密度梯度离心法PPT课件
药品生物技术《11等密度梯度离心法》
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等密度梯度离心技术典型实验和运转参数
样品
样品密度 转头 g/cm3
CsCl浓度 转速 g/cm3
时间/h 温度 /℃
DNA(E.coli) 1.521.57
DNA(噬菌体) 1.48
SW50.1
1.5
Trpe50.70 1.5
45,000 30
20
45,000 32
20
DNA(Microco 1.70 ccusluteus)
Trpe65
1.6
50,000 32
20
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密度梯度离心与等密度离心的区别
密度梯度离心法
等密度离心法
沉降速度主要依赖于颗粒的形状和大小。
沉降平衡主要依赖颗粒的密度,与形状和大 小无关。
离心时间较短,待大颗粒到达管底前停止离 离心时间与液柱长短有关,一般16~18h。
一些梯度物质及应用
梯度物质
溶剂 最大密度
一般用途
白蛋白 CsCl Cs2SO4 右旋糖酐(M.W.10,000) Flcoll(聚蔗糖) 甘油 Metrizamide(泛影菊胺)
H2O H2O H2O H2O H2O H2O H2O
KBr
H2O
NaBr 蔗糖(66%)
NaI
H2O H2O H2O
1.35 1.91 1.26 1.13 1.17 1.26 1.46
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注意点
• 离心时间要长。 • 可用角式转头或水平式转头。 • 粒子密度相近或相等时不宜用 • 密度梯度溶液中要包含所有粒子密度。
• 铯盐浓度过高和离心力过大时,铯盐会沉淀管底,严重时会造成事 故,故等密度梯度离心需要专业人员经严格计算确定铯盐浓度、离 心机转速和离心时间。
生化技术第二章 离心分离PPT教学课件
一 糖类的化学检测
糖类包括多糖、双糖、单糖 单糖和某些双糖具有游离羰基——还原糖 多糖和蔗糖等无还原性——非还原糖 糖类化学检测主要是利用游离羰基的还原
性质,与试剂(氧化剂)进行氧化还原反 应而进行测定的。
非还原糖必须转化为还原糖再进行测定
用途:分离细胞、细胞碎片、培养基残渣及粗 结晶等较大颗粒
2高速离心机 1*104g~2.5*104 r/min ,R.C.F 1*104g~105g
用途:分离各种沉淀物、细胞碎片及较大的细 胞器等
高速冷冻离心机
3 超速离心机
2.5*104g~8*104 r/min ,R.C.F 5*105g或更高 结构:离心管帽、冷冻装置和温控系统、真空
第二章 离心分离
借助离心机旋转所产生的离心力,使不 同大小和不同密度的物质分离的技术
细胞的收集、细胞碎片和沉淀的分离等 常用离心分离
超速离心技术已成为分离、纯化、鉴别 和各种生物大分子的重要手段之一
一 离心机的种类与用途
转速分:常速(低速)、高速和超速
1 常速离心机
<8000r/min, R.C.F<1*104g
定磷试剂,45 ℃水浴25min,冷却至室温测OD650 无机磷标准液作标准曲线
(3)核酸含量的计算 一般DNA含磷9.5%,RNA含磷9.2%, RNA量=(总磷量-无机磷量)×10.9 DNA量= (总磷量-无机磷量)×10.5
2 二苯胺法测定DNA含量
DNA中的2-脱氧核糖在酸性环境中与二苯胺 试剂一起加热产生蓝色反应,在595nm处有 最大吸收峰。在40~400μ g范围内,OD595与 DNA浓度成正比。少量乙醛可提高反应灵敏 度。
离心原理PPT课件
1. 在离心管中加入适量淋巴细胞分离液。
2. 取肝素抗凝静脉血与等量Hank‘s液或RPMI1640 充分混 匀,用滴管沿管壁缓慢叠加于分层液面上,注意保持清 楚的界面,水平离心2000rpm×20分钟。
3. 离心后管内分为三层,上层为血浆和Hank‘s液,下层主 要为红细胞和粒细胞,中层为淋巴细胞分离液,在上、 中层界面处有一以单个核细胞为主的白色云雾层狭窄带 ,单个核细胞包括淋巴细胞和单核细胞。此外,还含有 血小板。
Ø 分离、纯化样品; Ø 对已纯化的样品进行结构和性质的分析。
.
2
一、离心的一般原理
颗 颗粒的密度、形状、大小
粒
运 液体介质的密度、粘度和重力场
动
的 的强度
方
向 悬浮颗粒在液体介质的扩散运动
和
速
颗粒越小,则沉降越慢,
度
扩散. 现象越严重。
3
1、离心力和相对离心力
离心力(centrifugal force,F)
.
9
离心机的构造
†转头 †驱动装置 †速度控制系统 †冷却装置 †真空装置 †光学检测系统
preparative
ultracentrifuge
.
10
离 心 转 头
a 水平转头
b 角式转头 c 垂直转头
角度在14-40℃ 之间
.
11
实验中常用的是普通离心机(转速一般 不高于4000rpm),用于分离血清和 沉淀细胞、大的沉淀物等。
等特性的影响。
†预计沉降时间;
†测定物质相对分. 子质量。
6
3、沉降速度(sedimentation velocity, v)
沉降速度是指在离心力作用下,单位 时间内颗粒沉降的距离。
实验二 密度梯度离心法分离提纯叶绿体及叶绿体荧光观察
轻轻吸取上清液。
5. 先将50%蔗糖溶液0.4ml加入离心管,再取 15%蔗糖溶液0.4ml小心沿管壁缓缓注入, 不能搅动50%蔗糖液面,使两种溶液界面 可见,制成密度梯度。
三、实验用品
1. 材料:新鲜菠菜叶 2. 器材:光学显微镜、台式高速冷冻离心机,
研钵、剪刀、托盘、玻皿等 3. 试剂: (1)匀浆介质(0.25 mol/L蔗糖、
0.05 mol/L Tris-HCI缓冲液,pH7.4)(2) 50%蔗糖溶液,(3)15%蔗糖溶液。
四、实验步骤
1. 洗净菠菜叶,尽可能使它干燥,去掉叶柄、 主脉后,称取2~3g,剪碎置研钵中。
6. 加入0.4ml上清液,严格平衡离心管后,用 水平转头8000r/min离心,20min。
7. 用滴管轻轻吸出界面处的溶液,滴于载玻 片上,盖上盖玻片后,显微镜下观察。另 取部分溶液在暗室内用荧光显微镜直接观 察。(角转取中间靠壁的叶绿体)
五、作业
• 分离的叶绿体是否纯净?试分析原因。 • 实验报告
实验二 密度梯度离心法 分离提纯叶绿体及叶绿体
荧光观察
一、实验目的
• 学习密度梯度法,分离提纯菠菜叶 绿体及叶绿体的荧光显微镜观察。
二、实验原理
❖一个颗粒在离心场中的沉降速率取决于颗 粒的大小、形状和密度,也同离心力以及 悬浮介质的粘度有关;
❖用两种浓度的蔗糖溶液制成的梯度,在 离心条件下,叶绿体和比它沉降系数小 的细胞组分聚集到梯度交界处,而沉降 系数较大的细胞组分沉到离心管底部, 这样,可粗略地分离叶绿体。
叶
密度梯度离心课件
将准备好的样品装入离心管中 ,注意样品装填均匀,避免出
现空洞或偏心。
平衡液加盖
将平衡液加盖到离心管中,注 意液面高度与样品一致,以保 证离心效果和实验结果的准确 性。
离心条件设置
根据样品特性和实验目的,设 置合适的离心速度、时间和温 度等条件。
离心操作
启动离心机,按照设定的条件 进行离心操作。
平衡液不稳定
原因
平衡液不稳定可能是由于平衡液的成分不正确或离心过程中的温度变化引起的。如果平衡液的成分不正确,会导 致样品在离心过程中出现沉淀或聚集。而温度变化则会影响平衡液的密度,进而影响样品的分离效果。
解决方案
在选择平衡液时,应确保其成分与样品相似,并且具有稳定的密度。此外,在离心过程中应保持稳定的温度条件 ,以确保平衡液的密度不会发生变化。
原理
密度梯度离心原理基于样品中各组分的质量和离心力场中的浮力之间的关系。在 离心力场中,样品中的各组分会根据其质量和浮力差异进行迁移,质量较大的组 分会向离心管底部迁移,质量较小的组分会向离心管顶部迁移。
密度梯度离心的应用
01
02
03
分离细胞器
密度梯度离心可用于分离 细胞中的各种细胞器,如 线粒体、叶绿体、溶酶体 等。
清洗去除杂质,提高样品纯度和离心 效果。
平衡液配制
选择合适的平衡液
根据样品特性和实验目的 ,选择合适的平衡液,以 保证离心效果和实验结果 的准确性。
平衡液配置
按照平衡液配方和比例, 准确配置所需浓度的平衡 液。
平衡液过滤
过滤去除平衡液中的杂质 和颗粒物,确保离心效果 和实验结果的准确性。
离心操作
在离心过程中不得随意打开离心腔盖 子,以免气流冲击导致安全事故。
药品生物技术《10密度梯度离心法》
酶(大部分) 2.5-4.5 SW-60 10-40% 60,000 18
DNA(大部分)பைடு நூலகம்22
SW-60 碱性10- 55,000 5 40%
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内容总结
梯度介质:为了使沉降系数比较接近的颗粒得以别离,必须配制好适宜的密度梯度系统。梯度介质:为了使沉降系数比较接近的颗粒得以别离, 必须配制好适宜的密度梯度系统。密度梯度系统是在溶剂中参加一定的溶质制成的。使用最多的是蔗糖密度梯度系统,其适用范围是:蔗糖浓度5~ 60%,密度范围102~3。密度梯度液的制备:一般采用密度梯度混合器进行制备。A:混合室 B:贮液室 C:电磁搅拌器 D:阀门。最重的粒子密度大于 介质密度。5
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• 密度梯度液的制备: 一般采用密度梯度混 合器进行制备。
• 也可将不同浓度的蔗糖溶 液,小心地一层一层参加 离心管中,越靠近管底, 浓度越高,形成阶梯梯度。
密度梯度混合器由贮液室、混合室、电 磁搅拌器和阀门等组成。如图
D
A:混合室 B:贮液室 C:电磁搅 拌器 D:阀门
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离心后形成不同大小不 同形状、具有一定沉降 系数差异的颗粒在密度 梯度溶液中形成假设干 条界面清楚的不连续区 带。
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注意点
• 严格控制离心时间,最大颗粒未到达管底停止离心。
• 最重的粒子密度大于介质密度。 • 样品事先加载在较平缓的密度梯度溶液上。 • 不能用角式转头,只能用水平式转头。
• 梯度介质:为了使沉降系数比较接近的颗粒得以别离,必须 配制好适宜的密度梯度系统。密度梯度系统是在溶剂中参加 一定的溶质制成的。这种溶质称为梯度介质。一般是一种化 学惰性,并能很快扩散的材料。
密度梯度离心
称为电泳
蛋白质在电场中移动的速度和方向主要取决于蛋白质
分子所带的电荷的性质、数量及质点的大小和形状。
外界影响因素:电场强度、溶液的 pH、离子强度及
电渗等
醋酸纤维薄膜电泳:
临床用于血浆蛋白电泳分析。
1. 滤纸桥 2. 电泳槽 3. 醋酸纤维素薄膜 4. 电泳槽膜支架 5. 电极室中央隔板
4.粘蛋白
胃膜素 硫酸糖肽 内在因子 血型物质A和B等
5.胶原蛋白
明胶 氧化聚合明胶、阿胶、新阿胶、冻干猪皮等
6.碱性蛋白质
硫酸鱼精蛋白
7.蛋白酶抑制剂
胰蛋白酶抑制剂(抑肽酶) 大豆胰蛋白酶抑制剂
8.植物凝集素
PHA、ConA(促进淋巴细胞转化)
利用生物分子与配基之间所具有的专一而又可逆的亲
和力,使生物分子分离纯化的技术。这种分离纯化方
法专一性强,理论上可以从复杂的体系中一步提取所
需的物质。
免疫亲和层析:抗原—抗体 凝集素亲和层析:糖—凝集素 金属螯和层析:如NTA-Ni—poly-His
氨基酸、多肽、蛋白质类生物药物
(一)氨基酸及其衍生物 1.AA营养价值及其与疾病治疗关系
(三)蛋白质类生物药物 1.蛋白质激素
①垂体蛋白质激素
生长素(GH) 催乳激素(PRL) 促甲状腺素(TSH) 促黄体生成激素(LH) 促卵泡激素(FSH) 人绒毛膜促性腺激素(HCG) 绝经尿促性腺激素(HMG) 血清性促性腺激素(SGH)
②促性腺激素
胰岛素 ③胰岛素及其它蛋白质激素 胰抗脂肝素 松弛素 尿抑胃素
下丘脑激素 甲状腺激素
胰岛激素
胰高血糖素(不包括胰岛素,因为胰岛素是蛋白) 胰解痉多肽 胃泌素 胆囊收缩素—促胰酶素(CCK—PZ) 肠泌素 肠血管活性肽 抑胃肽(GIP) 缓激肽 P物质 胸腺素 胸腺肽 胸腺血清因子
密度梯度离心法方法
密度梯度离心法方法嘿,咱今儿来聊聊密度梯度离心法!这可是个厉害的手段呢!你想啊,就好比我们要在一堆混杂的东西里找出特别的那一部分。
密度梯度离心法就像是个神奇的魔法棒,能帮我们把不同密度的东西分离开来。
想象一下,有一堆大大小小、轻重不一的东西混在一起,我们要怎么把它们区分开呢?这时候密度梯度离心法就闪亮登场啦!它会弄出一个像楼梯一样的密度变化,从低到高。
然后把那堆东西放进去,哇塞,就看着它们根据自己的密度乖乖地跑到该去的地方啦。
这可不像随便乱分哦!它特别精准,就像一个经验老到的分拣员,绝不会把该分开的弄混。
而且啊,这个方法用途可广啦!在生物学里,能帮我们分离细胞、细胞器啥的。
比如那些小小的细胞,它们有着不同的密度,通过这个方法,就能把它们一个一个地挑出来,是不是很神奇?咱再打个比方,这就像是在一个大混乱的舞池里,根据每个人的体重和身材,把他们分到不同的区域跳舞,让一切都变得井井有条。
密度梯度离心法就是这么厉害,能在微观世界里把那些我们需要的东西精准地分离出来。
你说这得有多牛?它能让我们看到那些平时看不到的细微之处,为科学研究打开一扇扇新的大门。
它就像是一把钥匙,能解开那些复杂谜题的关键一环。
在实验室里,科学家们可喜欢用这个方法啦!他们精心地准备好各种条件,让密度梯度离心法发挥出最大的作用。
就像一个大厨精心烹饪一道美味佳肴一样,每一个步骤都不能马虎。
而且哦,它还不断在发展和进步呢!随着科技的不断进步,密度梯度离心法也变得越来越厉害,能分离的东西也越来越多,越来越精细。
哎呀呀,这密度梯度离心法可真是个宝贝呀!它让我们能更好地了解这个世界,探索那些未知的领域。
难道你不觉得它超级厉害吗?反正我是觉得它厉害得不得了呢!希望以后它能给我们带来更多的惊喜和发现呀!。
离心技术与细胞器分离PPT优秀课件
式中r为离心转子的半径距离,指离心管的 重心至转轴中心间的距离,以cm为单位;g 为地球重力加速度(980cm/sec2);n为转 子每分钟的转数(rpm)。
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离心力的转换列线图
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离心机的基本分类
• 此法一般应用于物质的大小相近,而密度差异较 大时。常用来分离提取核酸、亚细胞器和质粒。
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Density gradient centrifugation
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Density gradient centrifugation
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•
Fc= mω2r
• 其中ω是旋转角速度,以弧度/秒为单位;r 是颗粒离开旋转中心的距离,以cm为单位; m是质量,以g为单位。
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相对离心力(relative centrifugal force,RCF)
• 又称相对离心加速度,是指离心力相当于 重力加速度的倍数。在文献中常用“相对 离心力”或“数字×g”表示。
以上步骤所提到的细胞核不纯,其中混杂有原生质体、线粒 体、叶绿体, 下面采用蔗糖密度梯度离心分离细胞核和叶绿 体。
• 7. 把含有2.3M蔗糖的CSK buffer 3ml加至于离心管底部.
• 8. 再把3ml 60%percoll CSK buffer 轻轻的平铺于7的溶液上 方, 用移液枪加时一定要小心顺着管壁把一溶液平铺于另一 溶液之上. 这时应该能观察到溶液明显的分层现象.
离心机
概述
制备性 普通离心机 冰冻离心机
密度梯度离心PPT课件
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9.4 Isolation and Characterization of Cell Organelles (细胞器) Centrifugation can separate many types of oganelles from cell homogenate, 1st Step: Differential centrifugation
5、沿离心管壁小心缓慢地加入0.6 mL叶绿体匀浆。
6、离心:8000r/min,20min;叶绿体在密度梯度液中间形成带。
7、取叶绿体悬液1滴(10~15uL)滴于载玻片上,加盖玻片后观察。
观察一:在普通显微镜下观察叶绿体形态(油镜);
观察二:在荧光显微镜下观察叶绿体的直接荧光(蓝光)。
8、取一滴悬液在载玻片上,加1滴0.1%吖啶橙荧光染料,加盖玻片。
材料新鲜菠菜10三实验流程min4层纱布过滤于烧杯中8000rmin20min制片菠菜叶洗净去叶梗和主脉匀浆介质50蔗糖溶液04ml15蔗糖溶液04ml06ml10ul111新鲜的嫩菠菜叶洗净擦干后去除叶梗及粗脉称30g于100ml匀浆介质中放入组织捣碎机
实验四 叶绿体的分离与观察
实验五 植物细胞液泡系与 细胞骨架的染色与观察
0.4mL
Байду номын сангаас
0.4mL
匀浆介质
制片 镜检
10 uL
-
8000r/min 20min
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实验步骤
1、新鲜的嫩菠菜叶,洗净擦干后去除叶梗及粗脉,称30g于100mL 匀浆介质中,放入组织捣碎机。
质粒DNA的提取(3)——密度梯度离心法提取质粒DNA
质粒DNA的提取(3)——密度梯度离⼼法提取质粒DNA
质粒DNA⼀般仅占细胞总DNA的1%-2%,⽽且其化学结构与寄主染⾊体DNA之间并没有太⼤差别,所以质粒DNA的纯化须从两者⾼级结构上的差异寻找依据。
在细菌细胞内,共价闭合质粒以超螺旋(即cccDNA分⼦)形式存在,如图4-3所⽰。
在细胞裂解及DNA分离的过程中,如果质粒DNA两条链中有⼀条发⽣⼀处或多处断裂,分⼦就能旋转⽽消除链的张⼒,形成松弛型环状分⼦,称开环DNA (ocDNA)。
如果质粒DNA的两条链在同⼀处断裂,则形成线状DNA (linear DNA. L-DNA)。
当提取的质粒DNA电泳分离时⼀,同⼀质粒DNA其超螺旋构象的泳动速度⽐开环和线状构象分⼦要快。
将含有EtBr(溴化⼄锭)的CsCI溶液加到⼤肠杆菌裂解液中,EtBr分⼦便会通过嵌⼊作⽤⽽结合到DNA链上,导致双螺旋结构发⽣解旋反应。
⼤肠杆菌染⾊体DNA⽚段具有游离的末端⽽易于解旋,从⽽会结合⼤量的EtBr分⼦。
共价闭合环状的DNA分⼦质粒,只能发⽣有限的解旋反应,限制了EtBr分⼦的结合数量,染⾊体DNA⽚段⽐质粒DNA结合更多的EtBr分⼦。
在DNA-EtBr复合物中,结合的EtBr分⼦数量越多,其密度也就越低。
因此,在EtBr达到饱和浓度的条件下,质粒DNA就要⽐线性的染⾊体DNA⽚段具有更⾼的密度。
通过氯化艳密度梯度离⼼之后,它们就会被平衡在不同的位置,从⽽达到纯化质粒DNA的⽬的。
密度梯度离心法取单个核细胞具体方法 ppt课件
95毫
1毫
1毫升 1毫升 1毫升 1毫升
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实验所需试剂的配置方法
七、完全RPMI-1640培养液 不完全1640培养液 灭活胎牛(或新生牛)血清
90毫升 10毫升
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实验补充知识
• 聚蔗糖-泛影葡胺是一种较理想的细胞分层液, 其主要成分是一种合成的蔗糖聚合物称聚蔗糖 (商品名为Ficoll),分子量为40kD,具有高密 度、低渗透压、无毒性的特点。高浓度的Ficoll溶 液粘性高,易使细胞聚集,故通常使用60g/L的低 浓度溶液,密度为1.020,添加比重为1.200的泛 影葡胺(urografin)以增加密度。国外常用商品 Isopaque或Hypaque,故又称Ficoll-Hypaque分 层液,将适量340g/L泛影葡胺加入Ficoll溶液中即 可配制成密度合适分层液。
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分离活细胞的介质要求
• 1)能产生密度梯度,且密度高时,粘度不 高;
• 2)PH中性或易调为中性; • 3)浓度大时渗透压不大; • 4)对细胞无毒。
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密度梯度离心法应用
• 利用密度梯度离心的原理,用ficoll液或 precoll液分离和纯化人或动物外周血单个核 细胞(PBMC)。
实验所需试剂的配置方法
四、血球保存液
葡萄糖 2.05克 枸椽酸钠 0.8克 氯化钠 0.42克 蒸馏水 100毫升
将上述成分混匀,略加温使其溶解,分 装小瓶(100毫升)。经10磅、10分钟高压灭 菌。4℃保存备用。
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实验所需试剂的配置方法
五、RPMI-1640培养液
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可写成:10× 10-13秒 表示为:10S
如:核蛋白体为 70S
细胞及细胞内某些成分的沉降系数及其离心条件
名称 沉降系数/S
RCF/g
转速(rpm)
细胞
﹥107
﹤200
﹤1500
细胞核 4×106-7
600~800
3000
线粒体 2×104~ 7×104
三、沉降系数(sedimentation coefficient,S) 1924年Svedberg对沉降系数下的定义:
颗粒在单位离心力场中粒子移动的速度。
若ω用2πn/60表示,则
式中X1为离心前粒子离旋转轴的距离; X2为离心后粒子离旋转轴的距离。
S实际上时常在10-13秒左右,故把沉降系数10-13 秒称为一个Svedberg单位,简写S,单位为秒。
1994 Avanti J全球独有,利用可变磁阻驱动系统的高效离心。 1996 Optima XL-I拥有两种检测系统的分析型超速离心机。 1998 Optima MAX全球首台超过一百万离心力的台式超速
离心。 1998 ARIES全球独有可以自我修正平衡的转头。 2002 Optiam L-XP全球首先采用触幕式操作的超速离心机。 2004 Allegra X-12全球唯一可处理细胞培台式离心机。
1979 L8 Series全球首先采用微机控制及感应电机驱动的 超速离心机系列。
1982 J21-M全球首台采用感应电机驱动的高速离心机。 1984 TL-100全球首台微量台式超速离心机。 1989 Optima Series 首先采用半导体制冷的驱动系统的超
速离心机系列。
1989 NVT创新的近垂直转头,可快速提纯DNA样品。 1991 Optima XL-A重新设计的分析型超速离心机。
第Hale Waihona Puke 章 离心技术离心技术是根据颗粒在匀速圆周运 动时受到一个外向的离心力的行为发展 起来的一种分离分析技术。
贝克曼库尔特离心技术发展里程碑
1947 1947 1963 1974 1976
Model E全球首台分析型超速离心机。 Model L全球首台制备型超速离心机。 Type 50 Ti全球首个钛金属转头。 Microfuge B全球首台微量离心机。 TJ-6R全球首台冷冻台式超速离心机。
动的任何物体都受到一个向外的离心力进行的。 离心力(Fc)的大小等于离心加速度ω2X与颗粒 质量m的乘积,即:
Fc = mω2X 其中ω是旋转角速度,以弧度/秒为单位;X是颗 粒离开旋转中心的距离,以cm为单位;m是质量, 以克为单位。
二、相对离心力(relative centrifugal force,RCF) 由于各种离心机转子的半径或者离心管至旋转轴 中心的距离不同,离心力而受变化,因此在文献 中常用“相对离心力”或“数字×g”表示离心力, 只要RCF值不变,一个样品可以在不同的离心机 上获得相同的结果。
其中Rmax为转子最大半径;Rmin为转子最小半径。
由其公式可知,K系数与离心转速及粒子沉降的 路径有关。所以K系数是一个变数。当转速变, 或者离心管的溶液量不同,即粒子沉降的路径改 变时,K系数就改变。
离心技术的应用: 1、应用于工业生产:
如化工、制药、食品等工业大型制备。离心 机转速都在每分钟5000转以下。 2、应用于生物、医学、化学等实验室分析研究:
分离和纯化样品,以及对纯化样品的有关性能 进行研究。
第一节 基本原理
一、离心力(centrifugal force,Fc) 离心作用是根据在一定角度速度下作圆周运
7000
7000
DNA 10~120
2×105
40000
RNA 4~50
4 ×105
60000
Pr
2~25
74 ×105
﹥ 60000
四、沉降速度(sedimentation velocity) 沉降速度是指在强大离心力作用下,
单位时间内物质运动的距离。
式中r为球形粒子半径; d为球形粒子直径; η为流体介质的粘度; ρP为粒子的密度;ρm为介质的密度。
五、沉降时间(sedimentation time,Ts)
在实际工作中,要将某种物质从溶液中分离出来, 必须知道所需转速与时间。
如果转速已知,则需解决沉降时间来确定分离某 粒子所需的时间。
根据沉降系数(S)式可得:
积分得:
式中X2为离心转轴中心至离心管底内壁的距离; X1为离心转轴至样品溶液弯月面之间的距离,那么
从上式可知,粒子的沉降速度与粒子直径的平方、粒 子的密度和介质密度之差成正比;离心力场增大,粒子的 沉降速度也增加,将此式代入上项沉降系数公式中,则S 的表示式也可表示为:
①当ρP>ρm,则S>0,粒子顺着离心方向沉降。 ②当ρP=ρm,则S=0,粒子到达某一位置后达到平
衡。 ③当ρP<ρm,则S<0,粒子逆着离心方向上浮。
一般情况下,低速离心时常以r/min来表示, 高速离心时则以g(或数字Xg)表示。
RCF就是实际离心场转化为重力加速度的倍数。
式中X为离心转子的半径距离,以cm为单位; g为地球重力加速度(980cm/sec2); n为转子每分钟的转数(rpm)。
Dole和Cotzias制作了与转子速度和半径相对应 的离心力的转换列线图。见图4-1。
样品粒子完全沉降到底管内壁的时间(t2-t1)用Ts 表示则式可改为:
式中Ts以小时为单位,S以Svedberg为单位。
六、K系数(k factor) K系数是用来描述在一个转子中,将粒子沉降下
来的效率。也就是溶液恢复成澄清程度的一个指数, 所以也叫“cleaning factor”。原则上,K系数愈小的, 愈容易,也愈快将粒子沉降。
在用图4-1将离心机转数换成相对离心力时,先 在离心机半径标尺上取已知的离心机半径和在 转数标尺上取已知的离心机转数,然后将这两 点间划一条直线,在图中间RCF标尺上的交叉 点,即为相应的离心力数值。
25.4cm
4200 rpm
例已知离心机转数为2500rpm,离心机的半径 为7.7cm,将两点连接起来交于RCF标尺,此交 点500×g即是RCF值。