病料采集.
病料的采集与运送
病料的采集与运送一、病料的采集一般应在感染初期或发病急性期从死禽（死亡时间不超过一天）或症状明显的活禽采取。
死禽采取气管、肺脏、肝脏、肾脏、脾脏、法氏囊等组织样品。
要求：送检材料具有代表性，并有一定的数量；采集送检的病料要求做好登记，注明所采鸡的品种、年龄、发病日龄、发病情况（临床症状）、采集时间、采集地点、死亡量、养户、送检日期、采集部位、用药情况、需要检测的项目等。
二、病毒和病料的保存采集的病料若再48小时以内进行检测，可放4度保存；否则应放在低温条件下保存即：-20度以下。
细菌性疾病检测不能冷冻，病料不能放置时间太久。
二、具体疾病的采样部位新城疫禽流感：喉头、气管、肺、气囊、肝、脾如果有神经症状可以取脑部。
传染性支气管炎：气管、肺、肾传染性喉气管炎：喉头、气管、肺以上气管的含毒量最高。
取病料是务必要取传染性法氏囊：法氏囊、脾脏在不明原因导致疾病的情况下可以各个部位都采集一下，有病变部位和免疫器官可重点采集。
细菌性疾病可带整只鸡（带回来时可用消毒药把表层浸泡消毒），一般取肝脏、肿胀关节液或肿胀部位。
球虫可以采集粪便或刮取感染鸡的肠内容物（也可带整个鸡到实验室）。
曲霉菌病可以采集病变部位（如肺脏），确证之后可以收集饲料，棉签刮去环境微生物帮助寻找治病原因。
具体可根据实际情况灵活调整。
三、现在耒阳实验室疾病诊断的方法简介：一、病毒性疾病：很多烈性传染病都具有凝集红细胞的作用，所以一般通过接种鸡胚分离病毒，通过血凝实验看是否具有血凝性缩小范围，看是否是血凝性病毒，在通过中和实验看是否是H9、H5、ND等，可以看鸡胚的病变来判断。
如传候会使绒毛膜形成豆斑。
未来也可以通过PCR来检测（具有准确快速的特点，也是总部常用的检测方法）。
二、细菌性疾病通过菌落特征、不同培养基的生长特性、显微镜的镜检及生化试验等来进行诊断。
四、球虫饱和盐水漂浮法和直接涂抹法等进行诊断五、环境微生物检测和水质检测。
病料采集的原则
病料采集的原则病料采集是医疗工作中非常重要的一环，它直接关系到诊断和治疗的准确性和有效性。
因此，病料采集的原则十分关键。
本文将从不同角度介绍病料采集的原则，以提高医疗工作的效率和质量。
一、全面性原则病料采集应该全面而细致，尽可能获取患者的所有相关信息。
这包括患者的个人信息、病史、体格检查结果、实验室检查结果、影像学检查结果等。
只有全面性的病料采集才能为医生提供准确的诊断依据，为患者提供恰当的治疗方案。
二、规范性原则病料采集应遵循一定的规范和标准，以保证数据的一致性和可比性。
医护人员应按照统一的流程和标准操作，确保病料采集的准确性和可靠性。
例如，在测量体温时，应使用标准的体温计并按照规定的方法进行测量，以避免误差和不必要的病料差异。
三、及时性原则病料采集应尽早进行，以确保及时获取患者的病情信息。
特别是在急诊和重症监护等情况下，医护人员应立即对患者进行病料采集，以便及时做出诊断和采取相应的治疗措施。
及时性的病料采集可以有效提高救治效果，降低患者的病死率和并发症发生率。
四、可靠性原则病料采集应确保数据的可靠性和准确性。
医护人员在进行病料采集时应严格按照操作规范执行，避免出现人为因素引起的误差。
例如，在采集血液样本时，应选择适当的采样器具，并遵循正确的采样方法，以保证血液样本的准确性和可靠性。
五、隐私保护原则病料采集应遵循隐私保护原则，尊重患者的隐私权和个人信息保密。
医护人员在进行病料采集时应确保患者的个人信息不被泄露和滥用。
例如，在记录病历时，应将患者的姓名、身份证号等敏感信息掩盖或部分隐藏，以保护患者的隐私权。
六、交流协作原则病料采集是一个团队合作的过程，医护人员应加强沟通与协作，确保病料的准确采集和记录。
医生、护士、实验室人员等各个环节的工作人员应建立良好的工作协调机制，及时传递病料信息，协同完成病料采集工作，提高工作效率和质量。
病料采集的原则是全面性、规范性、及时性、可靠性、隐私保护和交流协作等。
采集病料的原则和技术要点
采集病料的原则和技术要点病料采集是进行实验室诊断的重要环节，直接影响着检验结果的准确性和速度。
为了提高诊断的时效性和准确性，采集病料时须把握以下原则和技术要点。
1 时间性和新鲜性病料采集力求新鲜，能进行活体采集的病料尽量进行活体采集，如血液、乳汁、尿液以及禽类气管拭子和泄殖腔拭子等。
由于畜禽死亡后，随着时间的延长，尸体会发生腐败，组织器官的病理变化也会发生一定程度的改变，病原体种类也可能增加，阻碍实验室对病原的检查。
为了保证病料的新鲜性，采集内脏病料须于濒死期动物或死亡后立即进行（一般不超过6h，夏季最好不要超过4h，冬季北方可适当延长至24h）。
所采集到的病料要分类装入特定容器中进行冷冻或冷藏暂存。
2 针对性和适量性针对不同的疾病，病料的采集部位也有很大区别。
在实际生产中我们应结合流行病学特点、临诊症状和剖检变化，大致怀疑是某种或多种疫病，然后根据该种疫病的特点和主要病变部位来决定采集哪些部位的病料。
如怀疑是口蹄疫时可取水疱皮和水疱液检查；怀疑是鸭病毒性肝炎时可取肝脏、脾脏、肾脏组织检查；如要用血清学试验检查血清中的抗体，可采集血液分离血清。
若提不出怀疑对象时，则应全面采集病料，通常采取心血、体液、分泌物、胃肠内容物和各主要器官组织及各种病变组织，运用多种方法进行检查。
采集病料的数量（视群体多少可按千分之一到五）和大小既要满足检查的需要，又要防止盛装和送检时的累赘。
实质器官一般摘取1～2cm3的小方块；肠道取7～10cm长度，经双结扎后剪取；淋巴结和禽类脾脏可直接摘取，分别置无菌容器中保存。
3 无菌性和安全性为防止污染病料而干扰检查，采集病料时必须坚持无菌操作。
操作人员使用的解剖器械要灭菌或消毒，每采集一种病料，用酒精棉球将器械擦拭消毒一次；盛装病料的试管、平皿、小瓶等需要事先高压灭菌；不同畜禽的病料、同种动物不同个体的病料和同一动物不同脏器病料均应分别盛放，不可混放于一起，以防病料之间相互污染，影响检查结果的准确性。
鸡的病料采集实训报告
一、实训目的通过本次实训，了解和掌握鸡病料采集的基本原则、方法和注意事项，提高在实际工作中对鸡细菌病及病毒病诊断的能力。
二、实训时间2023年X月X日三、实训地点XX兽医实验室四、实训内容1. 鸡病料采集（1）采集原则：无菌、适时、适量、典型、合理。
（2）采集方法：① 活鸡采集：选取全群具有代表性、发病症状明显的活鸡或刚死的病鸡，采集病料时，应尽量减少对鸡群的应激。
② 死鸡采集：对已死亡的鸡，应尽快采集病料，最好不超过6小时。
③ 采集部位：根据疾病特点，选取含病原较多的或有特征性病理变化的器官和组织。
如怀疑为鸡新城疫，采集脑组织；怀疑为传染性法氏囊病，采集法氏囊；怀疑为鸡霍乱，采集肝、脾和心血等。
④ 采集数量：1月龄以内6~8只，2月龄左右5只，成年鸡3只。
2. 鸡病料保存（1）细菌性病料：将采集的疑似病变器官标本放在低温下保存，一般以28℃为宜，切忌冷冻。
有污染可能时，将病料放在盛有已灭菌的30%的甘油缓冲盐水或饱和盐水的容器中，加塞封固。
（2）病毒性病料：将病料放入盛有50%的甘油缓冲液中。
五、实训过程1. 实训准备（1）熟悉鸡病料采集的原则、方法和注意事项。
（2）准备好采集工具，如刀、剪、镊子、注射器、针头、无菌容器等。
（3）了解实验室的基本操作规程。
2. 实训操作（1）按照采集原则和方法，选取病鸡进行采集。
（2）对采集到的病料进行编号、登记，并做好标记。
（3）按照保存方法，将病料保存于相应的容器中。
（4）将采集到的病料送至实验室进行检测。
六、实训结果本次实训，我们成功采集了鸡的病料，并按照保存方法进行了保存。
在实验室检测过程中，我们将病料送检，得到了准确的诊断结果。
七、实训体会通过本次实训，我深刻认识到鸡病料采集在鸡病诊断中的重要性。
在实际工作中，我们要严格按照采集原则和方法进行操作，确保采集到的病料具有代表性、典型性。
同时，做好病料的保存工作，为实验室诊断提供准确、可靠的依据。
八、实训建议1. 加强鸡病料采集的理论学习和实践操作，提高采集技能。
病料采集.
病料采集一、采集原则1、适时采集供检疫用的材料因检测目的和项目不同，应尽可能采集到新鲜样品。
用于分离病原体的，须在动物病初发热期或出现典型临诊症状时采集；若需制备血清，在动物空腹时采血。
从动物尸体采样，无论什么检测项目，都应在动物死后立即采集。
若无条件，夏季最好不超过动物死后2h；冬季不超过20h。
2、典型采样首先要选择典型动物，即未经药物治疗、病状典型的动物，这对细菌性传染病的检查尤其重要。
二是选择典型材料，通常采集病原体含量最高的材料。
不同疫病的病原体在动物体内及其分泌物、排泄物中的分布、含量不同，即使同一种疫病，在病的不同时期和不同病型中，病原体在体内分布也不同。
在采取病料前，对动物可能患某种疫病作出初步诊断，侧重采集该病原体常侵害的部位。
从动物尸体采样，通常采集有病变的组织、器官或病变最明显、最典型的部位。
供病理组织切片的样品，应连带部分健康组织。
淋巴结、心、肝、脾、肺、肾，不论有无病变，一般均应采取。
3、合理采样指取样动物的数量和样品的数量要合理。
动物群体发病，至少采取5头（只）份动物的病料。
每一种样品应有足够的数量，除确保本次实验用量外，以备必要的复检用。
对于畜产品，按规定采取足量样品。
皮张炭疽检疫时，在每张皮的腿部或腋下边缘部位取样，初检取1g，复检时在同部位取2g。
4、无菌采样样品采集全过程无菌操作，尤其是供微生物学检查和血清学实验的样品。
采样部位、采样用具、盛放样品的容器均需灭菌处理。
有些样品，如皮肤上的水泡，采集部位用清水清洗即可，忌用消毒剂消毒。
5、安全采样在采样过程中，采样人员要注意安全，防止感染；同时防止病原扩散而造成环境污染。
二、供病原学检查材料的采集、处理1、供微生物学检查材料的采集、处理⑴血液大、中动物从颈静脉，需要量少可从尾静脉或耳静脉，一般每头每次10ml；家禽从翅静脉或心脏，每只每次3～5ml。
死亡动物从右心房采血。
全血必须加抗凝剂以防凝固。
抗凝剂可选用乙二胺四乙酸二钠（EDTA—Na2）、枸橼酸钠、肝素。
病料的采集与送检应注意哪几个原则？
病料的采集与送检应注意哪几个原则？兽医试题1、病料的采集与送检应注意哪几个原则？答：一、病料的采集：（1）可根据临床诊断症状和局部病变确定采集内容；（2）根据可疑疾病和剖检所见，有重点地选取病变典型的组织，病因不明的情况下，要尽量做到系统、全面采集。
二、送检：（1）要及时送检；（2）要避免高温及日光照射，防止腐败；（3）应附上送检单，病历表，尸体剖检记录，病料清单等资料。
2、新城疫的典型病理变化答：主要病变是出血和坏死，尤其以消化道和呼吸道为明显。
腺胃乳头间有出血点，或有溃疡和坏死，肌胃角质层下也常见有出血点，气管、直肠粘膜多见出血。
3、简述报告突发动物疫情时应报告的全部内容？答：①疫情发生的时间、地点；②染疫及疑似染疫动物种类和数量、同群动物数量、免疫情况、死亡数量、临床症状、病理变化、诊断情况；③流行病学和疫源追踪情况；④已采取的控制措施；⑤是否有人感染病例；⑥疫情报告的单位、负责人、报告人及联系方式。
4、简述动物疫情诊断和认定的有关要求及规定答：按照有关采样的规范要求及高致病性动物病原微生物菌（毒）种或样本运输包装规范等要求，采集病料样品送省级动物防疫监督机构实验室确诊。
省级不能确诊，送国家级实验室确诊。
确诊结果报国务院兽医行政管理部门，并抄送省级兽医行政管理部门。
5、简述对疫点应采取的应急处理措施答：①扑杀并销毁染疫动物和易感染的动物及其产品；②对病死的动物、动物排泄物及被污染饲料、垫料、污水进行无害化处理；③对被污染的物品、用具、动物圈舍、场地进行严格消毒。
6、简述对疫区应采取的应急处理措施答：①对疫区实施封锁；②扑杀并销毁染疫和疑似染疫动物及其同群动物；③对易感染的动物进行监测；④关闭动物及动物产品交易市场；⑤对动物圈舍、动物排泄物、垫料、污水和其他可能受污染的物品、场地，进行消毒或者无害化处理。
7、简述对受威胁区应采取的措施答：①对易感染的运行进行监测；②对易感染的动物根据国务院兽医主管部门要求实施紧急免疫接种。
病料的采集、保存及运输制度
病料的采集、保存及运输制度l、病料的采集‘(1) 血样的采集A．根据动物种类确定采血部位。
选用真空管、无菌注射器、无菌采血瓶、毛细管等采血，采血量满足试验需要。
B．若需抗凝血，则视实验要求选择抗凝剂。
如需血清，则待血凝固后无菌分离血清并分装于灭菌瓶(管)中。
(2)粪样的采集将消毒拭子插入动物肛门或泄殖腔中，采取直肠粘液或粪便，放入装有缓冲液的试管或瓶中，尽快送到实验室；若检查消化系统寄生虫，则需采取5—10g 新鲜粪便。
(3)子宫阴道内分泌物或外生殖器包皮内分泌物的采集将消毒好的特制吸管插入子宫颈口或阴道内，向内注射少量营养液或生理盐水，用吸球反复抽吸几次后吸出液体，注入培养液中。
用软胶管插入公畜的包皮内，向内注射少量的营养液或生理盐水，多次揉搓，使液体充分冲洗包皮内壁，收集冲洗液注入无菌容器内。
(4)实质脏器的采集无菌采集脏器组织块，放入无菌容器内。
每块组织应单独放在无菌容器内，注明日期、组织和动物名称。
注意防止组织间相互污染。
供组织病理学检查的组织块的厚度不能超过0、5cm，切成1—2cm的方块，置于至少10倍于组织样品体积的中性缓冲10％福尔马林溶液中，作组织学检查的样品不能冷冻。
(5)皮肤样品的采集产生水泡或皮肤病变的疾病，应直接从病变部位采样。
病变皮肤的碎屑以及末破裂水泡液也可作为样品。
(6)奶样的采集清洗乳头后采样。
弃去头把奶液后采集奶液装满无菌试管。
(7)胚胎的采集选取力整、无腐蚀的胚胎置于冰桶中尽快送抵实验室。
如果在24小时内不能将样品送达实验室，只能冷冻运送。
2、病料的保存检查抗体用的血液，不加抗凝剂，待凝血后，分离血清放入小青霉素瓶中。
供细菌培养用的液体病料，同容器一起放入有冰的保温瓶或4℃冰箱内。
3、病料的运送供细菌检验用的病料，要防止腐败，必须及时送检。
一般可用有冰块的保温瓶或其他低温条件，以使病料不腐败。
最好由专人送检，并带好送检的有关病情、病例、剖检等记录，以供检验人员的参考。
病料的取材和送检
考核项目十病料的取材和送检【学习目的和要求】掌握病料的采取、保存、包装和记录。
【器材及材料】病鸡、平皿、剪子、镊子疾病的种类很多,有的是常见病和多发病,比较容易诊断；有的表现出特异性的症状和病变,也可以一目了然。
但在更多的情况下是疾病缺乏特征性的病变,甚至肉眼看不到明显的病变,有的出现两种以上不同疾病的复杂病变,为了弄清病因,正确诊断,需要采集病料,送至有关单位或诊断室作进一步检验。
现将细菌、病毒、寄生虫、毒物和病理组织学的检查材料的采集、保存和运送方法,作一简要介绍。
一、病料的采集1、细菌、病毒病料采集要求（1）在采取病料前必须对被检动物可能患有何种疫病作出初步诊断，对人畜共患病，在采病料时应戴手套、口罩等。
对急性死亡的动物，从耳尖或四肢末梢血管取血制成涂片，染色镜检，在排除炭疽后方能剖检取样;如确实需要剖检，一定要严格做好消毒和防护，防止病原扩散。
（2）供检验用的病料必须是新鲜畜尸的各脏器或血液等。
采取病料的时间是越早越好，取料时间要求在患畜死后即行采取,最好不超过6小时；夏季要在动物死亡后2小时内采取病料;剖开腹腔后,首先取材料,再作检查,因时间拖长后肠道和空气中的微生物都可能污染病料。
已腐败变质的畜尸不能采取病料。
作细菌学培养的则应采用未使用过治疗药物的病畜。
（3）采集病料时应行无菌操作,所用的容器和器械都要经过消毒。
刀、剪、镊子用火焰消毒或煮沸消毒(100℃,15~20分钟)；玻璃器皿(如试管、吸管、注射器及针头等)要洗干净, 用纸包好,高压灭菌(1.5千克/平方厘米,121℃,20~30分钟)或干热灭菌(160℃,2小时)。
（4）采病料要有目的地进行,首先怀疑是什么病,就采什么病料,如果不能确定是什么病时,则尽可能的全面采集病料。
一般应采肝、脾、肾、淋巴结、脑、脊髓等组织，小家畜则可送全尸到实验室，依具体情况采取病料。
（5）需作病原检查的放在５０％甘油生理盐水中保存；作病理组织学检查的则放在福尔马林中保存。
病料的采集和运送
病料的采集和运送（一）、病料采集的注意事项1．解剖前检查凡发现患畜急性死亡时，绝不能随便解剖。
未解剖前，必须由末梢血管采血（或局部解剖）作涂片，检查是否患有炭疽杆菌。
操作时应特别注意，勿使血液污染他处，以防止传播和对人体的伤害。
当确定不是炭疽时，方可解剖。
剖检时，采取有病变的脏器或组织送往实验室，以便证明其病因。
2．采集病料的时间内脏病料的采取，须于患畜禽死后立即进行，最好不超过6h，夏季不超过4h，否则时间过长，由肠内侵入其它细菌，致使尸体腐败，有碍于病原菌的检验。
3．采集器械的消毒刀、剪、镊子等用具可煮沸30min，最好用酒精擦拭，并在火焰上烧一下。
器皿在高压灭菌器内或干烤箱内灭菌，或放于0.5％--1％的碳酸氢钠水中煮沸；软木塞或橡皮塞置于0.5％石炭酸溶液中煮沸10min。
载玻片应在1％—2％的碳酸氢钠溶液中煮沸10—15min，水洗后，再用清洁纱布擦干，将其保存于酒精、乙醚等分液中。
注射器和针头放于清洁水中煮沸30min即可。
4．采集病料的所有手续必须是无菌操作采取一种病料，使用一套器械。
并将取下的材料分别置于灭菌的容器中，绝不可将多种病料或多头畜禽的病料混放在一个容器内。
病变的检查应在病料采集后进行，以防所采的病料被污染，影响检查结果。
5．需要采取的病料，应按疾病的种类适当选择当难以估计是那种传染病时，应采取有病变的脏器、组织。
但心血、肺、脾、肝、肾、淋巴结等，不论有无肉眼可见病变，一般均应采取。
6．病料采集后，如不能立即进行检验，应立即保存于冰箱中。
（二）、病料的采集方法1．脓汁、渗出液用灭菌注射器无菌抽取未破溃的脓肿深部的脓汁，置于灭菌的细玻璃管中，然后将两端熔封，用棉花包好放于试管中，亦可直接用注射器采取后，放试管中，如系开放的化脓灶或鼻腔时，可用无菌的棉签浸蘸后，放在灭菌试管中。
也可直接用接种环经消毒的部位插入，提取病料直接接种在培养基上。
2．淋巴结及内脏将淋巴结、肺、肝、脾、肾等有病变的部位各采取1—2cm2的小方块，分别置于灭菌试管或平皿中。
病料采集.
病料采集一、采集原则1、适时采集供检疫用的材料因检测目的和项目不同，应尽可能采集到新鲜样品。
用于分离病原体的，须在动物病初发热期或出现典型临诊症状时采集；若需制备血清，在动物空腹时采血。
从动物尸体采样，无论什么检测项目，都应在动物死后立即采集。
若无条件，夏季最好不超过动物死后2h；冬季不超过20h。
2、典型采样首先要选择典型动物，即未经药物治疗、病状典型的动物，这对细菌性传染病的检查尤其重要。
二是选择典型材料，通常采集病原体含量最高的材料。
不同疫病的病原体在动物体内及其分泌物、排泄物中的分布、含量不同，即使同一种疫病，在病的不同时期和不同病型中，病原体在体内分布也不同。
在采取病料前，对动物可能患某种疫病作出初步诊断，侧重采集该病原体常侵害的部位。
从动物尸体采样，通常采集有病变的组织、器官或病变最明显、最典型的部位。
供病理组织切片的样品，应连带部分健康组织。
淋巴结、心、肝、脾、肺、肾，不论有无病变，一般均应采取。
3、合理采样指取样动物的数量和样品的数量要合理。
动物群体发病，至少采取5头（只）份动物的病料。
每一种样品应有足够的数量，除确保本次实验用量外，以备必要的复检用。
对于畜产品，按规定采取足量样品。
皮张炭疽检疫时，在每张皮的腿部或腋下边缘部位取样，初检取1g，复检时在同部位取2g。
4、无菌采样样品采集全过程无菌操作，尤其是供微生物学检查和血清学实验的样品。
采样部位、采样用具、盛放样品的容器均需灭菌处理。
有些样品，如皮肤上的水泡，采集部位用清水清洗即可，忌用消毒剂消毒。
5、安全采样在采样过程中，采样人员要注意安全，防止感染；同时防止病原扩散而造成环境污染。
二、供病原学检查材料的采集、处理1、供微生物学检查材料的采集、处理⑴血液大、中动物从颈静脉，需要量少可从尾静脉或耳静脉，一般每头每次10ml；家禽从翅静脉或心脏，每只每次3～5ml。
死亡动物从右心房采血。
全血必须加抗凝剂以防凝固。
抗凝剂可选用乙二胺四乙酸二钠（EDTA—Na2）、枸橼酸钠、肝素。
疑似非洲猪瘟病料的采集保存和送检
疑似非洲猪瘟病料的采集保存和送检非洲猪瘟是一种由非洲猪瘟病毒引起的高度接触性传染病，对猪类造成严重危害，而目前我国也面临着非洲猪瘟病毒的威胁。
为了及时发现和控制非洲猪瘟病情，必须要对疑似非洲猪瘟病料进行采集保存和送检。
本文将从采集、保存和送检三个方面介绍关于疑似非洲猪瘟病料的相关知识。
一、疑似非洲猪瘟病料的采集1. 选择合适的时机在发现疑似非洲猪瘟的病料时，要尽快进行采集。
这样不仅可以保障采集到足够的病毒量用于后续的检测，也可以减少病毒的传播范围。
2. 使用专用工具采集非洲猪瘟病料需要使用专用防护工具，包括口罩、手套和防护服等。
这样可以有效避免病毒的传播和人员的感染。
3. 避免交叉污染在采集非洲猪瘟病料时，要尽量避免与其他材料接触，以免发生交叉污染而影响后续的检测结果。
4. 采集适量样本在采集非洲猪瘟病料时，要采集足够的样本用于后续的检测。
一般来说，每个样本的量应该在5-10ml左右。
二、疑似非洲猪瘟病料的保存1. 使用合适的容器采集到非洲猪瘟病料后，要立即放入合适的容器中保存。
一般来说，可以选择使用塑料瓶或者冰袋等容器。
2. 保持低温非洲猪瘟病料属于易腐物，因此在保存时要尽量保持低温。
一般建议将病料保存在-20℃~-80℃的温度下。
3. 防止冻结虽然要保持低温保存，但同时也要注意避免冻结。
在保存过程中，要避免将病料暴露在过低的温度下，以免影响后续的检测结果。
4. 标识清晰在保存疑似非洲猪瘟病料时，要做好标识工作，包括标注病料采集时间、地点和疑似病例等信息。
这样有利于后续的追踪和识别。
三、疑似非洲猪瘟病料的送检1. 选择合适的送检机构在送检前，要选择合适的检测机构。
一般来说，可以选择具有相关资质和丰富经验的检测机构进行送检。
2. 做好送检准备在送检前，要做好相应的准备工作，包括填写送检申请表、准备相关材料等。
这些工作有利于提高送检的效率和准确性。
3. 选择合适的送检时间在选择送检时间时，要尽量选择工作日进行送检，避免因为节假日等原因影响检测的进度和准确性。
实验七 病料的采集、包装和运送
实验七病料的采集、包装和运送一、实验前的几点说明提前十分钟进入实验室，抄写板述。
上课，点名入座。
二、板述内容：1、目的要求1.1、认识病料的采集、包装和运送的意义。
1.2、掌握病料采集、包装和运送的一般原理、操作实验内容。
2、实验内容1.1、家兔心脏采血20ml，置无菌平皿供分离血清用。
1.2、用注射器先及2ml肝素、家兔心脏采血10ml置无菌试管供分离病毒用。
1.3、解剖家兔，采集心肝、肝、脾、肺、肾及淋巴结等盛入无菌平皿中供细菌学检查。
1.4、将上述所采脏器置50﹪磷酸甘油缓冲液上保存，供病毒学检查。
1.5、将上述平皿内所析出的血清移入另一试管加入适量抗生素供血清学检验用。
1.6、将溶器表面消毒，注明病料来源、种类、保存方法及采集时间。
用蜡封口，将所有病料放入盛有冰块的保温箱中，带送检单专人送检。
三、实验内容对传染病患畜（禽）进行微生物学诊断，并获得准确结果，是诊断传染病最确切的依据之一。
要分离病原微生物，必须准确采集含菌（病毒）最多的病料。
而要准确采集病料，又必须充分了解各种病原微生物在患畜（禽）体内及其分泌物和排泄物中的分布情况。
不同是病原微生物在患畜（禽）体内的分布情况是不同的；即使是同一种病原微生物，在病程的不同时期和不同病型中分布也不相同。
因此在采集病料之前，必须根据该传染病的流行病学特点、临床表现和病理解剖学检验的结果，对被检动物可能患有什么样的疫病作出初步的诊断。
然后有针对性地采集最合适的病料进行微生物检验，这样才容易得到准确结果。
家畜传染病给畜牧业生产带来的损失是众所周知的，因此，迫切要求对传染病进行快速而准确的诊断。
这对早期扑灭传染病的流行是非常必要的。
采集病料时应尽可能避免杂菌的污染，要求尽量做到无菌操作，所用的器械、容器等均要求无菌。
生前采集的病料，如血液、脓汁、分泌物、粪尿等应尽早送检，不宜久置。
患畜（禽）死后，应立即剖检采取病料，以防组织腐败、不利于病原体的分离。
采得的病变组织亦应立即送检。
病料采集流程
织块儿太大固定效果不好。 1.5 采集正常组织和肿瘤组织交界处的组织。 1.6 每瓶固定液只能盛一只鸡的病料。 1.7 固定液浓度要求10%福尔马林（即10毫升40%甲醛+90毫升水）。 1.8 固定液最好盛在干净矿泉水瓶中,组织与固定液比例为1:20以上。 1.9 采集脾脏时一定要剪开筋膜;腺胃不要环切,要顺腺胃长轴竖切。
取无菌棉签，插入鸡喉头内或泄殖腔转动3 圈，取出，插入含无菌缓冲液离心管内， 剪去露出部分，盖紧瓶盖，作好标记。
9、全血采样：适合细菌、血液寄生虫感染 感染，进行血涂片检测，用灭菌注射器自 鸡的心脏或翅静脉采血1-2毫升，注入灭菌 试管中。（一般在血液中加入少量的抗凝 剂3.8%枸橼酸钠0.1-0.2毫升或柠檬酸钠液）
2 鸡只送样要求：
2.1 活鸡选择有明显症状鸡只，如呼吸道、 伸颈、发蔫、挣扎、神经等。
2.2 死鸡选择新鲜刚死亡鸡只，并放于阴 凉处。
2.3 使用纸箱子，将鸡只放于纸箱，并用 胶带缠好，并用剪刀扎上透气孔。
2.4 不可将鸡放于汽车高温地方，如发动 机旁。
3 组织和实质器官采样要求：用于病毒或细菌分离 3.1 采取刚死亡鸡只或刚杀死鸡只病料。 3.2 分离病毒采取脾脏、肺脏、气管、输卵管、脑部、肾
脏等组织。 3.3 分离细菌以采取肝脏为主。 3.4病料的采集必须采用无菌操作。剖开腹腔后，注意肠
管的完整。更换无菌的器械，直接将目标病变器官摘下放 到无菌的包装袋中封好，每只鸡一个口袋。 3.5将病料袋标明时间、场名、栋舍、日龄。 3.6分离病毒病样冷冻保存. 3.7分离细菌病样尽量冷藏保存，冷冻会导致细菌细胞破 裂死亡。
5、液体病料的采集
胆汁、脓肿液、渗出物等液体病料，使用 灭菌吸管或注射器，经烫烙部位吸取病变 组织的液体，将病料注入灭菌的试管中， 塞好棉塞送检。
病料采集、保存和运输
病料采集、保存和运输猪病的种类很多，有点是常病和多发病,，如白痢、黄痢等，比较容易诊断，有的表现出特异性的症状和病变，如水肿、气喘等，可以一目了然，但在更多的情况下疾病是缺乏特征性的病变，甚至肉眼看不到明显的病变，有的出现两种以上不同疾病的复杂病变，而小区有缺发实验室诊断做进一步的检验。
现将细菌、病毒、寄生虫、毒物和病理组织学的检查材料的采集、保存和运输方法，做一简要介绍。
一、细菌和病毒学检查材料1、取料时间的要求，在患畜死后即行采取，一般情况下最好不超过6小时，但炎热夏天越快越好。
剖开腹腔后，首先取材料再做检查，因时间拖长后肠道和空气中的微生物都可能污染病料；2、采集病料是应进行无菌操作，新用的容器和器械都要经过消毒，刀、剪、镊子用火焰消毒或煮沸（100℃，15-20分钟）；玻璃器皿（试管、吸管、注射器及针头）要洗干净，用纸包好高压灭菌（1.5kg/平方厘米，121℃,20-30分钟）或干热灭菌（160℃，2小时）。
3、采病料要有目的地进行，首先要怀疑是什么病，就采什么病料，如果不能确定是什么病时，则尽可能的全面采集病料，取料方法如下：一是实质器官(肝、脾、肾、淋巴结)：先用废刀（新刀火烧后易损坏），在酒精灯上烧灼后，用灭菌的刀、剪、镊子从组织深部取病料（约1-2平方厘米大小）放在灭菌的容器内。
二是血液、胆汁、浓汁等流汁病料。
心、胆囊病变，用灭菌注射器插入器官或病变内抽取，再注入灭菌的试管或小瓶内。
猪死后不久血液就凝固，无法采血样但从心室内尚可取出少量（多数为血浆）。
若死于败血症或某些毒物中毒则血液凝固不良。
三是采血，是指加抗凝剂的血液，用无菌操作从耳静脉采血3-5毫升，盛于灭菌的小瓶内，瓶内先加抗凝剂（20%枸椽酸钠）2-3滴于5毫升血液中，轻轻振摇。
四是血清，同上方法才出3-5毫升血液，置于干燥的灭菌试管内，经1-2小时后即自然凝固析出血清，必要时可进行离心，再将血清液置于另一个灭菌的小管内，冰冻保存。
猪病料采集方法及注意事项
猪病料采集方法及注意事项采集病料前需要进行器械的灭菌消毒，使用一次性针头和注射器及真空采血管;采取一种病料，使用一套器械与容器;做好计划，如要采集足够的数量及采集的部位、种类等;还要准备采集后的用具等消毒、清洗液及容器等用品。
一、血样采集具体步骤如下：1 准备好灭菌(至少是干净的，但必须保证干燥)干燥的带盖子的塑料试管或者青霉素瓶若干;准备好专业的采血针，或者一次性注射器(5-10毫升)。
保证每个血样一个瓶子或一个针筒。
2 采血。
采血前，在相应的注射器或容器上做好标记。
(1)耳静脉采血。
本法为最常用的取血法之一(适用于中、大猪)。
将猪保定后，或由助手以手扶住头部及耳部。
选耳静脉清晰的耳朵，用75%酒精局部消毒，待干。
用手指轻轻摩擦猪耳，使静脉扩张，用连有针头的注射器在耳缘静脉末端刺破血管,等血液漏出取血或将针头逆血流方向刺入耳缘静脉取血，取血完毕用棉球压迫止血。
黑色皮肤猪耳静脉看不清，用手电筒在耳、腹面照射利于采血。
(2)前腔静脉采血(适用于仔猪，小猪)：猪前腔静脉，在第一对肋骨间的胸腔入口处的气管腹侧面，由左右两侧颈静脉和腋静脉汇合形成。
该血管在一周龄猪直径约5毫米，成年猪约1厘米以上。
采血部位在第一对肋骨与胸骨柄结合处直前，但由于左侧靠近隔神经，以右侧采血为宜。
(3) 注意事项：选用合适的注射器及针头公母猪宜选用16号 50mm针头;30kg以上的中大猪，宜选用12号38mm针头;10-30kg小猪，可选用9号 25mm(一次性注射器常配的针头);10kg以下仔猪，应选择9号 20mm针头(一次性注射器所配的另一种规格的针头)。
选准进针的部位一般来说，30千克以下的小猪应采两前肢与气管交汇处，种公母猪和30千克以上的中大猪可选颈部最低凹处。
进针时又要掌握好一定的方向、角度和深度，要及时调整。
血管被刺穿，会引起血肿，要立即停止采血，须换另一头猪采血。
特别要注意的是对仔猪采血时，不能太猛、太深，以免伤及心包或心脏。
病料采集
一、细菌学检查材料（一）细菌学检查材料的采集采集细菌学检查用的病料，要求无菌操作，以避免污染。
使用的工具要煮沸消毒，使用前再经火焰消毒。
在实际工作中不能做到时，最好取新鲜的整个器官或大块的组织及时送检。
在剖检时，器官表面常污染，故在采集病料之前，应先清洁及杀灭器官表面之杂菌。
在切开皮肤之前，局部皮肤应先用来苏儿消毒；采取内脏时，不要触及其他器官。
如果当场进行细胞培养，可用调药刀在灯上烤至红热，烧灼取材部位，使该处表层组织发焦，而后立即取材接种。
1.血液心血以毛细吸管或20毫升的注射器穿过心房，剌入心脏内。
毛细吸管之制法：将玻璃管加热拉长，从中折断即可。
或用普通吸管，但应将其钝端连一橡皮管及一短玻璃管，以免吸血时把血吸入口内。
普通注射器也可用以采血，但针头要粗些。
心血抽取困难时可以挤压肝脏。
全血用20毫升无菌注射器，吸5%柠檬酸钠溶液1毫升，然后，从静脉采血10毫升，混匀后注入灭菌试管或小瓶内。
血清以无菌操作从静脉吸取血液，血液置室温中凝固约1-2小时，然后置4℃过夜，使血块收缩，将血块自容器壁分离，可获取上清夜即血清部分。
或者将采取的血液置离心管中，待完全凝固后，以3000转/分钟的速度离心10-20分钟，也可获取大量血清。
将血清分装保存。
若很快即用于检测，则保存于4℃冰箱中。
若待以后检测，则保存于-20℃或-70℃低温冰柜中。
血液涂片涂血片的载玻片应先用清洗液浸泡，然后用水洗净后入95%酒精中，最后干燥后备用。
涂血片可在耳尖采血。
将推片与玻片处成30度角接触，使标本液在两片之间迅速散开，按上述角度在载玻片上轻轻匀速地自右向左移动，至标本液完全均匀地分布于载玻片上。
涂片时应操作轻巧，以免损伤细胞。
涂片要求薄而匀。
一般用力轻，推移快，则涂片多较厚；用力重，推移速度慢，则涂片较薄。
涂片后最好待其自然干燥。
2.实质脏器用无菌用具采取组织块放于灭菌的试管或广口瓶中，取的组织块大小约2平方厘米即可。
若不是当时直接培养而是外送检查时，组织块要大些；要注意各个脏器组织分别装于不同的容器内，避免相互污染。
病料的采集及保存.
病料的采集及保存
日期: 2010-4-6 13:27:12 浏览: 8 来源: 学海网收集整理作者: 佚名
1．剖检前检查凡发现患畜(包括马、牛、羊及猪等)急性死亡时，必须先用显微镜检查其末梢血液抹片中是否有炭疽杆菌存在。
如怀疑是炭疽，则不可随意剖检，只有在确定不是炭疽时方可进行剖检。
2．取材时间内脏病料的采取，须于死亡后立即进行，最好不超过6h，否则时间过长，由肠内侵入其他细菌，易使尸体腐败，影响病原微生物的检出。
3．器械的消毒刀、剪、镊子、注射器、针头等煮沸消毒30min。
器皿(玻璃制品、陶制品、珐琅制品等)可用高压灭菌或-干烤灭菌。
软木塞、橡皮塞置于0．5％石炭酸水溶液中煮沸10min。
采取一种病料，使用一套器械和容器，不可混用。
4．病料采取应根据不同的传染病，相应地采取该病常侵害的脏器或内容物。
如败血性传染病可采取心、肝、脾、肺、肾、淋巴结、胃、肠等；肠毒血症采取小肠及其内容物；有神经症状的传染病采取脑、脊髓等。
如无法估计是哪种传染病，可进行全面采取。
检查血清抗体时，采取血液，凝固后析出血清，将血清装入灭菌小瓶送检。
为了避免杂菌污染，病变检查应待病料采取完毕后再进行。
各种组织及液体的病料采取方法如下。
......。
【最新精选】采集病料的原则和技术要点
采集病料的原则和技术要点采集病料是微生物学诊断、血清学诊断和病理组织学诊断等实验室诊断方法的重要环节，直接影响着检验结果的准确性和速度。
为了提高诊断的时效性和准确性，以便及时制定和落实防制措施，减少经济损失，采集病料时须把握以下原则和技术要点。
1 时间性和新鲜性采集的病料力求新鲜。
能进行活体采集的病料尽量进行活体采集，如血液、乳汁、尿液以及禽类气管拭子和泄殖腔拭子等。
患病动物死亡后，随着时间的延长，尸体腐败，组织器官的病理变化会发生一定程度的改变，病原体种类也可能增加，有碍于病原体的检查。
因此内脏病料的采集，须于患病动物死亡后立即进行，一般不超过6h，夏季最好不要超过4h，冬季北方可适当延长至24h。
为了保证病料的新鲜性，对经济价值小的动物或濒死期动物可直接致死后采集病料。
采集的病料要尽快检查，以防腐败。
如不能立即检查，可暂时保存于冰箱的冷藏室或阴凉的角落，但不可冻结保存。
自己无条件检查需送检时，应在病料中加入适当的保存液，使病料尽量保持新鲜或接近新鲜状态。
细菌材料置30%甘油生理盐水中；病毒材料置50%甘油生理盐水中，如作病毒分离还应加入一定量的双抗（青霉素、链霉素）处理；血清材料按每9mL加入1mL 5%的石炭酸；供细菌学或病毒学检查的血液，按每9mL加入1mL的抗凝剂（3.8％枸橼酸钠溶液），因血液凝固的速度较快，可先在容器中加入抗凝剂，再接入血液，并将其摇匀；作病理组织切片的病料置10%的福尔马林溶液或95%的酒精中，保存液的量为病料的8～10倍，如用10％福尔马林液固定，应在24h后更换一次保存液。
2 针对性和适量性采集的病料种类过多，检查工作量增大，延长了诊断的时间，使防制工作不能及时提出和落实。
在实际工作中，应结合流行病学特点、临诊症状和剖检变化，大致怀疑是何种疫病，根据该种疫病的特点和需采取的检查方法不同，采集相关的病料，如怀疑是口蹄疫，可取水疱皮和水疱液检查；怀疑是蠕虫病感染，可取粪便检查虫卵；如要用血清学试验检查血清中的抗体，可采集血液分离血清。
实验病料的采集
实验二病料的采集、保存及送检一、目的掌握被检病料的采取、保存、送检的方法。
二、材料实验动物（鸡）、瓷盘、剪子、镊子、酒精灯、酒精、接种环、载玻片、火柴棒等。
三、病料的采取1.采取病料的基本原则(1)采集最适病料理想的病料，应是无菌采取的含病原微生物量高的血液、器官组织或分泌物和排泄物。
因此要根据疾病的病性采取合适的病料，如无法估计是何种疾病时，应根据临床症状和病理变化采集病料或全面采取病料。
取材时应注意病原微生物感染所致疾病的类型(如呼吸道感染疾病、胃肠道感染疾病、皮肤和粘膜性疾病、败血性疾病等)、病原微生物的侵入部位、病原微生物感染的靶器官等。
细菌检验病料应当是采自未经抗菌药物治疗的患病动物，并且应多做几张涂片。
(2)适时采集采集病料的时间一般在疾病流行早期、典型病急性期，此时病原微生物的检出率高；后期由于体内免疫力的产生，病原微生物减少，检测病原微生物比较困难，同时可能出现交叉感染，增加判断的困难性。
在采集供抗体测定用的血清时，可适时地采集急性期和恢复期的两份血清样品，一般两份血清的间隔时间为14～2ld。
内脏病料的采取，须于动物死后立即进行；夏季最迟不超过4～6h，冬天不超过24h，否则时间过长，由肠内侵入其他细菌，致使尸体腐败，有碍于病原菌的检出。
供做切片的样品采取后必须立即投入固定液，否则时间过长，会使细菌和组织细胞死亡、溶解，影响检验结果。
有条件做现场培养时，剖开尸体后应进行接种培养，然后采样，最后剖检。
(3)无菌操作采集病料所用的器械及容器要进行严格的消毒：刀、剪、镊子等金属用具可煮沸消毒30min，使用前最好用酒精擦拭，并在火焰上烧一下；器皿（玻制、陶制及珐琅制等）在高压灭菌器或干烤箱内灭菌；软木塞和橡皮塞应高压灭菌；载玻片用2%～5%碳酸钠煮沸消毒5～10min，煮沸后用清水冲洗干净，拭干保存或浸泡于95%酒精中以备使用；注射器和针头放于清洁水中煮沸30min即可，或用一次性注射器。
病料的采集与运输
病料的采集与运输一、病料的采集1，新鲜，代表性，一定的数量，死尸上采集：夏天少于6h，冬天12-24h.2，减少污染，在做尸体剖检时，应将尸体浸泡在消毒剂溶液中，防止羽毛及皮屑飞扬对病料造成的污染。
3，尸体剖开腹腔时，第一时间采取病料，减少病料因暴露于空气中而造成的污染。
4，无菌操作（尽量）：病料采集时，对采集病料的器械及容器必须提前消毒，减少因器械或盛放病料的容器对病料的污染。
5，病料采集后，应先存放于冰箱中1-2小时后，再做微生物检验二、病料的采集方法1，组织和实质器官的采集病料的采集必须采用无菌操作。
剖开腹腔后，必须注意肠管的完整。
如需进行细菌的分离培养，要以烧红的手术刀片烫烙脏器表面，使用经火焰灭菌的接种针插入烫烙的部位，提取少量的组织或液体，作涂片镜检或接种于培养基上，进行培养。
2，液体病料的采集血液、胆汁、脓肿液、渗出物等液体病料，使用灭菌吸管或注射器，经烫烙部位吸取病变组织的液体，将病料注入灭菌的试管中，塞好棉塞送检。
3，全血的采集方法用灭菌注射器自鸡的心脏或翅静脉采血2-5毫升，注入灭菌试管中。
（一般在血液中加入少量的抗凝剂3.8%枸橼酸钠0.1-0.5毫升或柠檬酸钠液）红细胞保存液的配制：葡萄糖2.05g、柠檬酸钠0.8g、柠檬酸0.055g、氯化钠0.42g，加蒸馏水至100ml.高压灭菌10磅、10分钟。
4，血清的采集方法用灭菌注射器自鸡的心脏或翅静脉采血2毫升，注入灭菌试管中（青霉素瓶）摆成斜面，待血液凝固血清析出后，将血清吸出注入另一个灭菌试管中，备用。
5，肠道及肠内容的采集方法肠道：选择病变明显部位的肠道，将内容物弃掉，用灭菌生理盐水冲洗干净，然后将病料放入盛有灭菌的30%甘油盐水缓冲液中送检。
亦可将肠管切开，用灭菌生理盐水冲洗干净，然后用烧红的手术刀片烫烙粘膜表面，将接种针插入粘膜层，取少量病料接种于培养基上。
30%甘油盐水缓冲液的配制：甘油：300ml、Nacl 4.2g、Na2HPO4 3.1g、NaH2PO41.0g、0.02%酚红溶液1.5ml，加蒸馏水至1000ml.混匀。
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病料米集
、采集原则
1、适时米集
供检疫用的材料因检测目的和项目不同，应尽可能采集到新鲜样品。
用于分离病原体的，须在动物病初发热期或出现典型临诊症状时采集；若需制备血清, 在动物空腹时采血。
从动物尸体采样，无论什么检测项目，都应在动物死后立即
采集。
若无条件，夏季最好不超过动物死后2h;冬季不超过20h。
2、典型采样
首先要选择典型动物，即未经药物治疗、病状典型的动物，这对细菌性传染
病的检查尤其重要。
二是选择典型材料，通常采集病原体含量最高的材料。
不同疫病的病原体在动物体内及其分泌物、排泄物中的分布、含量不同，即使同一种疫病，在病的不同时期和不同病型中，病原体在体内分布也不同。
在采取病料前, 对动物可能患某种疫病作出初步诊断，侧重采集该病原体常侵害的部位。
从动物尸体采样，通常采集有病变的组织、器官或病变最明显、最典型的部位。
供病理组织切片的样品，应连带部分健康组织。
淋巴结、心、肝、脾、肺、肾，不论有无病变，一般均应采取。
3、合理采样
指取样动物的数量和样品的数量要合理。
动物群体发病，至少采取5头（只）份动物的病料。
每一种样品应有足够的数量，除确保本次实验用量外，以备必要的复检用。
对于畜产品，按规定采取足量样品。
皮张炭疽检疫时，在每张皮的腿部或腋下边缘部位取样，初检取1g，复检时在同部位取2g。
4、无菌采样
样品采集全过程无菌操作，尤其是供微生物学检查和血清学实验的样品。
采
样部位、采样用具、盛放样品的容器均需灭菌处理。
有些样品，如皮肤上的水泡, 采集部位用清水清洗即可，忌用消毒剂消毒。
5、安全采样
在采样过程中，采样人员要注意安全，防止感染；同时防止病原扩散而造成环境污染。
二、供病原学检查材料的采集、处理
1、供微生物学检查材料的采集、处理
⑴ 血液大、中动物从颈静脉，需要量少可从尾静脉或耳静脉，一般每头每次10ml;家禽从翅静脉或心脏，每只每次3〜5ml。
死亡动物从右心房采血。
全血必须加抗凝剂以防凝固。
抗凝剂可选用乙二胺四乙酸二钠（EDT—Na2）、
枸橼酸钠、肝素。
枸橼酸钠不宜用于病毒血样。
采血前，按10ml血液加入5%句橼酸钠溶液1ml或0.1%肝素1ml或乙二胺四乙酸二钠15〜20哑的比例，把抗凝剂直接加入真空采血管或试管中，让采集的血液立即与抗凝剂混合，密封后外贴标签，送检或冷藏。
但冷藏时间不宜太久，以免溶血。
病毒样品，在1ml血样中可加入青霉素和链霉素各500〜1000IU，以抑制血源性或在采血过程中污染的细菌。
供细菌学检查的血样不可加抗生素。
⑵分泌物和渗出液采集口腔、鼻腔、喉气管、泄殖腔及阴道分泌物时, 将棉棒插入天然孔反复旋转蘸取分泌物，然后将样品端剪下。
采集咽、食道分泌
物前被检动物禁食12h，大中动物用食道探子从已扩张的口腔伸入咽喉部、食道, 反复刮取。
乳汁采集前，先清洗乳房并消毒，弃去最初挤出的几把乳汁，然后收集10〜20ml做检材。
尿液可在动物排尿时采集，亦可利用导尿管采取。
取样量据检验目的而定，通常取30〜50ml。
水泡液、水肿液、关节囊液，胸腹腔渗出液可用注射器抽取，至少采取1ml。
脓汁的采集，用棉球蘸取，或用注射器吸取。
⑶淋巴结、内脏器官、肌肉淋巴结连带周围脂肪整体采集；内脏器官和肌肉，通常取病变最明显的部位，取样大小可酌情而定。
采集的淋巴结、内脏器官、肌肉分别置于灭菌容器。
⑷水泡皮先将病变部清水清洗，剪取新鲜水泡皮3〜5g放入灭菌小瓶。
⑸肠管选取至少6cm肠管，两端结扎，从结扎线外端稍远处剪断，置灭菌玻璃容器或塑料袋中。
⑹长骨及肋骨整根采集，不要损伤其两端，用5%石炭酸水容液浸透的纱布
或麻袋片包裹；亦可在骨头撒上食盐，再用麻袋片包裹。
⑺流产胎儿、家禽及其它小动物尸体、鱼等用不透水塑料袋包紧，装入木箱送检。
⑻患病小动物在距离实验室较近，又有较好的隔离运输条件下，可将发病小动物直接送实验室检查。
以上病料采集后，立即放入灭菌的玻璃容器，密封，外贴标签。
作细菌学检查的，尽快冷藏。
作病毒学检查的，尽快冷冻或加入病毒保护液。
常用的病毒保护液有：含抗生素的PH7.2〜7.4磷酸盐缓冲液、50%甘油磷酸盐缓冲液、50%
甘油生理盐水。
亦可用灭菌生理盐水。
在采集液体材料和固体材料时均需制作涂片, 供显微镜检查。
液体材料如血
液、胆汁、分泌物等直接用灭菌接种环取一滴, 于载玻片中央均匀涂布成适当大
小的薄层；组织器官则以无菌方法剪取新鲜切面, 在玻片上压印（触片）或涂抹
成一薄层。
涂片自然干燥后，使其涂面彼此相对, 两端加以火柴杆或厚纸片，用
线缠紧，用纸包好，放小盒内送检。
每份病料不少于3张涂片。
2、供寄生虫检查材料的采集、处理
⑴血液多从耳静脉采血，立即制成涂片标本。
⑵阴道分泌物用蘸有生理盐水的棉球在阴道内反复旋转擦拭，再将棉球的
液体挤压在载玻片上，制成涂片。
当分泌物较少时，可用35C左右的生理盐水冲洗阴道、子宫，收集冲洗液，离心，取沉渣涂片镜检。
⑶粪便从动物直肠采集或采集新排出的粪便，一般采取10〜30g。
采集后置于洁净的玻璃容器或塑料袋，冷藏待检。
⑷被寄生虫寄生的组织、器官采集时常连带寄生虫一并采集，放入5% 10%福尔马林溶液中。
⑸皮肤刮取物
螨病病料：在病变皮肤和健康皮肤交界处采集。
病变部剪毛，用锐匙或凸刃小刀，与皮肤垂直刮取皮屑，刮到皮肤微出血为止。
把刮取物置于洁净小瓶，加塞。
若在野外采集样品，可在刀刃上蘸些水或煤油，以防刮风吹跑病料。
晓虫病料：用常水浸湿棉球，在马匹肛门周围及会阴部皮肤上反复擦拭，用擦拭后的棉球涂片。
⑹寄生虫
体表寄生虫：用手或镊子捏取；附有虫体的羽毛可剪下。
放入70%酒精、甘油酒精或5%福尔马林容液中。
体内寄生虫：在胃肠道等组织器官洗液中发现蠕虫时，小型线虫用毛笔将虫体挑出，经生理盐水洗净后，移入70%酒精、甘油酒精或巴氏夜固定。
大型蠕虫像蛔虫、棘头虫、绦虫用5%〜10%福尔马林溶液固定。
三、供血清学检查材料的采集、处理
1、血清
⑴采血用于制备血清的血液采出后不加抗凝剂，不进行脱纤处理。
一次采血量大中动物每头不少于10ml,家禽不少于3ml,雏鸡适量。
需要检测双份血清比较抗体效价变化时，第一份血液采于病初，制成血清后冻结保存。
然后间隔3〜4周采集制备第二份血清。
两份血清同时送检。
⑵制备血清采血时使血液直接流入试管，加塞，立即摆成斜面，待血液凝固后竖起试管，使血清自然析出。
析出的血清用注射器或吸管移至另一试管或青霉素空瓶中，加塞送检。
亦可将血液离心分离血清。
作血清学检测的血液，在采集、运送、制备血清过程中，均应避免震动和冻结，防止溶血，影响检测结果。
⑶血清保存制备的血清若能在一周内检测，4C冷臧。
若需保存较长时间, -30 C冻结。
2、抗原抗原材料
采集、处理方法同微生物学检查材料的采集和处理。
四、供病理组织学检查材料的采集、处理
1、选材
病理组织学检查材料是供切片镜检用的，为了在显微镜下正确辩别组织和细胞病变，一个视野中应包含病理组织和健康组织。
因此，应选择病变部位与健康
部位交界处的组织作为检材。
而且健康组织应包括器官的主要构造，例如肾组织应包括皮质、髓质、肾盂；肝脏、脾脏等应连有被膜。
较重要的病变要多取几块，以展示病变的发展过程。
若同一器官有不同的病变，分别采取。
2、采集
切取组织块要用锋利的刀具，切割时必须迅速而正确，忌用拉锯式来回切割。
供切片用的组织块大小为1.5cm X 1.5cm X 0.5cm，但采集的新鲜组织块要大一些和厚一些，以便固定后重新修整组织块，并留有备用。
组织块固定前切忌触摸、挤压，以防改变组织原有结构和性状。
3、固定
常用的固定液有10%福尔马林溶液、95%酒精、鲍因氏液（Bouni氏液）等。
固定液的量应是病料体积的5〜10倍。
固定时间通常为12〜24h。
若需长期保存, 经12〜24h后更换一次固定液。
固定时在容器底部垫以脱脂棉，以防组织粘底而固定不良。
若有几个病例的
组织固定在同一容器时，应把每一病例的组织块用纱布包好，附上标签再投入固定液中。
供快速冰冻切片检查用的组织常不经固定，采样后尽快送检。
如当天不能送
出或检查，必须冻结保存，以免组织腐败和自溶。