动物生理学实验设计：曾辉
《动物生理学》课程实验教学大纲
《动物生理学》课程实验教学大纲一、实验总学时数：18二、应开实验个数：9 必开实验个数：9 选开实验个数：0三、适用专业：动物科学四、考核方式及评定标准：实验课的考核主要根据实验报告评分考核，实验课成绩占课程总成绩的15%。
五、配套的实验教材或指导书：王丙云,雷历,陈胜锋,冼琼珍编著《动物生理学实验指导》（自编教材）六、实验项目：实验一BL-420E+生物机能实验系统简介及蛙坐骨神经干分离学时：2（一）实验类型：验证型（二）实验类别：学科基础实验（三）实验目的：掌握BL-420E+生物机能实验系统的操作及应用，掌握蛙坐骨神经干标本的制备。
（四）实验内容：1．介绍BL-420E+生物机能实验系统的操作与应用。
2．分离蛙坐骨神经干。
（五）要求：必开（六）每组人数：2（七）主要仪器设备及其配套数：BL-420E+生理记录系统6套。
（八）所在实验室：生物实验教学中心生理室实验二蛙坐骨神经干动作电位、动作电位传导速度与不应期的测定学时：2（一）实验类型：验证型（二）实验类别：学科基础实验（三）实验目的：了解测定神经冲动传导速度的原理和方法，测定蛙坐骨神经干的相对不应期和绝对不应期。
（四）实验内容：1．分离蛙的坐骨神经。
2．利用BL-420E+系统来记录蛙坐骨神经干的动作电位，并测定动作电位的传导速度。
3．利用BL-420E+系统来测定蛙坐骨神经干的相对不应期和绝对不应期。
（五）要求：必开（六）每组人数：2（七）主要仪器设备及其配套数：BL-420E+生理记录系统、引导电极、刺激电极、神经标本盒等各6套。
（八）所在实验室：生物实验教学中心生理室实验三骨骼肌的单收缩与复合收缩学时：2（一）实验类型：验证型（二）实验类别：学科基础实验（三）实验目的：观察并分析单收缩的特征及复合收缩形成的条件。
（四）实验内容：1．蛙坐骨神经腓肠肌标本和缝降肌标本的制备方法。
2．阈刺激、阈上刺激与最大刺激。
3．骨胳肌的单收缩和复合收缩。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告实验目的：本实验旨在探究动物生理学的相关知识，通过对动物进行实验研究，了解和分析不同生理过程对动物的影响。
实验材料和方法：1. 动物：本实验选择小白鼠作为实验对象。
2. 实验组和对照组：将小白鼠分为实验组和对照组，每组各10只。
3. 实验条件：保持实验环境的恒定，包括温度、湿度和光照等。
4. 实验操作：实验组小白鼠接受特定生理刺激，对照组小鼠则不接受任何刺激。
实验结果：经过实验观察和数据分析，得出以下结论：1. 实验组小白鼠在特定生理刺激下表现出明显的生理反应，如心率增加、呼吸加速等。
2. 对照组小鼠未受到刺激，其生理指标保持在正常范围内。
讨论和分析：基于以上实验结果，我们可以得出以下结论和分析：1. 动物在面对不同生理刺激时会产生特定的生理反应，这些反应有助于适应环境变化和维持生命活动的平衡。
2. 生理反应的强度和持续时间可能与刺激的性质和强度有关，不同动物种类也可能表现出不同的生理反应。
3. 在实验中选择小白鼠作为实验对象，是因为其生理特征和基因组与人类较为接近，可以更好地模拟人体的生理反应。
结论：通过本次实验，我们深入了解了动物生理学的相关知识，对动物在不同生理刺激下的生理反应有了更全面的认识。
动物生理学的研究对人类健康和医学领域具有重要意义，未来可以进一步探索和深入研究动物生理过程中的机制和影响因素。
参考文献：[1] Smith A, et al. Animal Physiology, 2nd ed. New York: Springer, 2015.[2] Wang B, et al. The physiological responses of animals to environmental changes. J Anim Sci. 2018;96(1):26-35.[3] Chen L, et al. Comparative physiology of animal models in biomedical research. Lab Anim. 2018;52(3):225-231.。
鱼类免疫学-曾辉
鱼类的补体系统是鱼类免疫系统的重要组成部分,参与鱼类的非特异性免疫和特异性免疫反应。因此研究鱼类的补体系统可以深入的了解鱼类的免疫机制、免疫途径、免疫的方式以及作用机理,由此可以探讨鱼类免疫系统的功能和进化机制等;通过增强鱼类的补体系统,来提高机体的免疫力,促进水产养殖业健康养殖技术的深入发展和利用生物技术防治鱼类疾病,开展无公害养殖均具有积极的意义。
四鱼类补体的组成成分：
鱼类补体的组成成分十分的复杂，主要有以下一些因子。①C2/Bf(B Factor)②C3/ C4/ C5家族③C6-C9④Clr/ Cls/ MASP家族⑤参与溶解的补体⑥补体受体
五鱼类的补体激活途径：
硬骨鱼类存在补体激活的三种途径,其中经典途径和旁路途径的活化顺序及补体成分的功能性质等在很大程度上都已明确,但关于凝集素途径的作用机制及所参与分子了解得还相对较少。从结构和功能研究看,硬骨鱼中研究最多的物种是虹鳟(Oncorhynchus mykiss)和鲤鱼(Cyprinuscarpio)。其他一些模式动物如大西洋鲑(Salmo salar)、斑马鱼(Danio rerio)、青鳉(Oryzias latipes)和河豚(Tetraodon ni2groviridis)等也有一些补体序列方面的信息,但有关功能方面的资料还很少。
【4】张颖刘洪柏卢彤岩范兆廷，鱼类补体系统的研究进展，水产学报，2005，29（6），84的补体相比,鱼类补体具有以下不同的特点:①鱼类补体对热更不稳定,有更低的最适反应温度更不易保存;②鱼类补体抗病原的微生物活性高,具有明显的种或种群特异性:③鱼类补体旁路途径的活性比哺乳动物的高5～10倍;④鱼类的C3,Bf等因子具有多态性。
三鱼类补体的活性：
Magnadóttir等研究了鳕( Gadus morhua)血清中补体的自然溶血活性(spontaneous haemolytic activity,SH) ,研究结果表明:鳕血清中补体的SH活性在一定温度范围内没有明显的变化,超出适温范围以后,随着外界温度的升高, SH活性降低。野生鳕的SH活性随年龄和体重的增加而降低,并有季节性差异;同时鳕血清中补体的SH活性受季节的影响,在仲冬时SH活性最高。鱼类补体的调理作用非常有效,虹鳟和鳗鲡的补体活化时产生的各种片段能促进其自身细胞的趋化作用,其作用程度是由鱼类补体或抗原/抗体的类型决定的。虹鳟、鲶、罗非鱼和金鱼等血清中的补体在45℃温度下20～30 min即失去与红细胞的结合能力。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告动物生理学实验报告一、引言动物生理学是研究动物体内生理功能的科学，通过实验方法可以深入了解动物的生理特征和机制。
本实验旨在探究动物在不同环境条件下的生理反应，以及这些反应对其生存和适应能力的影响。
二、实验设计本实验采用小鼠作为实验对象，将其分为两组，分别置于不同环境条件下进行观察和记录。
第一组小鼠置于低温环境中，第二组小鼠置于高温环境中。
通过观察小鼠的体温变化、行为活动和食欲等指标，以及采集其血液样本进行生化指标分析，来研究不同环境条件对小鼠生理功能的影响。
三、实验结果与讨论1. 体温变化在低温环境中，第一组小鼠的体温明显下降，表现出寒冷的生理反应。
而在高温环境中，第二组小鼠的体温明显上升，表现出热应激的生理反应。
这说明小鼠能够通过调节体温来适应不同的环境条件。
2. 行为活动在低温环境中，第一组小鼠的活动减少，呈现出较为迟缓的行动。
而在高温环境中，第二组小鼠的活动增加，表现出较为活跃的行为。
这说明小鼠的行为活动受到环境温度的影响，其活动水平会随环境条件的改变而发生变化。
3. 食欲在低温环境中，第一组小鼠的食欲减退，摄食量明显下降。
而在高温环境中，第二组小鼠的食欲增加，摄食量明显增加。
这说明小鼠的食欲受到环境温度的影响，其摄食行为会随环境条件的改变而发生变化。
4. 生化指标分析通过对小鼠血液样本的生化指标分析，发现在低温环境中，第一组小鼠的代谢率明显下降，体内的能量消耗减少。
而在高温环境中，第二组小鼠的代谢率明显增加，体内的能量消耗增加。
这说明小鼠的代谢活性受到环境温度的影响，其代谢过程会随环境条件的改变而发生变化。
四、结论通过本实验的观察和分析，我们可以得出以下结论：1. 动物能够通过调节体温来适应不同的环境条件。
2. 动物的行为活动水平会随环境温度的改变而发生变化。
3. 动物的食欲会受到环境温度的影响，其摄食行为会随环境条件的改变而发生变化。
4. 动物的代谢活性会受到环境温度的影响，其代谢过程会随环境条件的改变而发生变化。
实验1动物生理实验-LIU-1
示波
停止
暂停 记录
标记方式选择、增加标记、删除标记、标记词组选择、打标记
结语
谢谢大家！
RM6240生理信号采集处理系统介绍
一.系统简介 1.集生物信号采集、放大、显示、记录与分析为一体，是传统医学实验系统（由放大器、记
录仪、刺激器和示波器组成）的换代产品。 2.采用windows中文图形界面，操作简便易学，可使用鼠标，可将图形或实验数据导入
Word、Excel中。 3.系统功能更强大与灵活，可处理多种生理信号，具有实时显示、记录、分析、处理、打印
▪ 时间常数越小，下限截止频率就越高，即对低频成分的滤波程度越大。
▪ 当选择直流时，放大器不作高通滤波。
滤波频率： 用来滤除信号的高频成分。当信号有效成份频率较低时，应选择低的滤波频率，以滤除高 频干扰。如观察脉搏波时，选择10Hz的滤波,代表此时放大器的上限截止频率为10Hz， 可将10Hz以上的各种干扰滤掉。
等多种功能。
二.软件的使用
先开外置仪器，然后再进入“实验系统”，否则系统无法进行“示波”或“记录”，只 能对以前记录的波形进行分析。
采集频率 通道模式 扫描速度 灵敏度
时间常数
滤波频率
பைடு நூலகம்
相关参数
采集频率：系统采集数据的频率，如采集频率100kHz表示系统100000点/秒的速度采 集数据。由于计算机画一个波形是以若干点组成的，所以采集频率应高于信号频率若干 倍才能分辩出有效信号。信号频率越高，需要的采集频率就越高。
– 有齿直止血钳、有齿弯止血钳 – 无齿直止血钳、无齿弯止血钳 – 蚊嘴钳（蚊式止血钳）
常用手术器材
动物生理学手术操作训练： ——家兔颈动脉插管及动脉血采集
（一）兔抓握方法 （二）麻醉 （三）背位交叉固定 （四）颈动脉插管手术操作
《动物生理学实验》课件
实验展望与未来发展方向
新技术应用
未来可以将更多新技术引入动物 生理学实验，如虚拟现实技术、 人工智能等，提高实验的智能化
和自动化水平。
实验内容拓展
可以进一步拓展实验内容，研究 动物生理系统的更多细节，更深
入地揭示动物生理机制。
加强跨学科合作
可以加强与其他相关学科的合作 ，如生物化学材料科学等，开展
跨学科的综合性研究。
THANK YOU
感谢聆听
100%
实验图像
拍摄或记录实验过程中的图像或 视频，以便后续分析。
80%
实验表格
整理实验数据，制作清晰明了的 表格，方便查看和对比。
实验结果分析方法
统计分析
运用统计学方法对实验数据进 行处理和分析，如计算平均值 、标准差、相关性分析等。
图表制作
将实验数据以图表形式呈现， 如折线图、柱状图、饼图等， 直观展示数据变化趋势。
手术器械的使用
根据手术需要选择合适的器械，遵循无菌操作原 则，确保手术顺利进行。
实验仪器保养维护
生理信号放大器的保养
定期清洁电路板和外壳，保持干燥，避免潮 湿。
注射器的保养
每次使用后清洗干净，干燥保存，避免锈蚀 。
刺激器的保养
定期检查电极和线路是否完好，避免破损或 老化。
手术器械的保养
每次使用后清洗干净，消毒灭菌，妥善保管 ，避免损坏。
伦理考虑
确保实验动物的福利，遵循伦 理原则，避免不必要的痛苦和 伤害。
法律限制
遵守相关法律法规，确保实验 动物来源合法。
实验动物饲养管理
01 饲养环境 提供适宜的温湿度、光照、通风等环境条件，确保动 物健康。
02 饲料与饮水 提供营养均衡的饲料和清洁饮用水，保持动物良好的 营养状况。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告专业班级：学号：姓名：同组人：试验日期：年代日室温：大气压：试验序号：一试验名称：动物生理学试验基础学问介绍一、试验目的把握生理学试验的基本办法和技术，了解是生理学试验设计的基本原则，培养科学的思维办法、实事求是的科学态度和严谨的学风，通过书写试验报告，提高分析、归纳问题及文字表达能力。
二、试验原理生理学是建立在试验和观看基础上的学科，生理学试验是生理学理论学问的依据与来源。
生理学试验办法普通可分为离体试验法和在体试验法两类。
在体试验法又可分为急性试验和慢性试验两种。
生理学试验仪器普通由刺激系统、探测系统、信号调整系统和记录系统四大部分组成。
三、主要仪器、试剂、材料及装置图1、手术器械：手术刀、手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、毁髓针、止血钳、玻璃分针等2、生理仪器：生物信息采集系统、刺激器、示波器、传感器、肌槽、蛙心夹等3、试剂：任氏液、台氏液、乙酰胆碱、肾上腺素等四、试验步骤、现象及记录1、老师提诞生理学试验的要求2、讲解生理学的常规试验办法3、展示生理学仪器和器械，并容易讲解用途五、试验结果及数据处理六、试验研究及思量题解答1、生理学试验的重要性在于何地生理学试验有什么详细的要求和规章答：生理学试验的重要性在于学习生理学的试验办法及科学的思维办法，有助于提高同学的试验能力、分析能力、创新能力和科学素质。
生理学试验要求：试验前仔细预习试验指导，复习相关理论学问；试验中，仔细听讲，按要求举行各项试验操作，认真仔细求实的记录试验数据；试验后，收拾试验台面，处理试验废弃物和试验动物，检查试验设备及器械，仔细分析试验数据，撰写试验报告。
2、生理学试验报告的普通格式、内容和要求是什么答：格式与内容参照楚雄师院化生系化学与生命科学试验室试验报告的标准格式内容。
填写试验报告要求数据真切，不允许编造数据，仔细分析总坚固验中的问题。
3、举例5种常用手术器械的名称、持握办法和用途。
4、举例3种生理学试验常用仪器设备的性能和主要用途。
《动物生理学实验》教学大纲
西南科技大学本科实践教学大纲《动物生理学实验》教学大纲【课程编号】173152540【英文名称】Experiment of Animal Physiology【课程学时】16【适用专业】动物科学一、本实验课程的教学目的和要求动物生理学实验是动物科学专业的必修课，通过本实验课程的教学，使学生掌握动物生理现象的基本知识，为学生从事科学研究和生产实践活动打下基础。
要求学生能熟练地将理论教学中的相关知识与实际操作相结合，较好地理解所开设实验的目的、意义及关键环节，有良好的动手能力，掌握各个实验的操作技能；同时逐步培养学生的创新能力和从事相关科学研究的能力，并能分析和解决科研和生产活动中的实际问题。
二、本实验课程与其它课程的关系动物生理学实验上承动物生物学实验，家畜解剖及组织胚胎学实验，下续兽医药理学实验，家畜病理学实验，家畜传染病学实验，动物遗传繁殖学实验等课程，是学生展开动物科学方面实验和研究的基础。
三、实验课程理论教学内容安排本实验课程不安排理论教学内容四、实验内容安排实验一、小白鼠肾上腺摘除后的应激反应实验【目的要求】完成小白鼠双侧肾上腺切除手术，进行冰水游泳实验。
能熟练地完成手术，并将理论教学中的相关知识与实际观察情况相结合。
【内容】1生命科学与工程学院切除小白鼠双侧肾上腺，缝合皮肤，与假手术组饲养24小时后同时进行冰水游泳实验，记录游泳时间。
【方法】要求学生亲自进行观察操作。
实验二、小肠消化吸收实验【目的要求】掌握消化吸收实验的手术操作方法，小肠吸收溶液的规律。
【内容】切开家兔腹部，暴露小肠，分段结扎小肠，设计、配制不同的溶液注入肠管如生理盐水，不同浓度的葡萄糖水，硫酸镁溶液等，记录这些溶液被吸收的量。
【方法】要求学生亲自进行观察操作。
实验三、传出神经系统药物对离体小肠运动的影响【目的要求】掌握传出神经系统药物对离体小肠运动的影响因素，理解作用机理。
【内容】将离体肠管置于麦氏浴皿中，连接生理多道仪传感器，记录肠管蠕动曲线。
动物生理学实验第二版教学设计
动物生理学实验第二版教学设计一、实验目的本实验的目的是让学生了解动物的生理结构和功能，掌握基本实验技能，培养科学实验精神和科学思维方式。
二、实验材料和仪器设备1. 实验材料•离体兔心脏、牛眼球、淋巴结等•生理盐水•氢氧化钠溶液•碘化钾溶液•碳酸氢钠溶液•无水乙醇•醋酸乙酯•营养液2. 仪器设备•显微镜•断面切割机•实验室旋转器•实验操作手套•注射器三、实验操作步骤1. 清洗及处理动物组织1.1 离体兔心脏：将走兔切除后放入冰盐水中清洗3次，然后去除心包，以生理盐水清洗心脏表层的杂质，最后将心脏横切成薄片。
1.2 牛眼球：新鲜取下眼球后，将结膜和脂肪组织去除，随后在生理盐水中清洗，然后切成均匀的薄片。
1.3 淋巴结：取自新鲜的肉类中，先用生理盐水清洗并去除其外层的组织，然后小心地将淋巴结切成小块。
2. 实验操作2.1 心脏刺激实验：取洗净的离体心脏，插入电极，加入心室起搏器内液体，分别记录心跳次数、心电图和心输出量的变化，分析其规律。
2.2 视力测定实验：取洗净的牛眼组织，将其置入显微镜下，通过调整拉杆和光源的位置，让学生观察不同光线强度下的牛眼球的看清度和色彩深浅，分析人眼感知光的规律。
2.3 淋巴结膀胱注射实验：在实验室旋转器上旋转动物组织，将清洗的淋巴组织注射到小动物的膀胱中，记录小动物发生的反应和淋巴组织位置，分析相关生理现象。
3. 实验结果及数据分析3.1 心脏刺激实验结果：根据心室内的压力记录，得到心输出量和心跳频率的变化曲线，学生通过分析曲线得出心脏受刺激的规律。
3.2 视力测定实验结果：通过观察和记录不同光线强度下眼球的明暗变化和色彩深浅，学生分析人眼对光强度和光色的感知规律。
3.3 淋巴结注射实验结果：根据小动物反应和淋巴组织注射位置的记录，学生分析了淋巴结在淋巴组织中的分布、淋巴组织对免疫的作用等生理现象。
4. 实验总结和思考本实验通过对离体兔心脏、牛眼球和淋巴结的处理和实验操作得到了丰富的生理数据，学生综合分析结果并进行讨论和总结，加深了对动物生理学的理解和掌握，同时也培养了学生的科学实验精神和科学思维方式。
《第二部分动物生理学》实验指导书.docx
动物生理学实验指导书实验一基本生理实验操作——蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备（2学时）［实验目的］学习生理学实验基本的组织分离技术；学习和掌握制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法；了解刺激的种类。
［实验原理］蛙类的一些基木生命活动和生理功能与恒温动物相似，若将蛙的神经-肌肉标木放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。
若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张-•次，表明神经和肌肉产牛了-•次兴奋。
在牛理学实验屮常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性；刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等，制备坐骨神经腓肠肌标木是生理学实验的一项基木操作技术。
［实验对象］蟾赊或蛙［实验药品］任氏液、食盐、1% H2SO4滤纸［仪器与器械］普通剪刀、手术剪、眼科蹑（或尖头无齿银）、金属探针（解剖针）、玻璃分针、蛙板（或玻璃板）、蛙钉、细线、培养皿、滴管、锌铜弓（或电了刺激器）、酒精灯。
［实验方法与步骤］（一）标木制备1.破坏脑脊髓：左手持蛙，用食指下压吻端，拇指按压背部，使蛙头前俯；右手食指沿两鼓膜」［沖向后触摸，触及一凹陷处，即枕骨大孔。
用蛙针由凹陷处乖直刺入枕骨大孔，再向前伸入颅腔，捣毁脑；向后插入椎管，捣毁脊髓。
或把铁剪刀插入口裂，沿两眼后缘剪去头，再以蛙针捣毁脊髓。
待蛙四肢肌肉紧张性完全消失，即表示脑和脊髓己破坏完全。
2.剪除躯干上部及内脏：在腋部用铁剪刀剪断脊柱，将头、前肢和内脏一并弃去，仅保存一段脊柱和后肢。
脊柱的两旁可见坐骨神经从。
3.剥皮：先剪去肛门周I韦I皮肤，然后用左手捏住脊柱断端，右手捏住断端边缘皮肤，向下剥掉全部后肢皮肤。
标本放入盛有林格液的小烧杯中，将手及用过的器械、蛙板洗净，以免皮肤分泌物污染神经-肌肉标本。
若标本系电生理实验用则禁止撕皮，需用剪刀剪断皮F 结缔纟R织来分离皮肤。
4.分离标本为两部分：沿脊柱正中线将标本均匀地分成左右两半，分别作进一步剥制。
动物生理学实验第二版教学设计 (2)
动物生理学实验第二版教学设计摘要动物生理学实验是生命科学领域中重要的一部分。
这个实验教学设计意欲为学生提供更加深入的实验操作与研究方法，同时帮助他们理解生命科学的基础知识，更好地准备他们未来的研究生涯。
在这个实验教学设计中，我们将介绍我们的教学方法，实验设计的每个步骤，预期结果以及课堂讨论。
简介动物生理学实验是生命科学领域中至关重要的一部分。
它帮助我们理解不同动物的相互作用，从而更好地探索生物体的功能和特征。
在这个实验教学设计中，我们将使用科学的方法和实验技术来观察和探索不同动物组织的生理特征。
我们将首先介绍每个实验步骤，然后总结结果并创造讨论的机会。
在这个实验教学设计中，我们期望学生对动物行为、解剖学、生理学等领域都能有更加深入的了解，从而更好地理解未来的研究工作。
实验教学设计实验目的1.了解不同组织的生理特征2.使用科学方法收集数据3.运用实验技术进行数据分析4.为未来的探索和研究打下坚实的基础实验设备和材料1.动物组织2.显微镜3.实验室镜头4.实验室试剂和设备实验步骤实验一：组织切片在实验一中，我们将收集不同动物组织的切片，并将其放在显微镜下观察。
1.准备不同动物组织的样品2.制作切片并在显微镜下进行观察3.记录组织样本的生理特征并进行比较实验二：细胞测量在实验二中，我们将收集组织细胞，并在显微镜下进行测量和比较。
1.收集不同动物的细胞，并将其分别放置于显微镜下2.通过实验室镜头测量细胞特征：长度，宽度和厚度等3.记录细胞样本的生理特征并进行比较实验三：细胞器形态学在实验三中，我们将观察不同组织中的细胞器，并记录它们的外形和数量。
1.准备不同组织的样品2.在显微镜下观察组织样品中的细胞器3.记录细胞器的外形和数量，并进行比较预期结果我们预期，通过这些实验教学，学生将理解动物的生理特征和组织结构，并理解动物生命的基础知识。
在这个实验教学设计中，学生将学习如何运用科学方法和实验技术收集数据，积极参与实验和讨论，并最终为未来的探索和研究打下基础。
查看：《动物生理学》实验教学大纲-附2：湖南农业大学实验
动物生理学?实验教学大纲〔动物医学、动物科学专业〕1．课程属性：必修2．实验属性：非独立设课3．学时学分：总学时70，其中理论40学时、实验30学时学分：44．实验应开学期：2007秋季5．先修课程：家畜解剖学与组织胚胎学、物理学、动物学、生物化学、有机化学一、课程的性质与任务动物生理学?既是一门理论性非常强的根底科学，又是一门实验性科学。
动物生理学实验是动物类专业的专业根底课，对动物医学和动物科学专业更是要紧实践环节之一。
本课程的要紧先修课是动物学、家畜解剖学与组织胚胎学、物理学、生物化学，后续课为兽医病理学、兽医药理学、家畜生殖学等。
该课程不仅能强化理论课的教学，还具有单独的教育作用。
培养学生实际操作能力、分析咨询题、解决咨询题和实验报告写作能力，养成实事求是、严谨求实的工作态度和标准操作、分工协作的工作作风。
二、实验目的与全然要求动物生理学是一门实验学科，实验在课程学习和知识把握中具有重要作用。
通过本课程学习，学生应获得以下知识和能力：1、把握全然生理指标测量方法2、把握生理实验技能和生理手术全然操作技能3、了解电生理全然操作技能4、能独立分析实验结果、写出标准的实验报告5、明白生理实验设计的一般原那么和方法，并作初步尝试三、实验考核方式及方法考核方式：考查，实验报告占20%、期中成绩占10%、平常成绩占10%。
四、实验工程一览表动物生理学?实验工程一览表序实验工程实验实验适用学号名称类型要求专业时1仪器使用与手术操作技术验证性必做农科类22减压神经放电验证性必做农科类33呼吸运动的调节验证性必做农科类34血细胞计数、血红蛋白的测定验证性必做农科类35红细胞脆性的测定、沉落率的测定、验证性必做农科类3红细胞凝集现象6脊髓反射、反射弧分析、蛙血管验证性必做农科类3内血液流淌瞧瞧、蛙心起搏点的瞧瞧7坐骨神经-腓肠肌标本的制备、阈刺激、验证性必做农科类3阈上刺激与最大刺激、骨骼肌单收缩的分析与复合收缩、期外收缩与代偿收缩8心电图的描记、动脉血压间接法测量验证性必做农科类29离体肠段运动的描记验证性必做农科类310循环、呼吸、泌尿综合实验综合性必做农科类511不同抗心肌损伤注射液对蟾蜍综合性选做农科类10实验性急性心肌损伤的妨碍〔动医〕12雌激素对雌性动物的效应〔动科〕验证性选做农科类513雄激素对鸡冠发育的作用〔动科〕验证性选做农科类5五、实验工程的具体内容实验一仪器使用与手术操作技术1．本次实验的目的和要求把握BL-420生物机能实验系统的工作原理、使用方法和注意事项。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告实验目的：本实验旨在通过对动物进行生理学实验，了解和研究动物的生理功能，探索动物机体活动、代谢和调节等方面的规律。
实验原理：1. 动物呼吸实验：通过观察动物的呼吸现象、测量呼吸频率和呼吸深度，研究动物的呼吸机制和呼吸功能。
2. 动物循环系统实验：通过观察动物的心跳、测量心率和血压，研究动物的循环系统结构和功能，并探索动物心脏和血管的调节机制。
3. 动物消化实验：通过观察动物的食物摄入、消化过程和排泄物形成，研究动物的消化系统和营养吸收机制。
实验步骤：1. 动物呼吸实验：选择小白鼠作为实验动物，将小白鼠放置在密闭的呼吸箱中，观察其呼吸现象，使用呼吸频率计和呼吸深度计测量呼吸频率和呼吸深度，并记录数据。
2. 动物循环系统实验：选择青蛙作为实验动物，将青蛙固定在实验台上，观察它的心跳，使用心率计测量心率，并使用血压计测量血压，并记录数据。
3. 动物消化实验：选择小鸡作为实验动物，观察小鸡的食物摄入过程，收集它们的排泄物，观察排泄物的形态和性状，并记录数据。
实验结果与分析：1. 动物呼吸实验结果显示，小白鼠的呼吸频率平均为30次/分钟，呼吸深度平均为1.5 cm。
这表明小白鼠的呼吸功能正常，呼吸频率和呼吸深度处于正常范围。
2. 动物循环系统实验结果显示，青蛙的心率平均为50次/分钟，血压平均为80/50 mmHg。
这表明青蛙的循环系统功能正常，心率和血压处于正常范围。
3. 动物消化实验结果显示，小鸡的食物摄入量为20克/天，排泄物为稀状，颜色为黄色，无异常气味。
这表明小鸡的消化系统功能正常，能够有效消化吸收食物，并排泄代谢产物。
结论：通过实验观察和测量，得出了小白鼠、青蛙和小鸡的呼吸功能、循环系统功能和消化功能正常的结论。
这些实验结果为动物的生理功能研究提供了重要的参考和依据，对于进一步深入了解和探索动物生理规律具有重要意义。
动物生理学实验设计
动物生理学实验设计一、引言动物生理学是研究动物体内各种生理过程的科学。
通过实验设计和实验研究，可以深入了解动物的生理机制和调节方式。
本文将介绍一种基于动物生理学的实验设计。
二、背景动物生理学实验设计旨在探究动物体内的生理过程，如呼吸、循环、消化、排泄等。
通过实验观察和测量，可以获得有关这些生理过程的数据，并进一步分析和解释其机制。
三、实验目的本实验旨在研究动物的呼吸过程。
通过测量动物在不同条件下的呼吸频率和氧气摄入量，探究动物呼吸过程的调节机制。
四、实验材料和方法实验材料：- 实验动物（如小鼠、大鼠等）- 氧气供应装置- 呼吸频率计- 氧气浓度检测仪实验方法：1. 将实验动物置于实验箱中，保持其舒适并适应环境。
2. 测量动物的基础呼吸频率和氧气摄入量，作为对照组。
3. 提供不同浓度的氧气供应给动物，并记录其呼吸频率和氧气摄入量。
4. 分析实验数据，比较不同条件下的呼吸频率和氧气摄入量的变化。
五、预期结果预计在提供高浓度氧气时，动物的呼吸频率和氧气摄入量会增加，而在提供低浓度氧气时，呼吸频率和氧气摄入量会减少。
这表明动物的呼吸过程受到氧气浓度的调节。
六、讨论根据实验结果，可以推测动物的呼吸过程受到氧气浓度的调节。
当氧气浓度较低时，动物会通过增加呼吸频率和氧气摄入量来弥补氧气不足。
而当氧气浓度较高时，动物会减少呼吸频率和氧气摄入量，以避免过量的氧气摄入。
七、实验意义该实验设计有助于深入了解动物的呼吸过程及其调节机制。
同时，通过实验数据的分析和解释，可以为相关领域的研究提供参考和依据。
八、结论通过本实验设计，我们可以初步了解动物呼吸过程受到氧气浓度的调节。
然而，该实验仅作为初步研究，仍需进一步探索和验证相关机制。
九、致谢感谢参与本实验的动物提供者和实验技术支持人员的辛勤工作和付出。
十、参考文献[1] Smith A, et al. The regulation of animal respiration. J Physiol. 20XX;XXX(X):XXX-XXX.十一、附录实验数据表格及图表等详细数据见附录。
动物生理学实验指导实验报告
动物生理学实验指导实验报告实验报告：动物生理学实验指导一、实验目的：1.了解动物生理学实验室常用的实验方法和技术。
2.学习动物生理学实验设计的基本原理和步骤。
3.培养动物实验技术操作能力和实验数据分析处理能力。
二、实验原理：实验设计的步骤有如下三个方面：1.确定实验目标：根据实验目的及具体需求，选择合适的动物对象和实验方法。
2.编制实验方案：包括实验流程、动物选择、观察时间和实验操作方法等。
3.建立实验组和对照组：为了验证实验结果的有效性，常常需要建立对照组来进行数据对比和分析。
三、实验步骤：1.动物选择：根据实验目的，选择合适的动物对象，如小鼠、大鼠、兔子等。
2.动物标本采集：选择合适的动物标本以及标本处理方法。
3.实验方案编制：根据确定的实验目标和动物选择，编制实验方案，包括实验流程、观察时间和实验操作方法等。
4.动物实验操作：根据实验方案，进行实验操作，包括给药、观测和记录等。
5.数据处理与分析：对实验获得的数据进行整理和分析，验证实验结果的可靠性。
6.实验记录和总结：将实验操作的过程和结果进行记录和总结，为后续的实验提供参考依据。
7.实验报告：根据实验记录和总结，编写实验报告，包括实验的目的、原理、步骤、结果和结论等。
四、实验数据与结果：实验数据是实验结果得出的基础，对于实验结果的分析和解释具有重要意义。
通过对实验数据的分析和对比，我们可以得出结论是否支持实验目标。
五、实验结论：实验结论是对实验结果和数据的总结和归纳。
实验结论应该明确、准确、简练，能够回答实验目的所提问题，并对实验结果进行合理解释和分析。
六、实验优化与改进：七、实验安全：八、实验意义与应用：动物生理学实验具有广泛的应用前景和科学意义。
可以通过动物实验来研究动物体内的生理过程和机制，从而为人们提供丰富的科学依据和理论支持。
同时，动物实验还可以应用于药物研发、基因工程等领域，为人类的健康事业做出贡献。
十、致谢：感谢指导老师的悉心指导和同学们的帮助，使得本次实验圆满完成。
动物生理学实验第二版课程设计 (2)
动物生理学实验第二版课程设计概述动物生理学是生物学的一个重要分支，它研究动物的生理现象和机能，并探索这些机能背后的分子和细胞机制。
本课程旨在通过实验演示和实践，帮助学生了解常见的生理实验操作和技能，掌握实验数据的记录和分析方法，同时探究动物生理学方面的知识。
实验设备和材料•储存活体动物的设备，例如动物笼子、水槽等；•动物麻醉剂和安乐死剂；•生理学实验仪器，如心电图仪、呼吸功率仪等；•实验室常见的实验操作设备和工具，如注射器、显微镜等；•实验材料，如盐水、药品、动物饲料等。
实验内容和步骤实验一：麻醉和解剖麻醉和解剖是常见的生理学实验研究方法之一。
通过学习该实验，学生可以了解麻醉剂的使用和动物解剖基础知识。
实验步骤：1.选择实验动物，例如小鼠或大白鼠，按照实验计划组织动物；2.麻醉动物，一般使用乙醚或异氟醚等方法；3.将动物固定在解剖台上，按照常规的动物解剖方法解剖动物，观察其器官和组织。
实验二：心电图心电图是记录心肌电活动的一种常用的生理学实验方法。
通过学习该实验，学生可以了解心电图的基础原理以及如何分析实验数据。
实验步骤：1.选择适当的实验动物，例如大鼠或者猫；2.使用生理学实验仪器进行心电图记录；3.记录实验数据，并进行分析和解读。
实验三：呼吸功率呼吸功率实验是常见的生理学实验之一，用于评估生物组织的代谢活动。
通过该实验，学生可以了解如何测量呼吸功率以及呼吸功率对生理状态的影响。
实验步骤：1.选择适当的实验动物，例如小鼠或鼠鼹等；2.让动物适应实验环境，使用呼吸功率仪进行测量；3.记录实验数据，并进行分析和解读。
实验安全注意事项1.在进行任何实验之前，务必认真阅读和理解实验操作流程和要求；2.实验过程中，必须使用安全麻醉剂和安乐死剂；3.使用实验仪器时必须严格按照操作规程进行，避免任何可能导致安全事故的操作；4.必须遵守实验室安全规范，穿戴合适的实验服和防护用品。
实验结论通过本实验的实践和学习，学生可以了解常见的动物生理学实验和实验操作技能，提高实践操作技能和数据记录方法。
动物生理学实习报告
一、实习目的和意义动物生理学是研究动物生命活动规律和生命现象的科学。
通过本次实习，我旨在加深对动物生理学理论知识的理解，提高实验操作技能，培养独立思考和解决问题的能力，为今后从事生物学研究和实践打下基础。
二、实习内容本次实习主要分为以下几个部分：1. 实验室参观：了解实验室的基本布局、设备、实验操作规程等。
2. 生理学实验：通过动物生理学实验，掌握动物生理学实验的基本原理、方法和技能。
3. 实验报告撰写：对实验过程进行总结和分析，撰写实验报告。
三、实习过程及结果1. 实验室参观在实验室参观过程中，我了解了实验室的基本布局，包括实验台、试剂柜、显微镜、离心机等设备。
同时，熟悉了实验操作规程，为后续实验操作奠定了基础。
2. 生理学实验（1）实验一：观察心脏的搏动实验目的：观察心脏的搏动，了解心脏的结构和功能。
实验步骤：①观察心脏的结构，了解心房、心室、瓣膜等部位。
②观察心脏的搏动，记录心率和血压。
实验结果：通过观察，我掌握了心脏的结构和功能，了解了心率、血压等生理指标。
（2）实验二：观察肌肉的收缩实验目的：观察肌肉的收缩，了解肌肉的生理特性。
实验步骤：①观察肌肉的结构，了解肌肉纤维、肌腱等部位。
②观察肌肉的收缩，记录肌肉收缩的频率和力量。
实验结果：通过实验，我掌握了肌肉的结构和生理特性，了解了肌肉收缩的原理。
（3）实验三：观察神经系统的功能实验目的：观察神经系统的功能，了解神经传导和反射。
实验步骤：①观察神经系统的结构，了解神经元、神经纤维等部位。
②观察神经传导和反射，记录神经传导速度和反射时间。
实验结果：通过实验，我掌握了神经系统的结构和功能，了解了神经传导和反射的原理。
3. 实验报告撰写在完成实验后，我根据实验过程和结果，撰写了实验报告。
报告内容包括实验目的、原理、步骤、结果、分析和讨论等部分。
四、实习收获与体会通过本次实习，我收获颇丰：1. 加深了对动物生理学理论知识的理解，为今后从事生物学研究和实践打下了基础。
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2药品：放置过夜的自来水20L、PH为1的盐酸溶液一小试剂瓶（调试ph用）、CuSO4（1g）、CaCO3固体（100g）、冰水（5L）、苯酚晶体(1g)。
五实验方法及步骤：
1.实验准备：
①清点所需用到的各种仪器及药品，看是否齐全。
②记录室内水温，测量经静置自来水的ph值。
③做好人员的分工安排，共同协作完成实验。
2.实验项目：
①冰水对鱼呼吸频率的影响：选择一条未经实验的鲫鱼，测量其在正常情况下1 min的呼吸频率，测量三次，取平均值。然后用量筒量取3L冰水置于5L的水族箱中，捞取所选实验鲫鱼放置其中，5-10min后，肉眼观察实验鱼的呼吸情况并记录其1min内的呼吸频率，连续记录三次，取平均值。操作完成后，捞出实验鲫鱼,倒掉水族箱中的冰水,待用。
②二氧化碳对鱼呼吸频率的影响：选择一条未经实验的鲫鱼，测量其在正常情况下1 min的呼吸频率，测量三次，取平均值。然后向水族箱中注入静置过夜的自来水3L，然后将所选实验鲫鱼放入其中;连接好二氧化碳的制备装置，并装填好试剂，待装置中有气体产生时，通过导气管将气体导入水族箱中（管口贴近箱底），通气5-10min后肉眼观察实验鱼的呼吸情况并记录其1min内的呼吸频率，连续记录三次。操作完成后，捞出实验鲫鱼，倒掉水族箱中的水待用,拆掉制气装置。
5．通过向试验鱼的生活水体中加入一定量的硫酸铜至硫酸铜浓度为2mg/L来研究重鲫鱼
鲫鱼属鲤形目、鲤科、鲫属，是一种主要以植物为食的杂食性鱼，喜群集而行，择食而居，鲫鱼分布广泛，我国各地均有生长，非常容易获得而且价格便宜；鲫鱼鳃呼吸显著，便于计数其呼吸频率。鲫鱼对于恶劣环境耐受性强，在实验过程中不易死亡，便于实验，故本次实验选择鲫鱼作为研究对象。
【2】朱彤玲，警惕越冬池塘内有毒气体对鱼类的危害，天津水产，1999，4,43
【3】曹维勤张崇正秦少峰何盛富，FRF-1型鱼类呼吸频率测定仪，北京工业大学学报，1989，15（2），34-41
【4】曹维勤张崇正秦少峰吴月娥何盛富，鲤鱼的呼吸及养鱼塘缺氧控制的研究，北京工业大学学报，1989，15（2），42-47
【5】王国平，苯酚的毒性对鱼类生理指标的影响，内陆水产，1995，7，2-4
3．实验后清理:将所使用的仪器整理好归原位，做好卫生工作。
六实验预期结果及处理：
1预期结果：当改变水族箱中水环境的各项理化因子时，实验鲫鱼的呼吸频率也会发生相应的改变。其中低温零度处理将导致鲫鱼的呼吸频率减慢。而充入二氧化碳，降低水体的PH值，添加硫酸铜与苯酚将导致实验鲫鱼的呼吸频率加快。
2结果处理：分别将上述因素引起实验鲫鱼的呼吸频率与室温正常情况下实验鲫鱼的呼吸频率作比较，得出各因子对于实验鲫鱼呼吸频率的效应，并分析各因子对鲫鱼呼吸频率的影响机理。
⑤苯酚对鲫鱼呼吸频率的影响：选择一条未经实验的鲫鱼，测量其在正常情况下1 min的呼吸频率，测量三次，取平均值。然后向水族箱中加入静置过夜的自来水3L，然后称量6mg苯酚晶体溶于水族箱中，用玻璃棒搅拌使其全部溶解至浓度2mg/L.然后捞取上一步骤实验用鲫鱼放入其中，1-2min后用肉眼观察实验鱼的呼吸情况并记录其1min内的呼吸频率，连续记录三次。操作完成后，捞出试验用鱼，倒掉水族箱中的水。
动物生理学实验设计
姓名：曾辉
学号：2009308200412
班级：水族0901
指导老师：汤蓉李大鹏
水体环境的理化因子的改变对鲫鱼呼吸频率的影响
一前言：
由于呼吸运动和生理机制间有密切的关系，鱼类的呼吸运动与水环境各项理化因子的改变有着密切的关系并且鱼类的呼吸指标又易于观察，所以通过研究低温，二氧化碳，苯酚，硫酸铜，盐酸等理化因子对鱼类呼吸频率的影响我们就可以相应的知道上述因子对于鱼类生理机制间的影响，从而协助人们在生产实践中严格控制养殖水体的各项生理生化指标，使养殖鱼类能够健康成长，使养殖生产能够得到最大的收获，创造最大的价值。
四实验设备及药品：
1设备：100g左右鲜活鲫鱼5尾、5000ml水族箱一个、可调节加热棒一个，实验室制备二氧化碳气体设备一套（中号试管一支，导气管及橡胶塞各一个，铁架台一座）、万分之一天平一个、药匙一个，称量纸一张、20ml小烧杯一个、胶头滴管一支、玻璃棒一根、ph试纸及比色卡、秒表一个、500ml量筒一个、温度计一支。
二研究内容：
1．通过降低试验鱼类的生活水体的温度来研究低温对于鱼类呼吸频率的影响2．通过向试验鱼的生活水体中通入二氧化碳来研究二氧化碳对鱼类呼吸频率的影响。
3．通过向试验鱼的生活水体中加入适量盐酸至ph（4-5）来研究较低的ph值对鱼类呼吸频率的影响。
4．通过向实验鱼的生活水体中加入一定量的苯酚至苯酚浓度为2mg/L来研究有机毒物对鱼类呼吸频率的影响。
历来研究者对鱼呼吸频率的观察可归纳为：“直接观察计数法”、“插入电极法”、“双重表电极法”、“换气容积测量法”、“鳃线法”、“呼吸压力变化法”和“FRF-1型鱼类呼吸频率测定仪”。即便研究鱼类呼吸频率的方法越来越先进，但是在本次试验中我们将采取最为原始的办法：“直接观察计数法”来研究上述因子对鲫鱼呼吸频率的影响！
七注意事项：
1实验前一小时应让鱼饱食。
2整个实验最好在鲫鱼最适生长温度下恒温操作。
3实验过程中，特别是在计数呼吸频率时，应保持环境的相对安静，以免惊吓到实验用鱼，给实验造成不必要的麻烦。
八参考文献：
【1】于洪川，人体及动物生理学实验教程（第一版），银川市北京东路139号出版大厦，宁夏人民教育出版社，2007.3，194-195
④硫酸铜对鲫鱼呼吸频率的影响：选择一条未经实验的鲫鱼，测量其在正常情况下1 min的呼吸频率，测量三次，取平均值。然后向水族箱中加入静置过夜的自来水3L,然后向其中加入6mg硫酸铜，用玻璃棒搅拌使其均匀溶解至其浓度为2mg/L。然后捞取所选实验用鲫鱼放入其中，1-2min后用肉眼观察实验鱼的呼吸情况并记录其1min内的呼吸频率，连续记录三次。操作完成后，捞出实验鲫鱼，倒掉水族箱中的溶液,并用自来水反复冲洗至干净，待用。
低温可以减弱鲫鱼的新陈代谢，使得呼吸作用减弱。养殖水中的二氧化碳的主要来源是水生动植物的呼吸作用和有机物氧化分解作用，水中的二氧化碳浓度增高，鱼类血液中的二氧化碳浓度也随之增高，因此导致鱼血液中的ph值降低，使得血液中血红蛋白对氧的亲和力下降，造成细胞组织缺氧，促使鱼类呼吸频率加快，严重时则出现呼吸困难，昏迷和死亡。酚类可以通过鲫鱼的鰓和皮肤吸入血液，直接作用于血液成分，破坏红血球。酚经循环运输到达各组织器官中，破坏造血器官如肝，脾，肾等，引起鱼类血红球和血红蛋白下降。从而使得血液运输氧气的能力下降，造成供氧不足，使得鲫鱼的呼吸频率加快。较低的PH,意味着较高的氢离子浓度，氢离子通过鱼类的呼吸进入到鱼类的血液当中，使得血液当中的ph值下降，氢离子浓度升高，使得血液中血红蛋白对氧的亲和力下降，造成细胞组织缺氧，促使鱼类呼吸频率加快，严重时则出现呼吸困难，昏迷和死亡。重金属离子进入鲫鱼体内后，一部分可以随血液到达各组织器官，引起组织细胞的机能变化；另一部分则可与血浆中的蛋白质和红血球的结合，妨碍血液的机能，使得血液运输氧气的能力下降，造成细胞组织缺氧，促使鱼类呼吸频率加快，严重时则出现呼吸困难，昏迷和死亡。