常用动物麻醉用量
动物常用麻醉药及应用
动物常用麻醉药及应用舒泰麻醉剂使用说明书简要说明：舒泰是一种新型分离麻醉剂，它含镇静剂替来他明和肌松剂唑拉西泮。
在全身麻醉时，舒泰能够保证诱导时间短、极小的副作用和最大的安全性。
在经肌肉盒静脉途径注射时，舒泰具有良好的局部受耐性。
舒泰是一种非常安全的麻醉剂。
适用范围用于犬、猫和野生动物的保定及全身麻醉。
应用剂量麻醉前给药注射舒泰前15分钟按以下剂量给予硫酸阿托品犬：0.1mg/kg ，皮下注射猫：0.05mg/kg ，皮下注射诱导麻醉剂剂量犬：7—25mg/kg ，肌肉注射5—10mg/kg ，静脉注射犬：10—15mg/kg ，肌肉注射5—7.5mg/kg ，静脉注射麻醉维持时间：根据剂量不同，从20到60分钟不等。
维持麻醉剂量建议给予初始剂量的1/3—1/2 ，静脉注射。
野生动物：使用详细说明灵长类动物（平均值）肌肉注射..........................4—6mg/kg 。
猫科动物（平均值）肌肉注射..........................4—7.5mg/kg 。
犬科动物（平均值）肌肉注射..........................5—11mg/kg 。
熊科动物（平均值）肌肉注射..........................3.5—8mg/kg 。
牛科动物（平均值）肌肉注射..........................3.5—33mg/kg 。
灵猫科动物（平均值）肌肉注射..........................2.5—6mg/kg 。
小鼠（平均值）肌肉注射..........................50—75mg/kg 。
大鼠（平均值）肌肉注射..........................50—75mg/kg 。
豚鼠（平均值）肌肉注射..........................20mg/kg 。
仓鼠（平均值）肌肉注射..........................50mg/kg 。
动物麻醉剂及麻醉剂量
动物麻醉方法及给药剂量【1】一、动物麻醉的目的1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。
甚至引起动物死亡或休克。
2.防止动物伤害实验操作者。
3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。
二、麻醉的类型和方法1.全身麻醉的方法：吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。
常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。
1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。
动物先兴奋后抑制，自行倒下。
当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。
如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。
如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。
2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。
经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。
4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。
3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。
一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。
开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。
犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。
乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。
活鱼麻醉长途运输
活鱼麻醉长途运输
用药物将鱼麻醉，使其呈类似休眠状态，不能游泳和跳跃，呼吸频率减慢，代谢降低，耗氧减少，这样可以大密度长途运输活鱼。
选用药物的原则是对鱼药效高；对人无害；易缓解苏醒；价廉易购；使用方便，易溶于水；低温下有效。
这里简单介绍几种在活鱼运输中的麻醉剂及其用法。
1、巴比妥钠把活鱼放入13.3×10-6的巴比妥钠溶液内运输，不久鱼就呈昏迷状态，腹部向上，呼吸减慢，不游动，在水温10摄氏度时，能麻醉10多个小时，放入清水后5―10分钟就能缓解苏醒。
2、苯巴比妥纳可按每公斤体重1.11毫升肌肉注射。
鱼经麻醉后，仰浮于水面，呼吸缓慢。
如途中发现鱼有跳跃冲撞时，表示药量不足，应再予以注射适当药剂，达到麻醉为止。
用此法运输，药效时间可达8―20小时。
3、乙醚(或95%酒精)用药棉沾乙醚(体重2-3公斤鱼用0.5-0.8毫升)塞入鱼口内，2-3分钟后鱼就麻醉，再将鱼放入清水桶里或包在水草中或湿布内运输，一次可麻醉2-3小时，效果亦好。
- 1 -。
犬、猫全身麻醉药物的使用方法
犬 、猫 全 身 麻 醉 药 物 的 使 用 方 法
张 宇 （吉林省九台市畜牧总站 吉林九 台 １５０３００）
１ 犬麻 醉 舒 泰 （含镇静剂替来他 明和 肌松 剂唑拉西泮 ），手术前先
皮下注射硫酸阿托品 ，０．１毫克 ，千克 ，１５分钟后注射舒泰 。诱 导剂量 ：７～２５毫克 ／千克 ，肌 肉注射 ；或 ５～１０毫克 ，千克 ，静脉 注射 。麻 醉持 续时间 ：根据 以上剂量 ，持 续 ２Ｏ～３０分钟 补充注 射 ：第 １次剂量的 １／２～１，３，最好是静脉注射 。
硫 喷妥钠 。静脉给药 ，２５毫 克 ，千克 。通常将硫 喷妥钠稀 释成 ２．５％的溶 液 ，按体重 折算 总药量 ，先 将 １／ ２ 或是 ２／３以较 快 的速 度静 脉注射 ，大约为 １毫升 ／秒 。在注射过程 中，动物很 快呈现肌松 ，全身松弱无力 ，眼睑反射 减弱 ，呼 吸均 匀平稳 ，睡 孔缩小 。剩余量需较慢给药 ，并密切注意观察动物在麻醉后的 临床表现 ，认 为 已达所需要 的深 度时 ，应 即停 止给药 。如果 静 脉 注射给药 过快 ，或是剂 量偏大 ，会 严重抑 制呼吸 ，甚至 会呼 吸停止 。故 为防止意外 ，应准备好 呼吸兴奋剂 以及人工呼吸装 置 。一 旦发生呼吸抑制 ，人工支持 呼吸比用 呼吸兴奋药物更有 实 际意义 。通常如上述一次麻醉 给药 ，可 以持续 １５～２５分 钟 ， 其恢 复期稍长 ，可达 ２￣３小 时。在ＩＩ缶床具体应用时 ，有时为 了 延长麻 醉的时间 ，常把静脉注射针 （头皮针 因连有软管较 为方 便 ）留置在静 脉内 （注意应 固定好 ），当动物有所觉 醒骚 动或 有 叫声时 ，再从静脉适量推人药 物 ，当然要 观察 动物体态 反应 以决定给药 的多少 ，用这种反复 多次给药的方式 ，则可 以延 长 所需 的麻醉时间 ，能更好地配合完成手术 。
家兔麻醉剂量
家兔麻醉剂量《家兔麻醉剂量》一、常用麻醉药物家兔可以使用甲强龙（Ketamine）作为麻醉药物，常用剂量为80-110mg/kg。
二、小动物常用麻醉剂量1.甲强龙（Ketamine）：80-120mg/kg2.瑞芬太尼（Ropivacaine）：0.2-0.4ml/kg3.阿片类（opiates）：5-10mg/kg4.咪唑胺（Midazolam）：0.1-0.2mg/kg5.布比卡因（Bupivacaine）：0.3-0.5ml/kg三、用药说明1.甲强龙（Ketamine）：应按体重以80-120mg/kg计算，用醋酸甲强龙可混入2-5%糖水或0.9%氯化钠溶液或果糖溶液，每次给药量不超过1ml，用针注射，肌肉注射，耳静脉注射，口服均可，每次服药间隔不应少于2小时。
用药后可观察到家兔微微发抖，但不会引起太多痛苦。
2.瑞芬太尼（Ropivacaine）：应按体重以0.2-0.4ml/kg计算，必须在0.9%氯化钠溶液或0.2%碳酸氢钠溶液中稀释，以减少刺激性，降低副作用。
每次给药量不超过1ml，可静脉或肌肉注射，每次服药间隔不应少于2小时。
3.阿片类（opiates）：应按体重以5-10mg/kg计算，给药量不超过0.3ml，可静脉注射，也可肌肉注射，每次服药间隔不应少于2小时。
4.咪唑胺（Midazolam）：应按体重以0.1-0.2mg/kg计算，可静脉注射，也可肌肉注射，每次给药量不超过0.2ml，每次服药间隔不应少于2小时。
5.布比卡因（Bupivacaine）：应按体重以0.3-0.5ml/kg计算，必须稀释，稀释溶液可使用0.9%氯化钠溶液或0.2%碳酸氢钠溶液，可静脉或肌肉注射，每次给药量不超过1ml，每次服药间隔不应少于2小时。
四、注意事项1、用药前应全面检查家兔的体温、心率、呼吸率等，并合理安排麻醉剂量。
2、用药应在专业人员的指导下进行，用药完毕后应定期进行观察，及时发现异常反应，采取必要的措施。
动物麻醉技术
--硫酸镁为导泄、利胆、降压、抗惊厥药。口服不易吸收， 并使肠内容物渗透压升高，水分吸收减少，肠容积增大，刺激肠蠕动而泄下。注射给药可使血中Mg2+增加，它能阻止神经末梢释放乙酰胆碱，使骨骼肌松弛。本实验通过不同给药途径对硫酸镁作用的影响。
速眠新麻醉剂
---肾损伤模型
做药理学时，按照“章蕴毅主编.药理学实验指导.人民卫生出版社2007.8北京”实验3，做的。
An animal model of lung transplantation: damage, protection and immune response
---乳腺癌模型
有两条需要大家注意：1、术后肺不张不好处理。2、用大鼠的话，相关抗体偏少可能会给术后的研究带来不利，建议改用小鼠做模型。个人认为，从大鼠向小鼠过度约需一到两周时间。
---30例大鼠肺移植手术成功率为90%，移植后存活率100%，左供肺摘取需时(3±1) min，供肺完成体外套管时间分别为：肺动脉(2.0±0.5) min、肺静脉(3±1) min、支气管(2.0±0.5) min，供受体动静脉和支气管套管吻合时间分别为：肺动脉(4±1) min、肺静脉(8±3) min、支气管(2.0±0.5) min，总手术时间(55±10) min。提示改良的三袖套技术建立大鼠肺移植模型操作供稳定可靠的动物模型。
---煮沸消毒后的水合氯醛溶液可分解为酸性液，注入后可使动物发生酸中毒。因此不能高压灭菌，主要按照以下配置方法我想不会感染的。
其方法如下：
1、溶媒：通常用生理盐水，最好是5～l0％葡萄糖注射液或5%葡萄糖硫酸镁注射液(5%葡萄糖液l00ml加硫酸镁5g)。
2、浓度：高浓度刺激性大，易引起溶血；低浓度则增加注入药液量而加重心肺负担。临床常用浓度为5～10％。
实验动物麻醉
实验动物麻醉所有可能引起实验动物疼痛或不适的实验方案都必须使用合适的麻醉剂、止痛剂和镇静剂。
如麻醉剂、止痛剂或镇静剂可能影响实验数据，该实验方案可不使用麻醉剂、止痛剂或镇静剂，但必须在实验方案中予以详细说明，并在实验动物管理委员会批准后方可开展相关实验。
包括动物品系、使用途径、体重、性别、动物健康状况、温度、其它同时使用的药物在内的多种因素影响麻醉剂、止痛剂或镇静剂的使用剂量和有效时间。
因此，在使用麻醉剂时必须时刻监测实验动物的麻醉深度，以防止过度麻醉导致动物死亡或麻醉不足无法缓解动物的疼痛。
足底反射、角膜反射、肌肉紧张和对皮肤夹捏的反应是检测动物麻醉深度的有用指标，在条件许可时，推荐测量动物心率、血压、呼吸频率及体温作为检测动物麻醉深度更为精确的指标。
使用麻醉剂时，一定要注意方法的可靠性，根据不同的动物选择合适的方法。
1．麻醉剂的用量，除参照一般标准外，还应考虑个体对药物的耐受性不同。
一般说，衰弱和过胖的动物，其单位体重所需剂量较小。
在使用麻醉剂过程中，特别是使用巴比妥类药物时，一般应首先使用较小剂量，随时检查动物的反应情况，并逐步提高剂量。
2．动物在麻醉期体温容易下降，要采取保温措施。
相比清醒的动物，麻醉后的动物反应相对迟钝。
因此，推荐使用循环水浴保温垫，不推荐使用照明灯、电加热器等不易控制温度的设备，以免灼伤实验动物。
3．静脉注射麻醉剂发挥作用速度快，静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应,当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
配制的药液浓度要适中，不可过高，以免麻醉过急；但也不能过低，以减少注入溶液的体积。
实验操作涉及腹腔注射时，不应使用腹腔注射麻醉剂。
4．气温较低时，麻醉剂在注射前应加热至动物体温水平。
5．注射麻醉剂前12小时实验动物应禁食，以防止食物回流。
注射前3小时应限制饮水。
6．如需使用抗生素以防止术后感染，手术前1小时应肌肉注射抗生素，并于手术过程中静脉注射抗生素。
动物麻醉方法及麻醉药剂量
常用xx的剂量和用法
1、戊巴比妥钠：
适用于犬、猫、兔时多采用静脉和腹腔注射的方法，静脉时剂量为３０mg/kg常用浓度为３％，用药量为１.０ml/kg，腹腔时剂量为４０-５０mg/kg，常用浓度为３％。
当对象为豚鼠时，用腹腔注射剂量为４０-５０mg/kg常用浓度为２％。
大，小鼠时，用腹腔，剂量为４５mg/kg，常用浓度为２％。
2、氨基甲醛：
主要用于犬、猫、兔采用腹腔和静脉注射的方法，一般剂量为７５０-１０００mg/kg常用浓度为２５％。
3、氨基甲酸乙酯（xx）：
适用于豚鼠和大，小鼠时，多采用腹腔注射的方法，剂量为１３５０
mg/kg，常用浓度为２０％家兔，可以静脉，也可以腹腔注射。
剂量1g/kg。
4、异戊巴比妥：
适用于犬、猫、兔时，如果采用静脉时，剂量为４０-５０mg/kg常用浓度为５％，用药量为０.８-１.０mg/kg，如果采用腹腔和肌肉注射时，剂量为８０-１００mg/kg常用浓度为１０％。
5、硫喷妥钠:
适用于犬、猫、兔时采用静脉和腹腔方法,剂量为25-50mg/kg,常用浓度为2％。
当是大白鼠时,采用静脉和腹腔方法,剂量为50-100/kg,常用浓度为1％。
麻醉时间为15-30min,效力强,宜慢注射。
6、乙醚：
适用于各种动物，采用器官内插入吸入。
(精选)动物麻醉剂及麻醉剂量
动物麻醉方法及给药剂量一、动物麻醉的目的1.清醒状态的动物虽然更加接近其生理状态，但是试验过程中的各种强刺激容易引起动物大脑皮质的抑制，使动物机体发生生理机能障碍影响到实验的结果。
甚至引起动物死亡或休克。
2.防止动物伤害实验操作者。
3.基于人道主义的考虑，麻醉是动物保护所必需采取的措施。
二、麻醉的类型和方法1.全身麻醉的方法：吸入麻醉：吸入麻醉是将挥发性麻醉剂或气体的麻醉剂经过动物的呼吸道进入体内产生麻醉的效果。
常见的麻醉剂有乙醚、安氟醚、三氟乙烷等，其中乙醚因麻醉深度容易掌握、安全、动物容易恢复等优点，使用最为广泛。
1）大鼠、小鼠、豚鼠的乙醚麻醉：将含有乙醚的棉球/纱布放在大烧杯中，将动物放入，封口。
动物先兴奋后抑制，自行倒下。
当动物角膜反应迟钝，肌肉紧张度降低时，即可取出动物。
如果动物逐渐恢复肌肉紧张（挣扎），可重复麻醉一次，待平静后即可开始试验。
如果试验时间较长，可将动物固定在其口鼻处放置含有乙醚的棉球或纱布，并在实验中注意动物的反应，适时追加乙醚的吸入量，以维持麻醉的深度和实践。
2）猫、兔的乙醚麻醉：将动物放进内装含有乙醚的棉球/纱布的麻醉瓶中，封口。
经过1~2min，从动物后腿依次出现麻痹现象，而后失去运动能力，表明动物进入麻醉状态。
4~6min后可以将动物麻醉，如观察到动物倾斜不能站立、跌倒时，说明动物已经深度麻醉，立即取出动物，这时动物肌肉松弛、四肢紧张度降低，角膜反射迟钝，皮肤痛觉消失，可进行试验。
3）犬的乙醚麻醉：首先将犬用绳子绑定，根据犬的大小选择适合的麻醉口罩，将纱布/棉花放到口罩内，加入乙醚。
一人固定犬的前后肢，另一人用膝盖顶住犬的胸颈处，一手捏住头颈（注意力量，防止窒息），将口罩套在犬嘴上。
开始乙醚用量可大一些，之后逐渐减少。
犬开始兴奋后出现挣扎、呼吸不规则现象，而后呼吸逐渐平稳，肌肉紧张度逐渐消失，角膜反射迟钝，对皮肤刺激无反应，此时可开始试验。
乙醚吸入如果出现呼吸窒息应暂停吸入乙醚，等呼吸恢复后在继续吸入。
各种实验动物权威麻醉用量
小鼠()麻醉劑量表：肌肉注射：靜脈注射：皮下注射：腹腔注射：吸入2 。
(K,Hrapkiewicz Iowa State University 1998)大鼠()麻醉劑量表：肌肉注射：靜脈注射：皮下注射：腹腔注射：吸入2 。
(K,Hrapkiewicz Iowa State University 1998)沙鼠()麻醉劑量表：肌肉注射：靜脈注射：皮下注射：腹腔注射：吸入: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2004)2 。
(K,Hrapkiewicz Iowa State University 1998)雪貂()麻醉劑量表：肌肉注射：靜脈注射：皮下注射：腹腔注射：吸入: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2004)2 。
(K,Hrapkiewicz Iowa State University 1998)倉鼠()麻醉劑量表：肌肉注射：靜脈注射：皮下注射：腹腔注射：吸入: 1 。
(K,Hrapkiewicz Iowa State University 1998)天竺鼠( )麻醉劑量表：肌肉注射：靜脈注射：皮下注射：腹腔注射：吸入: 1 。
(K,Hrapkiewicz Iowa State University 1998)兔()麻醉劑量表：肌肉注射：靜脈注射：皮下注射：腹腔注射：吸入: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2004)2 。
(K,Hrapkiewicz Iowa State University 1998)犬()麻醉劑量表：肌肉注射：靜脈注射：皮下注射：腹腔注射：吸入: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2004)靈長類()麻醉劑量表：肌肉注射：靜脈注射：皮下注射：腹腔注射：吸入: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2004)2 。
(K,Hrapkiewicz Iowa State University 1998)。
常用的麻醉剂和麻醉方法(人医和动物均有)
常用的麻醉剂和麻醉方法常用的麻醉剂大致分为三类，即挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂和中药麻醉剂。
麻醉方法一般分为吸入、注入（静脉、皮下、肌肉、腹腔等）、口服、灌胃等。
麻醉药物应用的方法和剂量如下：一最常用的挥发性麻醉药物为乙醚开放麻醉法是用脱脂棉浸湿乙醚后，小动物如大鼠、小鼠可将头部放入蘸有乙醚棉球的广口瓶内，4～6分钟后即处于麻醉状态。
适用于各种实验动物。
如实验过程较长，可在其鼻部放棉花或纱布，不时滴加乙醚维持，也可用乙醚先麻醉后再用非挥发性麻醉剂维持麻醉。
较大动物可用麻醉口罩滴药法。
封闭麻醉法是将小动物置于一封闭容器中，该容器中预先置于浸泡乙醚之棉球，乙醚挥发后使动物吸入而置麻醉。
在给药过程中必须随时观察动物的变化，如果发现动物的角膜反射消失，瞳孔突然放大，应立即停止麻醉。
防止麻醉过深，引起死亡。
常用全身麻醉剂：乙醚乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用。
其麻醉量和致死量相差大,所以其安全度大。
但由于乙醚局部刺激作用大,可刺激上呼吸道粘液分泌增加；通过神经反射还可扰乱呼吸、血压和心脏的活动，并且容易引起窒息，在麻醉过程中要注意。
但总起来说乙醚麻醉的优点多，如麻醉深度易于掌握，比较安全，而且麻醉后恢复比较快。
其缺点是需要专人负责管理麻醉，在麻醉初期出现强烈的兴奋现象，对呼吸道又有较强的刺激作用，因此，需在麻醉前给予一定量的吗啡和阿托品(基础麻醉)，通常在麻醉前20－30分钟，皮下注射盐酸或硫酸吗啡(每公斤体重5～10mg)及阿托品(每公斤体重0.1mg)。
盐酸吗啡可降低中枢神经系统兴奋性，提高痛阈，还可节省乙醚用量及避免乙醚麻醉过程中的兴奋期。
阿托品可对抗乙醚刺激呼吸道分泌粘液的作用，可避免麻醉过程中发生呼吸道堵塞，或手术后发生吸入性肺炎。
进行手术或使用过程中，需要继续给予吸入乙醚，以维持麻醉状态。
慢性实验预备手术的过程中，仍用麻醉口罩给药，而在一般急性使用,麻醉后可以先进行气管切开术,通过气管套管连接麻醉瓶继续给药。
动物麻醉剂如何使用才符合伦理
动物麻醉剂如何使用才符合伦理实验动物常用的麻醉剂注射性麻醉剂注：IM：肌肉注射；IP：腹腔内注射；IV：静脉注射；SQ：皮下注射；PO注射用麻醉剂指的是经静脉、皮下、肌肉、腹腔等途径注入产生全麻作用的药物。
常用的注射用麻醉剂有戊巴比妥钠、硫喷妥钠、地西泮、氯胺酮等。
氯胺酮(Ketamine)氯胺酮广泛应用于所有动物物种的麻醉，还具有镇痛作用。
然而氯胺酮不适合单独作为手术麻醉药物，常与其它麻醉剂联合使用。
氯胺酮与α⁃2⁃肾上腺素能激动剂（甲苯噻嗪）联合使用，可增加镇静和镇痛作用。
与苯二氮平类药物（地西泮）联用可缓解肌肉僵硬症状。
使用阿托品可以预防使用氯胺酮导致的唾液分泌物增加和心律失常。
戊巴比妥钠（Pentobarbital Sodium）属于中效巴比妥类镇静催眠药（3-6小时），随用量的增加逐渐产生镇静、催眠和抗惊厥作用，大剂量使用时可产生麻醉作用。
对呼吸中枢有较强的抑制作用，安全范围较小，麻醉过量易导致动物死亡。
以戊巴比妥钠（50 mg / kg, IP）麻醉小鼠时，有足够的镇静作用，但是镇痛效果差。
而如果增加麻醉剂量（70 mg / kg, IP）虽可以提供足够的镇痛作用，但是与之相关的死亡率风险和血流动力学不稳定性增加。
因此，巴比妥类药物通常只适合终末阶段大剂量使用并且不准用于疼痛控制，除非和阿片类或非甾体类抗炎药共同使用。
水合氯醛(Chloral Hydrate)水合氯醛是一种催眠药、抗惊厥药，为白色或无色透明的结晶，有刺激性气味。
具有镇静、催眠和抗惊厥作用。
较大剂量有抗惊厥作用，大剂量可引起昏迷和麻醉。
麻醉过量会导致延髓呼吸中枢抑制，引起死亡。
水合氯醛对心血管系统影响大，可引起严重的心律失常。
目前认为水合氯醛适合于催眠而非麻醉，动物手术所需麻醉剂量的水合氯醛不能提供足够的镇痛作用，还会导致显著的呼吸抑制。
20%的水合氯醛具有很强的刺激性，可能会造成大鼠肠梗阻、腹膜炎以及胃溃疡等，因此不推荐存活动物实验使用水合氯醛腹腔麻醉。
各种实验动物权威麻醉用量
小鼠(mouse)麻醉劑量表IM：肌肉注射IV：靜脈注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2004)2.Clinical laboratory animal medicine。
(K,Hrapkiewicz Iowa State University Press1998)大鼠(Rat)麻醉劑量表IM：肌肉注射IV：靜脈注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2004)2.Clinical laboratory animal medicine。
(K,Hrapkiewicz Iowa State University Press1998)沙鼠(Gerbil)麻醉劑量表IM：肌肉注射IV：靜脈注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2004)2.Clinical laboratory animal medicine。
(K,Hrapkiewicz Iowa State University Press1998)雪貂(ferret)麻醉劑量表IM：肌肉注射IV：靜脈注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.實驗動物管理與使用指南。
(中華實驗動物學會出版2004)2.Clinical laboratory animal medicine。
(K,Hrapkiewicz Iowa State UniversityPress1998)倉鼠(Hamster)麻醉劑量表IM：肌肉注射IV：靜脈注射SC：皮下注射IP：腹腔注射Inhalation：吸入Reference: 1.Clinical laboratory animal medicine。