植物组织渗透势的测定

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植物组织渗透式的测定

植物组织渗透式的测定
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• 结果分析
注意寻找在两个相邻浓度的蔗糖溶液中,其中 一个大约有50%的细胞发生初始质壁质壁分 离,而在其后一个浓度的蔗糖溶液中不发生 质壁分离,以这两个浓度的平均浓度作为等 渗浓度,其对应的渗透势即为细胞的渗透势。
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未发生质壁分离 .
箭头所示角隅处发.生初始质壁分离
胞表箭 内皮头 容时所 物被示 流撕细 失破胞
当发生质壁分离时, ψp =0,这时Ψ = Ψs
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质壁分离法
• 实验原理
生活细胞的原生质膜是一种选择透性膜,可以看作是半透 膜,它对于水是全透性的,而对于一些溶质如蔗糖的透 性较低。因此当把植物组织放在一定浓度的外液中,组 织内外的水分便可通过原生质膜根据水势梯度的方向而 发生水分的迁移,当外液浓度较高时(高渗溶液),细 胞内的水分便向外渗出,引起质壁分离;而在外液浓度 低时(低渗溶液),外液中的水则进入细胞内。当细胞 在一定浓度的外液中刚刚发生质壁分离时(初始质壁分 离,质壁分离仅在细胞角隅处发生),细胞的压力势等 于零,细胞的渗透势等于细胞的水势,也就等于外液的 渗透势。该溶液即称为细胞或组织的等渗溶液,其浓度 称为等渗浓度。
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• 注意 1. 加样时测定管中不允许有气泡,否 则会发生不冻现象或结果不准确。 2. 若样品挤出液含有植物残渣,要离 心去掉杂质后再测定。 3. 仪器长期不用后需校正后再用。
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2. 材料取出后,用剪刀将材料剪碎,放入注射器 内融冰,然后用加压方法将细胞液挤出,存于 Eppendorf管内,如暂时不能测,可放入冰箱冰室内保存。
3. 打开冰点渗透压计的电源,如果仪器需要校正 则按仪器使用说明用标准液进行校正。
4. 取20ul待测液倒入测定管中,把测定管放入致冷 槽内,按下探头,按“COOL”键致冷,约70Sec后,测 定管内发出强振声,同时数字显示器显示数字,待数 字稳定不变后,即可记下读数。

植物组织渗透势测定

植物组织渗透势测定
植物组织渗透势测定
• 引言 • 植物组织渗透势测定的原理 • 实验材料与设备 • 实验步骤与操作 • 结果与讨论 • 结论
01
引言
植物组织渗透势的概念
01
植物组织渗透势是指植物组织内 部的水势,与外部溶液的水势相 比较,反映了植物组织吸水或失 水的能力。
02
渗透势的高低与溶液中溶质的浓 度、种类和温度等因素有关,浓 度越高,渗透势越低;反之,浓 度越低,渗透势越高。
位。
用于称量植物组织和渗 透溶液的重量,以计算
渗透势。
保持实验环境温度恒定, 以减少温度对渗透势测
定的影响。
04
实验步骤与操作
样品制备
选取健康植物组织
选择健康、无病虫害的植物组织 作为实验材料,确保实验结果的
准确性。
清洗与处理
将植物组织清洗干净,去除表面的 污垢和杂质,然后进行适当的处理, 如切片或研磨,以便进行后续测定。
06
结论
本实验的结论
植物组织渗透势的测定对于了解植物水分关系和生理状态具有重要意义。
通过本实验,我们成功地测定了植物组织的渗透势,并得到了较为准确的 结果。
在实验过程中,我们发现植物组织渗透势受到多种因素的影响,如植物种 类、生长环境、组织状态等。
对植物组织渗透势测定的意义和影响
植物组织渗透势的测定有助于了 解植物对水分的吸收、运输和利
将植物组织渗透势的测定应用于更多的植物种类 和实际生产中,以扩大其应用范围和价值。
THANKS
感谢观看
渗透势的高低与水分子的浓度有关,水分子的浓度越高,渗透势越低;反之,水 分子的浓度越低,渗透势越高。
渗透势的物理意义
渗透势反映了水分在植物组织中的流 动状态,是植物水分运输和吸收的重 要驱动力。

测定植物组织水势的方法及其原理

测定植物组织水势的方法及其原理

测定植物组织水势的方法及其原理测定植物组织水势是研究植物生理学中的重要课题之一。

水势是指植物细胞内外水分的自由能差,是植物体内水分运输和调节的关键指标。

本文将介绍几种常用的测定植物组织水势的方法及其原理。

一、压力室法压力室法是一种直接测定植物组织水势的方法。

其原理基于植物细胞内外水势的平衡关系。

在实验中,将待测组织样品放入一个密封的压力室中,通过增加压力,使压力室内外的水势达到平衡。

通过测量加入压力之前和之后的压力差,可以计算出组织的水势值。

二、渗透势法渗透势法是一种间接测定植物组织水势的方法。

其原理基于渗透压对水势的影响。

在实验中,将待测组织样品放入含有不同浓度溶液的渗透槽中,使组织与外界形成渗透平衡。

通过测量组织与溶液之间的渗透压差,可以计算出组织的水势值。

三、压力-容积曲线法压力-容积曲线法是一种间接测定植物组织水势的方法。

其原理基于植物细胞的压力-容积关系。

在实验中,将待测组织样品置于不同的外界压力下,测量组织的容积变化。

通过绘制压力-容积曲线,可以确定组织的压力势和水势值。

四、气体法气体法是一种间接测定植物组织水势的方法。

其原理基于气体扩散对水势的影响。

在实验中,将待测组织样品置于密闭的容器中,通过测量容器内气体的湿度变化,可以计算出组织的水势值。

以上所述的方法各有优缺点,选择合适的方法取决于实验目的、样品特性和实验条件等因素。

此外,还可以结合其他生理指标的测定结果,综合分析植物组织的水势状况。

测定植物组织水势的方法包括压力室法、渗透势法、压力-容积曲线法和气体法等。

这些方法基于不同的原理,通过测量不同的参数来间接或直接地确定植物组织的水势值。

在实际应用中,需要根据具体情况选择合适的方法,并结合其他指标进行综合分析,以全面了解植物的水分状况。

09 质壁分离植物组织渗透势的测定

09  质壁分离植物组织渗透势的测定

植物组织渗透势的测定一、实验目的1. 观察植物组织的细胞质壁分离过程及其原理和方法的掌握。

2. 学会用质壁分离法测定植物细胞渗透势的方法。

二、实验原理渗透势是指因溶质溶解而使水的自由能降低(与纯水相比)的数值,降低的值与溶质的浓度成正比,纯水的水势最大(值定为零),当水中具有溶质,水势便降低,此时的水势称为渗透势,故是负值(渗透势的绝对值等于溶质的渗透压,渗透压为正值)。

渗透势的单位以巴表示,1巴 = 0.985大气压(或1大气压 = 1.013巴)。

植物成熟的细胞都具有液泡,液泡中具有各种溶质,故具有一定的渗透势,液泡外面包裹着活的原生质,原生质外面有细胞壁包围,细胞壁可看作是层透膜,活的原生质具有选择性,所以整个细胞类似一个渗透系统。

可用质壁分离法测量细胞渗透势。

质壁分离法当细胞放在一种渗透势比其细胞液渗透势低的溶液中时,细胞液中的水向外渗,液泡体积缩小,原生质的胞壁也跟着向内收缩,如水分继续外渗,液泡体积缩小,而胞壁弹性有限,不能继续收缩,原生质就和细胞壁脱离,这就是质壁分离现象。

当细胞放在某一溶液中,细胞内外水分交换达到平衡,即处于渗透平衡状态,此时细胞内的压力势为零,那么细胞液的渗透势就等于该溶液的渗透势,该溶液浓度称为等渗浓度。

利用一系列梯度浓度的溶液,观察质壁分离现象时,细胞的等渗浓度将介于刚刚引起初始质壁分离现象时(即细胞只是角偶上与胞壁分离)的浓度和与其相邻的尚不能引起质壁分离浓度梯度之间的溶液浓度。

代人公式Ψ= - RTiC即可算出其渗透势。

s三、实验用品(一)材料洋葱鳞茎或紫鸭跖草叶片。

(二)器材显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、刀片。

(三)试剂 1 mol/L蔗糖溶液。

四、实验操作1.以1 mol/L的蔗糖溶液作母液,用蒸馏水配成0.10,0.20,0.25,0.30,0.35,0.40,0.45,0.50,0.60 mol/L的一系列浓度的蔗糖溶液各10 ml。

各溶液分别装入具塞子试管中,按浓度梯度递减的次序排成一行,并在试管壁上贴上标签注明浓度。

实验植物组织渗透势的测定(质壁分离法)

实验植物组织渗透势的测定(质壁分离法)

实验1 植物组织渗透势的测定(质壁分离法)一、实验目的观察植物组织在不同浓度溶液中细胞质壁分离的产生过程及其用于测定植物组织渗透势的方法。

二、实验原理当植物组织细胞内的汁液与其周围的某种溶液处于渗透平衡状态,植物细胞内的压力势为零时,细胞汁液的渗透势就等于该溶液的渗透势。

该溶液的浓度称为等渗浓度。

当用一系列梯度浓度溶液观察细胞质壁分离现象时,细胞的等渗浓度将介于刚刚引起初始质壁分离的浓度和尚不能引起质壁分离的浓度之间的溶液浓度。

代入公式即可计算出渗透势。

三、实验仪器、试剂、材料等显微镜;载玻片及盖玻片;镊子;刀片配成0.5—0.1mol/L梯度浓度的蔗糖溶液各50ml。

称34.23g蔗糖用蒸馏水配成100ml,其浓度为1m0le/L(母液)。

再配制成下列各种浓度:0.50mol/L:吸母液25ml+水25ml0.45mol/L:吸母液22.5ml+水27.5ml0.40mol/L:吸母液20.0ml+水30.0ml0.35mol/L:吸母液17.5ml+水32.5ml0.30mol/L:吸母液15.0ml+水35.0ml0.25mol/L:吸母液12.5ml+水37.5ml0.20mol/L:吸母液10.0ml+水40.0ml0.15mol/L:吸母液7.5ml+水42.5ml0.10mol/L:吸母液5.0ml+水45.0ml四、实验方法将带有色素的植物组织(叶片),一般选用有色素的洋葱鳞片的外表皮、紫鸭跖草、苔藓、红甘蓝或黑藻、丝状藻等水生植物,也可用蚕豆、玉米、小麦等作物叶的表皮。

撕取下表皮,迅速分别投入各种浓度的蔗糖溶液中,使其完全浸入,5—10分钟后,从0.5mol/L开始依次取出表皮薄片放在滴有同样溶液的载玻片上,盖上盖玻片,于低倍显微镜下观察,如果所有细胞都产生质壁分离的现象,则取低浓度溶液中的制片作同样观察,并记录质壁分离的相对程度。

实验中必须确定一个引起半数以上细胞原生质刚刚从细胞壁的角隅上分离的浓度,和不引起质壁分离的最高浓度。

实验一植物细胞渗透势的测定

实验一植物细胞渗透势的测定

实验一植物细胞渗透势的测定(质壁分离法)植物细胞的渗透势主要取决于细胞的溶质浓度,因此又称溶质势。

渗透势与植物水分代谢、生长及抗性等有密切关系。

已知在干旱、盐渍等条件下,一些植物常在细胞内主动积累溶质,以降低其渗透势,增加吸水能力,而在一定程度上维持澎压,保障细胞的生长和气孔的开放,这种现象叫做渗透调节作用。

渗透调节能力的大小可以用逆境条件下细胞渗透势地降低值来表示,在水分生理与抗性生理研究中经常需要测定。

以下介绍两种测定方法。

[原理] 将植物组织放入一系列不同浓度的蔗糖溶液中,经过一段时间,植物细胞与蔗糖溶液间将达到渗透平衡状态。

如果在某一溶液中细胞脱水达到一平衡时刚好处于临界质壁分离状态,则细胞的压力势ψs 等与外液的渗透势ψso,即ψs=ψso,此溶液称为该组织的等渗溶度,其溶度称为该组织的等渗浓度,即可计算出细胞也渗透度(ψs0)。

实际测定时,由于临界质壁分离状态难以在显微镜下直接观察到,所以一般均以初始质壁分离作为判断等渗浓度的标准。

处于初始质壁分离状态的细胞体积,比吸水饱和时略少,故细胞也浓缩而渗透势略低于吸水饱和时的渗透度,此种状态下的渗透势称基态渗透势。

[仪器与用具] 显微镜1台;载玻片与盖玻片各若干;温度计1支;尖头镊子1把;刀片1片;100ml试剂瓶9套;500ml试剂瓶9套;烧杯、容量平、量筒、吸管等;吸水纸适量。

[试剂]1 mol浓度的蔗糖溶液(1000ml水溶解342.3g蔗糖)称取预先在60~80℃下烘干的蔗糖34.2g,溶于100ml蒸馏水中,即为1摩尔浓度的蔗糖溶液。

0.03%中性红溶液。

蔗糖系列标准液:取干燥洁净的小试剂瓶9号编号,用1摩尔浓度的蔗糖溶液依C 1V1=C2V2公式配置0.30、0.35、0.40、0.45、0.50、0.60、0.70摩尔浓度等一系列不同浓度的蔗糖溶液(具体范围可根据材料不同而加以调整),贮于试剂瓶中,瓶口加塞以防蒸发浓缩。

[方法]:1.用洋葱的外内表皮或紫色鸭跖草的表皮等作实验材料。

植物组织渗透势的测定实验报告

植物组织渗透势的测定实验报告

植物组织渗透势的测定实验报告实验目的:本实验旨在通过测定植物组织的渗透势,了解植物组织的渗透调节机制。

实验原理:渗透势是渗透压作用下的水分势,它是植物体内水分调节的重要指标之一。

植物细胞中的液泡内含有渗透压可增强渗透势,而渗透压的大小可能又会受到细胞内离子浓度的影响。

根据渗透势的计算公式,渗透势=水势-压力势-重力势,则可利用渗透势、压力势、重力势的测定值计算出植物细胞中的水分势。

实验步骤:1.准备不同的糖浓度溶液,如0.2M、0.4M、0.6M、0.8M、1.0M等。

2.取5个均匀的油菜籽,并洗净浸泡入不同浓度的糖溶液中。

3.在浸泡15分钟后,取出5个油菜籽,用纸巾吸干表面水分。

4.将油菜籽用电子天平测重,记录下重量。

5.将油菜籽放入半透膜袋中,然后将膜袋放入加压瓶中。

6.加压瓶内加入注射器,调整压力到1.5大气压。

7.测量处于压力平衡状态的细胞所受力致变形的长度差,计算出油菜籽细胞渗透压。

实验结果与分析:表1 油菜籽细胞渗透压的计算结果浓度(M) 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0渗透势(MPa) -0.19 -0.28 -0.36 -0.48 -0.62压力势(MPa) 0.14 0.14 0.14 0.14 0.14重力势(MPa) 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00水势(MPa) -0.33 -0.42 -0.50 -0.62 -0.76从表1中可见,油菜籽的渗透势随浓度的升高而增加,表明了随着外部糖浓度的增加,细胞内的水分势也随之下降,细胞质减少水分 influx,而且渗透势值也在减少,说明渗透压受到调节的影响。

实验结果表明植物为了与外界达到水分平衡而出现的一种自由节制调节,可以增加渗透势及渗透压,以达到内外环境间的水分调节处理。

结论:通过实验,我们成功地测定了油菜籽细胞的渗透势,发现植物细胞能够通过渗透调节机制对内、外环境的水分进行调节达到平衡。

这对了解植物生长调节具有非常重要的意义。

植物组织中水势的测定

植物组织中水势的测定
水势测定:平衡法
小液流法测定植物组织水势的原理 ?
商务工作计划通用模版
植物组织的水势高于外液的渗透势(溶质势) :
组织吸水,外液浓度变大;ψw植物<ψS
当植物组织与外液接触时发生水分交换:
外液浓度保持不变; ψw植物=ψS
组织失水,外液浓度变小;ψw植物> ψS
植物组织的水势低于外液的渗透势(溶质势):
溶液浓度
0.05
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向
加样器的使用
正确使用: 注意事项:吸取溶液后不能倒置
所取材料在植株上的部位要一致,打取叶圆片要避开主脉和伤口。
取材以及打取叶圆片的过程操作要迅速,以免失水。到实验材料生长处操作。
甲烯蓝易吸附在试管壁上,先用水洗刷,再用铬酸洗液浸泡。, 铬酸洗液回收,可以重复使用。
纸擦干叶片, 勿水洗!
试剂:
05,0.1,0.2,0.3,0.4,0.5 mol·kg-1H2O
用具: 特制试管架1个; 10ml试管12支(具橡皮塞)
CaCl2溶液:
甲烯蓝粉末
(为什么使用特制的试管架?)
(二)实验用品
(三)操作步骤
选取均匀一致的植物叶片8~10片(勿水洗!),打取叶圆片60余片,甲组试管内各加入叶圆片10个,使叶片浸入溶液,盖上橡皮塞,平衡20min以上。期间多次摇动试管,以加速水分平衡。
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向Leabharlann 无平衡浓度结果溶液浓度
0.05
0.1
0.2
0.3
0.4
0.5
液滴移动方向
错误结果

实验1 植物组织渗透势的测定

实验1 植物组织渗透势的测定

实验1 植物组织渗透势的测定一、质壁分离法【实验目的】掌握用质壁分离法测定植物组织渗透势的原理,学会观察质壁分离现象,并进行细胞渗透势的计算。

【实验原理】将植物组织细胞浸泡在某种外界溶液中时,植物细胞内汁液与外液之间因渗透势存在差异会发生渗透作用。

当细胞汁液的浓度大于外界溶液时,细胞失水,会发生质壁分离;当细胞汁液的浓度小于外界溶液时,细胞吸水;当细胞汁液与外液之间处于渗透平衡状态时,植物细胞内的压力势为零,细胞汁液的渗透势等于该溶液的渗透势。

该外界溶液的浓度成为等渗浓度。

【实验仪器与材料、用品】显微镜载玻片盖玻片镊子刀片 1mol/L的蔗糖母液(称取34.23g的蔗糖用蒸馏水配置成100ml的溶液)移液器带有色素的洋葱或紫鸭趾草【主要内容】设计并配制一系列浓度梯度的蔗糖溶液,通过实验找出使细胞发生初始质壁分离的浓度,计算植物组织的渗透势。

【实验步骤】1、按下表配制一系列浓度的蔗糖溶液,放入小烧杯中。

2、取一层洋葱鳞片(或紫鸭趾草叶片、蚕豆、玉米等作物的叶片表皮),在外表皮上用刀片切成约0.5-0.8×0.5-0.8的小方快,用小镊子从一角开始撕取表皮,迅速分别投入各种浓度的蔗糖溶液中,使其完全浸入5-10分钟。

3、从高浓度的外液即0.5mol/L蔗糖溶液开始依次取出表皮薄片,放在滴有相同溶液的载薄片上,盖上盖玻片于低倍显微镜观察,并记录质壁分离的相对程度。

4、确定使细胞发生初始质壁分离的浓度,即一个引起半数以上细胞原生质体刚刚从细胞壁角隅处分离的浓度,和不引起质壁分离的最高浓度。

两个极限溶液浓度的平均值即与细胞的渗透势相等。

配制新鲜溶液和撕取新鲜叶的表皮,重复将以上步骤,直至有把握确定为止,结果记录在表-2中。

表-2 实验结果记录表实验人日期材料名称实验室室温 oC 蔗糖的终浓度(mol/L)渗透势(巴,bar) 0.5 0.45 0.40 质壁分离的相对程度(作图表示) 0.35 0.30 0.25 0.20 0.15 0.105、计算细胞质液的渗透势测出以上两个极限溶液浓度的平均值后,代入以下公式,计算出常压下该组织细胞质液的渗透势。

植物组织渗透势的测定(质壁分离法)

植物组织渗透势的测定(质壁分离法)

实验一植物组织渗透势的测定(质壁分离法)一、原理成长的植物细胞是一个渗透系统,当把细胞置于一定浓度溶液中时,当植物组织细胞内的汁液与其周围的某种溶液处于渗透平衡状态,且此时植物细胞内的压力势为零时,那么细胞汁液的渗透势就等于该溶液的渗透势。

该溶液的浓度称之为等渗浓度。

当用一系列梯度浓度溶液观察细胞质壁分离现象时,细胞的等渗透浓度将界于刚刚引起初始质壁分离的浓度和与其相邻的尚不能引起质壁分离的浓度梯级之间的溶液浓度。

代入公式即可计算出其渗透势二、仪器药品显微镜载玻片及盖玻片镊子刀片培养皿8套滤纸1M蔗糖溶液滴管三、实验步聚1.梯度浓度溶液的配制:用1M蔗糖溶液为母液,分别吸取8,7,6,5,4,3,2ml溶液于试管中,各加入蒸馏水至10ml,即成0.8,0.7,0.6,0.5,0.4,0.3,0.2M的梯度溶液。

用移液管,从0.2M依次取一定量的溶液(3ml),盛于培养皿内,盖上盖,贴上标签待用。

2.将带有色素的植物组织(叶片),一般选用有色素的洋葱鳞片的外表皮,紫鸭跖草,苔藓,红甘蓝及黑藻,丝状藻等水生植物,也可用乔豆,玉米、小麦等作物叶的表皮。

用镊子撕取下表皮,迅速分别投入各种浓度的蔗糖溶液中,使其完全浸入,3.5—10分钟后,从0.5M开始依次取出表皮薄片放在滴有同样溶液的载玻片上,盖上盖玻片,于显微镜下观察是否所有细胞都产生质壁分离的现象,实验中必须确定一个引起半数以上细胞原生质刚刚从细胞壁的角隅上分离的浓度,和不引起质壁分离的最高浓度。

取二者的平均值为等渗透势。

4.按照公式把等渗浓度换算成渗透势,以MPa表示之。

ψπ=-RTiCψπ表示欲测渗透势,MPa;R表示气体常数:0.008314( MPa ·L/M·K);T表示绝对温度,即(273+t℃) K;i 表示解离系数,蔗糖等于1。

C表示等渗溶液的浓度,则:ψπ=-0.008314×(273+ t℃)×1×C测出引起质壁分离刚开始的蔗糖溶液浓度和与其相邻的不引起质壁分离最高浓度之后,可按下列公式计算在常压下该组织细胞质液的渗透势。

测植物渗透式实验报告

测植物渗透式实验报告

一、实验目的1. 了解植物渗透势的概念及其与植物生长和适应环境的关系;2. 掌握植物渗透势的测定方法;3. 通过实验,探究不同植物组织渗透势的差异。

二、实验原理植物渗透势是指植物细胞内液泡的溶质浓度与外界溶液浓度相等时,细胞内液泡所具有的渗透压力。

植物渗透势与植物的水分代谢、生长和抗逆性等密切相关。

通过测定植物渗透势,可以了解植物在不同环境条件下的水分状况,为植物栽培和管理提供理论依据。

三、实验材料1. 植物材料:不同品种的植物叶片(如小麦、玉米、大豆等);2. 仪器设备:电子天平、蒸馏水、不同浓度的蔗糖溶液(0.05M、0.10M、0.20M、0.30M、0.40M、0.50M)、滴管、培养皿、滤纸、剪刀等。

四、实验方法1. 准备不同浓度的蔗糖溶液;2. 将植物叶片洗净、剪成小块,用电子天平称取一定重量(如0.5g);3. 将植物叶片放入培养皿中,用滴管滴加不同浓度的蔗糖溶液,使叶片完全浸没;4. 将培养皿置于室温下,观察并记录植物叶片在蔗糖溶液中的变化,如叶片的沉浮、颜色变化等;5. 根据实验结果,分析不同植物组织渗透势的差异。

五、实验步骤1. 实验前,准备不同浓度的蔗糖溶液,用蒸馏水配制;2. 将植物叶片洗净、剪成小块,用电子天平称取0.5g;3. 将植物叶片放入培养皿中,用滴管滴加0.05M蔗糖溶液,观察并记录叶片变化;4. 重复步骤3,分别滴加0.10M、0.20M、0.30M、0.40M、0.50M蔗糖溶液,观察并记录叶片变化;5. 根据实验结果,分析不同植物组织渗透势的差异。

六、实验结果与分析1. 在0.05M蔗糖溶液中,所有植物叶片均沉入底部,说明此时植物叶片的渗透势高于0.05M蔗糖溶液的渗透势;2. 在0.10M蔗糖溶液中,部分植物叶片沉入底部,部分叶片浮起,说明此时植物叶片的渗透势介于0.05M和0.10M蔗糖溶液的渗透势之间;3. 在0.20M蔗糖溶液中,大部分植物叶片沉入底部,说明此时植物叶片的渗透势低于0.20M蔗糖溶液的渗透势;4. 在0.30M、0.40M、0.50M蔗糖溶液中,植物叶片均沉入底部,说明此时植物叶片的渗透势低于相应浓度蔗糖溶液的渗透势。

植物组织渗透势的测定实验报告

植物组织渗透势的测定实验报告

植物组织渗透势的测定实验报告植物组织渗透势的测定实验报告植物组织渗透势是指植物体内细胞和组织之间水分的运输能力。

在植物生长过程中,水分的运输对于维持植物体内的正常生理活动至关重要。

因此,了解植物组织渗透势的测定方法对于研究植物生长和适应环境的机制具有重要意义。

本实验旨在通过测定植物组织的渗透势,探究渗透调节对植物生理过程的影响。

实验选取了两种常见的植物组织:马铃薯切片和黄瓜切片,分别进行测定。

首先,我们需要准备实验所需的材料和试剂。

实验所需的材料包括马铃薯和黄瓜,实验所需的试剂包括蔗糖溶液和蒸馏水。

蔗糖溶液的浓度可以根据实验需要进行调整。

接下来,我们需要进行组织样品的处理和制备。

首先,将马铃薯和黄瓜洗净,并切成薄片。

然后,用蒸馏水对切片进行漂洗,去除表面的杂质。

接着,将切片放入不同浓度的蔗糖溶液中,浸泡一段时间,使组织样品与蔗糖溶液达到平衡。

在实验过程中,我们需要使用测渗法来测定植物组织的渗透势。

首先,将处理好的组织样品取出,用纸巾轻轻吸干表面的水分。

然后,将样品放置在一块干燥的纸巾上,以便测定样品的初始重量。

接下来,将样品放置在一个密封的容器中,容器内加入一定量的蒸馏水。

通过观察样品的质量变化,可以间接测定组织样品的渗透势。

由于渗透势与水分的流动方向相反,当组织样品吸收蒸馏水时,样品的质量会增加;而当组织样品释放水分时,样品的质量会减少。

在实验过程中,我们可以通过测量样品在不同时间点的质量来计算组织样品的渗透势。

通过绘制样品质量随时间变化的曲线,可以得到组织样品的吸水或释水速率。

通过比较不同组织样品的吸水或释水速率,我们可以推测不同组织样品的渗透调节能力。

实验结果显示,马铃薯切片在蔗糖溶液中的吸水速率较慢,而黄瓜切片在蔗糖溶液中的吸水速率较快。

这说明马铃薯组织对外界环境的渗透调节能力较强,而黄瓜组织对外界环境的渗透调节能力较弱。

通过本实验,我们可以初步了解植物组织渗透势的测定方法,并通过比较不同组织样品的渗透调节能力,推测植物对外界环境的适应能力。

植物组织渗透势的测定

植物组织渗透势的测定

实验 1植物组织渗透势的测定(质壁分离法)一、实验目的观察植物组织在不同浓度溶液中细胞质壁分离的产生过程及其用于测定植物组织渗透势的方法。

二、实验原理当植物组织细胞内的汁液与其周围的某种溶液处于渗透平衡状态,植物细胞内的压力势为零时,细胞汁液的渗透势就等于该溶液的渗透势。

该溶液的浓度称为等渗浓度。

当用一系列梯度浓度溶液观察细胞质壁分离现象时,细胞的等渗浓度将介于刚刚引起初始质壁分离的浓度和尚不能引起质壁分离的浓度之间的深液浓度。

代入公式即可计算出春渗透势。

三、实验仪器、试剂、材料等显微镜;载玻片及盖玻片;镊子;刀片配成 0.5 —0.1mol/L梯度浓度的蔗糖溶液各50ml。

称 34.23g 蔗糖用蒸馏水配成 100ml,其浓度为 1m0le/L (母液)。

再配制成下列各种浓度:0.50mol/L :吸母液 25ml+水 25ml0.45mol/L :吸母液 22.5ml+ 水 27.5ml0.40mol/L :吸母液 20.0ml+ 水 30.0ml0.35mol/L :吸母液 17.5ml+ 水 32.5ml0.30mol/L :吸母液 15.0ml+ 水 35.0ml0.25mol/L :吸母液 12.5ml+ 水 37.5ml0.20mol/L :吸母液 10.0ml+ 水 40.0ml0.15mol/L :吸母液 7.5ml+ 水 42.5ml0.10mol/L :吸母液 5.0ml+ 水 45.0ml四、实验方法将带有色素的植物组织(叶片),一般选用有色素的洋葱鳞片的外表皮、紫鸭跖草、苔藓、红甘蓝或黑藻、丝状藻等水生植物,也可用蚕豆、玉米、小麦等作物叶的表皮。

撕取下表皮,迅速分别投入各种浓度的蔗糖溶液中,使其完全浸入, 5—10 分钟后,从0.5mol/L开始依次取出表皮薄片放在滴有同样溶液的载玻片上,盖上盖玻片,于低倍显微镜下观察,如果所有细胞都产生质壁分离的现象,则取低浓度溶液中的制片作同样观察,并记录质壁分离的相对程度。

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2. 材料取出后,用剪刀将材料剪碎,放入注射器 内融冰,然后用加压方法将细胞液挤出,存于 Eppendorf管内,如暂时不能测,可放入冰箱冰室内保存。
3. 打开冰点渗透压计的电源,如果仪器需要校正 则按仪器使用说明用标准液进行校正。
4. 取20ul待测液倒入测定管中,把测定管放入致冷 槽内,按下探头,按“COOL”键致冷,约70Sec后,测 定管内发出强振声,同时数字显示器显示数字,待数 字稳定不变后,即可记下读数。
蔗糖 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 浓度
(M) 质壁 分离 情况
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8
• 结果分析
注意寻找在两个相邻浓度的蔗糖溶液中,其中 一个大约有50%的细胞发生初始质壁质壁分 离,而在其后一个浓度的蔗糖溶液中不发生 质壁分离,以这两个浓度的平均浓度作为等 渗浓度,其对应的渗透势即为细胞的渗透势。

OS=(△t)/1.857
– 式中:OS为1000克水中所溶解的溶质颗粒数目,即重量摩尔渗透浓 度(osmolarity),也就是总颗粒浓度ic值; △t为冰点下降数值 (度);1.857为水的摩尔冰点下降常数。
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根据上述原理,本实验采用冰点渗透压计测定植 物细胞液的渗透势, 冰点渗透压计的测量原理
植物组织渗透势的测定
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1
实验目的
• 渗透势是水势的组分之一,是指由于细 胞内溶质颗粒的存在而使水势下降的数 值,纯水的渗透势为零,溶液的渗透势 为负值。植物细胞的渗透势是植物的一 个重要生理指标,对于植物的水分代谢、 生长及抗性都具有重要的意义。常用于 测定植物细胞与组织水势的方法有质壁 分离法、冰点降低法、蒸汽压降低法等。
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2
• 成熟植物细胞水势的组成:
Ψ = Ψs+ Ψp
1. Ψs 溶质势/渗透势 由于溶液中溶质颗粒的存在而使水势降低的值。纯水的
溶质势为0,溶液的渗透势可根据 Van‘t Hoff Equation
计算: Ψs = - CiRT
2. ψp 压力势 压力势是指外界(如细胞壁)对细胞的压力而使水势 增大的值。一般情况下细胞处于膨胀状态,原生质 体压迫细胞壁产生膨压,而细胞壁反过来反作用于 原生质体使产生压力势。
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冰点下降法
• 实验原理:
根据Van Hoff公式,溶液的渗透势ψs=-icRT,因此只要知道溶液 的ic值即颗粒的总浓度即可算出溶液的渗透势。而根据物理化学 溶液理论之一 ——拉乌尔(Raoult)冰点下降原理,任何溶液, 如果其单位体积中所溶解的溶质颗粒(分子和离子)总数相同, 则引起冰点下降的数值也相同。实验表明,1摩尔的任何非电解 质(等于6.02×1023分子颗粒数)溶解于1000克水中,则使水的冰 点由0度下降至-1.857度;而1摩尔的电解质溶解于1000克水中,其冰 点下降值为解离的离子与不解离的分子的总摩尔数同1.857的乘 积,即冰点下降值与溶质的总颗粒数有关。因此,欲求某一溶液的 溶质颗粒数目,可先测其冰点下降数值,然后再按下式算出结果:
0.25
-6.70
0.3
-8.13
0.35
-9.58
0.4
-11.11
0.45
-12.69
0.5
-14.31
0.55
-15.99
0.6
-17.77
0.65
-19.61
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13
0.7
-21.49
• 注意:
1. 观察时要在载玻片上滴一滴同浓 度的蔗糖溶液。
2. 实验用洋葱以紫色的最易于观察 质壁分离,其它材料如紫鸭趾草、红甘 蓝也可代替。
是以冰点下降值与溶液的摩尔浓度成比例关系 为基础,采用高灵敏度的感温元件热敏电阻测 量溶液的冰点,通过电量转换,冰点下降值直接 转换为常用渗透势单位(mosm/KGH2O)。测定时 将被测液体样品置于半导体致冷槽中进行冷却, 使之温度下降至-10度左右,通过强掁使之结冰,
测定其冰点。渗透压计的操作过程采用程序自
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4
质壁分离现象——水分的渗透作用
高渗溶液
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5
• 实验设备与材料
–显微镜; –镊子; –载玻片; –盖玻片; –刀片;培养皿; –移液管; –蔗糖; –洋葱
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6
• 实验步骤
1. 配制一系列不同浓度的蔗糖溶液,浓度 分别为0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6M。
2. 取6个培养皿,编号,分别吸取上述浓 度的蔗糖溶液各10ml放于培养皿内。
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9
未发生质壁分离
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10
箭头所示角隅处可发编辑生版 初始质壁分离
11
胞表箭 内皮头 容时所 物被示 流撕细 失破胞
,在 细撕
已在很大程度上发可编生辑版质壁分离
12
表:蔗糖溶液浓度与其渗透势
蔗糖溶液浓度(mol/L)
渗透势(大气压)
0.1
-2.64
0.15
-3.96
ห้องสมุดไป่ตู้0.2
-5.29
当发生质壁分离时, ψp =0,这时Ψ = Ψs
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3
质壁分离法
• 实验原理
生活细胞的原生质膜是一种选择透性膜,可以看作是半透 膜,它对于水是全透性的,而对于一些溶质如蔗糖的透 性较低。因此当把植物组织放在一定浓度的外液中,组 织内外的水分便可通过原生质膜根据水势梯度的方向而 发生水分的迁移,当外液浓度较高时(高渗溶液),细 胞内的水分便向外渗出,引起质壁分离;而在外液浓度 低时(低渗溶液),外液中的水则进入细胞内。当细胞 在一定浓度的外液中刚刚发生质壁分离时(初始质壁分 离,质壁分离仅在细胞角隅处发生),细胞的压力势等 于零,细胞的渗透势等于细胞的水势,也就等于外液的 渗透势。该溶液即称为细胞或组织的等渗溶液,其浓度 称为等渗浓度。
3. 用镊子撕取洋葱的外表皮投入各浓度的 蔗糖溶液中,使其完全浸没。投入时先从高浓 度开始,每隔5min向下一浓度放2~3片洋葱表 皮。
4. 在洋葱表皮在各浓度的蔗糖溶液中平衡 30min后,从高浓度开始依次取出放入显微镜 下观察质壁分离的情况(低倍镜即可),记录 观察结果。
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• 实验结果
动控制。
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• 实验仪器及材料
– 冰点渗透压计(美国产Fiske 210型); – 液氮罐; – 注射器; – eppendorf管; – 纱布; – 吸水纸。
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• 实验步骤
1. 取一定量的植物材料,用潮湿纱布轻轻擦去表 面灰尘;将材料包在洁净的锡箔纸中,立即放入液氮 中5分钟,将细胞杀死。也可放在低温冰箱中杀死组织。
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