关于实验动物中心近期动物实验
动物学河蚌系列实验实验报告河蚌的解剖与观察实验报告
动物学河蚌系列实验实验报告河蚌的解剖与观察实验报告一、课题名称：河蚌系列实验二、文献综述：动物学实验（白庆笙、王英永编著）（高等出版社）三、实验目的和要求：1. 学习解剖观察河蚌内部器官的。
2. 通过对河蚌外形及内部结构的观察，了解软体动物门的一般特征及其与生活方式相适应的特征。
3. 了解变温动物心博频率与温度的关系。
四、实验条件：1 、实验：活河蚌。
2 、实验器材：显微镜、放大镜、恒温水浴锅、温度计、解剖器具、解剖盘、载玻片、滴管。
3 、实验药品: 炭末水混合液。
五、实验原理和方法：方式，河蚌是典型的代表；六、实验步骤设计1 （1）外形壳分左右两瓣，钝圆的一端是2扭转刀柄，将壳稍撑开，缝隙，再以刀锋紧贴左贝壳内表面切断前、后闭壳肌及其附近的肌肉，将镊子柄取出。
揭开左贝壳。
从入水口沿鳃上腔边缘至唇瓣至前闭壳肌腹缘剪掉左侧外套膜，即可进行实验和内部结构。
3 、心脏搏动与水温关系（1 ）在内脏的背侧，即贝壳绞合部附近找到围心腔，仔细观察，可见心脏在其周围搏动。
（2 ）将河蚌置于盛有室温水的水浴锅内，让水淹没心脏，记录此温度下每分钟心博次数。
（3 ）将预先制好的冰块放入水浴锅内，使水温逐渐下降，直到4C左右。
此时心脏基本不跳动（心博频率）。
（4 ）逐步加温，用温度计随时测量水温。
水温每升高1~2C,记录一次心率4 、内部构造观察⑴ 原位观察•前闭壳肌和后闭壳肌；伸足肌、缩足肌•外套膜、外套腔、外套线；入水管、出水管•斧足•呼吸系统：鳃瓣、（从出水口剪开一鳃瓣的鳃上腔）鳃小瓣、瓣间隔、鳃丝、丝间隔和鳃上腔。
•循环系统：观察河蚌的心脏（心室、心耳）操作：沿鳃的上缘剪掉左侧腮•• ，即•• 5 、钩介幼虫的观察11 对左右对称的小贝壳，贝1条12 、河蚌的解剖内部构造的观察（1）原位观察•斧足•呼吸系统：鳃小瓣、瓣间隔、循环系统：观察河蚌的心脏（心室、心耳）、动脉干生殖系统：雌雄异体。
生殖腺均位于足基部内脏团中，以手术刀除去内脏团的外表组织，可见黄色的腺体（卵巢），即为生殖腺，左右两侧生殖腺各以生殖孔开口于排泄孔的前下方神经系统：脑、足、脏神经节。
大学实验动物中心SPF级大、小鼠实验管理操作规程
大学实验动物中心SPF级大、小鼠实验管理操
作规程
一、动物实验项目由实验者（乙方）向实验动物（甲方）提出申请，经实验动物中心审议并批准后，填写《大学动物实验室使用协议》方能开展动物实验。
并有《实验动物操作上岗证》持证进入实验室进行实验操作。
二、项目合作协议一式两份，由双方分别备案。
三、实验者在操作过程中，如有损坏或遗失实验室中的仪器设备等，应照价理赔；若故意损坏者，将对责任人严肃处理。
四、动物实验中，由于环境、笼具不洁、饲料变质或未能及时提供饲料、饮水等而造成动物死亡的，由甲方承担责任。
五、由于实验方案或操作不当而引起动物死亡的，由实验者承担责任。
六、由于不可预料或不可抗衡的事故发生（如大范围停水、断电、电压不稳、、设施自然损坏等）而致实失败，则由双方谅解协商解决。
七、原则上，实验室管理人员不直接参加实验操作。
八、动物发生不明原因的死亡，双方应立即相互告知,并在两小时内处理动物尸体。
九、实验者需每日在规定时间内进行动物实验或进行例行巡视，发现有异常情况应主动与实验室联系，以便及时解决。
十、实验者需严格按实验室规定的操作程序进入动物实验室操作，并遵守动物实验室管理制度，如有严重违反者,动物实验室管理者可拒绝其进入，由此造成的后果应由实验者承担。
十一、动物实验室产生的服务费用，应按规定标准收取并及时划入甲方专用帐务内，先划再用。
十二、实验者所采用的实验方法中，如使用有毒、有害材料或试剂、危害人类健康的诱导物等必须事先声明，经甲方审定后按规定程序带入，不得擅自夹带进实验室，以免影响其他实验。
动物中心实验动物福利与伦理审查表 范文
动物中心实验动物福利与伦理审查表范文全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：动物中心实验动物福利与伦理审查表范文在动物实验研究中，保障动物的福利和尊严是至关重要的。
为了确保动物实验的合法性和道德性，各个动物中心都需要进行动物福利与伦理审查。
下面是一份关于动物中心实验动物福利与伦理审查表的范文：一、基本信息：1. 动物实验项目名称：2. 主要研究人员姓名：3. 研究机构名称：4. 审查日期：二、项目背景和目的：1. 项目背景简介：2. 研究目的和预期成果：3. 研究对动物的影响和潜在风险：三、动物选择与数量：1. 动物种类：2. 动物来源：3. 动物数量：4. 动物饲养环境和条件：四、动物实验程序：1. 动物实验过程描述：2. 动物处理和操作方法：3. 动物实验的持续时间：五、动物福利保障：1. 动物饲养管理：- 饲养环境和设施：- 饲养和饲料标准：- 动物健康监测：2. 动物实验操作：- 动物麻醉和手术管理：- 动物痛苦和苦难的减轻：- 动物实验结束后的处理：3. 实验结束后的处理：- 动物放归或安乐死：- 动物实验结果报告：六、伦理与道德考虑：1. 伦理委员会的审查和批准：2. 动物实验伦理原则遵守：七、其他相关事项：1. 动物实验的法律合规情况：2. 实验过程中出现的问题和意外情况的处理方式：八、审查结论：1. 动物实验的合法性和道德性评估：2. 建议的改进和完善措施：以上是动物中心实验动物福利与伦理审查表的范文，希望有助于您的动物实验研究工作。
希望在动物实验研究中，我们始终保持对动物的尊重和关爱，合理利用动物资源，促进科学的发展和人类的福祉。
感谢您的关注和配合！第二篇示例：动物实验是科学研究中不可或缺的一部分，然而动物福利和伦理审查在动物实验中也变得愈发重要。
为了保护动物的权益和福利，各国纷纷制定了相关政策和法规，其中就包括动物中心实验动物福利与伦理审查表。
本文将针对这一议题展开讨论。
动物中心实验动物福利与伦理审查表是什么？这是一个用来评估动物实验中动物福利状况和伦理合规性的记录表格。
动物中心实验动物福利与伦理审查表 范文
动物中心实验动物福利与伦理审查表范文在动物中心进行实验时，保障实验动物的福利和遵循伦理原则至关重要。
为了确保实验的合规性和道德性，以下是一份关于动物中心实验动物福利与伦理审查表的范文，供参考。
动物中心实验动物福利与伦理审查表一、实验基本信息1.实验项目名称：____________________2.实验项目负责人：____________________3.实验单位：____________________4.实验地点：____________________5.实验起止时间：____________________二、实验动物基本信息1.动物种类：____________________2.动物数量：____________________3.动物来源：____________________4.动物年龄：____________________5.动物性别：____________________三、实验目的与必要性1.实验目的：____________________2.实验的科学研究价值：____________________3.是否有非动物实验替代方案：____________________四、实验动物福利保障措施1.动物饲养环境：____________________（包括温度、湿度、光照、通风等）2.动物饲养管理：____________________（包括饲养员培训、饲养制度等）3.动物健康状况监测：____________________（包括疫苗接种、疾病防治等）4.动物福利评估：____________________（包括行为学、生理学等指标）五、伦理审查内容1.实验是否符合国家有关动物实验的法律法规：____________________2.实验是否遵循国际动物实验伦理原则：____________________3.实验是否经过本单位伦理委员会审查：____________________4.实验过程中是否采取减轻动物痛苦的措施：____________________5.实验结束后是否对动物进行妥善处理：____________________六、实验结果与公开1.实验结果是否对外公开：____________________2.实验结果公开方式：____________________3.实验结果公开范围：____________________七、其他说明1.实验过程中如有特殊情况，需及时向伦理委员会报告。
小鼠活体试验实验报告
小鼠活体试验实验报告实验目的：本实验旨在评估特定化合物对小鼠生理功能的影响，以及该化合物在小鼠体内的代谢和分布情况，为进一步的药物开发和安全性评估提供基础数据。
实验材料：1. 实验动物：健康成年小鼠，体重20-25g，性别和年龄一致。
2. 化合物：待测试化合物，纯度≥98%。
3. 实验试剂：生理盐水、麻醉剂、血液采集器材等。
4. 仪器设备：恒温水浴箱、离心机、显微镜、血液分析仪等。
实验方法：1. 小鼠分组：将小鼠随机分为对照组和实验组，每组10只。
2. 给药方式：实验组小鼠通过口服方式给予一定剂量的化合物，对照组给予等体积的生理盐水。
3. 观察指标：记录小鼠的行为反应、体重变化、食物和水的摄入量。
4. 血液采集：在给药后的第1天、第3天和第7天，对小鼠进行血液采集，进行血液常规和生化指标分析。
5. 组织采集：实验结束后，对小鼠进行解剖，采集肝脏、肾脏等组织样本，进行组织学检查和化合物分布分析。
实验结果：1. 行为反应：实验组小鼠在给药后表现出轻微的嗜睡和活动减少，但无明显异常行为。
2. 体重变化：实验组小鼠体重增长速度略低于对照组，但差异不显著。
3. 食物和水摄入量：实验组小鼠的食物和水摄入量在给药初期略有下降，随后逐渐恢复至正常水平。
4. 血液分析：实验组小鼠的血液常规和生化指标与对照组相比，未发现显著差异。
5. 组织学检查：实验组小鼠的肝脏和肾脏组织未见明显病理变化。
6. 化合物分布：化合物在小鼠体内的分布主要集中在肝脏和肾脏，表明这两个器官可能是化合物的主要代谢和排泄途径。
结论：根据本实验结果，待测试化合物在小鼠体内的代谢和分布情况良好，未引起明显的生理功能异常。
然而，实验组小鼠在给药初期出现轻微的体重增长减缓和食物水摄入量下降，提示该化合物可能具有一定的副作用。
因此，建议在后续研究中进一步探讨该化合物的安全性和有效性，为临床应用提供更多的科学依据。
实验日期：2024年4月14日实验人员：[实验人员姓名]指导教师：[指导教师姓名]。
我国当前的动物实验现状及解决方案
我国动物实验领域的问题与对策动物实验的科学定义指在实验室内，为了获得有关生物学、医学等方面的新知识或解决具体问题而使用动物进行的科学研究。
随着整个世界科学技术的进步，以及我国生活水平的提高，吃饱穿暖已不再让人堪忧，更多为人关注的则是怎样能生活的有质量，人们似乎更趋于对自己生理构造的探究以及自己生命及生活质量的的保证和提高。
我们不断着手于探索生物的起源，揭开遗传的奥密，攻克癌症的堡垒，研究各种疾病与衰老的机理，监测公害、污染，保护人类生存的环境，生产更多更好的农畜产品为人类生活造福，在药品、生物制品、农药、食品、添加剂、化工产品、化妆品、航天、放射性和军工产品的研究试验与生产中，在进出口商品检验。
然而，此类科研结果不经动物实验又怎能轻易地施以人身？我们不能用人去做实验。
因此动物实验领域，已受到世界各国的普遍重视，投入了巨大的人力物力，这是因为在生物科学领域内，我们必须借助实验动物去完成对人类生命的探索。
动物总是做为人类的替身，去承担安全评价和效果试验，在生命科学领域内一切研究课题的确立，成果水平的高低，都决定于实验动物的质量，没有它，我们的科学实验就不能在时间、空间和研究者之间进行比较，我们的科研成果、论文就不能在国际上进行交流，得不到国际的公认，将被国际同行们看为科学水平不高甚至是一堆废纸。
动物实验探索人类的生命奥秘，控制人类的疾病和衰老，延长人类的寿命，它具有深远的意义。
而因此动物实验也是不可替代的方式。
对于科技起步较晚发展速度较快而经济水平以及人民素质依然较落后的我国，尽管随着动物实验领域的发展不断的收益，然而诸多的问题不断显现。
围绕道德伦理和实验验本身的安全问题及各种可行性问题不断带来了一些障碍阻碍相关事业的发展。
第一个问题，动物实验正确与否在人们心中的伦理性判断观点不一。
有很多人对科学工作者的以动物为实验物进行省道和指责。
随着动物实验的不断开展，有越来越多的动物权利主义者。
动物实验反对者者反对将动物当作一般财货或是为人类效力的工具。
动物实验的基本操作技术实验报告
动物实验的基本操作技术实验报告实验报告一、实验目的1.学习毒理学实验中有关动物实验的基本操作技术2.掌握健康小鼠的外观检查方法、性别鉴定、捉拿和固定方法、小鼠灌胃给药与小鼠腹腔注射给药等技术3.掌握小鼠颈椎脱臼法处死方法、小鼠脏器系数的概念及其测定方法、病理学意义4.熟悉小鼠的标记、小鼠解剖步骤及正常脏器观察5.了解实验动物的被毛去除方法、实验动物粪、尿的收集、小鼠血液样本采集方法二、实验材料和器材1.动物：小鼠2.器材：鼠笼、天平、注射器、灌胃针、止血钳、手术剪、平皿、托盘、烧杯若干。
三、实验方法1.对小鼠进行观察观察的指标主要包括：小鼠的体型、发育情况；毛发是否清洁浓密有光泽，是否顺贴不蓬乱；行动是否迅速，反应是否灵敏；眼睛是否明亮有神，瞳孔是否清晰等圆；天然孔道是否干净、有无分泌物。
2.小鼠的捉拿右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。
此时迅速用左手拇指和食指捏任小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。
3.小鼠性别鉴定主要观察肛门与生殖器之间的距离。
雄性大鼠的距离较大，雌性的距离较小，且成年雄鼠尾部可见睾丸，成年雌鼠可见乳头。
4.小鼠称重打开电子天平，待读数显示稳定后，将平皿置于天平上，去皮；将小鼠置于平皿中，待读数显示稳定后，读数得25.95g。
5.小鼠灌胃1）准备灌胃针头，将注射器针头拔下，更换为灌胃针头；根据小鼠的体重，按0.1ml/10g 灌胃量计算：V=25.950*0.1/10=0.26ml用注射器取0.26ml液体（自来水）；2）按“三-2-1）”的方法抓住小鼠，使其头、颈和身体呈一直线；3）灌胃针头从小鼠的嘴角进入，压住舌头，抵住上颚，轻轻向内推进，进入食管后会有一个刺空感，进入食道后即可推注药液，然后原方向将灌胃针抽出。
6. 腹腔注射1）吸取液体（自来水），将针头向上，吸取一段气体后，再缓慢排除气体，以达到取出气泡的效果。
动物实验中心实验动物人道处死与尸体的处理制度
动物实验中心实验动物人道处死与尸体的处理制度
1、需要终结实验动物生命时，必须采用人道的手段终止实验动物的生命。
大小鼠可用颈椎脱臼法等，子和豚鼠注射空气针或用棒击后脑法等，犬和猪可用麻醉下主动脉放血法等。
2、每次实验结束后，应将死亡动物（正常死亡或人道中止生命的动物）尸体收集在一塑料废物袋中，不能混有其它实验废弃物。
将此袋放入冰柜中，做好动物尸体存放记录。
3、存放于冰柜中的动物尸体由医疗废弃物处理单位统一处理。
六、环境及设备监测管理制度
1、消毒锅：每次消毒时，用121℃化学指示卡检测消毒效果；每季度用嗜热芽孢杆菌制成的生物指示剂，经消毒锅消毒后进行培养，观察指示剂颜色的变化来确定消毒效果。
2、饮水及饮水净化器：每月进行1次无菌检测。
较简单的方法是无菌取样，用肉汤增菌培养24h后进行培养基培养48h，看有无菌落生长。
3、饲料无菌检验：每批进行检测。
方法同动物饮水检测。
4、垫料的无菌检验：定期抽查，方法同上。
5、紫外灯照射强度测定：根据使用时间进行测定。
用紫外线强度测定仪按要求测定，若其强度低于75 w/cm2的国家标准，应该增加其照射时间或更新。
6、过氧乙酸浓度测定：所用的过氧乙酸每月应配制1次。
对购进的每批化工原料，都应进行有效浓度测定，以确保消毒效果。
7、室内落下菌测定：根据工作情况进行测定，每月按国家环境标准测定1次。
8、环境检测：对清洁级动物设施在每月的第1周，按国家标准检测1次；异常情况，应急时检测并采取措施。
厦门大学实验动物中心
厦门大学实验动物中心《实验室使用xx》各课题组：翔安校区实验动物中心一期建筑面积7050m2，其中屏障环境4000m2、普通环境400m2，辅助区1900m2，二期建筑面积6500m2，其中屏障环境3800m2、辅助区2700m2,可饲养SPF级小鼠、大鼠，无菌级小鼠和普通级兔、豚鼠、小型猪、犬、猴等实验动物。
为了规范实验动物等级，合理使用功能实验室，避免实验动物的交叉污染，保证各课题组动物实验的正常进行，对进入实验动物中心的课题组和实验人员作出如下规定。
1、所有实验人员必须遵守国家《实验动物管理条例》、《实验动物国家标准》、《实验动物伦理审查指南》和《厦门大学实验动物管理办法（试行）》等相关标准和政策规定。
2、非本校课题组必须提供课题组长签字和加盖本单位公章的《实验室使用须知》后方能网上成功注册，随后实验人员方可向本课题组长注册。
本校课题组免交《实验室使用须知》。
未获得注册通过的课题组不得安排实验。
3、实验人员进入实验室前必须参加实验动物中心每月统一组织的专业理论知识培训、闭卷考试、环境设施现场培训，经实验动物中心考核合格后发放门禁卡（准入证）。
办理相关证件时需出示学生证、身份证等相关证件。
4、实验人员必须如实告知身体健康状况，如传染性疾病如肝炎、结核携带者，或者真菌等皮肤病患者均不得申请进入实验动物中心。
5、实验动物中心开放时间：正常工作日8:00～18:00，周末、寒暑假及法定节假日9:00～17:00。
若因实验需要，带上本课题组长签字的书面材料向实验动物中心有关老师申请，同意后方可进入实验室。
6、屏障环境SPF级实验动物室必须饲养具有相应生产许可证和质量合格证的实验动物。
普通环境饲养的动物必须从具有实验动物生产许可证或相关行业管理部门颁发的合法营业执照单位引进，大型动物必须提供动物烈性传染病和人畜共患病的免疫接种证明。
对于进口动物或质量来源不明的动物必须经隔离检疫净化合格后才能引进种源繁殖室。
浙江大学实验动物中心
浙江大学实验动物中心浙江大学实验动物中心浙江大学实验动物中心关于“屏障级实验动物区”小鼠实验投诉处理的通知中心各部门：2019年四季度，沈华浩教授课题组反映饲养在实验动物中心屏障级实验动物区（四楼西区）的部分基因敲除小鼠出现脱毛、抓挠、死亡和繁殖障碍等一系列问题。
经调查，情况属实，并发现该区域工作人员未能严格执行中心操作规范，个别员工责任心不强，且主管领导也负有不可推卸的责任。
为严肃纪律，维护中心形象，努力提高实验动物中心的服务质量和水平，中心决定：1、对实验动物中心四楼西区全体工作人员进行惩戒性谈话，加强职业道德教育，梳理相关操作规范；2、扣除四楼西区全体工作人员当季度奖励；3、扣除实验生产部门主任刘迪文，副主任兼质控主管卫振当季度奖励。
望中心全体员工，以此为鉴，加强责任心，提高业务水平，为提高实验动物服务而努力。
浙江大学实验动物中心二O一O年十二月二日主题词：质量惩罚通知抄报：医学部、实验室与设备管理处打印：卫振校对：傅军浙江大学实验动物中心浙江大学实验动物中心关于中心“屏障级实验动物区”小鼠异常事故处理的通知中心各部门：2019年5月24日，段树民教授课题组反映有一盒动物非正常死亡，8盒基因修饰小鼠标签牌混乱。
经调查，证实由于中心工作人员在药物净化时疏忽，导致其中一盒动物窒息而亡，部分基因修饰小鼠标牌调换。
为严肃纪律，提高员工的责任心，对此事故处理如下：1、周天华作为动物中心主任，傅军、丁贤明作为具体负责人，有监管不严之责，扣发当月奖金。
2、倪瑛、吴凯是该事故的直接责任人，且发生事故后又不及时上报，问题严重，扣除五、六月奖金；3、朱杰作为该动物的实际管理者，责任心不强，管理不到位，扣除当月奖金；4、朱建作为小组长，领导不力，巡查不严，扣除当月奖金。
望中心全体员工，以此为鉴，加强责任心，杜绝再犯同样错误。
浙江大学实验动物中心二O一一年五月三十日主题词：质量惩罚通知抄报：医学部、实验室与设备管理处打印：卫振校对：傅军。
厦门大学实验动物中心
厦门大学实验动物中心《实验室使用xx》各课题组：翔安校区实验动物中心一期建筑面积7050m2，其中屏障环境4000m2、普通环境400m2,辅助区1900m2,二期建筑面积6500m2,其中屏障环境3800m2、辅助区2700m2,可饲养SPF级小鼠、大鼠，无菌级小鼠和普通级兔、豚鼠、小型猪、犬、猴等实验动物。
为了规范实验动物等级，合理使用功能实验室，避免实验动物的交叉污染，保证各课题组动物实验的正常进行，对进入实验动物中心的课题组和实验人员作出如下规定。
1 、所有实验人员必须遵守国家《实验动物管理条例》、《实验动物国家标准》、《实验动物伦理审查指南》和《厦门大学实验动物管理办法（试行）》等相关标准和政策规定。
2、非本校课题组必须提供课题组长签字和加盖本单位公章的《实验室使用须知》后方能网上成功注册，随后实验人员方可向本课题组长注册。
本校课题组免交《实验室使用须知》。
未获得注册通过的课题组不得安排实验。
3、实验人员进入实验室前必须参加实验动物中心每月统一组织的专业理论知识培训、闭卷考试、环境设施现场培训，经实验动物中心考核合格后发放门禁卡（准入证）。
办理相关证件时需出示学生证、身份证等相关证件。
4、实验人员必须如实告知身体健康状况，如传染性疾病如肝炎、结核携带者，或者真菌等皮肤病患者均不得申请进入实验动物中心。
5、实验动物中心开放时间：正常工作日8:00〜18:00,周末、寒暑假及法定节假日9:00〜17:00。
若因实验需要，带上本课题组长签字的书面材料向实验动物中心有关老师申请,同意后方可进入实验室。
6、屏障环境SPF级实验动物室必须饲养具有相应生产许可证和质量合格证的实验动物。
普通环境饲养的动物必须从具有实验动物生产许可证或相关行业管理部门颁发的合法营业执照单位引进，大型动物必须提供动物烈性传染病和人畜共患病的免疫接种证明。
对于进口动物或质量来源不明的动物必须经隔离检疫净化合格后才能引进种源繁殖室。
中山大学实验动物中心 第9期动物实验资格证考试合格人员
10 20070985 丁庆峰 男
中山医学院
(东)2013-09-009
12 09110649 高思 女
药学院
(东)2013-09-010
13 10353030 观荣贵 男
药学院
(东)2013-09-011
14 10212927 郭喆霏 女
药学院
(东)2013-09-012
15
郭小东 女 广东省第二人民医院 (东)2013-09-013
43 12110776 杨哲 男
工学院
ห้องสมุดไป่ตู้
(东)2013-09-037
45 12110797 于霏 女
中山医学院
(东)2013-09-038
46 12212620 于晓璐 女
生命科学学院 (东)2013-09-039
47
章津铭 男
澳门大学
(东)2013-09-040
48 12213646 张绍阳 男
中山医学院
16 12110558 郝建伟 男
生命科学学院 (东)2013-09-014
18 10353104 黄若谷 女
药学院
(东)2013-09-015
19 10353106 黄焱 男
药学院
(东)2013-09-016
22 10353040 劳石坚 男
药学院
(东)2013-09-017
23 11110804 李俊 男
38 11111157 吴翀 男
生命科学院
(东)2013-09-032
39 10353042 吴孟玲 女
药学院
(东)2013-09-033
40 200920095074 吴琼儒 女
华南理工大学 (东)2013-09-034
动物中心动物实验规定 (试行)
校内﹡
2.5
3.0
6
学校南京附院
2.5
3.0
6
校外
4
5
8
﹡ 校内（以校内转账方式为准）学校补贴小鼠0.5元∕笼∕ 天，大鼠2.0元∕笼∕天
STEP 2 进鼠手续
1、填写“动物饲养（进动物）申请表” 2、转基因、净化小鼠转移的基本流程 3、净化前小鼠进入一楼Holding室的基本流程
1、填写“动物饲养（进动物）申请表”
繁殖到第10代时安排了冷冻 • +：前的代数表示某品系在原保种单位的代数，+后的代数表示该品
系在NJMU繁育的代数。例如C57BL/6(F73+26) • ？：如果某品系在其原保种单位的代数未知，可用？表示，后面可
+该品系在NJMU的保种代数。例如C57BL/6(？+F10)
代数
• NE：是指回交的子代小鼠与回交的上一代小鼠交配。 – 例如：N5代的小鼠，之后用N5的鼠和N4的鼠互相配，则后代为NE5； – 若是此时用N5鼠互相兄妹配，则后代为N5F1。
目录
• 1、动物设施介绍 • 2、动物饲养流程 • 3、小鼠基本知识 • 4、笼牌使用 • 5、实验人员管理
动物设施介绍
PART ONE
设施分类
设施平面
• 1、江宁一楼 • 2、江宁三楼
动物饲养流程
PART TWO
STEP 1 饲养手续
1、伦理申请 :8080/ethical/control/ main
实验人员进出管理规定
如需进入动物设施，需在中心入口处按取指纹，确认进入权限（江宁 一楼；江宁三楼B区；
江宁三楼C、D区），凭相关证件（上岗证、准入证、学生证）换取 储物柜钥匙；
动物中心动物进实验室流程
动物中心动物进实验室流程Animal testing is a highly controversial topic in today's society. On one hand, it is seen as a necessary evil for scientific and medical progress. On the other hand, it raises ethical concerns about the treatment of animals and the validity of using them as test subjects. 动物实验在当今社会是一个备受争议的话题。
一方面，它被看作是科学和医学进步的必要之恶。
另一方面，它引发了关于动物待遇和将它们用作试验对象的道德关切。
When it comes to the entry of animals into a laboratory for experiments, the process can be quite complex. Animals are first obtained from breeders or suppliers and transported to the laboratory where they are housed and cared for before the experiments begin. 在动物进入实验室进行实验时，整个流程可能会非常复杂。
动物首先会从养殖者或供应商处获得并运输到实验室，在实验开始之前被安置和照顾。
The first step in the process is obtaining the animals from a breeder or supplier. This involves selecting the appropriate species and obtaining the necessary permits and paperwork. The animals arethen transported to the laboratory in a manner that ensures their safety and well-being during transit. 过程中的第一步是从养殖者或供应商处获得动物。
动物实验报告
动物实验报告实验动物学实验报告学院：学号：姓名时间：实验⼀：⼩⿏实验⼀、实验⽬的1、掌握⼩⿏抓取、固定的基本⽅法；2、掌握⼩⿏的雌雄鉴别⽅法；3、掌握⼩⿏的标记⽅法；4、掌握⼩⿏的基本采⾎技术；5、掌握⼩⿏的常⽤给药⽅法；6、掌握⼩⿏的解剖⽅法，熟悉内部脏器的⾃然位置；⼆、实验材料1、实验动物：每组两只雌⿏，两只雄⿏；2、实验器械及试剂：⿏笼；⼩⿏固定器和⼩⿏固定板；眼科剪；眼科镊；解剖⼑；1ml注射器；⽑细玻璃管；灌胃针；苦味酸染料；葡萄糖液；2%⽔合氯醛；三、实验内容及⽅法1、⼩⿏的抓取和固定抓取时先⽤右⼿抓取⿏尾提起，置于⿏笼或实验台向后拉，在其向前爬⾏时，⽤左⼿拇指和⾷指抓住⼩⿏的两⽿和颈部⽪肤，将⿏体置于左⼿⼼中，把后肢拉直，以⽆名指按住⿏尾，⼩指按住后腿即可。
这种在⼿中固定⽅式，能进⾏实验动物的灌胃、⽪下、肌⾁和腹腔注射以及其他实验操作。
2、⼩⿏的雌雄鉴别雄⿏的阴囊明显，雄⿏可见阴道开⼝和五对乳头。
幼⿏或仔⿏则主要从外⽣殖器与肛门的距离判定，近者为雌，远者为雄。
另外，雌⿏肛门和⽣殖器之间有⼀⽆⽑⼩沟，⽽雄⿏则在肛门和⽣殖器之间长⽑。
3、⼩⿏的标记⽅法1）⽿孔法⽤⽿号钳在⽿上打洞或者⽤剪⼑在⽿边缘剪缺⼝，左⽿为⼗位，右⽿为个位。
2）剪趾法适⽤于出⽣⼀周以内新⽣仔⿏；3）染⾊法⽤⽑笔将苦味酸涂在动物的不同部位，注意逆着⽑发⽣长⽅向刷。
4、⼩⿏的基本采⾎1）剪尾采⾎当所需⾎量很少时采⽤本法。
固定动物并历出⿏尾，将⿏尾在45℃温⽔中浸泡数分钟，也可⽤酒精棉球涂擦，使局新⾎管扩张。
将⿏尾擦⼲，再⽤⼑⽚剪去1-2mm，让⾎液滴⼊盛器或直接⽤移液器吸取，同时⾃尾根部向尾尖按摩。
取⾎后，先⽤棉球压迫⽌⾎并⽴即⽤6％液体⽕棉胶涂于尾巴伤⼝处，使伤⼝外结⼀层⽕棉胶薄膜，保护伤⼝。
也可采⽤切割尾静脉的⽅法采⾎，三根尾势脉可交替切割，并⾃尾尖向尾根⽅向切割，每次可取0.2～0.3ml⾎，切割后⽤棉球压迫⽌⾎。
动物实验中心寄养动物的管理制度
动物实验中心寄养动物的管理制度
1、动物实验应在实验动物观察室进行，严禁在饲养和生产区域进行试验，所做的实验应符合该动物实验设施标准。
2、凡做动物实验的科室，实验人员必须事先与办公室联系，须填写《动物实验审批表》，并取得同意后，方能购进动物。
3、凡进入饲养室的动物，须带上耳标或其他个体标记，写好笼卡，标明科室，并在观察室做好登记，包括试验名称、动物名称、数量、来源、等级及饲养日期等。
4、饲养人员应同实验人员共同安排好实验动物饲养笼位，单方未得到对方允许，不能擅自串换笼具。
饲养人员饲养过程中，不得随意串换笼位和动物，有死亡动物应及时通知办公室负责人员，并通报实验人员。
5、动物实验的观察及试验后的动物处理，由实验人员负责，本单位不负责保管实验标本，私自放置丢失概不负责。
6、饲养人员如发现动物异常，应及时通知办公室负责人员和实验人员。
7、实验人员应做好试验使用区域的清洁卫生，每次试验后要做好消毒灭菌工作。
8、饲养室严禁处死、解剖动物。
9、实验人员应做好动物尸体的处理工作。
10、饲养人员应负责动物饲养工作环境卫生和防疫工作。
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关于实验动物中心近期动物实验
岗前培训的通知
各学院、部、处、室及附属单位：
为进一步完善我校动物实验科学研究的规范化与标准化,近期，校实验动物中心计划安排4次岗前培训及1次动物实验基本操作培训，现将培训相关事宜通知如下：
一、岗前培训
1. 培训时间：第14、15、19、20周的周三下午14:30-16:30。
2. 培训内容：动物实验室的规章制度及动物实验室的操作流程。
3. 培训地点：实验动物中心示教室。
4. 培训对象：即将到实验动物中心开展相关实验动物研究工作并且没有参加过培训的人员（包括参与课题的实验人员）。
5. 培训人数：25人。
6. 培训费用：免费。
二、动物实验基本操作（自选）
1. 培训时间：第18周的周三下午14:30-17:00。
2. 培训内容：大（小）鼠的抓取和保定、给药（灌胃）、采血等。
3. 培训地点：实验动物中心取材实验室。
4. 培训费用：收取实验动物材料费、耗材费。
（1）实验动物材料费：大鼠58元/只，小鼠16元/只；
（2）耗材费（一次性手套、口罩）3元/人；
（3）合计：77元/人。
实验动物中心提供费用证明，自行前往校财务处缴纳。
5. 培训要求：自带实验工作服。
三、报名要求
1. 请各课题组根据工作实际情况安排培训，在培训日期前3天到实验动物中心报名，联系人：林玮，联系电话：22861532。
2. 如果报名人数超过培训人数上限，中心将按照报名顺序安排培训，并根据实际报名情况增开培训班次。
附件：培训计划表
实验动物中心
2019年5月20日
附件：
培训计划表。