植物生理学实验
植物生理学实验测试
植物生理学实验测试植物生理学是研究植物生长和发育等生理过程的科学学科，通过实验测试可以揭示植物对外界环境因素的响应和适应机制。
本文将介绍几种常见的植物生理学实验测试方法，包括植物生长实验、叶绿素测定实验和逆境胁迫实验等。
一、植物生长实验植物生长实验是研究植物对不同环境条件下的生长反应的一种常见方法。
可以通过改变光照、温度、水分等环境因素来观察植物生长的变化。
在实验中，选取相同种子并进行处理，如将一组种子暴露在高温环境下，另一组放置在低温环境中，然后记录植物的生长情况，并进行数据统计和分析。
通过这种实验方法可以了解植物对温度的适应性以及不同温度对植物生长的影响。
二、叶绿素测定实验叶绿素是植物中起着关键作用的色素，其含量可以反映植物光合作用的强弱。
叶绿素测定实验可以通过测量植物叶片中叶绿素的含量来评估光合作用的效率。
实验中，首先需要采集新鲜叶片样品，并将其研磨得到绿色叶汁，然后通过光度计等仪器测定叶绿素的吸光度值，并根据标准曲线计算叶绿素的含量。
通过叶绿素测定实验可以评估植物对不同环境因素（如光照强度、养分浓度）的响应和适应能力。
三、逆境胁迫实验逆境胁迫实验是模拟植物在环境恶劣条件下的生理反应，如盐胁迫、干旱胁迫、冷热胁迫等。
通过逆境胁迫实验，可以研究植物在逆境条件下的生理适应和耐受机制。
实验中，可以使用不同浓度的盐水浇灌植物或让植物在干旱条件下生长，然后观察植物的生长情况、生理指标的变化，并与正常生长的植物进行比较分析。
逆境胁迫实验可以揭示植物对逆境的敏感性和胁迫响应机制，为育种和改良耐逆植物品种提供理论依据。
总结：植物生理学实验测试是研究植物生理过程的重要手段，通过不同的实验方法可以揭示植物对环境因素的响应和适应机制。
植物生长实验、叶绿素测定实验和逆境胁迫实验是常见的植物生理学实验方法，分别用于研究植物生长、光合作用和逆境胁迫的情况。
通过这些实验测试的结果，可以进一步了解植物的适应性和耐受能力，为培育适应不同环境的优良植物品种提供理论基础。
植物生理学实验
[思考题]
1 测定植物组织外渗电导率时，有时会发 现处理电导率比对照低的现象，试解释？
植物组织水势测定--小液流法
[原理]
在恒温恒压下，由植物组织与外界溶液组 成的体系的水势包含有植物组织的水势和 溶液的渗透势。
如果植物组织的水势低于外液的渗透势， 则植物组织吸水而使外液浓度变大；反之， 植物组织失水而使外液浓度变小；若二者 相等，则外液浓度不变，此时外界溶液的 渗透势等于植物组织的水势。
[思考题]
1.为什么常根据葡萄的颜色来判断葡萄的 质量好坏？
2.试想一下，在植物生长过程中影响花青 素形成的因素有哪些？
植物组织抗逆性鉴定 --外渗电导法
[原理]
质膜的选择透性因逆境伤害而明显改变或 丧失时，细胞内的物质(尤其是电解质)大 量外渗，从而引起组织浸泡液的电导率发 生变化，通过测定外渗液电导率的变化， 就可反映出质膜的伤害程度和所测材料抗 逆性的大小.
同一种溶液浓度不同，比重亦不同。
当两个不同浓度的溶液相遇时，稀的溶液 由于比重小而上浮，浓的溶液比重大而下 沉。当把浸过植物组织的溶液滴回到原浓 度的溶液中时，液滴会发生下降、上升或 基本不动几种情况。
如果液滴下降，说明浸泡液的渗透势高于 植物组织的水势；若液滴上升，说明浸泡 液的渗透势低于植物组织的水势；如果液 滴不动，则表示植物组织与浸泡液的水分 交换处于动态干衡中，浸泡液的渗透势等 于植物组织的水势。
实验一 植物的光合速率测定 ---改良半叶法
[原理]
• 植物叶片的主脉两侧对称部分叶面积基本 相等，其形态和生理功能也基本一致。
• 用物理或化学方法处理叶柄或茎的韧皮部， 保留木质部，以阻断叶片光合产物的外运， 同时保证正常水分供应。
植物生理学实验 实验报告
植物生理学实验实验报告植物生理学实验实验报告摘要：本实验旨在探究植物的生理反应和适应机制。
通过观察植物在不同环境条件下的生长和生理指标的变化，我们可以更好地理解植物的生理过程和适应策略。
本实验采用了盆栽植物的生长观察和测量方法，结合实验室中的设备和技术手段，得出了一系列有关植物生理学的结论。
1. 引言植物生理学是研究植物生长、发育和适应环境的科学，它涉及植物的生理过程、代谢调节、信号传导等方面。
通过实验研究，我们可以揭示植物在不同环境条件下的生理反应和适应机制，为植物的生产和保护提供理论依据。
2. 材料与方法本实验选取了常见的盆栽植物作为实验对象，包括绿萝、仙人掌和吊兰。
为了模拟不同环境条件，我们设置了三组实验组：阳光组、阴影组和干旱组。
每组实验设置五个重复，以保证实验结果的可靠性。
3. 结果与讨论3.1 生长观察在阳光组中，绿萝的叶片呈现出深绿色，茂密且向阳生长；仙人掌的刺变得更加粗壮，颜色也更加鲜艳；吊兰的叶片展开较大，叶色浅绿。
而在阴影组中，绿萝的叶片变得较为苍白，茂密度下降；仙人掌的刺变得细长，颜色较为暗淡；吊兰的叶片展开较小，叶色深绿。
在干旱组中，绿萝的叶片开始出现萎蔫现象；仙人掌的刺变得干瘪，颜色变得暗淡；吊兰的叶片开始卷曲，叶色变黄。
3.2 生理指标测量我们通过测量叶片的光合速率、蒸腾速率和叶绿素含量等指标，来进一步了解植物在不同环境条件下的生理变化。
在阳光组中，绿萝的光合速率较高，蒸腾速率也较高；仙人掌的光合速率较低，蒸腾速率也较低；吊兰的光合速率和蒸腾速率处于中等水平。
而在阴影组中，绿萝的光合速率和蒸腾速率下降明显；仙人掌的光合速率和蒸腾速率几乎停止；吊兰的光合速率和蒸腾速率也有所下降。
在干旱组中，绿萝的光合速率和蒸腾速率急剧下降；仙人掌的光合速率和蒸腾速率几乎停止；吊兰的光合速率和蒸腾速率也有所下降。
叶绿素含量的测量结果与光合速率和蒸腾速率的变化趋势一致。
4. 结论通过本实验的观察和测量，我们可以得出以下结论：1) 植物在阳光充足的环境下生长更加茂盛，叶片颜色更加鲜艳。
现代植物生理学实验指南
现代植物生理学实验指南植物生理学是一门重要的生物学科，研究植物在生长、发育、代谢和适应环境等方面的生理过程。
为了深入理解植物生理学，我们需要进行各种实验研究，这里为大家提供一份现代植物生理学实验指南，帮助大家系统了解植物生理学实验的基本方法和技巧。
实验一：光合作用实验光合作用是植物体内最重要的生理过程之一，我们可以通过测量植物的氧气释放量和二氧化碳吸收量来评估光合作用效率。
实验步骤如下：1. 将一片绿叶片放入水中，并用环状金属片夹住叶片。
2. 将装有水的容器倒置在金属片上，并使叶片完全浸入水中。
3. 在光亮条件下放置数小时，测量水中溶氧量的变化，记录并计算光合速率。
4. 重复操作若干次，得出稳定的结果。
实验二：水分利用实验水是植物生命的重要组成部分，其缺乏或过多都会对植物生长产生影响。
我们可以通过测量植物根系吸水能力和细胞渗透压来评估植物对水分的利用效率。
实验步骤如下：1. 准备两盆一模一样的植物，其中一盆为对照组，另一盆加盐水。
2. 分别测量两盆植物的根系吸水量和细胞渗透压，记录数据。
3. 将两盆植物进行比较，得出对盐水处理的植物的适应能力。
实验三：激素生理实验植物激素在影响植物生长、发育和适应环境方面发挥了重要作用，我们可以通过测量植物生长的速率和荷尔蒙水平来评估激素的作用。
实验步骤如下：1. 选择一些与生长相关的植物，如小麦或豌豆等。
2. 分别在一组处理中加入不同浓度的激素，另一组作为对照组。
3. 坚持一段时间，测量植物的生长速率和荷尔蒙水平，比较两组的差异。
以上是三个常见的植物生理学实验，希望这份实验指南能对学习植物生理学的同学们有所帮助。
在实验过程中，需要注意实验条件的一致性和数据的准确性，以确保实验的正确性和可靠性。
植物生理学的重要实验技术
植物生理学的重要实验技术植物生理学是研究植物内部各种生理过程的科学，通过实验技术的应用，可以深入研究植物的生理特性和调控机制。
本文将介绍几种重要的植物生理学实验技术，包括光合作用测定、光周期实验、蒸腾作用研究和植物生长素的测定。
一、光合作用测定光合作用是植物通过光能将二氧化碳和水转化为有机物质和氧气的过程。
光合作用的测定可以通过净光合速率的测定来进行。
测定方法可以使用荧光法或者气体交流法。
荧光法是通过测定叶片上的荧光信号的强度来计算净光合速率，而气体交流法是通过测定进出叶气体的浓度变化来计算净光合速率。
这些方法需要使用一些仪器设备，如荧光测定仪或气体交流测定系统。
二、光周期实验光周期是植物在一定时间内接受光照和黑暗的周期性变化。
光周期实验主要用于研究植物的花期控制、休眠期控制等生理过程。
常用的方法是通过控制植物所接受的光照时间和黑暗时间的比例来模拟不同的光周期条件。
可以使用光周期系列灯来实现对光周期的控制。
在实验过程中，可以观察植株的生长状况、花期的调控以及激素含量的变化等指标。
三、蒸腾作用研究蒸腾作用是植物体内水分的散失过程，是植物体内水分运输和植物生长发育的关键过程之一。
蒸腾作用研究常用的技术是测定植物叶片表面的水蒸气压，并结合气孔开闭情况来研究蒸腾作用的影响因素。
测定水蒸气压时通常使用水分压差传感器或者电子秤等设备，观察气孔开闭可以通过显微镜或者扫描电子显微镜等工具进行。
四、植物生长素的测定植物生长素是一类植物内源激素，调控着植物体内的生长和发育过程。
研究植物生长素的测定可以使用生物测定法、免疫测定法和色谱法等。
生物测定法使用生物体来测定生长素的活性，如使用阿片酸促进小麦胚芽的生长来测定生长素含量。
免疫测定法则是利用抗体和抗原之间的特异性结合来测定生长素含量。
色谱法是利用气相色谱或者液相色谱来分离和测定植物生长素的含量，通常需要先对样品进行提取和纯化。
结论植物生理学的实验技术是理解植物各种生理过程和调控机制的关键。
植物生理学实验报告
实验一植物组织水势的测定（小液流法）——2013.3.11 一、目的用小液流法（落滴法）测定植物组织的水势，由水势大致了解植物体内的水分状况二、原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，谁从水势高处流向低处。
植物体细胞之间，组织之间以及植物体和环境间的水分移动方向都由水势插决定。
三、材料与设备植物材料：阔叶树叶片（大叶女贞）实验器具：细滴管一支；试管及指形管各五支（带塞）；100mL烧杯一只；镊子、剪刀各一把；2mL、5mL移液管各一支；标签纸；钻孔器；木板试剂：1ml/L蔗糖溶液；甲烯蓝溶液四、操作步骤1.用短滴管吸取1,mol/L蔗糖液配制一系列浓度递增的蔗糖溶液（0.05,0.1,0.2,0.3,0.4mol/L）各10 ml，加入干燥刻度试管内，各管都加上塞子，充分混合，并编号。
用移液管从浓度各试管中吸取1ml注入第二指形管内，各管均加塞，并贴上标签。
2.用钻孔器（取相同部位）钻取同大小叶片。
每支指形管中放入10片，加塞，放置20~30分钟（期间摇动2~3次），到时间后，加入2~3滴甲烯蓝溶液于指形管中，使其溶液呈蓝色，以区别原来的颜色。
3.用细长滴管从各指形管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入相同编号（原相同浓度）试管的中部，缓慢从细长滴管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，在无色透明背景上观察小液滴移动的方向。
如果有色液滴向上移动，说明细胞液中水分外流，试验比重比原来小；如果有色液向下移动，则说明细胞从溶液中吸收了水分，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动，向外扩散则说明两者的浓度相等或接近，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度，若找不到改浓度，取在下降上升转变时量浓度的均值。
五、作业1.记录小液流在试管内的移动方向2.按下列公式计算组长的水势：ψW（细胞水势）=ψs=-CRT式中：ψs——溶液的渗透势，以Mpa为单位R——气体常数，为0.008314Mpa*L/（mol*K）。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告摘要：本实验旨在通过一系列实验来研究植物的生理特性及其对外界环境的响应。
我们使用了单子叶植物蔗糖苦苣菜（Saccharum officinarum L.）作为研究对象，并分别对其光合作用、光反应及水分运输进行了分析。
通过实验结果，我们得出了一些重要结论，对于深入了解植物生理学及其应用具有重要的意义。
引言：植物生理学是研究植物如何在内外环境的调节下进行生长和发育的科学。
通过对植物的生理特性进行研究，我们可以更好地了解植物生活的基本规律。
因此，本实验旨在通过一系列实验来深入研究植物的生理学特性。
材料与方法：1. 实验材料：蔗糖苦苣菜植株、草状质量秤、光谱辐射计、叶绿素荧光仪、离心机等。
2. 实验步骤：- 实验一：光合作用a. 将蔗糖苦苣菜植株放置在恒温暗房内恢复一段时间。
b. 将光谱辐射计放在适当位置，记录光照强度和光质。
c. 将一片健康的叶片置于夹层式草状质量秤上，记录叶片重量。
d. 将叶片暴露在光源下，测量一定时间内的叶片重量。
e. 重复实验步骤c和d，以获得多组数据并进行统计分析。
- 实验二：光反应a. 将蔗糖苦苣菜叶片置于叶绿素荧光仪上，等待测量稳定。
b. 记录初始叶绿素荧光（F_o）值。
c. 迅速打开强光源，记录最大叶绿素荧光（F_m）值。
d. 计算有效光能利用率（Yield）和光化学淬灭（qP）等参数。
- 实验三：水分运输a. 随机选取两片蔗糖苦苣菜叶片，将其离枝并切割横截面。
b. 快速将一片叶片放置在自来水中，随即用另一片叶片封住叶脉。
c. 将样品放置在离心机上，启动离心机以模拟植物体内水分运输。
d. 一段时间后，观察叶片的水分状态，并记录数据。
结果与讨论：1. 实验一的结果显示，蔗糖苦苣菜的光合作用明显受到光照强度和光质的影响。
光照强度越高，光合速率越快。
同时，特定波长范围的光对光合作用的促进作用更为明显。
2. 实验二的结果表明，蔗糖苦苣菜的光反应能力非常高，有效光能利用率和光化学淬灭都表现出良好的性能。
植物生理学实验 实验报告
植物生理学实验实验报告
《植物生理学实验实验报告》
实验目的：
本实验旨在探究植物生长过程中的生理学特性，通过实验观察和数据分析，了
解植物对外界环境的适应能力。
实验材料：
本次实验所需材料包括小麦种子、培养皿、水、土壤、温度计、光照计、湿度
计等。
实验步骤：
1. 将小麦种子放置于培养皿中，分别在不同的条件下进行实验观察。
其中包括
不同的温度、光照和湿度条件。
2. 记录每组实验条件下小麦种子的发芽率、生长速度、叶片颜色等生理学特征。
3. 对实验数据进行统计分析，比较不同条件下植物生长的差异，分析植物对外
界环境的适应能力。
实验结果：
经过实验观察和数据分析，我们发现在不同的温度、光照和湿度条件下，小麦
种子的生长状况存在显著差异。
在适宜的温度和湿度条件下，小麦种子的发芽
率和生长速度较高，叶片颜色也更加翠绿。
而在极端的温度和湿度条件下，小
麦种子的生长受到抑制，甚至出现枯萎现象。
实验结论：
通过本次实验，我们深刻认识到植物对外界环境的适应能力，以及不同环境条
件对植物生长的影响。
这不仅有助于我们更好地了解植物生理学特性，也为农
业生产和植物保护提供了重要的理论依据。
总结：
植物生理学实验是深入了解植物生长过程和生理特性的重要手段，通过实验观察和数据分析，我们可以更加全面地了解植物对外界环境的适应能力，为植物生长和保护提供科学依据。
希望本次实验能够对植物生理学研究和相关领域的发展起到一定的推动作用。
植物生理实验题
植物生理实验题
植物生理实验题通常涉及对植物生长、发育和生理过程的实际操作和观察。
以下是一些可能的植物生理实验题目，供你参考：
光合作用实验：
设计一个实验，验证光合作用与光照强度之间的关系。
你可以考虑改变光照强度，测量植物的光合速率。
呼吸作用实验：
利用呼吸作用实验，研究温度对植物呼吸速率的影响。
你可以使用不同温度条件下的植物组织，比较它们的氧气摄取或二氧化碳释放。
水分运输实验：
通过设计一个实验，探究植物中水分的运输。
可以使用色素标记法，观察染色液在植物中的运输过程。
激素影响实验：
设计一个实验，研究植物生长激素对植物生长和发育的影响。
可以选择一种激素，如赤霉素、生长素等，通过添加或去除激素，观察植物的生理变化。
光周期实验：
通过改变光照的时间来研究植物的生物钟。
设计一个实验，调整日夜的长短，观察植物的开花、休眠等周期性生理过程。
渗透压实验：
利用渗透压实验，研究植物细胞在不同浓度溶液中的膨压和质壁关系。
可以使用不同浓度的蔗糖溶液，观察植物细胞的反应。
叶片光合效率实验：
通过测量不同叶片的光合效率，探究叶片的结构和功能之间的关系。
可以使用光合仪或测光仪进行实验。
温度对发芽的影响实验：
设计一个实验，研究不同温度条件下植物种子的发芽速率和发芽率。
观察温度对种子生理活性的影响。
这些实验题目可以涵盖植物生理学的多个方面，要求学生在实验设计、数据收集和分析方面有一定的能力。
希望这些题目能够激发你对植物生理学实验的兴趣。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告植物生理学实验报告引言：植物生理学是研究植物内部生理过程的科学，通过实验方法可以深入了解植物的生长发育、代谢、适应环境等方面。
本实验旨在探究植物对光照强度的响应机制，以及光合作用对植物生长的影响。
材料与方法：实验材料包括小麦种子、培养皿、土壤、水、光照强度计等。
首先，将小麦种子均匀撒在培养皿中，然后在不同的光照条件下进行培养。
实验分为三组，分别是高光照组、中光照组和低光照组。
每组设置三个重复样本。
在实验过程中，使用光照强度计测量不同组的光照强度，并根据需要调整光照灯的距离。
结果与讨论：实验结果显示，光照强度对小麦的生长发育有明显的影响。
在高光照组下，小麦的生长速度较快，茎秆高度和根系发达。
而在低光照组下，小麦的生长速度明显减缓，茎秆矮小，根系生长不良。
中光照组的小麦生长状况介于两者之间。
这种光照对植物生长的影响主要是由于光合作用的变化引起的。
光合作用是植物通过光能转化为化学能的过程，是植物生长发育的重要能量来源。
在高光照条件下，植物叶片能够充分接收到光能，从而促进光合作用的进行，提供足够的能量和养分供植物生长发育所需。
而在低光照条件下，植物叶片接收到的光能减少，光合作用能力减弱，因此植物生长速度减缓。
此外，实验还观察到了光照强度对小麦叶片颜色的影响。
在高光照组下，小麦叶片呈现出浓绿色，而在低光照组下，叶片颜色较为苍白。
这是因为光照强度的不同导致了叶绿素的合成和降解速率的变化，进而影响了叶片的颜色。
结论：通过本实验，我们得出了光照强度对植物生长发育的影响是显著的结论。
高光照能够促进植物的生长速度和光合作用的进行，而低光照则会导致植物生长减缓和叶片颜色苍白。
这对于植物生理学研究和植物栽培具有一定的指导意义。
然而，本实验还存在一些不足之处。
首先，实验中使用的小麦种子数量较少，样本量较小，因此实验结果的可靠性有待进一步验证。
其次，本实验只研究了光照强度对植物生长的影响，未涉及其他因素如温度、湿度等对植物生理的影响。
植物生理学综合实验
第九组 MJ与NO、H2O2的关系
第九组组要是两个实验，第一个是将茉莉酸甲酯和维生素C合用，维生素C是延 缓叶片衰老的，茉莉酸甲酯的促进叶片衰老的，两者的作用应该是相互抵消的。 第二个是将茉莉酸甲酯和过氧化氢在一起合用，两者都是促进细胞衰老的，当 一定合用是，衰老效果更加的明显，因为两者的作用相互叠加了。但是第一个 实验的实验现象在鉴定细胞活性的时候，结果却不是很明显，看了一下，叶片 时没什么问题的，导致这样的原因可能是染色环节上出错了，有可能是脱色时 间不够，也有也能是有光亮环境的时间过多，导致脱色效果不好等等。
第七小组
第八组
5×10-4mol/L MJ+300umol/L SNP
5×10-6 mol/L MJ+100umol/LHb
5×10-6mol/L MJ+1.0g/L ETH
5×10-4 mol/L MJ+75umol/L COCl2
第八小组
第九组
5×10-4mol/L MJ+1.0g/L Vc
植物生理综合实验 细胞死活与H2O2鉴定
学号 姓名
一 实验目的：
1.了解信号物质、激素对植物子叶的影响 2.掌握细胞死活与过氧化氢鉴定方法
二 实验原理：
植物受到一些物质处理时，会作出相应的反应。 产 生活性物质（信号物质）。一些细胞甚至会死亡。这些反 应可被检测。
三实验内容：
一、茉莉酸甲酯对黄瓜子叶的作用 二、一些物质对茉莉酸甲酯作用的影响
茉莉酸甲酯在植物生长和发育过程中是体现出类似 激素的作用，能够促进种子的萌发，植物的生长、开 花、还能促进叶片的衰老，块茎形成，果实成熟等。 从第一组的实验可以看出茉莉酸甲酯促进了叶片的衰 老，并且浓度越高，对细胞的衰老作用就越强。
植物生理学 实验
[实验目的]：观察植物组织在不同浓度溶液中细胞质壁分离的产生过程及其用于测定植物组织渗透势的方法。
[实验原理]：当植物组织细胞内的汁液与其周围某种溶液处于渗透平衡状态，植物细胞内的压力势为零时，细胞汁液的渗透势就等于该溶液的渗透势，这种渗透势相等的溶液称为等渗溶液。
该溶液的浓度称为等渗浓度。
当用一系列梯度浓度溶液观察细胞质壁分离时，细胞的等渗浓度将界于刚刚引起初始质壁分离的浓度和尚不能引起质壁分离的浓度之间的溶液浓度。
代入公式即可计算出其渗透势。
[器材与试剂]：实验仪器：显微镜，载玻片及盖玻片，镊子，刀片；实验试剂：100ml 浓度为1mol/L 蔗糖溶液：用蒸馏水配成0.10、0.15、0.20、0.25、0.30、0.35、0.40、0.45、0.50mol/L 的蔗糖溶液各50mL ；实验材料：洋葱鳞茎[实验步骤]：1.取带有色素的洋葱鳞茎，迅速投入各种浓度的蔗糖溶液中，使其完全浸入，约5—10min 。
2.从0.50mol/L 开始依次取出表皮薄片放在滴有同样溶液的载玻片上，盖上盖玻片，于低倍显微镜下观察，并记录质壁分离的相对程度。
3.在实验中确定一个引起半数以上细胞原生质刚刚从细胞壁的角隅上分离的浓度，和不引起质壁分离的最高浓度。
4.在找到上述浓度极限时，用新的溶液和新鲜的叶片重复进行几次，直到有把握确定为止。
在此条件下，细胞的渗透势与两个极限溶液浓度之平均值的渗透势相等。
将结果记录于表中。
测出引起质壁分离刚开始的蔗糖溶液最低浓度和不能引起质壁分离的最高浓度平均值之后，可按下列各式计算在常压下该组织细胞质液的渗透势。
-Φs=RTiC1式中：-Φs 为细胞渗透势；R 为气体常数=0.083×105L ·Pa/mol ·K ；T 为热力学温度，单位K ；i 为解离常数，蔗糖为1；C 1为等渗溶液的质量摩尔浓度，单位是mol/kg ；则-Φs==0.083×105×(273+t)×1×C由于实验用的蔗糖溶液浓度单位为mol/L ，因此需要按下式对其浓度进行修正。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告植物生理学是研究植物内部生理过程的学科，通过实验研究来了解植物的生理功能和生理机制。
本文将介绍植物生理学实验的一些基本原理和方法，并以一个实验为例，说明如何通过实验来研究植物的生理过程。
植物生理学实验的基本原理和方法植物生理学实验通常涉及到植物的生长、营养、代谢、生殖等方面的研究。
实验方法包括观察、测量、分析和比较等。
在实验设计中，需要考虑到实验的可重复性、实验对象的选择和实验条件的控制等因素。
观察是植物生理学实验中的基本方法之一，通过观察可以了解植物在不同条件下的生长和发育情况。
比如观察植物在不同光照条件下的生长情况，可以了解光照对植物生长的影响。
测量是另一种重要的实验方法，可以通过测量植物的生长速度、光合作用速率、气体交换速率等参数来了解植物的生理功能。
分析和比较是另外两种重要的实验方法，可以通过对不同实验条件下的数据进行比较和分析，查找差异和规律。
实验设计中，需要考虑实验对象的选择和实验条件的控制。
实验对象的选择需要考虑到实验目的和实验方法的可行性。
实验条件的控制需要尽可能消除外界干扰因素，从而保证实验结果的可靠性和准确性。
实验示例：光照对植物生长的影响为了研究光照对植物生长的影响，我们设计了以下实验：实验材料：豌豆种子、石膏板、水、不同光照条件下的灯具。
实验方法：1.将豌豆种子浸泡在水中，等待其发芽。
2.在石膏板上划出等距离的直线，并在直线上标注不同的光照条件（如全光照、半光照和无光照）。
3.将发芽的豌豆种子分别种在不同光照条件下的石膏板上。
4.在不同的光照条件下，每天记录豌豆种子的生长情况，包括生长高度、根长、幼苗颜色等。
实验结果：在全光照条件下，豌豆种子的生长速度最快，幼苗的颜色也最鲜艳；在半光照条件下，豌豆种子的生长速度较慢，幼苗颜色也较浅；在无光照条件下，豌豆种子无法正常生长。
结论：光照是影响植物生长的重要因素之一，光照越充足，植物的生长速度越快，幼苗的颜色也越鲜艳。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告
植物是我们周围不可或缺的重要生物，它们通过各种生理过程实现
生长、发育和适应环境。
为了更深入地了解植物的生理特点，我们进
行了一系列植物生理学实验。
以下是我们的实验报告：
实验一：光合作用速率与光照强度的关系
在这个实验中，我们收集了不同光照强度下植物的光合作用速率数据。
结果显示，随着光照强度的增加，植物的光合作用速率呈现出增
加的趋势。
这表明光照强度对植物光合作用的影响十分显著，光合作
用速率与光照强度呈正相关关系。
实验二：水分蒸腾速率与相对湿度的关系
在这个实验中，我们测量了不同相对湿度下植物的水分蒸腾速率。
结果显示，随着相对湿度的增加，植物的水分蒸腾速率逐渐降低。
这
表明植物的水分蒸腾速率受相对湿度的影响，相对湿度与水分蒸腾速
率呈负相关关系。
实验三：温度对植物呼吸速率的影响
在这个实验中，我们调节了不同温度下植物的呼吸速率。
结果显示，随着温度的升高，植物的呼吸速率也随之增加。
这表明植物的呼吸速
率受温度影响，呼吸速率与温度呈正相关关系。
通过以上实验，我们对植物的光合作用、水分蒸腾和呼吸等生理过
程有了更深入的了解。
这些实验为我们研究植物的生长发育及环境适
应性提供了重要的参考依据。
希望我们的实验结果能对今后的植物生理学研究有所启发和帮助。
《植物生理学实验》
植物生理学实验引言植物生理学实验是研究植物生长和发育过程中的生理过程的一种科学方法。
通过对植物进行不同条件下的实验观察和分析，可以了解植物对外界环境的适应能力、生长调控机制等重要信息。
本文将介绍几个常见的植物生理学实验，包括光合作用实验、呼吸作用实验和植物生长调控实验。
实验一：光合作用实验实验目的研究光合作用在植物生理过程中的影响。
实验材料和仪器•适用于实验的植物样本•光照箱•光合作用测定仪器（如光合速率测定仪）实验步骤1.准备植物样本，并将其放置于光照箱中。
2.分别设置不同光照强度（如低光、中光、高光）的条件，并记录光照强度。
3.使用光合速率测定仪器，测定每个条件下的光合速率。
4.分析结果并得出结论。
实验结果和讨论根据实验结果，可以得出光照强度对光合作用速率的影响。
光照强度越高，光合作用速率越快，因为光合作用需要光能作为能量来源。
这个实验表明了光合作用对植物生长和发育的重要性，同时也可以用于评估植物对不同光照条件下的适应能力。
实验二：呼吸作用实验实验目的研究植物呼吸作用的过程和机制。
实验材料和仪器•成活的植物样本•呼吸速率测定仪器实验步骤1.准备植物样本并放置于呼吸速率测定仪器中。
2.记录植物在不同条件下的呼吸速率，如不同温度、不同光照等。
3.分析结果并得出结论。
实验结果和讨论通过呼吸速率的测定，可以了解到不同条件下植物呼吸的强度和速率。
温度对植物呼吸速率的影响比较显著，一般情况下，随着温度的升高，植物呼吸速率也会提高。
这个实验可以帮助我们理解植物的能量代谢过程，为植物生长和发育的调控机制提供重要信息。
实验三：植物生长调控实验实验目的研究不同条件对植物生长和发育的调控作用。
实验材料和仪器•可控环境设备（如生长箱）•不同生长因子的处理液（如植物激素）实验步骤1.准备植物样本，并将其种植在生长箱中。
2.设置不同生长条件，如温度、湿度、光照等，并记录相关参数。
3.分别加入不同处理液，如植物激素，观察植物生长和发育的变化。
植物生理学实验
营养胁迫条件下生物量积累的减少可能与 植物对营养元素的吸收和利用受限有关， 这会影响植物的生长和发育进程。
实验结论
实验结论1
光照条件对植物叶绿素含量 具有显著影响，适当增加光 照强度可以提高植物的光合 作用效率。
实验结论2
水分胁迫条件下，植物会通 过降低蒸腾速率来维持水分 平衡，因此在干旱地区种植 作物时应注意合理灌溉。
改进方向
优化实验设计，缩短实验周期；采用更加智能的环境调控系统，提高实
验效率；改进生理指标的测定方法，减少对植物组织的破坏，提高实验
的准确性。
05
CHAPTER
参考文献
参考文献
APA格式
主要用于社会科学和人文学科的参考文献引 用。
MLA格式
主要用于文学作品的参考文献引用。
Chicago格式
主要用于历史和传记作品的参考文献引用。
数据整理
对实验数据进行整理、分类和 归档，以便后续分析和处理。
结果分析
根据实验数据，进行统计分析 ，得出实验结论，并撰写实验
报告。
数据记录
准确记录
在实验过程中，应准确记录每个步骤 的操作和结果，包括使用的试剂、仪 器型号和规格、实验条件等。
及时记录
实验过程中应随时记录数据，避免遗 漏或错记，确保数据的真实性和完整 性。
水分、二氧化碳浓度等多种因素的影响。
输标02入题
植物适应性：植物通过调整自身生理生化过程，适应 不同的环境条件，如温度、光照、水分、土壤类型等。
01
03
植物激素的作用：植物激素如生长素、赤霉素、细胞 分裂素等对植物的生长发育具有调控作用，影响植物
的形态建成和生理生化过程。
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植物生理学实验报告
一、实验名称植物生理学实验：植物蒸腾作用的观察与测定二、实验目的1. 观察植物蒸腾作用的现象。
2. 测定植物叶片的蒸腾速率。
3. 了解影响植物蒸腾作用的因素。
三、实验原理植物蒸腾作用是指植物体内水分通过叶片气孔以水蒸气形式散发到大气中的过程。
蒸腾作用是植物体内水分循环的重要环节，对植物的生长发育和生态环境具有重要意义。
实验中，通过观察植物叶片气孔的开闭情况，测定叶片的蒸腾速率，分析影响蒸腾作用的因素。
四、实验材料与仪器1. 实验材料：新鲜植物叶片、剪刀、蒸馏水、滤纸、玻璃片、温度计、秒表、透明塑料袋。
2. 实验仪器：分析天平、蒸馏水器、温度计、秒表、量筒、透明塑料袋。
五、实验步骤1. 将新鲜植物叶片用剪刀剪成约1cm²的小块，用蒸馏水洗净，晾干。
2. 将叶片放入透明塑料袋中，密封袋口。
3. 用温度计测量叶片和塑料袋内的温度，记录初始温度。
4. 将塑料袋置于室温下，每隔一定时间（如5分钟）观察叶片气孔的开闭情况，记录气孔开闭次数。
5. 将叶片从塑料袋中取出，用分析天平称量叶片质量，记录初始质量。
6. 将叶片放入蒸馏水中浸泡，使其充分吸水。
7. 将吸水后的叶片重新放入塑料袋中，密封袋口。
8. 将塑料袋置于室温下，每隔一定时间（如5分钟）观察叶片气孔的开闭情况，记录气孔开闭次数。
9. 将叶片从塑料袋中取出，用分析天平称量叶片质量，记录吸水后的质量。
10. 计算叶片的蒸腾速率。
六、实验结果与分析1. 观察叶片气孔的开闭情况，发现叶片在室温下蒸腾作用明显，气孔开放次数较多；在蒸馏水中浸泡后，气孔开放次数明显减少。
2. 通过实验数据计算，得到不同条件下叶片的蒸腾速率。
3. 分析影响植物蒸腾作用的因素，如温度、光照、水分等。
七、实验结论1. 植物蒸腾作用是植物体内水分循环的重要环节，对植物的生长发育和生态环境具有重要意义。
2. 温度、光照、水分等因素对植物蒸腾作用有显著影响。
3. 本实验通过观察植物叶片气孔的开闭情况和测定叶片的蒸腾速率，验证了植物蒸腾作用的存在。
《植物生理学实验》教学大纲全文
《植物生理学实验》教学大纲课程名称（中文/英文）：植物生理学实验（Plant physiology experiments） 课程编号：1805102课程类别：专业方向选修教材名称：《植物生理学实验》实验教学大纲与指导学时学分： 学时 21 学分 1 实验学时 21应开实验学期：二～三 年级 四～五 学期先修课程：植物生理学适用专业：环境科学，生物技术一、课程性质及要求本课程为环境科学、生物技术专业本科生开设的专业教育选修课，是《植物生理学》理论课教学的补充。
本课程教学要求：通过实验操作，让学生深入认识、巩固和扩充植物生理学的基本概念、基本原理、重要生理代谢机制等理论知识，学习植物生理学基本的研究方法和实验技术，培养学生进行科学研究的基本技能，提高学生动手能力以及分析问题、解决问题的能力，养成严谨的科学态度。
二、内容简介《植物生理学》是植物学科方向的高级课程，《植物生理学》实验课是充实课堂理论知识，锻炼学生动手操作能力，培养学生实验基本技能的辅助课程。
该课程通过实践操作，使学生掌握组成植物体各部分的组织学特征及根、茎、叶等器官的细胞学特征，以及掌握植物生理中水分代谢、光合作用、抗性生理、有机物质转化等基本概念和操作技能，更加熟悉植物生理学基础知识，为学生学习后续课程及日后参加生产、科研等工作打下基础。
三、主要仪器设备：普通显微镜，水浴锅，可见分光光度计，托盘天平四、教学方法与基本要求1．必须在所有化学，生物化学等课程完成后才能开设本课程；2. 一般是在理论课教授完成后才进行实验课程的教学；3. 教学方法主要是学生自己操作，授课教师边讲解边示范。
五、考核方法实验报告作为平时成绩记录六、实验项目设置序号实验名称内容提要实验学时每组人数实验属性实验要求1 淀粉粒，石细胞，厚角组织的观察观察植物不同组织的细胞形态及结构 2 1 验证2 根尖形态与结构观察 观察根尖的形态与结构 2 1 验证3 茎的初生与次生结构观察 观察单、双子叶植物茎的初生与次生结构 2 1 验证4 叶表皮细胞，气孔与结构观察观察植物叶表皮细胞及气孔形态与叶横切面结构2 1 验证5 植物细胞原生质流动和质壁分离现象的观察观察植物细胞原生质流动，质壁分离的现象2 1 综合6 植物组织水势的测定 利用小液流法测定植物组织的水势 3 4 综合7 植物叶绿素的提取、分离、性质及吸收光谱利用有机溶剂提取新鲜植物叶片的叶绿素，观察叶绿素的荧光现象，掌握吸收光谱测定方法3 4 综合8 过氧化物酶及超氧化物歧化酶活性的测定掌握植物材料中过氧化物酶及超氧化物歧化酶活性测定原理与方法,比较各种植物材料中酶活性的变化2 4 综合9 油类种子萌发时脂肪酸含量的变化掌握油类种子里脂肪酸测定的方法，比较它们在萌发过程中含量的变化3 4 综合小计21。
植物生理学实验报告
植物⽣理学实验报告植物⽣理学实验报告实验⼀、植物组织⽔势测定（⼩液流法）⼀、实验原理⽔总是从⽔势⾼的系统流向⽔势低的系统。
将植物叶⽚分别与⼀系列不同浓度的蔗糖溶液接触，蔗糖溶液浓度从⼩到⼤，开始时，植物叶⽚⽔势低于蔗糖溶液，溶液中⽔分向叶⽚转移，蔗糖溶液浓缩，蔗糖溶液密度较原始浓度升⾼；蔗糖溶液⾼到⼀定浓度后，蔗糖溶液⽔势低于植物叶⽚，叶⽚⽔分向溶液中转移，蔗糖溶液稀释，密度较原始浓度降低。
如果植物组织的⽔势等于蔗糖溶液的⽔势，⽔分不发⽣净移动，外液浓度较原浓度不发⽣变化上述浸泡过植物组织、浓度发⽣改变的蔗糖溶液为⼄组。
原始浓度的蔗糖溶液为甲组。
将⼄组溶液染⾊后，取⼄组溶液⼀⼩滴（⼩液流），放⼊对应浓度的甲组溶液中，观察⼩液流因密度不同⽽下降、上升或不动的情况，记录与之相对应的甲组溶液的浓度。
⼆、材料与设备1.材料：植物叶⽚；2.仪器设备：试管、试管架、打孔器、尖头镊⼦、尖头针、移液管、⽑细滴管；3.试剂：1M蔗糖液、甲烯蓝粉。
三、实验步骤1.蔗糖溶液配制：l)取⼲燥洁净试管5⽀，贴标签标记，⽤1M蔗糖母液配制蔗糖溶液，浓度由⼩到⼤分别为0.1、0.25、0.5、0.75、1M，每个浓度均配8m1，放⼊对应标记的试管中，作为甲组（⼀定要混匀）2）另取⼲燥洁净的指形管5⽀，标明0.1、0.25、0.5、0.75、1M浓度的蔗糖溶液，分别从甲组取相应浓度蔗糖溶液1m1置于指形管，作为⼄组。
2.取样及测定1)选取⽣长⼀致的叶⽚，⽤打孔器钻取⼩圆⽚4-6⽚/管，将⼩圆⽚全部浸⼊⼄组指形管溶液中，摇动20分钟；2）⽤针尖蘸取少许甲烯蓝粉末，分别放⼊⼄组各指形管中，摇匀，可看见⼄组指形管中溶液颜⾊变蓝：3）⽤⽑细滴管吸取蓝⾊溶液，轻轻插⼊相应浓度的甲组溶液中部，⽤吸⽿球轻柔吹⽓，以帮助蓝⾊溶液从⽑细滴管中流出。
在流出的⼀瞬间观察并记录液滴的升降情况；4）若液滴下降，说明组织吸⽔使溶液变浓，⽐重变⼤；若液滴上升，说明组织失⽔使溶液变稀，⽐重变⼩；若液滴静置不动，说明此溶液的溶质势与叶圆⽚组织的⽔势相等，⽔分交换平衡，溶液⽐重不变，根据溶液的浓度可计算⽔势：若前⼀浓度溶液⼩液流下沉，⽽后⼀浓度溶液中上浮，则组织的⽔势值介于两蔗糖溶液⽔势之间，可取平均值计算。
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实验名称：植物含水量的测定实验目的：掌握测定植物组织的含水量的方法实验原理：利用水遇热蒸发为水蒸汽的原理，可用加热烘干法来测定植物组织中的含水量。
植物组织含水量的表示方法，常以鲜重或干重 % 表示，有时也以相对含水量 % （或称饱和含水量 % ）表示。
后者更能表明它的生理意义。
实验材料与设备：（一）材料：植物鲜组织。
（二）仪器设备：天平（感量1/1000g）；烘箱；干燥器；剪刀；搪瓷盘；塑料袋；纸袋；吸水纸等。
实验步骤：⒈鲜重测定迅速剪取植物材料，装入已知重量的容器（或塑料袋）中，带入室内，用分析天平称取鲜重（FW）。
⒉干重测定提前把烘箱打开，温度升至100~105℃。
把称过鲜重的植物材料装入纸袋中，放入烘箱内，100~105℃杀青10min，然后把烘箱的温度降到70~80℃左右，烘至恒重。
取出纸袋和材料，放入干燥器中冷却至室温，称干重（DW）。
⒊饱和鲜重测定将称过鲜重的植物材料浸入水中，数小时后取出，用吸水纸吸干表面水分，立即称重；再次将材料放入水中浸泡一段时间后，再次取出，吸干表面水分，称鲜重，直到两次称重的结果基本相等，最后的结果即为饱和鲜重（SFW）。
若事先已知达到水分饱和所用的时间，则可一次取得饱和鲜重的测量定值。
⒋取得以上数据后，按公式计算组织含水量、相对含水量。
思考题：测定饱和含水量时，植物材料在水中浸泡时间过短或过长会出现什么问题？实验名称：植物组织水势的测定（小液流法）实验目的：学会用小液流法测定植物组织的水势实验原理：将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。
因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）。
ψw＝ψπ＝－P＝－iCRT实验材料与设备：（一）材料：小白菜或其它作物叶片（二）仪器设备：1.带塞青霉素小瓶12个；2.带有橡皮管的注射针头；3.镊子；4.打孔器5.培养皿。
（三）试剂：1. 0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30mol/L蔗糖溶液；2.甲烯蓝粉末。
实验步骤：（一）取干燥洁净的青霉素瓶6个为甲组，各瓶中分别加入0.05～0.30mol/L蔗糖溶液约4ml（约为青霉素瓶的2／3处），另取6个干燥洁净的青霉素瓶为乙组，各瓶中分别加入0.05～0.30mol/L蔗糖溶液1ml 和微量甲烯蓝粉末着色，上述各瓶加标签注明浓度。
（二）取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约50片，放至培养皿中，混合均匀。
用镊子分别夹入5～8个小圆片到盛有不同浓度的甲烯蓝蔗糖溶液的青霉素瓶中（乙组）。
盖上瓶塞，并使叶圆片全部浸没于溶液中。
放置约30～60min，为加速水分平衡，应经常摇动小瓶。
（三）经一定时间后，用注射针头吸取乙组各瓶蓝色糖液少许，将针头插入对应浓度甲组青霉素瓶溶液中部，小心地放出少量液流，观察蓝色液流的升降动向。
（每次测定均要用待测浓度的甲烯蓝蔗糖溶液清洗几次注射针头）。
如此方法检查各瓶中液流的升降动向。
若液流上升，说明浸过小圆片的蔗糖溶液浓度变小（即植物组织失水）；表明叶片组织的水势高于该浓度糖溶液的渗透势；如果蓝色液流下降则说明叶片组织的水势低于该糖溶液的渗透势，若蓝色液流静止不动，则说明叶片组织的水势等于该糖溶液的渗透势，此糖溶液的浓度即为叶片组织的等渗浓度。
将求得的等渗浓度值代入如下公式：ψw＝ψπ＝－iCRT。
式中：ψw＝植物组织的水势（单位：Mpa）；ψπ＝溶液的渗透势； C＝等渗浓度（mol/L）；R＝气体常数（0.008314 MPa·L /mol/K）；T＝绝对温度；i＝解离系数（蔗糖＝1，CaCl2＝2.60）。
思考题：在干旱地方生长的植物其水势较高还是较低？为什么？实验名称：植物组织渗透势的测定实验目的：学会用质壁分离法测定植物组织的渗透势实验原理：植物细胞是一个渗透系统，若将植物细胞放在各种不同浓度的蔗糖溶液中时，由于细胞液的浓度与外界溶液的浓度（或水势）的差异。
两者便会发生水分的交换。
当细胞液的浓度高于外溶液的浓度（或者说ψs cell<ψs sol即ψw cell< ψw sol）时，细胞则吸水，使细胞处于紧张状态；当细胞液的浓度低于外溶液的浓度时，（或者说ψs cell>ψs sol即ψw cell>ψw sol）时，细胞液中的水分则往外渗透，严重时则引起质壁分离；当细胞液的浓度与外界溶液的浓度相等时，（或者说ψs cell= ψs sol即ψw cell=ψw sol）。
细胞内外水分交换处于动态平衡。
此时细胞既不紧张也不引起质壁分离，这时外溶液的浓度即为等渗浓度（即细胞内外ψs或ψw相等的浓度）。
本实验是以细胞的初始质壁分离（即一视野中有半数细胞产生初始质壁分离）确定为等渗浓度。
根据公式，即可计算出外溶液的ψs，即ψs= - iCRTi:离解系数，蔗糖等于1;c:等渗浓度；R：气体常数，0.0083 MPa·L/mol·K；T表示绝对温度，即273+t（实验时溶液的温度）因为ψs sol=ψw sol,又因为细胞初始质壁分离时，ψp cell=0,即ψw cell= ψs cell,所以ψw cell(或ψs cell)= ψw sol( 或ψs sol).实验材料与设备：大红花、洋葱、显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、刀片、移液管（10ml）2支、培养皿、蔗糖溶液（1mol/L）实验步骤：1．按十字交叉法把1mol/L蔗糖溶液（母液）分别配成0.1、0.2、0.3、0.5、0.6 mol/L蔗糖溶液各10ml。
置于培养皿中，摇匀加盖。
2．撕取带有色素的植物组织（如花瓣、洋葱鳞片等）表皮，分别投入各种浓度的蔗糖液中，（每浓度约放5片），使其完全浸入。
3．20分钟之后依次取出表皮放在载玻片上，滴上同样浓度的溶液1滴，盖上盖玻片，在显微镜下观察细胞产生质壁分离的情况，确定等渗浓度C。
4．测量液温5．根据公式ψs=-iCRT,计算出所测材料的ψw(ψs).思考题：试比较洋葱和大红花花瓣水势的高低。
实验名称：单盐毒害和离子间拮抗作用实验目的：通过实验使学生认识到离子平衡对植物生长的重要性。
实验原理：离子间的现象的本质是复杂的，它可能反映不同离子对原生质亲水胶粒的稳定性，原生质膜的透性，以及对各种酶活性调节等方面的相互制约作用，从而维持机体的正常生理状态。
实验材料与设备：烧杯、纱布、石蜡、小麦0.12mol/L KCI（A液）、0.12 mol/L CaCI2（B液）、0.12 mol/L NaCI（C液）实验步骤：1、实验前3~4天选择饱满的小麦种子100粒浸种，在室温下萌发，待根长1cm时可做材料。
2、取4个小烧杯，依次分别倒入下列盐溶液：（1）A液（2）B液（3）D液（A液100ml+B液1ml）（4）E液（A液100ml+B液1ml+ C液12.2ml）3、小烧杯用涂石蜡的纱布盖上。
挑选大小相等及根系发育一致的小麦幼苗10株，小心种植在纱布盖的孔里，使根系接触到溶液，然后放到光照培养箱中进行培养，随时补加蒸馏水以保持杯内溶液的水平，7天后观察结果。
可看出在单盐溶液中，小麦幼苗生长受阻，特别是它们的根部出现畸形。
调查幼苗生长情况（每株鲜重/mg、每株根数/个、每株根的总长度/cm）思考题：比较小麦在不同盐溶液中的生长情况并解释之。
实验名称：植物对离子的选择性吸收实验目的：通过试验了解植物对离子的选择吸收特点实验原理：植物根对不同离子吸收量是不同的，即使是同一种盐类，对其阳离子与阴离子的吸收量也不相同。
本实验即利用植物对不同盐类的阴阳离子吸收量的不同，从而改变溶液的PH值来确定这一吸收特性，该实验也使我们了解什么是生理酸性盐、生理碱性盐和生理中性盐。
仪器设备：小麦（洋葱）、PH计、广口瓶、试剂瓶、量筒、烧杯、洗瓶、吸水纸、移液管实验步骤： 1、材料准备实验前20天培养具有完整根系的植物2、测定溶液的原始PH实验开始时吸取0.01mg/L浓度的（NH4）2SO4和NaNO3各150ml分别置于两个200ml的广口瓶中，另一个广口瓶中放蒸馏水150ml，然后用PH计（或精密PH试纸）测定以上溶液或蒸馏水的原始PH。
3、测定植物吸收离子之后溶液的PH取3株根系发育完善的、大小相似的小麦，分别放于上述3个广口瓶中，在温室下培养3—7天后用PH计测溶液的PH，实验结果按下表记录。
思考题：从实验结果分析中得出什么结论？实验名称：光合作用淀粉的形成实验目的：了解淀粉是植物光合作用的主要产物之一实验原理：光合作用是绿色植物吸收太阳光的能量。
同化CO2和H2O为机物质，并释放出O2过程，其中光、CO2、叶绿素是光合作用的必要条件，由于一般植物的光合作用能产生淀粉，故以淀粉能否生成即知光合作用是否进行，可借助于淀粉与I—KI产生蓝色反应检查出来。
实验材料与设备：天竺葵、洋紫苏、洒金榕、玻璃钟罩、烧杯、1%NaHCO3溶液、饱和KOH溶液、95%乙醇、酒精灯、表面皿、滴管、锡薄或黑纸片、I2-KI溶液的配制：2gKI溶于5ml 水中，再加1gI2，溶解后加水595ml。
实验步骤：在早上太阳末出来之前，选择生长正常的叶子（天竺葵、黄豆、洋紫苏、胜红蓟、菜豆等叶子均可），用黑纸将叶子的一半（上、下面）遮光（注意：遮光部分不能漏光），让植株在阳光下照射约5—6小时，然后将叶子剪下，其后放在烧杯中加入95%乙醇，放在水浴锅里煮沸（注意装着酒精的烧杯不能直接在火焰上加热，以免发生危险），直至叶绿素全部浸出，叶片呈白色为止，此时用镊子取出叶片，并将其展开于表面皿上，滴上I—KI 溶液，观察其颜色的变化，可见叶子经过遮光的部分呈白色，而经照光的部分则呈蓝色（注意：如果在实验前一天将叶子先遮光处理，效果则更好）。
思考题：叶子遮光的目的是什么？实验名称：叶绿体色素的提取与分离实验目的：学会叶绿体色素提取和分离的方法，了解叶绿体色素的性质。
实验原理：叶绿体中的色素能够溶解在有机溶剂丙酮中，所以，可以通过研磨法用丙酮提取叶绿体中的色素(若无丙酮亦可用酒精代替)。
层析液是一种脂溶性很强的有机溶剂。
叶绿体中的色素在层析液中的溶解度不同(溶解度高的随层析液在滤纸上扩散得快；溶解度低的随层析液在滤纸上扩散得慢。
)，所以，可以用纸层析法分离出叶绿体中的色素。
实验材料与设备：（1）溶液配方：石油醚20ml+丙酮2ml+苯1ml（2）天平、研钵、烧杯、量筒、滤纸、表面皿、剪刀、95%乙醇、漏斗、滴管（3）菠菜、木茨等叶子实验步骤：（1）称2克新鲜绿色叶片（木茨、菜心、菠菜等叶均可），剪碎，放在研钵中，加入5ml乙醇，共研磨成匀浆，过滤，该滤液即为色素提取液。