小鼠脾脏、胸腺单个核细胞分离

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10min。弃去上清,加ACK至2~3ml,轻轻吹打混匀并放置 3~4min,以破坏红细胞。然后加PBS缓冲液至10ml,以 1500rpm离心10min; 3. 弃去上清,加PBS缓冲液至10ml,以1500rpm离心10min; 4. 弃去上清,加PBS缓冲液至10ml,吹打混匀即为小鼠脾脏单个 核细胞悬液。
白细胞计数时,一般情况下各大方格间的细胞数相差不超过 10%。
如微量吸管内壁沾有白细胞稀释液,会使红细胞破坏,故应 先做红细胞计数
小鼠脾脏、胸腺单个核细胞分离
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基本概念
所有参与免疫应答以及与免疫应答相关的细胞均被称为免疫细胞。 包括淋巴细胞、单核-巨噬细胞、DC、各种粒细胞、红细胞、肥大 细胞、干细胞。
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免疫细胞分离方法:
1. 根据不同免疫细胞表面标志:FACS、MACS 2. 根据细胞理化性质:
1)根据细胞比重差异:自然沉降法、密度梯度离心法、改变细胞密度 法 2)根据细胞黏附特性:B细胞黏附于尼龙棉 3)根据细胞对渗透压变化的敏感度:红细胞对低渗敏感
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解剖图
胸腺位于胸腔胸骨后、纵隔前上方,覆 盖在心脏前上方的白色组织。通常小鼠 鼠龄越小,胸腺体积相对越大。
小鼠脾脏位于上腹部左后侧,体积 较大,长条形态,属于外周免疫器 官。外周血中淋巴细胞可经再循环 驻入脾脏等外周免疫器官的特定区 域,所以富含各类免疫细胞。
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实验步骤:
(一)取小鼠脾脏: • 小鼠颈椎脱位处死,置70%乙醇溶液
基本原理及步骤:首先将抗特异细胞表面抗原的抗体致敏到磁珠 上,待它与混合体系中的细胞反应后,利用磁力的作用,使与致 敏结合的细胞与其它物质分离,达到纯化、分离的目的。
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免疫磁珠法细胞分选过程
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免 疫 磁 珠 细 胞 分 选 装 置
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全自动细胞分选系统
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密度梯度离心法
Ficoll-Hypaque密度梯度离心法: 人外周血单个核细胞(peripheral blood
中浸泡3~5min; • 取其后右侧卧位,消毒左侧背腹交界
处皮肤,取脾脏并尽量将去脂肪及筋 膜组织。
取脾脏
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实验步骤:
(二)制备单个核细胞悬液: 1. 将取出的脾脏置于盛有PBS缓冲液的平皿中,然后再置于尼龙指
套中。用针芯轻轻碾磨使单个核细胞通过尼龙指套悬浮于平皿中; 2. 吸取平皿中细胞悬液置于刻度离心管中,以1500rpm离心
➢ SmIg、Fc受体、补体受体、EB病毒受体,部 分CD分子是B细胞的重要表面标志,其中以 SmIg为B细胞所特有,是鉴定B细胞可靠的指 标。
➢ CD19/CD5分子:可将B细胞区分为B1细胞和 B2细胞,B1细胞为CD19和CD5双阳性,而 B2细胞仅为CD19阳性,B2细胞为通常所指的
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NK细胞表面标志
人类NK细胞表面标志主要以CD16、 CD56来认定,临床上将CD3CD56+CD16+淋巴细胞认定为NK细 胞。
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FACS
流式细胞仪由激光光源系统,气控单细胞层流系统,光检测及信息 处理系统和细胞分离纯化系统组成。
流式细胞术(FCM)是一种对处在液流中的单个细胞或其它生物微粒 (如细菌)等进行快速定量分析和分选的技术,它将免疫荧光与细胞 生物学、流体力学、光学和电子计算机等多种学科的高新技术融为一 体,进行细胞和分子水平的基础理论与临床应用研究。
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计数时需要遵循一定的方向逐格进行,以免重复或遗漏,对 压线细胞采用数左不数右,数上不数下的原则
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细胞数量明显增大时可适当加大稀释倍数。 充池时要一次完成,不能产生满溢、气泡
或充池不足的现象。 大小方格内压线细胞的计数遵循数上不数
下、数左不数右的原则,避免多数或漏数。
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红细胞计数时,如果每个中方格之间相差超过20个以上,要 重新充池计数。正常数值范Байду номын сангаас内,两次红细胞计数相差不得 超过5%。
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T细胞表面标志及其亚群
➢ CD3+CD4+CD8-辅助性T细胞 (help T cell,Th)
➢ CD3+CD4-CD8+细胞毒性T细胞 (cytotoxic T cell,Tc or CTL)
➢ CD4+CD25+调节性T细胞 (regulatory T cell,Tr or Treg)
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B细胞表面标志
➢人的红细胞密度为1.093 ➢粒细胞密度为1.092 ➢单个核细胞(淋巴细胞和单核细胞)的密度为 1.075-1.090
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不同细胞密度不同
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用1.077±0.001的分层液可将细胞分离
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密度梯度离心法
血浆 单个核细胞(PBMC) 粒细胞 红细胞 离心后
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实验五 小鼠脾脏、胸腺单个核细胞分离
mononuclear cell PBMC)包括淋巴细胞和单核细胞, 其体积、形状和比重与其他细胞不同,利用密度在 1.077±0.001g/L之间近于等渗的Ficoll-Hypaque混合 溶液(称为淋巴细胞分层液)作密度梯度离心时,•各种血液成 分将按密度梯度重新分布聚集。
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不同细胞密度不同
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荧光激活细胞分离仪分离法
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流式细胞分析仪
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MACS
磁性微珠是20世纪80年代初以高分子材料和金属离子(如Fe3O4) 为原料聚合而成的一种以金属离子为核心、外层均匀地包裹高分子聚 合体的固相微粒。
以磁性微珠为载体,包被上针对某种细胞表面抗原的特异性抗体即 可制成免疫磁性微珠。
通常有二种分离方式:阳性分离和阴性分离。
将荧光标记的单克隆抗体加入PBMC悬液内,使二者特异性结合, 通过流式细胞仪自动检测,既可很快得到T、B细胞及其亚群百分率 和绝对值的有关数据,又能以每秒高达5000个细胞(18×106 细胞/h) 的速度分离和收集无菌的淋巴细胞,纯度可达90%~99%,细胞活 性亦不受影响,可用于淋巴细胞的各种免疫生物学功能测定。
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实验步骤:
(三)计算细胞浓度 1. 将上述细胞悬液做一定倍数的稀释; 2. 混匀稀释后,取1滴加至细胞计数板中,计数细胞计数板中4大方格细胞
总数; 3. 计算细胞总数:
细胞总数=平均每个大方格中细胞数(4个大方格细胞总数/4)X104X稀 释倍数。
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计数池
正面观
支持堤
侧面观
支持堤 计数池 支持堤 1mm (0.1mm缝隙)
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