细胞死活鉴定
区别细胞死活的方法
区别细胞死活的方法
1、活体染色剂—亚甲基蓝溶液以前的教材中，活体染色剂亚甲基蓝溶液可用来鉴别所有有新陈代谢的细胞，利用交换吸附的原理，只有活细胞才能完成交换吸附。
2、胚的染色—红墨水细胞膜在细胞存活时有选择透过性，所以有机染料一般不会吸收，所以用它可以鉴定种子的死活，如玉米细胞是活的，胚没被染红，胚乳被染红。
3、显微镜观察—质壁分离和复原活的成熟的植物细胞有明显的质壁分离和复原现象。
显微镜观察—胞质环流通过细胞质流动实验的观察可以知道，只有活细胞才有胞质环流现象。
4、染色剂—台盼蓝人教版教材中，用台盼蓝染色剂，又称锥蓝，是一种阴离子型染料，不能透过完整的细胞膜，所以经台盼蓝染色后只能使死细胞着色，而活细胞不被着色。
5、酵母细胞—由于活细胞中新陈代谢的作用，使细胞内具有较强的还原能力，能使美蓝从蓝色的氧化性变为无色的还原型，因此美蓝染色后活的酵母细胞无色；而死细胞或代谢缓慢的老细胞，则因它们的无还原能力或还原能力极弱，使美蓝处于氧化态，从而被染成蓝色或淡蓝色。
死细胞鉴别实验报告
死细胞鉴别实验报告引言细胞是生物体的基本单位，而细胞的生死状态对于研究生物体的健康状态和反应至关重要。
因此，鉴别细胞是否存活或死亡是细胞生物学研究中的一个重要方面。
本实验旨在探究几种常用的细胞死亡检测方法，比较它们的原理、优缺点以及适用范围。
材料与方法材料- 死细胞（来源为培养基中存放久的细胞）- 活细胞（来源为新鲜培养的细胞）- Annexin V-FITC/PI 染色试剂盒- MTT（甲基硫代氮唑盐）试剂盒- PI（荧光素）染色试剂盒- 倒置显微镜- 96孔板方法1. Annexin V-FITC/PI 双染法- 取少量活细胞和死细胞，离心去除培养液。
- 用PBS洗涤2次。
- 加入适量Annexin V-FITC染色试剂和PI染色试剂，按试剂盒使用说明操作。
- 由于每种细胞线对于荧光素的增加有所不同，所以需要观察活细胞和死细胞的荧光信号。
- 在倒置显微镜下观察染色细胞。
活细胞通常会呈现绿色荧光，而死细胞则会呈现红色荧光，同时也能观察到双染的细胞。
2. MTT 法- 将活细胞和死细胞分别均匀悬浮在培养基中，制备concentration为1 \times 10^6/mL的细胞悬浮液。
- 取200μL的细胞悬浮液于96孔板孔中，每孔设置3个平行重复。
- 加入MTT试剂，按照试剂盒使用说明操作。
- 倒置显微镜下观察细胞的形态变化。
- 使用酸解液将MTT染色后的溶液吸出，避免细胞产生二次吸收。
- 使用微孔板阅读器检测各孔的吸光度。
3. PI 染色法- 准备好活细胞和死细胞的悬浮液。
- 取少量细胞悬浮液，在离心管中离心去除培养液。
- 滴加PBS重新悬浮细胞，使得细胞形态变得均匀。
- 加入适量的PI染色试剂，按照试剂盒使用说明操作。
- 通过倒置显微镜观察细胞的形态变化，并记录颜色和荧光信号。
实验结果与讨论Annexin V-FITC/PI 双染法结果在观察活细胞和死细胞样本时，我们发现活细胞产生了明亮的绿色荧光，而死细胞则产生了红色荧光。
细胞死活鉴定实验报告
一、实验目的1. 掌握细胞死活鉴定的原理和方法。
2. 学会使用显微镜观察细胞形态和结构，判断细胞的死活。
3. 了解细胞膜通透性在细胞死活鉴定中的作用。
二、实验原理细胞是生物体的基本结构和功能单位，细胞的死活状态对其生物学功能具有重要意义。
细胞膜是细胞的重要结构，具有选择性通透性，能够控制物质进出细胞。
活细胞的细胞膜对物质的选择性通透性较强，而死细胞的细胞膜通透性增加，物质更容易进出细胞。
本实验通过观察细胞对染料的摄取情况，判断细胞的死活。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：活细胞悬液、死细胞悬液、台盼蓝染液、生理盐水、显微镜、载玻片、盖玻片、滴管等。
2. 实验仪器：显微镜、载玻片、盖玻片、滴管、生理盐水、台盼蓝染液等。
四、实验步骤1. 准备载玻片和盖玻片，将载玻片用生理盐水清洗干净，晾干。
2. 分别取活细胞悬液和死细胞悬液各1滴，滴在载玻片上。
3. 分别将活细胞悬液和死细胞悬液各1滴，滴在盖玻片上，使细胞均匀分布。
4. 将载玻片放在显微镜下观察，调整显微镜的焦距，使细胞清晰可见。
5. 将台盼蓝染液滴在盖玻片边缘，用滴管轻轻吸取染液，使染液均匀覆盖在细胞上。
6. 观察细胞对染料的摄取情况，记录活细胞和死细胞的数量。
7. 重复实验，取不同浓度的台盼蓝染液进行实验，观察细胞对染料的摄取情况。
五、实验结果与分析1. 实验结果显示，活细胞对台盼蓝染液的摄取较少，死细胞对染液的摄取较多。
2. 随着台盼蓝染液浓度的增加，细胞对染液的摄取逐渐增多。
3. 分析原因：活细胞的细胞膜具有选择性通透性，对台盼蓝染液的摄取较少；而死细胞的细胞膜通透性增加，对染液的摄取较多。
六、实验结论通过本实验，我们掌握了细胞死活鉴定的原理和方法，了解了细胞膜通透性在细胞死活鉴定中的作用。
实验结果表明，活细胞对台盼蓝染液的摄取较少，而死细胞对染液的摄取较多，这与细胞膜通透性的差异有关。
七、实验讨论1. 实验过程中，需要注意载玻片和盖玻片的清洁，避免杂质对实验结果的影响。
细胞死活鉴定 实验报告
细胞生物学实验报告细胞死活鉴定1.实验目的：观察上次实验培养的小鼠脾细胞，掌握细胞死活鉴定的方法。
2.实验用品：（1）仪器及器材：显微镜、血细胞鉴定板、盖玻片、胶头滴管、试管（2）实验药品：蒸馏水、台盼蓝染液、生理盐水、伊红染液（3）实验材料：小鼠脾细胞3.实验原理：（1）活细胞特征：细胞边缘清晰，细胞透明度高，整体立体感强，核区域明显，细胞质内颗粒物质较少，无空泡。
培养数天后，可观察到正在分裂的细胞。
（2）肉眼观察鉴定细胞死活：正常生长的细胞培养液微微发黄，透明度高；如发现培养液微混，则说明细胞量太大需进行传代培养，或者培养液被污染；如果培养液仍呈现清亮的粉红色，则说明细胞未生长。
（3）细胞凋亡特征过程：首先，细胞膜绒毛消失；然后，细胞收缩，细胞核高度浓缩，边缘化；最后，细胞核片段化，形成凋亡小体。
细胞核片段化时，如果对此类细胞进行DNA电泳，则会发现电泳条带呈梯状分布。
（4）细胞死活鉴定方法①染色排除法：细胞死亡后，细胞膜的通透性变大，染料可以通过细胞膜进入细胞。
因此，死细胞可以被染料染色，而活细胞由于细胞膜的选择透过性而呈无色。
②荧光染色法：活细胞需要进行代谢。
将荧光染料与有机分子结合（如二丙酸酯荧光素），使之易穿膜。
在活细胞中这些物质可被分解为荧光染料和有机分子（二丙酸酯和荧光素），在显微镜下观察，细胞被染色。
此种方法中，活细胞被染色，死细胞则呈无色。
（5）血细胞计数板的用法：如果是对比较密的细胞进行计数（如红细胞），则使用中间的中格进行计数，再将所得数值乘以2500，即是每毫升中的细胞数量；如果是对比较稀疏的细胞进行计数（如白细胞），则使用四个角上的大格进行计数，再将所得数值乘以10000，即是每毫升中的细胞数量。
4.实验步骤：（1）台盼蓝染色法：①用生理盐水制成0.4%的台盼蓝溶液备用②取0.5ml细胞悬液放入干净试管中，加一滴染液，混合。
2 mins 后迅速制成临时装片，镜检。
（2）伊红丫染色法①用生理盐水制成0.15%的伊红染液混合② 2 mins 后制片镜检5.实验结果：视野中活细胞呈无色；死细胞呈蓝色，有些可观察到细胞核；还有少量细胞只有边缘部分呈蓝色。
鉴定细胞死活的方法
鉴定细胞死活的方法
鉴定细胞死活的常见方法如下：
1.显微观察：使用倒置显微镜或荧光显微镜观察细胞形态和结构，判断细胞是否出现明显的形态变化或结构改变。
2.染色方法：使用各种染色剂（如乙酰红胶、甲基蓝、孔雀石绿等）对细胞进行染色，观察染色结果来判断细胞的颜色和形态，从而判断细胞的死活。
3.细胞膜渗透性检测：使用荧光染色剂（如PI、DAPI等）通过细胞膜进入细胞内，观察细胞是否发生荧光变化，判断细胞膜的完整性和死亡程度。
4.细胞内酶活性检测：使用特定的酶底物和荧光染料（如细胞色素c、卡尔比蓝等）对细胞内酶活性进行检测，观察是否发生荧光变化，判断细胞内的酶活性和细胞状态。
5.流式细胞术：使用流式细胞术对细胞进行筛选、分离和分析，通过测量细胞形态、大小、颜色等参数，来判断细胞的死亡程度和数量。
6.细胞增殖检测：通过检测细胞的DNA合成、核分裂或细胞周期等指标，来判断细胞生长和增殖的状态，进而推断细胞的死亡或存活。
值得注意的是，不同的细胞类型和实验目的可能需要使用不同的死活检测方法。
鉴定植物细胞的死活
鉴定植物细胞的死活【试验目的】学习用质壁分别法和用活体染色法鉴定细胞死活【试验原理】活细胞与死细胞在性质上有很多差别，特殊是通透性的变化最为明显。
活细胞的原生质具有选择透过性；而死细胞则为全透性。
选择透过性是质壁分别的先决条件。
因此能发生质壁分别的细胞就表示是活的，不能发生质壁分别的细胞则说明是死的。
死活细胞间不仅通透性不同，而 pH 值等状况也不同，它们对某些染料的反应明显不同。
某些染料能在活细胞的细胞液中积累，但不能染活的原生质；另一方面，这些染料可使死细胞的原生质染色，但不积累于液泡。
所以可依据某些染料活体染色的状况来鉴定细胞死活。
【试验材料和用具】洋葱及其它植物材料、酒精灯、显微镜、刀片、镊子、载玻片、盖玻片、 1M 蔗糖、 0.01% 中性红溶液等。
【试验步骤】1 、用质壁分别的方法鉴定细胞的死活。
撕洋葱表皮细胞滴加 IM 蔗糖中，在显微镜下观看。
细胞很快发生质壁分别，这就是细胞活着的证据。
另把制取的同样制片，用冷冻、加热、干燥、酒精浸泡等方法将它们的细胞杀死，然后取代上述活材料，做质壁分别试验，结果看到已死的细胞不能发生质壁分别现象。
用尿素、硝酸钾、氯化钙溶液等来代替蔗糖，能快速鉴定细胞的死活。
2 、用活体染色的方法的鉴定细胞的死活。
取洋葱或其它材料，用镊子撕下表皮（如表皮不易撕下，也可在水中用锐利的刀片轻轻刮去多余部分），或用刀片做成切片若干，将表皮或切片浸入中性红溶液中，放置 5-10 分钟最出用清水浸洗后置于载玻片上，加盖玻片，在显微镜下观看。
活细胞一般在液泡内染成红色至紫色，原生质不染色，死细胞常呈橙红色，原生质和细胞核被染色。
撕破的细胞，只剩细胞壁时，呈淡红色或淡紫色。
为进一步鉴别细胞的死活，可把玻片上的水溶液吸去，滴一滴 1M 蔗糖溶液，便可观看到活细胞能发生质壁分别，死细胞及空细胞都有没有这种现象。
可用加热、冷冻或其它方法杀死植物组织，然后用上面所述方法进行处理，比较与活组织有何不同。
细胞活性鉴定
1、细胞活性的鉴定：死细胞对许多抗体均有很强的非特异性染色，这就使样本细胞活性检测变得非常重要，尤其是经过长时间运输和储存的样本。
检测的方法通常有两种：（1）实时的流式检测：利用荧光染料PI、7-AAD或EMA 进行死细胞染色，而活细胞拒染这些染料。
此方法的优势是细胞表面标志和活性分析可同时进行。
尤其适用于高度坏死的样本。
7-AAD最常用，因为在488nm激发下，其最大发射光在670nm左右，适合与FITC或PE进行多色标记。
但随着时间延长，7-AAD会在固定的细胞群体重新分配，死活细胞的区分变得困难。
因此，对于染色并在固定后12小时以上分析的标本，最好用EMA。
EMA与死细胞DNA稳定的共价结合保证了长时间固定后仍能很好的区分固定前的死活状态。
（2）手工检测：使用Trypanblue或其他细胞活性染料。
（3）使用专门的仪器进行检测。
如Vi-cell。
2、7-AAD（7-amino-actinomycin D）是一种核酸染料，在流式细胞术中用于鉴定死细胞，这种作用与PI相似。
它不能通过正常质膜，随着细胞凋亡、细胞死亡过程，质膜对7-AAD的通透性逐渐增加，结合细胞凋亡中DNA的有控降解，在合适波长激发光的激发下可发出明亮的红色荧光，通过7-AAD标记DNA的强弱，将细胞分为三群：7-AAD 强为死亡细胞，7-AAD弱是凋亡细胞，7-AAD-为正常活力细胞。
7-AAD同PI有着相似的荧光特性，但其发射波谱较PI窄，PI检测时同时占据FL-2和FL-3通道，而7-AAD只占FL-3通道，对其他检测通道的干扰更小，在多色荧光分析中是PI的最佳替代品，可与Annexin V-EGFP/FITC/PE联合使用。
3、Annexin V-PE/7-AAD细胞凋亡检测试剂盒是用红色荧光染料PE（Phycoerythrin）标记的AnnexinV作为探针，来检测细胞早期凋亡的发生，可用荧光显微镜、流式细胞仪或其他荧光检测设备进行检测。
死活细胞的鉴定方法
活细胞的鉴定在生物学与医学上具有很重要的意义。
细胞培养过程中要随时记录细胞的生长情况,需要经常测定细胞的存活率;在肿瘤细胞的研究中,为了检验各种药物对肿瘤细胞的杀伤力,也需要测定肿瘤细胞的存活率。
在临床医学中死活细胞的鉴定也有很大的应用,例如为了检测某一男子的生育能力,测定精子细胞的存活力就是比较常用的办法。
死活细胞的鉴定方法有很多种,常用的有染色法与仪器分析法。
染色法就是常用的细胞死活鉴定方法,简便,易于操作。
但就是通过直接的形态观察来鉴别细胞死活,实验结果很容易受操作者的主观因素的影响,存在一定的误差,所以,在实际操作中也常采用一些仪器来进行精确的批量检测。
不同的死活细胞鉴定方法有各自不同具体的反应机理,但无论采用何种办法,都就是利用了死活细胞在生理机能与性质上的差异。
常用的方法包括染色法与仪器分析法。
1 染色法染色法分化学染色法与荧光染色法,根据染色机理的不同,染料或使死细胞着色,或使活细胞着色。
死活细胞在生理机能与性质上的差异主要包括:死活细胞细胞膜通透性的差异:活细胞的细胞膜就是一种选择性膜,对细胞起保护与屏障作用,只允许物质选择性的通过;而细胞死亡之后,细胞膜受损,通透性增加。
常用的以台盼蓝鉴别细胞死活的方法就就是利用了这一性质。
台盼蓝,又称锥蓝,就是一种阴离子型染料,不能透过完整的细胞膜。
所以经台盼蓝染色后只能使死细胞着色,而活细胞不被着色。
甲基蓝有类似的染色机理。
植物细胞的质壁分离也可鉴定死活。
死活细胞在代谢上的差异:就是采用美蓝染料鉴定酵母细胞死活的依据。
美蓝就是一种无毒染料,氧化型为蓝色,还原型为无色。
由于活细胞中新陈代谢的作用,使细胞内具有较强的还原能力,能使美蓝从蓝色的氧化性变为无色的还原型,因此美蓝染色后活的酵母细胞无色;而死细胞或代谢缓慢的老细胞,则因它们的无还原能力或还原能力极弱,使美蓝处于氧化态,从而被染成蓝色或淡蓝色。
荧光素双醋酸酯(FDA)就是一种常用的培养动植物细胞以及植物细胞原生质体的生活力鉴定染料,其染色机理也利用了死活细胞在代谢上的差异:FDA本身不产生荧光,也无极性,能自由渗透出入完整的细胞膜。
死活细胞鉴定
生物探究活动——鉴定植物细胞的死活【实验目的】学习用质壁分离法和用活体染色法鉴定细胞死活【实验原理】活细胞的原生质层具有选择透过性；而死细胞则为全透性。
选择透过性是质壁分离的先决条件。
因此能发生质壁分离的细胞就表示是活的，不能发生质壁分离的细胞则说明是死的。
死活细胞间不仅通透性不同，而pH值等情况也不同，它们对某些染料的反应明显不同。
某些染料能在活细胞的细胞液中积累，但不能染活的原生质；另一方面，这些染料可使死细胞的结构染色，但不积累于液泡。
所以可根据某些染料活体染色的情况来鉴定细胞死活。
【实验材料和用具】洋葱及其它植物材料、酒精灯、显微镜、刀片、镊子、载玻片、盖玻片、1M蔗糖溶液、0.01%中性红溶液等。
【实验步骤】1、用质壁分离的方法鉴定细胞的死活。
撕洋葱表皮细胞滴加1M蔗糖溶液，在显微镜下观察。
细胞很快发生质壁分离，这就是细胞活着的证据。
另把制取的同样制片，用冷冻、加热、干燥、酒精浸泡等方法将它们的细胞杀死，然后取代上述活材料，做质壁分离实验，结果看到已死的细胞不能发生质壁分离现象。
用尿素、硝酸钾、氯化钙溶液等来代替蔗糖溶液，能快速鉴定细胞的死活。
2、用活体染色的方法的鉴定细胞的死活。
取洋葱或其它材料，用镊子撕下表皮（如表皮不易撕下，也可在水中用锋利的刀片轻轻刮去多余部分），或用刀片做成切片若干，将表皮或切片浸入中性红溶液中，放置5-10分钟最后用清水浸洗后置于载玻片上，加盖玻片，在显微镜下观察。
活细胞的液泡内染成红色至紫色，原生质不染色，死细胞常呈橙红色，原生质和细胞核被染色。
撕破的细胞，只剩细胞壁时，呈淡红色或淡紫色。
为进一步鉴别细胞的死活，可把玻片上的水溶液吸去，滴一滴1M蔗糖溶液，便可观察到活细胞能发生质壁分离，死细胞及只剩细胞壁的空细胞都有没有这种现象。
可用加热、冷冻或其它方法杀死植物组织，然后用上面所述方法进行处理，比较与活组织有何不同。
注：1台盼蓝，又称锥蓝，是一种阴离子型染料，不能透过完整的细胞膜。
死活细胞的鉴定方法
活细胞的鉴定在生物学和医学上具有很重要的意义。
细胞培养过程中要随时记录细胞的生长情况，需要经常测定细胞的存活率；在肿瘤细胞的研究中，为了检验各种药物对肿瘤细胞的杀伤力，也需要测定肿瘤细胞的存活率。
在临床医学中死活细胞的鉴定也有很大的应用，例如为了检测某一男子的生育能力，测定精子细胞的存活力是比较常用的办法。
死活细胞的鉴定方法有很多种，常用的有染色法和仪器分析法。
染色法是常用的细胞死活鉴定方法，简便，易于操作。
但是通过直接的形态观察来鉴别细胞死活，实验结果很容易受操作者的主观因素的影响，存在一定的误差，所以, 在实际操作中也常采用一些仪器来进行精确的批量检测。
不同的死活细胞鉴定方法有各自不同具体的反应机理，但无论采用何种办法，都是利用了死活细胞在生理机能和性质上的差异。
常用的方法包括染色法和仪器分析法。
1染色法染色法分化学染色法和荧光染色法，根据染色机理的不同，染料或使死细胞着色，或使活细胞着色。
死活细胞在生理机能和性质上的差异主要包括：死活细胞细胞膜通透性的差异：活细胞的细胞膜是一种选择性膜，对细胞起保护和屏障作用，只允许物质选择性的通过；而细胞死亡之后，细胞膜受损，通透性增加。
常用的以台盼蓝鉴别细胞死活的方法就是利用了这一性质。
台盼蓝, 又称锥蓝，是一种阴离子型染料，不能透过完整的细胞膜。
所以经台盼蓝染色后只能使死细胞着色，而活细胞不被着色。
甲基蓝有类似的染色机理。
植物细胞的质壁分离也可鉴定死活。
死活细胞在代谢上的差异：是采用美蓝染料鉴定酵母细胞死活的依据。
美蓝是一种无毒染料，氧化型为蓝色，还原型为无色。
由于活细胞中新陈代谢的作用，使细胞内具有较强的还原能力，能使美蓝从蓝色的氧化性变为无色的还原型，因此美蓝染色后活的酵母细胞无色；而死细胞或代谢缓慢的老细胞，则因它们的无还原能力或还原能力极弱，使美蓝处于氧化态，从而被染成蓝色或淡蓝色。
荧光素双醋酸酯（FDA是一种常用的培养动植物细胞以及植物细胞原生质体FDA本的生活力鉴定染料，其染色机理也利用了死活细胞在代谢上的差异：身不产生荧光，也无极性，能自由渗透出入完整的细胞膜。
植物细胞的活体染色和死活的鉴定
植物细胞的活体染色和死活的鉴定一、目的练习以碱性染料中性红进行活体染色的方法。
通过活体染色及质壁分离，进行细胞死活的鉴定。
二、原理用某种对植物无害的染料稀溶液对活细胞进行染色称活体染色。
中性红是常用的活体染之一。
在中性或微碱性环境下，植物的活细胞能大量吸收中性红并向液泡排泄，液泡一般呈酸性，进入液泡的中性红解离出大量阳离子而呈樱桃红色, 原生质及壁不染色。
死细胞的液泡消失因而不产生液泡着色现象，中性红阳离子却与带一定负电荷的原生质及细胞核结合而使生质及细胞核染色。
成熟植物的细胞是一个渗透系统，活的原生质具有选择透性，原生质内部包含着一个大液泡，具有一定的溶质势。
当细胞与外界低水势溶液接触时，细胞内的水分外渗，原生质随着液泡一起收缩而发生质壁分离；其后，当与清水（或高水势溶液）接触，细胞又因液泡的吸水膨胀而发生质壁分离复原。
死细胞因其原生质的选择透性已遭破坏，故与低水势溶液接触时不产生质壁分离。
三、材料、仪器设备及试剂1.材料：洋葱鳞茎；玉葱鳞茎。
2.仪器设备：刀片；镊子；吸水纸；酒精灯；载玻片；盖玻片；胶头滴管；显微镜。
3.试剂：0.8mol/L蔗糖液；0.03％中性红溶液。
四、实验步骤1.制片染色用尖头镊子撕取洋葱（玉葱）鳞片内表皮薄片，浸到0.03％中性红溶液中10～15min 进行染色。
2.观察2.1将染色后的植物材料放到载玻片上，盖好盖玻片，在盖玻片的一侧滴加无离子水（或pH略高于7.0的自来水），另一侧放吸水纸吸干，以洗净撕片外粘附的中性红溶液，然后在显微镜下观察，可以看出液泡染成樱桃红色；原生质层（细胞质和细胞）则无色透明紧贴细胞壁（在细胞的角隅上可以看见）。
2.2 在第1项观察后，接着从盖玻片的一边滴2滴0.8mol/L蔗糖液在盖玻片的另一边用吸水纸吸盖玻片下的水，将蔗糖液引入盖玻片下浸渍植物材料，并立即镜检，可以看到细胞很快发生质壁分离。
先是凹形质壁分离，而后变为凸形质壁分离。
2.3在第2项观察后，接着在盖玻片的一边加入2～3滴无离子水，在另一边用吸水纸吸去糖液，将无离子水引入盖玻片底，立即镜检可以看到带有液泡的原生质体重新吸水膨大，最后充满整个细胞腔，即质壁分离复原（复原缓慢进行时，细胞仍可正常存活；如果进行很快，则会因原生质机械破坏而死亡）。
植物细胞的活体染色及死活鉴定注意事项
植物细胞的活体染色及死活鉴定注意事项以植物细胞的活体染色及死活鉴定注意事项为标题植物细胞是构成植物体的基本单位，了解植物细胞的活体染色及死活鉴定方法对于研究植物生理和组织学具有重要意义。
下面将介绍植物细胞的活体染色和死活鉴定的注意事项。
活体染色是指在细胞活体状态下，通过染色剂对细胞进行染色的方法。
活体染色可以帮助我们观察细胞的形态、结构和功能，了解细胞的生理活动。
常用的活体染色方法有鲜活染色、活体健壮染色和活体标记等。
鲜活染色是将鲜活的植物组织或细胞直接放入染色剂中进行染色。
在进行鲜活染色时，需要注意以下几点：1. 选择适当的染色剂：根据所需染色的细胞结构或功能，选择适合的染色剂。
常用的染色剂有甲苯胺蓝、伊红等。
2. 控制染色时间：染色时间过长或过短都会影响染色效果。
一般来说，染色时间应根据实验目的和细胞类型来确定，一般为几分钟至数小时。
3. 适当调整染色剂浓度：染色剂浓度过高会导致细胞过度染色，影响观察结果；染色剂浓度过低则会导致染色效果不明显。
4. 染色时避免光照：光照会使染色剂分解或褪色，因此在染色过程中需要避免光照。
活体健壮染色是将植物组织或细胞培养在含有染色剂的培养基中进行染色。
与鲜活染色相比，活体健壮染色可以更好地保持细胞的形态和生理状态，适用于长时间观察和研究细胞的生理过程。
活体标记是利用荧光标记物对细胞进行染色，可以直接观察标记物在细胞内的分布和运动情况。
常用的活体标记方法有荧光染料标记、基因工程标记等。
死活鉴定是判断细胞是否存活的方法，常用的死活鉴定方法有荧光染料鉴定、染色体形态鉴定等。
荧光染料鉴定是利用荧光染料对细胞进行染色，观察细胞内的荧光信号来判断细胞是否存活。
常用的荧光染料有荧光素苷酸酯（如细胞活力检测试剂盒中的FDA）和乙酰胆碱酯酶（AChE）染色等。
染色体形态鉴定是通过观察细胞核的形态和结构来判断细胞是否存活。
活的细胞的染色体呈现规则的形态和结构，而死亡的细胞的染色体则呈现不规则的形态和结构。
细胞死活的检测方法举隅
细胞死活的检测方法举隅作者：曹建平来源：《中学生理科应试》2021年第10期农业上，播种之前需要检测种子的活力;医学上，为了检测某一男子的生育能力，需要测定精子的活力;为了检验药物对肿瘤细胞的杀伤力，需要测定肿瘤细胞的存活率等等.由此可见，细胞死活的鉴定在生产生活和医学研究方面具有重要意义.本文简单介绍几种检测细胞死活的方法，并结合部分试题进行分析.一、检测方法举隅1.台盼蓝染色法台盼蓝是一种阴离子型染料，它只能透过受损细胞或死亡细胞的细胞膜（质膜），而正常的活细胞能加以排除，即死细胞着色，活细胞不着色.2.荧光染色法荧光素双醋酸酯（FDA）是一种常用的动植物细胞的生活力鉴定染料.FDA本身不产生荧光，也无极性，能自由出入细胞.当FDA进入活细胞，被细胞内的脂酶分解，产生有极性的、能发出荧光的荧光素，荧光素不能自由透过活细胞膜，积累在细胞内，使细胞产生绿色荧光.3.美蓝染色法美蓝是一种无毒染料，氧化型为蓝色，还原型为无色，主要用于检测酵母细胞死活.由于活细胞具有较强的还原能力，能使美蓝从蓝色的氧化型变为无色的还原型，因此美蓝染色后活的酵母细胞无色;而死细胞或代谢缓慢的老细胞，被染成蓝色或淡蓝色.4.TTC染色法氯化三苯基四氮唑（TTC）常用于检测种子的生活力以及哺乳动物组织的缺血梗塞.TTC 溶于水中形成無色溶液，细胞中的脱氢酶可将TTC作为受氢体，使之还原成不溶于水的红色稳定的三苯基甲臢（TTF）. 如果脑组织细胞或胚种细胞死亡或生活力衰退，则不能染色或染色较浅.5.质壁分离法质壁分离法主要是检测成熟的植物细胞有无活性的方法.因为活细胞的原生质层具有选择透过性，所以活的成熟的植物细胞才可发生质壁分离.6.细胞质流动法细胞质流动需要消耗细胞代谢产生的能量，活细胞才进行细胞代谢，所以活细胞具有胞质环流现象.二、经典试题赏析例1 TTC法和红墨水染色法是检测种子活力常用方法，下列说法错误的是（）.A.在TTC法中，胚被染成红色的是具有活力的种子B.红墨水染色法中，胚不着色或着色很浅的是具有活力的种子C.这两种方法在原理上相似，均应用了活细胞的膜具有选择透透过性D.在TTC染色法中，被染成红色较深的种子细胞呼吸可能较强解析由于TTC能被细胞呼吸产生的＼[H＼]还原成红色不溶于水的物质，胚是种子的主要结构，故胚被染成红色的是具有活力的种子，A选项正确;红墨水中的色素不是活细胞需要的物质，如果胚被染色较深，说明胚细胞死亡;如果胚不着色或着色很浅，说明胚具有活力，B 选项正确;两种染色方法的原理不同，红墨水利用了细胞膜的选择透过性，根据“TTC染色法”可知，TTC染色的原理是TTC被细胞呼吸产生的＼[H＼]还原成不溶于水的红色，利用的是细胞的代谢产物，C选项错误;细胞呼吸越强，产生的＼[H＼]越多，TTC被还原产生的红色不溶于水的物质越多，D选项正确.参考答案：C例2 在进行植物体细胞杂交前，必须先获得有活力的原生质体.测定原生质体活力的常用方法之一是荧光素双醋酸酯（FDA）染色法，其基本原理是FDA本身无荧光，可自由通过细胞膜，经细胞内酯酶分解产生积累在细胞内并能发出绿色荧光的荧光素.相关叙述正确的是（）.A.FDA是一种大分子物质，通过胞吞进入细胞B.荧光素分子能以自由扩散的方式通过细胞膜C.实验中配制的FDA溶液是一种低渗溶液D.绿色荧光的强度与原生质体的活力呈正相关解析根据FDA可自由通过细胞膜，确定其不是大分子物质，A选项错误;根据荧光素积累在细胞内，确定其不能自由通过细胞膜，B选项错误;因为原生质体没有细胞壁，若为低渗溶液，则原生质体会吸水涨破，不能完成实验，C选项错误;原生质体的活力越强，酯酶活性越强，产生的荧光素越多，D选项正确.参考答案：D例3 下列有关不同实验中细胞死活的推测，正确的是（）.A.在高倍镜下观察黑藻细胞，发现细胞质缓慢流动，表明此时细胞是死细胞B.用台盼蓝染液处理酵母菌，细胞被染成蓝色，表明酵母细胞是活细胞C.健那绿染液染色后的口腔上皮细胞，线粒体为蓝绿色，表明细胞是活细胞D.将洋葱鳞片叶细胞置于质量分数为10%的蔗糖溶液中未发生质壁分离，则确定此细胞是死细胞解析活细胞的细胞质不停地流动，黑藻的细胞质流动，表明细胞是活细胞，流动缓慢可能是温度太低造成，A选项错误;活细胞的细胞膜能控制物质进出，使台盼蓝不能透过细胞膜，酵母细胞被染成蓝色，说明细胞死亡，B选项错误;健那绿染液是专一性染线粒体的活细胞染料，可以将线粒体染成蓝绿色，C选项正确;将洋葱鳞片叶细胞置于质量分数为10%的蔗糖溶液中，细胞不能发生质壁分离，原因可能是该蔗糖溶液浓度低于细胞液浓度或细胞是死细胞，D选项错误.参考答案：C（收稿日期：2021-07-28）。
动物细胞的死活鉴定和存活率的测定
（二）、动物细胞的死活鉴定和存活率的测定一、实验目的及原理1、掌握染料排除法鉴定细胞死活的原理。
2、学习用血球计数板进行细胞计数，以测定动物细胞存活率的方法。
原理：在显微镜下，从形态上很难区分死、活细胞。
但是，死细胞可被某些染料如台盼蓝、伊红和苯胺黑等染上相应的颜色，而活细胞则不会被染色。
因此，可根据细胞是否被染料着色来区分细胞的死活。
二、实验材料试剂血球计数板、滴管、试管、倒置显微镜、超净工作台、电吹风、0.25%胰蛋白酶液、PE液、MEM+小牛血清培养液、0.4%台盼蓝三、主要操作步骤（一）细胞悬液的准备1、75%酒精棉球消毒双手、工作台面、培养瓶和试管等。
2、将前一实验传代培养的细胞培养液倒入一个小试管中，暂存。
3、向培养瓶内加入5ml PE液，平放轻摇，放置2～5分钟后倒掉。
4、向培养瓶内加入0.5～o.8ml的0.25%胰蛋白酶消化液，放置2～４分钟后倒掉。
拍打悬浮后，再将暂存的细胞培养液倒入，制备成单细胞悬液, （内含活细胞和死细胞）。
（二）细胞死活鉴定及计数1、用95%酒精冲洗血球计数板及盖玻片，用电吹风吹干。
把盖玻片覆在计数板上面，露出计数板台面少许，以便滴加细胞悬液。
2、取吸管一支，伸入培养瓶中，吸取细胞悬液向一小试管中滴入6滴，再滴入0.4%台盼蓝3滴，混匀，染色2-3分钟。
如果细胞悬液含细胞过多，可先用MEM培养液稀释，稀释倍数视情况而定，然后再进行染色。
3、向计数板边缘处轻轻滴加1-2滴已染色的细胞悬液，使之充满计数板和盖玻片间的空隙。
4、显微镜下观察和计数。
活细胞不着色，死细胞被染上蓝色。
分别统计角上的4个大方格内的活细胞和死细胞数，两个平台共8个大方格。
（三）数据的统计活（死）细胞数（个/ml）=8个大方格中的活（或死）细胞总数/8 ⨯104⨯稀释倍数细胞存活率%=（活细胞数/细胞总数）⨯%四、实验结果第一个平台，四个角的活细胞数分别为9,10,7,12；死细胞数分别为2,2,3,1.第二个平台，四个角的活细胞数分别为11,7,9，10；死细胞数分别为3,2,2,2.五、思考题解答与讨论计算培养瓶中活（死）细胞数（个/ml），计算细胞存活率%。
细胞活性检测方法有哪些？
细胞活性是判断体外培养细胞在某些条件下是否能正常生长的重要指标,如药物处理、放射性或紫外线照射、培养条件变化等。
目前常用的方法有很多,如有台盼蓝染色法、克隆(集落)形成法、H放射性同位素掺入法、MTT法等。
本文总结了一些常用的细胞活性检测方法的原理、特点，并对比了各自的优缺点。
一、染色计数法1. 化学染色法染色计数法是细胞培养中检查细胞死活最常用的方法，直接利用死细胞和活细胞对染料的不同亲和力，检查细胞活性，能在光学显微镜下观察到染色结果。
可分为两类：死细胞着色法和活细胞着色法。
使死细胞着色的常用染料有台盼蓝、苯胺黑、伊红Y。
能使活细胞着色的常用染料有结晶紫、亚甲基蓝、甲苯胺蓝等。
其中最常用的是台盼蓝染色法。
细胞损伤或死亡时，台盼蓝可穿透变性的细胞膜，与解体的DNA结合，使其着色，而活细胞能阻止染料进入细胞内，故可以鉴别死细胞与活细胞。
通过细胞计数可得出细胞的存活率。
本染色法方便实用，价格低廉，操作简单。
但是台盼蓝染色时，时间不宜过长，否则部分活细胞也会着色，会干扰计数。
而且，细胞没有经过固定，形态不清晰。
2. 荧光染色法一些荧光染料对死细胞和活细胞也有不同的作用效果，利用荧光显微镜检测细胞活性。
如碘化丙啶（PI），被活细胞排斥但能穿透正在死亡或已经死亡细胞的细胞膜，因此活细胞不被染料上色，只有死细胞或凋亡细胞才能被染上红色。
吖啶橙（AO）能透过质膜完整的细胞，嵌入细胞核DNA，使之发出明亮的绿色荧光。
溴乙锭（EB）仅能透过胞膜受损的细胞，嵌入核DNA，发橘红色荧光。
也可应用AO-EB双染法鉴定细胞死活。
这种检测方法相比传统的染料，具有灵敏度高，操作简便，结果容易分辨等特点，而且利用双染法还可以分辨活细胞、凋亡早期细胞、凋亡晚期细胞、死亡细胞。
在细胞凋亡的检测上有很广泛的应用。
缺点在于，要求特殊的仪器进行检测，如荧光显微镜、激光扫描共聚焦显微镜或流式细胞仪。
而且通过荧光染料具有毒性，操作时需要带手套。
死活细胞的鉴定方法
死活细胞的鉴定方法鉴定死活细胞有多种方法，以下是几种常见的死活细胞鉴定方法：1.染色法染色法是一种常用的死活细胞鉴定方法。
它通过染色剂对细胞膜通透性的不同来区分活细胞和死细胞。
常用的染色剂有台盼蓝、中性红、碘化丙啶等。
台盼蓝可以透过死亡细胞的细胞膜，使死细胞着色，而活细胞则不能。
中性红和碘化丙啶则只能透过活细胞膜，使活细胞着色。
通过这种方法，可以清楚地看到细胞中的死活细胞分布情况。
2.荧光染色法荧光染色法是一种灵敏度更高的死活细胞鉴定方法。
它利用荧光染料对细胞进行染色，在荧光显微镜下观察细胞的荧光情况。
活细胞能够吸收荧光染料，发出荧光，而死细胞则不能。
这种方法可以更准确地检测出细胞中的死活细胞比例。
3.呼吸测试法呼吸测试法是一种直接检测细胞活性的方法。
它通过测量细胞在氧气消耗和二氧化碳释放方面的变化来评估细胞的活性。
活细胞在代谢过程中需要消耗氧气并释放二氧化碳，而死细胞则不具备这种代谢活性。
通过测量氧气和二氧化碳的浓度变化，可以判断细胞的死活情况。
4.膜电位法膜电位法是一种通过检测细胞膜电位变化来区分活细胞和死细胞的方法。
活细胞的细胞膜内外的电位差通常为负值，而死细胞的电位差则为正值。
利用这种电位差的变化，可以判断细胞的死活情况。
5.葡萄糖-6-磷酸脱氢酶（G6PD）活性检测法G6PD活性检测法是一种通过检测G6PD酶的活性来区分活细胞和死细胞的方法。
G6PD是红细胞中的一种酶，当红细胞死亡时，该酶的活性会迅速下降。
通过检测G6PD的活性，可以判断细胞的死活情况。
6.线粒体膜电位检测法线粒体膜电位检测法是一种通过检测线粒体膜电位的变化来区分活细胞和死细胞的方法。
线粒体是细胞中负责能量代谢的重要细胞器，活细胞的线粒体膜电位通常为负值，而死细胞的线粒体膜电位则为正值。
通过检测线粒体膜电位的变化，可以判断细胞的死活情况。
死活细胞鉴定
生命科学学院Life Science College细胞生物学实验报告姓名：柳伟雄班级：2013级生科一班学号：201300140062 同组者：曾玮璠山东大学实验报告2015年4月12日姓名：柳伟雄系年级：生科一班2013级同组者：曾玮璠科目：细胞生物学实验题目：小鼠脾脏细胞原代培养及观察计数一、目的和要求1.学习掌握细胞培养的基本原理以及具体方法，并对小鼠脾细胞进行原代培养。
2.掌握无菌操作的具体过程及无菌操作台的使用。
3.学习掌握染色法鉴别细胞的生死状态的原理及方法。
4.学习使用血球计数板对细胞总数及活细胞数进行计数。
二、原理1.细胞培养细胞培养指的是在无菌条件下，把动植物细胞从组织中取出，在体外模拟体内的生理环境，使离体的细胞在体外生长和繁殖，并且维持其结构和功能的一种培养技术。
动物细胞培养可分为原代培养和传代培养。
从供体获得组织细胞，在无菌条件下，用胰蛋白酶消化或机械分散等方法，将动物组织分散成单个细胞开始首次培养长出单层细胞的方法称为细胞的原代培养。
当培养的动物细胞生长增殖达到一定密度，形成致密的单层细胞时，用胰蛋白酶将细胞消化分散成单细胞，从一个容器中以1：2或其他比例转移到另一个容器中扩大培养的方法，称为细胞的传代培养。
传代培养的累计次数就是细胞的培养代数。
高等生物是由多细胞构成的整体，在整体条件下要研究单个细胞或某一群细胞在体内的功能活动是十分困难的。
但如果把活细胞拿到体外培养、增殖并进行观察和研究，则要方便和简单得多。
被培养的动物细胞是非常好的实验对象和实验研究材料，对体外培养的活细胞进行研究可以帮助人类揭开生、老、病、死的规律，探索优生、抗衰老和防治各种疾病的途径和机制，也可以人为地诱导和改变细胞的遗传性状和特性，使其向有利于人类健康长寿的方向发展。
因此动物细胞体外培养技术是研究细胞分子机制非常重要的实验手段，被广泛应用于医学、生物技术、基因工程等研究领域。
细胞培养的意义:具有其他生物技术无可比拟的优点；培养条件易改变和控制，便于单因子分析；便于人们直接对细胞内结构、细胞生长及发育等过程的观察；在生物学的各个领域(如分子生物学、细胞生物学、遗传学、免疫学、肿瘤学及病毒学等)已被广泛应用。
细胞生死状态的鉴定——台盼蓝法
4、根据染色结果计算活细胞率：
依据死细胞染成蓝色、活细胞不着色的原则计数死细 胞数和细胞总数，以如下公式计算细胞存活率： 活细胞率（%)=（细胞总数-死细胞数）/细胞总数 ×100%
五、注意事项
1、用乙醇清洁计数板及专用盖玻片，然后用绸布轻轻拭 干。 2、务必使细胞分散成单个细胞，趋于计数前，应充分混 匀细胞悬液。显微镜下计数时，遇到两个以上细胞组成的 细胞团。应按单个细胞计算。如果细胞团>10%。说明细 胞分散不充分。 3、台盼蓝染细胞时，时间不宜过长。否则活细胞也会逐 渐积累染料而染成颜色，会干扰计数。最好在三分钟以内 计数。
作用,保护生物蛋白的结构及生物特性，一般的有活性的生物制剂都要 用它来稀释)
3、器材 载玻片、盖玻片、倒置相差显微镜、试管、培养瓶（皿） 、滴管、血球计数板
四、实验方法：
1、试剂配制：用生理盐水配制0.4%台盼蓝染液，备用。
称取4克台盼蓝，加入少量蒸馏水研磨，加双蒸水至100毫升 ，用滤纸过滤，4℃保存。 使用液：使用时，用PBS稀释母液至0.4％即可。
正常的活细胞，胞膜结构完整，能够排斥台盼蓝，使之
不能够进入胞内；而丧失活性或细胞膜不完整的细胞，胞膜的 通透性增加，可被台盼蓝染成蓝色，通常认为细胞膜完整性丧
失，即可认为细胞已经死亡。
三、实验用品
1、材料 贴壁细胞 2、试剂 0.4%的台盼蓝染液、0.25%的胰酶、含10%血清的1640 培养液、PBS(磷酸缓冲盐溶液,一般作为溶剂，起溶解保护试剂的
细胞生死状态的鉴定 ——台盼蓝法
一、实验目的：
掌握血球计数板细胞计数法以及死活细胞鉴定 的原理和常用方法。
二、实验原理：
细胞死活鉴定的方法有很多种，常用的有染色法和仪 器分析法。染色法简便，易于操作。但是通过直接的形态 来鉴定细胞死活，实验结果很容易受主观因素的影响，存 在一定的误差，因此，在实际操作中也常用一些仪器来进 行精确的批量检测。 不同的鉴定方法有不同具体的反应机理，但都是利用 了死活细胞在生理机能和性质上的差异。 染色法分化学染色法和荧光染色法。 根据染色机理的不同，染料或使死细胞着色，或使活 细胞着色。死细胞着色法（台盼蓝、氨基黑、赤藓红B） 、活细胞着色法（结晶紫、亚甲基蓝、甲苯胺蓝）。荧光 染色（吖啶橙-活细胞细胞核呈黄绿色或亮绿色荧光死细 胞细胞核呈红色荧光).
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【实验目的】1、回顾细胞培养的有关知识；2、学习小鼠脾细胞的分离技术及简单的细胞培养技术3、掌握无菌操作的具体过程及无菌操作台的使用；4、了解细胞原代培养的基本方法及操作过程；5、学习掌握染色法鉴别细胞的生死状态的原理及方法；6、学习使用血球计数板对细胞总数及活细胞数进行计数；7、学习实验过程的详细描述及实验记录。
【实验原理】细胞培养指的是在无菌条件下，把动、植物细胞从组织中取出，在体外模拟体的生理环境，使离体的细胞在体外生长和繁殖，并且维持其结构和功能的一种培养技术。
动物细胞培养可分为原代培养和传代培养。
从供体获得组织细胞，在无菌条件下，用胰蛋白酶消化或机械分散等方法，将动物组织分散成单个细胞开始首次培养长出单层细胞的方法称为细胞的原代培养。
当培养的动物细胞生长增殖达到一定密度，形成致密的单层细胞时，用胰蛋白酶将细胞消化分散成单细胞，从一个容器中以1：2或其他比例转移到另一个容器中扩大培养的方法，称为细胞的传代培养。
传代培养的累计次数就是细胞的培养代数。
高等生物是由多细胞构成的整体，在整体条件下要研究单个细胞或某一群细胞在体的功能活动是十分困难的。
但如果把活细胞拿到体外培养、增殖并进行观察和研究，则要方便和简单得多。
被培养的动物细胞是非常好的实验对象和实验研究材料，对体外培养的活细胞进行研究可以帮助人类揭开生、老、病、死的规律，探索优生、抗衰老和防治各种疾病的途径和机制，也可以人为地诱导和改变细胞的遗传性状和特性，使其向有利于人类健康长寿的方向发展。
因此动物细胞体外培养技术是研究细胞分子机制非常重要的实验手段，被广泛应用于医学、生物技术、基因工程等研究领域。
细胞生死状态的鉴别方法主要是化学染色法和荧光染色法。
活细胞和死亡细胞在生理技能和性质上主要存在一下差异：①细胞膜通透性的差异：活细胞的细胞膜是一种选择性膜，对细胞起保护和屏障作用，只允许物质选择性地通过；而细胞死后，细胞膜受损，其通透性增加。
基于此，发展出了以台盼蓝、伊红、苯胺黑、赤藓红、甲基蓝以及荧光染料碘化丙啶或溴化乙啶等为染料鉴别细胞生死状态的方法，上述染料能使死亡细胞着色，而活细胞不被着色。
此外，应用植物质壁分离的性质也可鉴定植物细胞的生死状态。
活细胞的原生质具有选择透过性，死细胞因其原生质的选择透过性已遭破坏，故与高渗透压溶液接触时不产生质壁分离。
②代上的差异：活细胞中新代作用强，细胞的酶具有较强的活性和还原能力。
基于此，发展处了以荧光素二乙酸酯（FDA）、荧光素二丙酸酯、荧光素二丁酸酯或荧光素二苯甲酰酯等酯化的荧光素鉴别细胞生死状态的方法，上述酯化的荧光素亲脂性提高，容易被细胞吸收进入，活细胞的酯酶具有较强的活性，可将酯化的荧光素分解而释放出能发荧光的荧光素，该物质不能自由透过活的细胞膜，积累在细胞，荧光显微镜下显示有明亮的绿色或黄绿色荧光；而死亡细胞的酯酶因失去活性，不能分解酯化的荧光素，荧光显微镜下显示不发光。
另外，可用亚甲基蓝为染料鉴定酵母细胞的生死状态。
亚甲基蓝是一无毒染料，氧化型为蓝色，还原型为无色。
活细胞因具有较强的还原能力，能使亚甲蓝从蓝色的氧化型变成无色的还原型，故活的酵母细胞在用亚甲基蓝染色后显示无色；死亡酵母细胞或代缓慢的衰老酵母细胞，因无还原能力或还原能力极弱，使亚甲蓝仍处于氧化态，故呈现蓝色或淡蓝色。
1.细胞原代培养原代细胞培养是指直接从动物体获取的细胞、组织和器官，经体外培养后，直到第一次传代为止。
这种培养，首先用无菌操作的方法，从动物体取出所需的组织（或器官），经消化，分解成单个游离细胞，在人工培养下，使其不断的生长及繁殖。
细胞培养是一种操作繁琐而又要求十分严谨的实验技术。
是用无菌的方法将动物体的组织（或器官）取出，模拟动物体的生理条件，在体进行培养，使其不断生长、繁殖，人们借以观察细胞生长、繁殖、细胞分化以及细胞衰老等过程的生命现象。
要使细胞能在体外长期生长，必须满足两个基本要求：一是供给细胞存活所必须的条件，如适量的水、无机盐、氨基酸、维生素、葡萄糖及其有关的生长因子、氧气、适宜的温度，注意外环境酸碱度与渗透压的调节。
二是严格控制无菌条件。
细胞培养的意义:具有其他生物技术无可比拟的优点培养条件易改变和控制便于单因子分析便于人们直接对细胞结构、细胞生长及发育等过程的观察在生物学的各个领域如分子生物学、细胞生物学、遗传学、免疫学、肿瘤学及病毒学等已被广泛应用。
细胞培养的局限性在脱离机体复杂环境下细胞培养条件与躯体环境有一定距离观察到的结果有时难以正确反映机体的状况细胞培养得到的产物少。
2.染色法鉴别细胞死活细胞死活的鉴定方法有很多种，常用的有染色法和仪器分析法。
染色法是常用的细胞死活鉴定方法，简便，易于操作。
不同的死活细胞鉴定方法有各自不同具体的反应机理，但无论采用何种办法，都是利用了死活细胞在生理机能和性质上的差异。
染色法分化学染色法和荧光染色法，根据染色机理的不同，染料或使死细胞着色，或使活细胞着色。
死活细胞在生理机能和性质上的差异主要包括：死活细胞，细胞膜通透性的差异：活细胞的细胞膜是一种选择性膜，对细胞起保护和屏障作用，只允许物质选择性的通过；而细胞死亡之后，细胞膜受损，通透性增加。
常用的以台盼蓝鉴别细胞死活的方法就是利用了这一性质。
台盼蓝，又称锥蓝，是一种阴离子型染料，不能透过完整的细胞膜。
活细胞必须通过控制物质进出细胞膜来保持部环境的稳定性，细胞死后，细胞膜的通透性发生改变，原先不能够进入细胞的物质也能够进入细胞。
台盼蓝染料正常情况下被活细胞阻拦在细胞膜外，只有细胞受损或者死亡，才能进入细胞。
因此，活细胞一般不能被台盼蓝染色，而死细胞会被染成蓝色。
所以经台盼蓝染色后只能使死细胞着色，而活细胞不被着色。
3.悬浮细胞计数（血细胞计数板法）用血细胞计数板在显微镜下直接计数是一种常用的细胞计数方法。
该计数板是一块特制的载玻片，其上由四条槽，构成三个平台；中间较宽的平台又被一短横槽隔成两半，每一边的平台上各列有一个方格网，每个方格网共分为九个大方格，中间的大方格即为计数室。
血细胞计数板构造如图1。
计数室的刻度一般有两种规格，一种是一个大方格分成25个中方格，而每个中方格又分成16个小方格；另一种是一个大方格分成16个中方格，而每个中方格又分成25个小方格(图1)，但无论是哪一种规格的计数板，每一个大方格中的小方格都是400个。
每一个大方格边长为1mm，则每一个大方格的面积为1mm2，盖上盖玻片后，盖玻片与载玻片之间的高度为0.1mm，所以计数室的容积为0.1mm3（万分之一毫升）。
计数时，通常数五个中方格的细胞总数，然后求得每个中方格的平均值，再乘上25或16，就得出一个大方格中的细胞总数，然后再换算成1ml细胞悬中的细胞总数。
图 1 血球计数板构造示意图25个中方格的计数板，设5个中方格中的细胞总数为A，细胞悬液稀释倍数为B，则：1mL细胞悬液中的细胞总数=A/5×25×104×B=50000A·B（个）。
【实验材料】1.试剂：75%酒精、PBS液、细胞培养液、台盼蓝。
2.器具：超净工作台、解剖盘、镊子、剪刀、吸管、移液枪、玻璃培养皿、塑料培养皿、“L”型针头注射器、火柴、酒精棉球、酒精灯、Eppendorf管、离心机、二氧化碳培养箱、记号笔、倒置显微镜、血细胞计数板、盖玻片、普通光学显微镜、玻璃离心管，等。
3.材料：小白鼠【实验步骤】小鼠脾细胞原代培养1. 取材：取小白鼠一只，采用断头法处死；清水洗小鼠并浸于75%酒精中灭菌3min。
取出转入超净洁净台的解剖盘，无菌操作打开腹腔。
取出脾脏，去除其周围的脂肪组织，镊起脾脏用PBS液自上而下冲洗1~2次。
转入无菌玻璃培养皿中，待用。
2. 分离脾细胞：用滴管先向上述无菌玻璃培养皿中滴入PBS液30滴，再用“L”型针头注射器在皿中吸取PBS液0.2ml，然后将其沿脾长轴方向注射入脾（使脾脏膨胀以利于细胞散开）。
用针尖在脾脏上扎眼，并用“L”针头轻刮脾脏表面挤出脾细胞，用滴管吸皿中的PBS 液冲脾脏并吹散刮出的脾细胞，稍倾斜并静置1～2分钟。
吸取上述静置后的脾细胞悬液上清部分放入Eppendorf管，并使量至1ml，以3000r/min，离心1~2分钟。
3. 培养脾细胞：超净洁净台中取塑料培养皿一个，用“枪（1ml）”加入细胞培养液2ml，并在皿盖上画上标记，待用。
取上述离心后的Eppendorf管，在超净洁净台开盖弃去上清液，用“枪（200μl）”吸取塑料皿中的培养液400ml加入弃去上清液的Eppendorf管中，用枪头吹匀管底的脾细胞，然后吸取200ml脾细胞悬液接种于上述塑料培养皿中，混匀，然后放入37℃、5%CO2培养箱中培养。
染色法鉴定细胞死活及活细胞计数1. 试剂配制：用生理盐水配制0.4%台盼蓝染液，备用。
2. 细胞生长状态观察：从培养箱中取出培养物，观察培养液的颜色。
然后将培养皿置于倒置相差显微镜观察细胞生长状况。
3. 细胞悬液制备：取0.5mL细胞悬浊液于试管（本实验中，用玻璃离心管代替）中，加1-2滴台盘蓝染液（约0.1ml），混合均匀，染色2min。
4. 细胞计数：滴加少许染色后的细胞悬液于放有盖片的血球计数板的斜面上，细胞悬液依毛细作用扩散到计数区，使悬液自然充满计数板小室（注意不要使小室有气泡产生，否则要重新滴加）。
在普通光镜10x物镜下找到中心处的大方格，改用40X物镜，取中间和四个角上的中等方格，计数每个方格死活细胞的数量（注意：当遇到位于大格线上的细胞，一般数上不数下，数左不数右）。
先计数总细胞，再计数死细胞（蓝色）。
5. 根据染色结果计算活细胞率：依据死细胞染成蓝色、活细胞不着色的原则计数死细胞数和细胞总数，以如下公式计算细胞存活率：【实验结果】1. 细胞原代培养形态观察图 2 倒置显微镜下细胞原代培养图示（10×40）原代培养后的培养液呈粉红色，上清液澄清，未出现异味，也未被污染。
在倒置显微镜下，原代培养的细胞清晰可见，细胞多呈圆形，形状规则，细胞质均匀。
2. 细胞计数（自己原代培养1周的细胞）用血球计数板计数，分别计算了红细胞计数区域的五个小方格，计数结果如下: 编号（中格）右上右下左上左下中总数/个15 7 11 12 11死细胞数/个12 6 10 12 8活细胞数/个 3 1 1 0 3细胞存活率= 活细胞数 / 细胞总数×100%=（3+1+1+0+3）/（15+7+11+12+11）×100%=14.29%每毫升液体中细胞的数=[(15+7+11+12+11)/5]×25×104=2.8×106个/m【实验结果分析】本次实验中所测活细胞率为14.29%，比例略微偏低，分析可能有以下原因可能影响实验结果：a) 在离心分离呈单细胞的过程中离心机转速过快或时间过长很可能会导致细胞破裂，导致小鼠脾细胞大量死亡；b) 在无菌操作的过程中操作不规，导致染菌，会影响观察，导致实验失败；c) 取液时没有摇匀细胞液，导致所吸取的细胞悬液中细胞密度较低；d)染色时间过长，或观察时间过长都会导致染色试剂将细胞杀死，使细胞活力骤降，这是导致活细胞比例比较低的重要原因；e)实验中的一些不正确或不规的操作、计算带来的误差等也会直接导致实验误差。