附近可观察到肾乳头、肾盂、两个肾小盏及位于中间的肾大盏。
肝脏：在膈肌的下面呈红色的即为肝脏，翻开肝脏下方，用镊子轻轻拨开，即可看到墨绿色的胆囊。
膈肌：呈粉色，上面血多有放射状红色细丝
肾脏：移开胃后，可在其下观察到两肾，分布于两侧，其前端内缘各有一小的淡黄色扁圆形为肾上腺，由肾门伸出。