多序列比对_I

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生物信息学中的多序列比对算法研究

生物信息学中的多序列比对算法研究

生物信息学中的多序列比对算法研究一、引言生物信息学是利用计算机及统计学方法来研究生物学问题的新兴领域。

在生物大数据时代,生物信息学的发展进入了一个快速发展的阶段。

在生物序列比对中,多序列比对(Multiple sequence alignment,MSA)是一个非常重要的问题。

多序列比对的研究及其算法的不断完善,对于研究生物学问题有着重要的意义。

二、多序列比对的定义多序列比对是指在多个序列之间查找相似性并对齐的过程。

在多种生物学研究中,多个同源或各异的序列的比对是相当常见和有意义的。

三、多序列比对的应用多序列比对在生物信息学中有着重要的应用,它可以用于以下几个方面:1. 生物系统学:由于多序列比对可以获得序列进化模型,因此多序列比对是解决生物系统学问题的重要工具。

2. 同源性分析:通过分析多序列比对结果,可以推断不同物种中相似序列的同源性,即是否来自于共同的祖先。

3. 结构预测:多序列比对可以用来预测蛋白质结构。

4. 动物分类学:由于时空因素影响,不同物种中的同源序列经过不同速率的进化,因此多序列比对的结果可以用于物种分类。

四、多序列比对的挑战多序列比对过程面临各种挑战,如序列长度、序列间差异、计算时间等。

序列长度:随着序列长度的增加,多序列比对算法的计算时间和空间开销也随之增加。

因此,序列长度的增加往往会给计算带来极大的压力。

序列间差异:多序列比对要求不同序列间具有相同或相似的部分,但同时要处理序列间差异性的问题,这增加了多序列比对的复杂度。

计算时间:多序列比对是一个复杂的计算问题,需要大量的计算时间和计算资源。

因此,如何降低计算时间和计算资源的开销也是多序列比对需要解决的问题。

五、多序列比对算法1. 基于局部比对的算法:局部比对算法是一种快速的多序列比对算法,该算法从每个序列的局部匹配开始,并在此基础上扩展。

其中,CLUSTALW算法就是一种基于局部比对的算法。

2. 基于全局比对的算法:全局比对算法是一种精确的多序列比对算法。

序列比对的基本方法

序列比对的基本方法

序列比对的基本方法序列比对是生物信息学中重要的一项任务,它用于比较和分析不同生物序列之间的相似性和差异性。

序列比对方法既可以应用于DNA序列之间的比较,也可以用于蛋白质序列之间的比较。

本文将介绍序列比对的基本方法,包括全局比对、局部比对和多序列比对。

一、全局比对全局比对是将整个序列进行比对,得到两个序列之间的最佳匹配。

最常用的全局比对方法是Needleman-Wunsch算法,该算法用动态规划的方式计算两个序列之间的最佳匹配。

其基本思想是在两个序列中插入一个空位,并为每个空位赋予一定的惩罚分数,然后通过计算每种插入方式的得分来确定最佳插入位置,从而得到最佳匹配。

二、局部比对局部比对是在两个序列中寻找最佳匹配的子序列。

最常用的局部比对算法是Smith-Waterman算法,该算法也是基于动态规划的方法。

不同于全局比对,局部比对将得分为负值的子序列直接设为0,从而忽略掉匹配较差的部分。

该算法在序列比对中应用广泛,可以用于发现序列中的保守区域以及识别重复序列。

三、多序列比对多序列比对是指将多个序列进行比对,从而得到它们之间的相似性和差异性。

多序列比对方法有多种,包括ClustalW、MAFFT和Muscle等。

这些方法常用于计算进化关系,识别保守区域和功能位点等。

其中,ClustalW是最常用的多序列比对软件之一,它使用的是基于目标函数的方法,在多个序列中寻找最佳的全局匹配。

MAFFT和Muscle则分别使用多种算法来处理不同类型的序列,从而提高比对的准确性和效率。

四、快速比对算法传统的序列比对方法在处理大规模序列数据时效率较低。

为了提高比对速度,研究者提出了一系列快速比对算法,如BLAST、 FASTA和Smith-Waterman-Gotoh算法等。

这些算法常用于初步比对和预测,可以在较短的时间内找到相似序列,从而提高工作效率。

其中,BLAST是最常用的快速比对算法之一,其基本思想是将查询序列与参考数据库中的序列进行比对,并根据匹配得分对结果进行排序,从而找到相似序列。

多序列比对——精选推荐

多序列比对——精选推荐

多序列⽐对在寻找基因和致⼒于发现新蛋⽩的努⼒中,⼈们习惯于把新的序列同已知功能的蛋⽩序列作⽐对。

由于这些⽐对通常都希望能够推测新蛋⽩的功能,不管它们是双重⽐对还是多序列⽐对,都可以回答⼤量的其它的⽣物学问题。

举例来说,⾯对⼀堆搜集的⽐对序列,⼈们会研究隐含于蛋⽩之中的系统发⽣的关系,以便于更好地理解蛋⽩的进化。

⼈们并不只是着眼于某⼀个蛋⽩,⽽是研究⼀个家族中的相关蛋⽩,看看进化压⼒和⽣物秩序如何结合起来创造出新的具有虽然不同但是功能相关的蛋⽩。

研究完多序列⽐对中的⾼度保守区域,我们可以对蛋⽩质的整个结构进⾏预测,并且猜测这些保守区域对于维持三维结构的重要性。

显然,分析⼀群相关蛋⽩质时,很有必要了解⽐对的正确构成。

发展⽤于多序列⽐对的程序是⼀个很有活⼒的研究领域,绝⼤多数⽅法都是基于渐进⽐对(progressive alignment)的概念。

渐进⽐对的思想依赖于使⽤者⽤作⽐对的蛋⽩质序列之间确实存在的⽣物学上的或者更准确地说是系统发⽣学上的相互关联。

不同算法从不同⽅⾯解决这⼀问题,但是当⽐对的序列⼤⼤地超过两个时(双重⽐对),对于计算的挑战就会很令⼈⽣畏。

在实际操作中,算法会在计算速度和获得最佳⽐对之间寻求平衡,常常会接受⾜够相近的⽐对。

不管最终使⽤的是什么⽅法,使⽤者都必须审视结果的⽐对,因为再次基础上作⼀些⼿⼯修改是⼗分必要的,尤其是对保守的区域。

由于本书偏重于⽅法⽽不是原理,这⾥只讨论⼀⼩部分现成的程序。

我们从两个多序列⽐对的⽅法开始,接下去是⼀系列的利⽤蛋⽩质家族中已知的模体或是式样的⽅法,最后讨论两个具有赠送的⽅法,因为绝⼤多数公开的算法不能达到出版物的数量。

在本章结尾部分将会列出更详细的多序列⽐对的算法。

渐进⽐对⽅法CLUSTAL WCLUSTAL W算法是⼀个最⼴泛使⽤的多序列⽐对程序,在任何主要的计算机平台上都可以免费使⽤。

这个程序基于渐进⽐对的思想,得到⼀系列序列的输⼊,对于每两个序列进⾏双重⽐对并且计算结果。

生物信息学中的多序列比对方法

生物信息学中的多序列比对方法

生物信息学中的多序列比对方法生物信息学是一门研究生命科学数据的计算机科学学科,主要用于从大量基因组、蛋白质组、代谢组等生命组学数据中发现、分析和研究基因、蛋白质、代谢途径等生命过程的规律。

其中的多序列比对(Multiple Sequence Alignment,MSA)技术是一个比较重要的研究方法,其主要应用于多种生物信息学研究方向,如物种分类、基因结构和功能研究、蛋白质结构和功能研究等。

本文就生物信息学中的多序列比对方法进行简要介绍。

一、多序列比对的意义及难点多序列比对是将多条生物序列进行比对,在把它们对齐之后确定它们之间的共同位点及其差异位点的过程,从而分析出序列间的相似性和异质性等结构、功能上的关联。

这一过程主要分为四步:选择序列、生成比对矩阵、进行比对分析和生成比对结果。

通过多序列比对可以揭示序列进化、注释微小RNA、寻找共同结构域、定位功能残基等关键性生物学问题。

多序列比对的难点主要包括以下几个方面:(1)大数据量。

由于生物序列的数据量是非常庞大的,比如对于人和马之间的比对,需要对他们的约3000万个碱基进行比对,而且每个人的基因组或每个生物的蛋白质组都是高度复杂和大量重复的,因此进行多序列比对的计算复杂度非常大,需要使用高效的计算方法,充分利用计算资源。

(2)序列多样性。

生物序列相互之间具有高度的多样性,包括同一物种内的不同个体、不同物种之间的比对和不同基因家族的比对等,这些差异给多序列比对带来很大的挑战,需要使用不同的比对算法、策略和参数,才能得到最优的结果。

(3)精度和可信度。

生物序列不同的比对方法可能会得到不同的结果,因此必须对比和评估多种方法的参数和性能指标,同时要考虑到数据的来源、质量和格式等,以提高比对结果的精度和可信度。

(4)效率和实时性。

多序列比对通常是大数据、高计算量的任务,因此需要使用高性能计算环境或分布式计算架构,同时要考虑到任务的时间复杂度、并行度和负载均衡等问题,从而提高比对效率和实时性。

多序列比对

多序列比对

的序列,结果不理想。
• 目前应用最广的多序列比对算法。
34 /93
ClustalW2
• ( /Tools/msa/clustalw2 )目前应用 最广的多序列比对工具。 • 3个步骤:
1.) Construct pairwise alignments(构建双序列比对)
0 1 A 0 1 A 1 -2 A 2 T 3 T 3 G 3 -4 C 4 C
x coordinate y coordinate
--
A
T
G
C

13 /93
Alignment Paths
• Align 3 sequences: ATGC, AATC,ATGC
0 1 A 0 1 A 0 0 1 -2 A 1 2 T 3 T 2 3 G 3 -3 4 C 4 C 4
之前我们进行的是序列与序列的比对。 Can we align a sequence against a profile?
Can we align a profile against a profile?
Profile和pattern都可以表示多序列比对,哪个更好?
29 /93
Multiple Alignment: 贪婪算法
v1 v2 v3 v4
v1,3 v1,3,4 v1,2,3,4
Calculate: = alignment (v1, v3) = alignment((v1,3),v4) = alignment((v1,3,4),v2)
• 之前进行的是双序列比对
• 如果多个序列进行比对呢? 如何进行?
4 /93
Multiple Alignment versus Pairwise Alignment

6.多序列比对

6.多序列比对

CLUSTALW
Sequences should all be in 1 file. 7 formats accepted: NBRF/PIR, EMBL/SwissProt, Pearson (Fasta), GDE, Clustal, GCG/MSF, RSF. Enter the name of the sequence file: anti.fasta<rtn> Sequence format is Pearson Sequences assumed to be PROTEIN Sequence 1: ANP4_PSEAM Sequence 2: ANP_LIMFE Sequence 3: ANPA_PSEAM Sequence 4: ANPX_PSEAM Sequence 5: ANPY_PSEAM 85 aa 97 aa 82 **** CLUSTAL W (1.8) Multiple Sequence Alignments ******** 1.Sequence Input From Disc 2. Multiple Alignments 3. Profile / Structure Alignments 4. Phylogenetic trees S. Execute a system command H. HELP X. EXIT (leave program) Your choice: 2<rtn>
一个多序列比对例子
VTISCTGSSSNIGAG-NHVKWYQQLPG QLPG VTISCTGTSSNIGS--ITVNWYQQLPG QLPG LRLSCSSSGFIFSS--YAMYWVRQAPG QAPG LSLTCTVSGTSFDD--YYSTWVRQPPG QPPG PEVTCVVVDVSHEDPQVKFNWYVDG-ATLVCLISDFYPGA--VTVAWKADS-AALGCLVKDYFPEP--VTVSWNSG--VSLTCLVKGFYPSD--IAVEWWSNG--

生物信息学中多序列比对算法的研究与改进

生物信息学中多序列比对算法的研究与改进

生物信息学中多序列比对算法的研究与改进生物信息学是研究生物学领域中的大规模生物数据的收集、存储、处理和分析的一门学科。

其中,多序列比对是生物信息学中一个重要的任务,可以帮助我们理解生物序列的相似性和差异性,从而揭示生物进化、功能和结构的信息。

本文将介绍多序列比对算法的基本原理、常用的方法和一些改进策略。

多序列比对的基本原理是将多个生物序列在一定的比对模型下进行比对,找到它们之间的共有特征和差异。

而这种比对过程是通过构建一个比对矩阵来完成的,该矩阵记录了每对序列之间的相似性得分。

常用的比对模型包括全局比对、局部比对和连续比对。

全局比对是将所有序列从头至尾进行比对,适合于序列相似性较高且较短的情况。

常用的算法有Needleman-Wunsch算法和Smith-Waterman算法。

Needleman-Wunsch算法使用了动态规划的思想,通过计算不同序列位置之间的得分矩阵,找到最优的比对方案。

Smith-Waterman算法是对Needleman-Wunsch算法的改进,它引入了负得分以处理局部比对的情况。

局部比对是将序列的某个片段与其他序列进行比对。

这种比对方法适用于序列相似性低或存在插入/缺失的情况。

常用的算法有BLAST、FASTA和PSI-BLAST。

BLAST算法使用了快速查找的技术,先找到一些高度相似的序列片段,再进行进一步的比对。

FASTA算法也是通过生成比对矩阵来找到相似片段,但它比BLAST更加灵敏。

PSI-BLAST算法将多次比对与序列数据库的搜索相结合,用于找到蛋白质序列中的保守和演化区域。

连续比对是将序列中的一个或多个连续子序列与其他序列进行比对。

这种比对方法可用于寻找序列中的结构域和功能区域。

常用的算法有HMMER和COBALT。

HMMER算法使用了隐马尔可夫模型和HMM-profile来比对序列中的结构域,具有较好的准确性和灵敏性。

COBALT算法是一种基于Conserved Domain Database (CDD) 的比对方法,通过利用数据库中的结构域信息来找到序列中的结构域。

多序列比对PublicLibraryofBioinformatics

多序列比对PublicLibraryofBioinformatics

多序列比对PublicLibraryofBioinformatics多序列比对简介:双序列比对是序列分析的基础。

然而,对于构成基因家族的成组的序列来说,我们要建立多个序列之间的关系,这样才能揭示整个基因家族的特征。

多序列比对在阐明一组相关序列的重要生物学模式方面起着相当重要的作用。

多序列比对有时用来区分一组序列之间的差异,但其主要用于描述一组序列之间的相似性关系,以便对一个基因家族的特征有一个简明扼要的了解。

与双序列比对一样,多序列比对的方法建立在某个数学或生物学模型之上。

因此,正如我们不能对双序列比对的结果得出"正确或错误"的简单结论一样,多序列比对的结果也没有绝对正确和绝对错误之分,而只能认为所使用的模型在多大程度上反映了序列之间的相似性关系以及它们的生物学特征。

目前,构建多序列比对模型的方法大体可以分为两大类:第一类是基于氨基酸残基的相似性,如物化性质、残基之间的可突变性等。

另一类方法则主要利用蛋白质分子的二级结构和三级结构信息,也就是说根据序列的高级结构特征确定比对结果。

这两种方法所得结果可能有很大差别。

一般说来,很难断定哪种方法所得结果一定正确,应该说,它们从不同角度反映蛋白质序列中所包含的生物学信息。

基于序列信息和基于结构信息的比对都是非常重要的比对模型,但它们都有不可避免的局限性,因为这两种方法都不能完全反映蛋白质分子所携带的全部信息。

蛋白质序列是经过DNA序列转录翻译得到的。

从信息论的角度看,它应该与DNA分子所携带的信息更为"接近"。

而蛋白质结构除了序列本身带来的信息外,还包括经过翻译后加工修饰所增加的结构信息,包括残基的修饰,分子间的相互作用等,最终形成稳定的天然蛋白质结构。

因此,这也是对完全基于序列数据比对方法批评的主要原因。

如果能够利用结构数据,对于序列比对无疑有很大帮助。

不幸的是,与大量的序列数据相比,实验测得的蛋白质三维结构数据实在少得可怜。

多序列比对方法

多序列比对方法

多序列比对方法多序列比对是生物信息学中一个常见的分析方法,用于比较多个序列之间的相似性和差异性。

本文将介绍多序列比对的基本原理、常用方法和软件工具,以及其在生物学研究中的应用。

一、多序列比对的基本原理多序列比对是指对多个生物序列进行比较和分析。

生物序列可以是蛋白质序列、DNA序列或RNA序列等。

多序列比对的主要目的是确定序列之间的保守区域和变异区域,并发现序列之间的结构和功能相关性。

多序列比对的基本原理是通过构建序列之间的相似性矩阵,确定最佳的比对结果。

相似性矩阵用于测量两个序列之间的相似性,通常使用BLOSUM、PAM或Dayhoff矩阵等。

基于相似性矩阵和动态规划算法,可以计算序列之间的最佳比对路径,以及比对的得分。

二、常用的多序列比对方法1. 基于全局比对的方法:该方法适用于序列之间的整体相似性比较,常用的算法有Needleman-Wunsch算法和Smith-Waterman算法。

这两种算法都采用动态规划策略,通过计算各种可能的比对路径来确定最佳比对结果。

全局比对方法的主要缺点是在序列相似性较低的情况下,比对结果可能不准确。

2. 基于局部比对的方法:该方法适用于序列之间的部分相似性比较,常用的算法有BLAST和FASTA。

局部比对方法主要通过搜索局部相似片段来进行比对,可以提高比对的敏感性和准确性。

BLAST和FASTA是两种常用的快速局部比对工具,可以快速比对大规模序列数据库。

3. 基于多重比对的方法:该方法适用于多个序列之间的比较和分析,常用的算法有ClustalW和MAFFT。

多重比对方法通过构建多个序列的比对结果,可以识别序列之间的共同保守区域和变异区域,以及序列的结构和功能相关性。

ClustalW和MAFFT是两种常用的多重比对工具,具有较高的准确性和可靠性。

三、常用的多序列比对软件工具1. ClustalW:ClustalW是一个常用的多重比对软件,主要用于比对蛋白质和DNA序列。

多序列比对结果

多序列比对结果

多序列比对结果多序列比对是生物信息学中的一项重要任务,其目的是找出多个生物序列之间的相似性和差异性。

多序列比对结果包含了许多有用的信息,可以帮助我们更好地理解生物学现象和进化规律。

本文将详细介绍多序列比对结果的相关内容。

一、多序列比对的基本概念1.1 多序列比对的定义多序列比对是指将三个或三个以上的生物序列进行比较,找出它们之间的相同和不同之处,并将它们分别放置在同一条直线上,以便于进行分析和研究。

1.2 多序列比对的意义多序列比对可以帮助我们更好地理解不同种类生物之间的进化关系、基因功能以及蛋白质结构与功能等方面。

同时,它也是进行系统发育分析、遗传变异研究以及药物设计等领域中必不可少的工具。

二、多序列比对结果中常见术语解释2.1 序列标识符(Sequence identifier)指每个输入序列所属生物体或基因名称等信息,通常用于区分不同来源的数据。

2.2 序列长度(Sequence length)指每个输入序列的长度,通常以碱基或氨基酸数量为单位。

2.3 序列相似度(Sequence similarity)指两个或多个序列之间的相同比例,通常用百分比表示。

2.4 序列同源性(Sequence homology)指两个或多个序列之间的共同祖先,通常用BLAST等工具进行判定。

2.5 序列保守性(Sequence conservation)指在比对结果中多个序列中某一位点上具有相同碱基或氨基酸的频率,可以反映出该位点在进化过程中的重要性。

三、多序列比对结果展示方式3.1 线性展示方式线性展示方式是将所有输入序列按照从左到右的顺序排成一条直线,并在每个位置上标注相应的碱基或氨基酸。

这种展示方式简单明了,易于理解和分析。

但是当输入序列较多时,会导致图形混乱不清晰。

3.2 矩阵展示方式矩阵展示方式将所有输入序列以矩阵形式呈现,并通过颜色等方式标注相应位点上的差异和保守性。

这种展示方式可以更清晰地显示不同位置上的差异和保守性,但是当输入序列较长时,会导致图形过于庞大和复杂。

多序列比对名词解释

多序列比对名词解释

多序列比对名词解释多序列比对(sequence-to-sequence matching)是指在一组图像中选择少数代表性的图像序列进行相应的代数处理,使用这些被选出来的图像序列来改善另一些样本。

它与主成分分析方法类似,不同之处是它把图像看成由许多图像块组成的,每个块都包含着所研究目标特征的信息,因此,它更加注重局部细节信息。

在研究目标周围,我们常常发现有一些特殊的值域,这些值域可以很好地反映该目标的一些属性,因此我们就可以通过统计这些区域的特征点来识别某个特定目标。

例如:某次考试总共有20题, 10题为选择题, 10题为填空题,且只有2题为单项选择题。

有5道题得分较低,因此采用统计这些区域特征点的分布来鉴别学生的正确答案,效果较好。

相关多序列比对方法有同一个数据的谱形态空间内的多样性分析和从几何学角度建立样本的子集合关系等。

在考试复习阶段,把所给的问题作为训练集合,并按照教学大纲要求给每个题目设置权值,并训练不同的特征,其他的题目或者删除,或者进行合并。

1、将试卷中每一道题的答案提取出来,写在黑板上;2、将答案分类,再将各题的答案写在白纸上;3、再按照上述步骤,从训练集中随机抽取10份,分别将其他的80份试卷当做对照组; 4、将原始答案放到正确答案集中,重新计算各个特征点在答案中的权值。

基于空间变换方法的多序列比对(geographical-invariant pattern-basedsubset-to-subset matching)又称为图像中的空间域分析法。

它在已知图像的光谱信息后,直接利用原始图像的邻域特征,计算某些空间特征点,并与光谱特征进行比较,进而确定其目标的位置。

因此,在数字图像的研究中,我们把这种方法称为空间域的方法,而图像的光谱特征则称为频率域的方法。

这种方法的优点是:基本不需要光谱的专门知识,而且处理的结果精确可靠。

在图像的多序列比对过程中,图像分割是非常重要的一个环节。

生物信息多序列比对

生物信息多序列比对

图2 序列比对,图中“-”表示插入和删除,用字符表示相同的残基,“+”表示相似残基
序列比较的基本操作是比对(Alignment)
–两个序列的比对是指这两个序列中各个字符的一种
一一对应关系,或字符的对比排列 。
设有两个序列: GACGGATTAG,GATCGGAATAG
Alignment1:
GACGGATTAG GATCGGAATAG
相似性是指序列比对过程中用来描述检测序列和目标 序列之间相同DNA碱基或氨基酸残基顺序所占比例的 高低。是指一种很直接的数量关系。比如说,A序列和 B序列的相似性是80%,或者4/5。这是个量化的关系。 相似性本身的含义,并不要求与进化起源是否同一,与 亲缘关系的远近、甚至于结构与功能没有什么联系。 当相似程度高于50%时,比较容易推测检测序列和目 标序列可能是同源序列;而当相似性程度低于20%时, 就难以确定或者根本无法确定其是否具有同源性。 总之,不能把相似性和同源性混为一谈。所谓“具有 50%同源性”,或“这些序列高度同源”等说法,都是 不确切的,应该避免使用。
s: t:
Alignment -2
AGCACACA AGCACACA ACACACTA ACACACTA —————————————————————————— Match(A, A) Match(A, A) Delete(G, - ) Replace(G, C) Match(C, C) Insert( -, A) Match(A, A) Match(C, C) Match(C, C) Match(A, A) Match(A, A) Match(C, C) Match(C, C) Replace(A, T) Insert( -, T) Delete(C, -) Match(A, A) Match(A, A) 图3.6 序列AGCACACA和ACACACTA的两种比对结果

多序列比对 简书

多序列比对 简书

多序列比对简书【原创版】目录1.多序列比对的定义和意义2.多序列比对的基本方法和原理3.多序列比对的应用领域4.多序列比对在生物信息学中的重要性5.多序列比对的发展趋势与前景正文一、多序列比对的定义和意义多序列比对是一种生物信息学技术,用于比较两个或多个序列之间的相似性和差异性。

在生物学领域,多序列比对技术在基因组学、蛋白质组学等研究中具有重要的意义。

通过多序列比对,研究人员可以了解基因序列的进化关系、蛋白质序列的功能和结构特征,从而为生物学研究提供有力支持。

二、多序列比对的基本方法和原理多序列比对的基本方法可以分为两类:基于距离的比对方法和基于相似性的比对方法。

1.基于距离的比对方法:通过计算序列之间的距离来衡量它们的相似性。

常见的距离计算方法有欧氏距离、汉明距离等。

2.基于相似性的比对方法:通过比较序列之间的相似性来评估它们的相似性。

常见的相似性计算方法有 Pearson 相关系数、Jaccard 相似系数等。

三、多序列比对的应用领域多序列比对技术在多个领域具有广泛的应用,如基因组学、蛋白质组学、转录组学等。

1.在基因组学领域,多序列比对可用于基因组组装、基因注释、基因预测等任务。

2.在蛋白质组学领域,多序列比对可用于蛋白质序列比对、结构预测、功能注释等任务。

3.在转录组学领域,多序列比对可用于转录本鉴定、表达量分析等任务。

四、多序列比对在生物信息学中的重要性多序列比对在生物信息学领域具有重要意义,它可以帮助研究人员了解生物序列之间的进化关系、结构特征和功能属性。

此外,多序列比对还可以为基因组学、蛋白质组学等领域的研究提供有力支持,推动生物信息学的发展。

五、多序列比对的发展趋势与前景随着生物信息学技术的不断发展,多序列比对技术也在不断完善和优化。

未来的发展趋势包括提高比对速度、提高比对准确性和拓展应用领域等。

此外,随着人工智能技术的发展,深度学习等方法也将应用于多序列比对领域,为生物信息学研究提供更加高效和准确的比对结果。

多序列比对

多序列比对

局部序列比对
局部比对(Local Alignment)方法能够 确定序列中高度保守的区域
概形分析 (Profile Analysis)
区块分析 (Block Analysis)
概形分析 (Profile Analysis)
优势:



用来寻找一个可能与之匹配的目标序列 用来在一个数据库中搜索一个可能的新的蛋白 (pfsearch) 通过搜索一个profile数据库来找到提交的序列属 于哪一家族(pfscan) 比对两个MSA(profile to profile) 缺点: 所产生的概形仅仅代表MSA本身的序列族变异, 如果MSA中的几个序列相似,则衍生的概形将偏 向于这些序列
Human Mouse Dmel Cele Scer
2 基于双序列距离矩阵, 构建一个进化树 3 依据进化树进行渐进比对 • 依据进化树,开始对关系较近的序 列进行两两比对 • 逐渐加入关系较远的序列进行比对
Multiple align的累进比对方法
d
1 3
1 3 2 5
累进算法(Progressive Methods)
•针对基于动态规划算法的MSA程序比对序列数目有限, Feng & Doolittle(1987)发明了累进算法
•主要思想:通过双序列比对构建进化关系,并通过这种关系来构建 序列比对 • CLUSTAL 和 PILEUP 是目前常用的基于累进算法的比对软件 • CLUSTAL 是免费软件,目前应用非常广泛。 分为基于文本的CLUSTALW和图形用户界面的CLUSTALX http://www-igbmc.u-strasbg.fr/BioInfo/ClustalX/Top.html • T-Coffee 是一种新的基于CLUSTAL的程序, 它在比对关系较远的系列上较CLUSTAL更具优势, 但速度较CLUSTAL 要慢

多序列比对-生物信息学

多序列比对-生物信息学

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实习四:多序列比对(Multiplealignment)

实习四:多序列比对(Multiplealignment)

实习四:多序列⽐对(Multiplealignment)实习四:多序列⽐对(Multiple alignment)学号姓名专业年级实验时间提交报告时间实验⽬的:1. 学会利⽤MegAlign进⾏多条序列⽐对2. 学会使⽤ClustalX、MUSCLE 和T-COFFEE进⾏多条序列⽐对分析3. 学会使⽤HMMER进⾏HMM模型构建,数据库搜索和序列⽐对实验内容:多序列⽐对是将多条序列同时⽐对,使尽可能多的相同(或相似)字符出现在同⼀列中。

多序列⽐对的⽬标是发现多条序列的共性。

如果说序列两两⽐对主要⽤于建⽴两条序列的同源关系,从⽽推测它们的结构和功能,那么,同时⽐对多条序列对于研究分⼦结构、功能及进化关系更为有⽤。

例如,某些在⽣物学上有重要意义的相似区域只能通过将多个序列同时⽐对才能识别。

只有在多序列⽐之后,才能发现与结构域或功能相关的保守序列⽚段,⽽两两序列⽐对是⽆法满⾜这样的要求的。

多序列⽐对对于系统发育分析、蛋⽩质家族成员鉴定、蛋⽩质结构预测、保守模块的搜寻以及PCR引物设计等具有⾮常重要的作⽤。

作业:1.Align the orthologous nucleotide and protein sequences from 5 organisms you found from first practice with MegAlign. Describe the sequences you used (the title of each sequence), explain whether the phylogenetic tree is consistent with the species tree from NCBI taxonomy database. Set the alignment report to show consensus strength and decorate the residues different from consensus with green shade.(Hint: use the taxonomy common tree from NCBI to get the evolutionary relationship among the organisms. Save your organism name in a text file with each organism name in a line, and upload the file, choose Add from file, and you will see the relationship among the specified organisms) /doc/ea500ac1c1c708a1284a4449.html /Taxonomy/CommonTree/wwwcmt.cgi Hint 2:Change the accession number in your fasta or genPept format sequence file to organism name, so that the phylogenetic tree can be easily understood.⽅法与结果:打开Megalign,选择FILE下的Enter sequence ,打开之前保存的来⾃于五个物种的蛋⽩(或核酸)序列;⾸先选择打分矩阵,点击“Align”,选择Set residue Weight Table 选择矩阵:PAM100(核酸则设为weighted),通过“method parameters”查看参数,使⽤Clustal V的默认值;其次进⾏序列的⽐对,选择Align下的“by Clustal V Method”开始⽐对,再次待其结束后,进⾏⽐对结果的显⽰,选择view下的“Phylogenetic Tree”,显⽰出树形图;(图)与NCBI上找到的树形图进⾏对⽐(图);接下来点击View 下的“Alignment reports ”,选择OPTIONS下的“Alignment report contents”勾中“show consensus strength”,即在序列中显⽰出相似性条块;在OPTIONS下选择“New decorations”对decoration parameters 下选“shade—residues differing from—the consensus”把字符选择现实的颜⾊为绿⾊,结果显⽰如下:(图)同法可以得到核酸的树形图:(图)分析:系统发育树与NCBI上的物种树有很⼤的差异,因为可能这些物种间含有很多同源序列,我们不能单凭⼏条相似序列的同源关系来判断物种的亲缘关系,⽽应该考虑到物种更多相似序列的同源关系。

生物信息学中的多序列比对与模体识别问题研究

生物信息学中的多序列比对与模体识别问题研究

生物信息学中的多序列比对与模体识别问题研究生物信息学中的多序列比对与模体识别问题研究引言:生物信息学是研究生物学数据的存储、检索、处理和分析的领域,其在生物学研究中具有广泛的应用。

多序列比对和模体识别是生物信息学中两个重要的问题,对于揭示生物分子的功能和进化具有关键意义。

本文将围绕着多序列比对和模体识别这两个问题展开讨论,并介绍相关的研究方法与进展。

一、多序列比对多序列比对是将多个生物序列(如DNA、RNA、蛋白质序列)在不同的位置上进行对齐,以寻找共有的保守区域和变异区域,从而分析它们的结构和功能。

多序列比对的结果可以用来推断序列之间的亲缘关系、结构域的分布以及位点的保守性等信息。

目前,多序列比对的方法主要包括基于序列模板的比对算法、基于结构信息的比对算法和基于统计模型的比对算法。

1.1 基于序列模板的比对算法基于序列模板的比对算法是将目标序列与已知的参考序列进行比较,通过匹配相似的模式来确定序列的对应关系。

其中,Pairwise和MSA(Multiple Sequence Alignment)是两种经典的比对方法。

Pairwise方法适用于只有两个序列的情况,它通过动态规划算法寻找两个序列之间的最佳比对方案。

MSA方法则适用于多个序列的情况,其中常用的算法包括ClustalW、Muscle和MAFFT等。

这些方法通过引入相似性矩阵和权重矩阵来优化比对结果,提高比对的准确性和可靠性。

1.2 基于结构信息的比对算法基于结构信息的比对算法是利用蛋白质的三维结构信息来进行比对,以揭示蛋白质序列之间的相似性和功能关系。

在蛋白质结构比对中,结构保守性和功能相关性是两个重要的考虑因素。

目前,常用的蛋白质结构比对软件包括DALI、CE和TM-align 等。

这些算法通过比较蛋白质的结构特征(如二级结构、残基配对等)来确定序列的对应关系,从而获得更精确的比对结果。

1.3 基于统计模型的比对算法基于统计模型的比对算法是利用概率模型和复杂统计方法来进行比对,以获得更高的准确度和可信度。

多序列对比

多序列对比

全局比对工具ClustalW的应用
多序列比对的方法 ClustalW( PC版 本为 ClustalX ) 是目 前 使用最广泛的多序列比对软件,许多综合 序列分析软件均在内部集成了ClustalW。 多序列比对采用的是全局渐进比对算法, 不完全同于BLAST的局部比对。 多序列比对结果是建立在序列两两比对的 基础上逐步优化而来的。
全局比对工具ClustalW的应用
多序列比对的方法 首先对所有序列进行两两比对并计算它们 的相似性分值,根据分值将它们分成若干 组,然后在每组之间再进行比对,计算相 似性分值并继续分组比对,直到获得最终 的比对结果。
/Tools/msa/clustalw2
生物信息学
伦永志
大连大学医学院
目录
DNA测序技术 序列的获取 序列的相似性查询 多序列比对 蛋白质结构分析
全局比对工具Clus局比对工具ClustalW的应用
全局比对工具ClustalW的应用
多序列比对的意义 描述一组序列之间的相似性关系,以了解 某个基因家族的基本特征,预测基因功能 及寻找motif、conservative domain等。 描述某个同源基因之间的亲缘关系远近, 并将序列聚类以应用于分子进化分析。
全局比对工具ClustalX的应用
全局比对工具ClustalX的应用
全局比对工具ClustalX的应用
全局比对工具ClustalX的应用
全局比对工具ClustalX的应用
全局比对工具ClustalX的应用
全局比对工具ClustalX的应用
全局比对工具ClustalW的应用
. 表 示 该 列 位 点 发 生 异 型 改 变
: 表 示 该 列 位 点 发 生 同 型 改 变
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GAPS
• 线性罚分矩阵 Wn = nγ, n= 缺口数 , γ = 空位罚分 • 亲缘空位罚分 Wn= g + nγ,
=缺口数, γ = 空位拓展罚分 g = 空位开放罚分
简化比对统计
我们怎样告诉别人基于分值的比对的好坏?当两个随机序列在比对时得 到近似的分值的可能性有多大? 考虑一个简单的问题-在随机的硬币投掷过程中,获得头像 l 的最大可 能概率? 均匀的硬币 p = 0.5 且 ErdÖs and Rén yi – 最大可能概率= log1/p(n) 这里 log2(n). 如果 n=100, 最大可能概率是 6.65 对长度分别为 n 和 m 的两个序列,我们做 nm 比对,这样预测的最长序 列匹配将是 log1/p(mn) 更确确的说,期望值,或者最长匹配的平均值将是 E(M)~=log1/p(Kmn) 这里 K 是依赖于氨基酸组成的常数。
对所有 20 个氨基酸的处 理
给定 fab = 配对交换频率
直接假设 — 第一顺序马尔柯夫链转化模型
步骤 2 : 计算 a 率
Pa = 氨基酸 a 的概率
b 交换对的相对概
fab = a 和 b 之间的替代数量 fa = 含有氨基酸 a 的替代模式总 数
f = 在相关序列组中产生变异的总数量 =
PAM250 矩阵表中数据的来源? 步骤 6 :计算关联几率 序列比对中两个氨基酸来自于由进化的相关蛋白几率,和它们来自于 两个不相关的蛋白质比对的几率 Mab =相关蛋白中 b 取代 a 的几率 - vs - Paran =非相关蛋白中 b 取代 a 的几率 …… 它们是随机的
现在, Paran = fa ,氨基酸 a 发生的频率
最大: 对角线 从左到右 从上到下
动力学设计过程:
首先沿着侧边从上到下写下一个序列。
动力学设计过程:
首先沿着侧边从上到下写下一个序列。
全局比对: Needleman-Wunsch- Sellers O(n2) 利用线形空位处罚
最大: 对角线 从左到右 从上到下
动力学设计过程:
首先沿着侧边从上到下写下一个序列。
对角线 从左到右 从上到下
全局和局部比对程序 生物工作平台: / Bill Pearson 的网页 / NCBI, Expassy
氨基酸替代矩阵
Margaret Dayhoff, 1978, PAM 矩阵
可选择的办法是比对所有可能的特征对 ( 配对和错配,也很好 的考虑到了空位,保持比对的数量的易处理性。 ) 这种方法也 叫动力学设计。在算术上证明了产生最佳比对。 需要置换或相似矩阵和考虑到空位的方法。 怎样记下比队得分的例子:写下两条序列
序列 #1 序列 #2 置换矩阵得分
得分 =Σ ( AA 配对得分) - 缺口处罚 =15
步骤 5 :计算进化距离尺度 只有 1/1000 的氨基酸产生变化
M aa 表示氨基酸守衡
实例
( Phe 突变的调整概率)
** 用尺度因子 λ , M aa 是 ~0.99 也就是变异概率是 ~1%
也就是定义 PAM1 矩阵… .
λ 是进化尺度因子
…… 对于任何特别的突变概率, λMab 反应了 在 1PAM 上氨基酸 b 替代氨基酸 a 的可能性的 标准尺度。
PAM 250 矩阵- 250 %期望变化
序列仍然有 ~15-30 %序列相似性, 如,苯丙氨酸与苯丙氨酸 有 ~ 32% 的匹配概率 丙氨酸与丙氨酸 有 ~ 13% 的匹配概率
期望值 %相似性 其它的 PAM 矩阵: PAM120 - 40% PAM80 - 50% PAM60 - 60% PAM250 – 15-30% 相似性 相似性序列的使用
局部比对是从 x 序列子列到 y 序列子列比对中得分最好的 。 重要的并不是比对到序列结束。
对序列 x ,残基 1 , 2 , 3……N ,能够得到 ~N2 个子链,也 就是说启始点 a= 1,2….N ,结束点 b= 1, 2….n 。 Y 序列也一 样,得到 ~M 2 个子链。对于任意两个子链,由于有旧的 O(mn) 比对问题,所以可能比对的总数目是 ~ N2M 2(NM)=O(M 3N3)— 很不好!!!!在多项式时间 中是可以 解决的,但需要一个大的多项式。
动力学设计过程:
首先沿着侧边从上到下写下一个序列。
源追踪 :
当正方形比对完成之后,从较低的右边开始,以后的工作 根据箭头观察怎样到那儿……
源追踪引起的比 对 :
只有向后看才能理解生活,但是要生活好,必须向前看。 — Søren Kierkegaard
局部比对
Temple Smith 和 Michael Waterman , 1981— 修改了 Needleman-Wunsch-Sellers
接下来,假定在每个位置的变异独立于前面的变异。因此 计算关系稍远的相关蛋白的变化,该蛋白质进行了 N 次变异, 每一百个氨基酸通过乘以 PAM1 矩阵对其变异次数 N 的值 例子: PAM2 矩阵:
PAM250 矩阵
• 将 PAM1 自乘 250 次!
有 Mab 个值。如进化 互相关联的蛋白质在 PAM250 中一个氨基 酸取代另一个氨基酸 的几率
动力学设计过程:
首先沿着侧边从上到下写下一个序列。
注意 — 线形空位处罚: γ(n)=nA ,其中 A= 空位处罚
动力学设计过程:
首先沿着侧边从上到下写下一个序列。
空位 空位
因此得到 Sij 必须知道 S(i-1, j-1) 和 S(i, j1) and S(i-1, j)…… 因此需要回归。我们用 解决小问题的方法解决大问题。我们必须 记录怎样得到 Sij 。例如表格式矩阵中的中 间解答。计算机科学家称这为动力学设计 ,其中“设计”即矩阵,并不是某种计算 机编码。
** 进化模型 ** 以一个小数据库为基础。
假设是对称的: 假设短时间周期的氨基酸替代模型能够推测出长时间周 期的替代模型。 71 组蛋白质序列, 1572 个相似氨基酸 85% 发生改 变。 功能蛋白质→由自然选择“接受”变异 PAM1 矩阵意味着在蛋白质之间有 1% 的分歧 – 也就是说每 100 个残基中有 1 个氨基酸变异。一些文章也重述了这个情况 ,每个氨基酸变成另一个氨基酸的概率是 ~1% ,而不变的概 率是 ~99% 。
PAM250 矩阵表中数据的来源?
步骤 6 :计算关联几率
进化的关联几率而不是偶然几率
PAM250 矩阵表中数据的来源?
步骤 7 :计算对数值 ( 关联几率 ) 和乘以十来清楚碎片值 例子: Phe→Tyr ( 必须= Tyr→ Phe)
因此平均值= (5.7+8.3)/2=7…PAM250 中的数据
M’ab 的相对概率定义为:
步骤 3 :依比例确定相对概率,即获得任意一 个氨基酸变成另一个不同的氨基酸 1% 总机会
i.s. 测量 M’ 来确定 :
步骤 4 :定义“相对易变性” 给每个氨基酸指定 ma
含有氨基酸 a 的突 变数量
‘a’ 变异的方向 Prob(a)* 每 100 个位点中加权变异的 总数
局部比对

再一次地,动力学设计可以补救!
动力学设计的基本设置与以前一样…… 错配时相似矩阵 MUST 产生负值 -- 和 -**** 在得分矩阵中,计算位置的值是负数时,这个 值就被设置成 0 。
比对就此结束
SmithWaterman:
首先沿着侧边从上到下写下一个序列。
空位 空位
局部比对: 最大:
步骤 1 :在相关蛋白质家族内测量每个氨基酸 的成对替代频率
构建 Dayhoff 矩阵: PAM1
900 个 Phe (F)….+ 另外 100 个可能的 Phe 但是… 100 个 Phe (F) → 80 Tyr (Y), 3 Trp (W), 2 His (H)….
给了 fab, 也就是
…… 通过进化!
动力学设计过程:
首先沿着侧边从上到下写下一个序列。
空位 空位
全局比对: Needleman-WunschSellers O(n2) 利用线形空位处罚
最大: 对角线 从左到右 从上到下
动力学设计过程:
首先沿着侧边从上到下写下一个序列。
空位 空位
全局比对: Needleman-WunschSellers O(n2) 利用线形空位处罚
糟糕的例子
O(kn) = 指数时间…… . 恐怖!!!!
NP 问题 — 不知道多项式时间解决办法 = 非确定性多项式问题。
递归和动力学设计
比对两个没有空位的蛋白序列 — 大概是一个 O(mn) 问题。 没有空位 — 适合于计算天文学,直接比对方法不能做。 (= 22L/√(2πL); L= 序列长度 )
PAM30 矩阵,用非空位比对得分最高的一个
替代氨基酸矩阵
Dayhoff 的问题: • 基于氨基酸,不是核苷酸。 • 假定进化模型具有直接系统发生关系,循环讨论:序列→ 矩阵 ; 矩阵→ 新的序列 • 基于一小部分关系紧密的分子 • Gonnett, Cohen & Benner • 所有的模型是用达尔文的 1,700,000 匹配对所有的数据库极性 匹配 直接在不同 PAM 编译进化矩阵 • BLOSUM = 空位氨基酸替代矩阵- Henikoff&Henikoff 1992 基于一个较大的数据库,该数据库从 ~500Prosite 家族得到,这些 家族用用每个家族定义的保守氨基酸模式” 块”由 Bairoch 确认 典型的用多序列比对 AA 替代注释,得到对数几率比率 例如…块模式 60 %确认得到 Blosum60 矩阵,等等 … 如:基于非缺口比对的保守函数块。 Blosum62 -在信息内容和数据量最优匹配 不是基于直接的进化模型
要点大纲(续)
多序列比对: MSA, Clustal 阻断分析 特殊位置得分矩阵 (PSSM)
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