微卫星技术及其应用
微卫星分析讲解

3核苷酸重复有10种类型。
每个微卫星DNA 都由核心序列和侧翼序列组成, 其核心序列呈串联重复排列,侧翼 序列位于核心序 列的两端,为保守的特异单拷贝序列。
PCR扩增后的等位微卫星可以用多种方法检测,如放 射性同位素、银染、荧光标记。
我们使用的 T1 载体是 3000bb,太长的片段不易连接。
6、接头连接里面的接头是商业化接头还是贵公司设计合成的,依据是 是我们自己制备的。同问题 3,根据内切酶所切还是互补序列 一样。
沸煮
8、 解链 15lPCR 产物。 98℃沸煮 5-10min, 迅速冰浴 1 min, 48℃水浴 1-5min,迅速冰浴 1 min。这个步骤是否有问题,每步的目的是?
已知序列:先用SSR hunter扫描SSR位点, 再根据得到的序列设计引物进行后列设计引物 进行后续实验。
实验报告主要内容
文字性实验报告:包含实验试剂耗材、步骤、实验条件、 体系、引物序列、统计结果等;
各位点筛选多态性的PDF图;
2、引物设计合成及筛选
荧光引物标记:选取一对引物中的一条,合成寡核苷 酸链后在5’端合成上荧光素,FAM、HEX、TMR、ROX 标准组合;
设计与合成:荧光引物的标记效率和纯度对后期试验 至关重要,我们按照法医身份鉴定试剂盒和基因诊断 领域的标准来制备荧光引物;
筛选:我们利用M13(荧光/通用引物,18bp,在5’端 添加荧光标记,将M13互补序列添加到一条普通引物 的5’ )加尾法提供筛选服务
测序原始数据(序列和峰图均去掉载体序列);
PDF图及对应的excel表(微卫星分析);
微卫星DNA标记技术的特点及其在动物研究中的应用

基 因 的重 复单 位 数 目是 高 度 变
同 . 此 微卫 星显 示 了高 度 多 态 性 因 通 过 对 微 卫 星 D A 态 性 的 研 究 可 在 生 N 多 产 中选 取 数 个 与 生 产 性 能 相 连 锁 的微 卫 星标 记 。在 这 些 位 点 上 对 所 研 究 的 品 种 或 品 系进 行 分 析 .计 算 父 本 与母
12 微 卫 星 DN 数 量 多 且 在 基 因组 . A
尔遗传规律 .能够稳定地从上一代传
位 点 多态 性 . 些 特 点 可 以 帮 助 我 们 这 进 行 做 各 种 遗 传 分 析 .而 且 在 这 些 微 卫 星位 点 中多 数 可 以 为 不 同 动 物 所 共
11 微 卫星 标 记 具 有 丰 富 的 多态 性 . 微 卫 星 结 构 中 各 位 点 上 不 同 等 位
增 发 现 :在 羊 中5 % 的引 物 可 扩 增 出 6
特 异产 物 .其 中4 % 的扩 增 产 物 表 现 2
多 态 .而 在 马和 人 中则 未 扩 增 出多 态
用。 目前 . 卫 星 标记 技术 已经 被 广 泛 微 运 用 于 遗 传 图谱 的 构 建 、品 系 间 的 遗
物 . 过 P R 增 . 后 再 通 过 凝 胶 电 通 C 扩 然
( 春 学 院 生命 科 学 与资 源 环 境 学 院 , 西 宜 春 宜 江
中图 分 类 号 :85 ¥ 1
文献 标 识 码 : B
文章 编 号 :0 8 o 1(o 1— 0 4 0 10 一 4 42 l)2 03 — 2 1
微卫星在种群遗传学中的应用
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微卫星在种群遗传学中的应用随着科学技术的不断进步,生物学科研中的一些新方法也随之兴起。
其中,微卫星(microsatellite)就是其中之一。
微卫星是DNA序列中的一种重复序列,长度在1-6bp之间,因为重复序列的数量很多,微卫星在某些物种中的数量可以达到成千上万。
微卫星在种群遗传学中的应用越来越被重视,成为研究物种遗传结构、种群遗传多样性以及基因流动性的重要工具。
一、微卫星的优势与其他分子标记技术相比,微卫星具有以下优势:1、高变异性:微卫星是DNA上的多态性序列,比其他标记技术如限制性片段长度多态性(RFLP)或单核苷酸多态性(SNP)具有更高的变异性。
微卫星的变异程度达到了每10-20个个体就有一个变异点的程度,因此微卫星能够良好的反映物种的遗传多样性,和种属内个体之间的差异。
2、复制简单:微卫星的复制是某些酶的嘌呤基连续重复所导致的,而重复本身又是由于DNA拷贝时酶的差异而导致的。
由于这种复制机制相对比较简单且具有高变异性,因此微卫星标记信息容易获取且普遍适用于各种不同物种的基因组研究。
3、高复杂度:许多物种中,微卫星起着网络化基因座的作用,并且能形成微卫星基因组层面的加合效应,在整个基因组层面表现很强的复杂度。
二、微卫星在种群遗传学的应用还是非常丰富的,涉及到种群遗传结构、遗传多样性、基因流动性等多个方面。
1、遗传多样性和遗传结构:微卫星可以被用来研究自然界中物种的基因组遗传多样性和繁殖策略,利用这个标记技术研究物种的遗传结构。
例如,微卫星可被用来研究澳洲袋鼠的个体基因组的遗传变异。
澳洲袋鼠借由基于微卫星之间的多态性来进行种群区分分析,分组的结果能够十分有效的体现出不同种群间的遗传多样性以及遗传结构。
还有一项研究则是在英国白蚁中进行的,作者对微卫星技术的应用进行了比较,表明微卫星基因座显示出了更高的跨年度变异,但较低的异构形式,以及和更准确的频率测定结果,从而对于暴露白蚁生态分布模式的研究具有更高的价值。
MEMS技术及其应用
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经费投入
研究机构
研究方向
研究特点
MEMS的发展过程
20世纪60年代 :
采用将传感器和电子线路集成在一个芯片上的设计思想来制作集成传感器 。
20世纪60年代后期: 硅刻蚀技术用于制作能将压力转换为电信号的应变薄膜结构。
20世纪70年代 : 人们使用硅各向异性选择性腐蚀制作薄膜,掺杂以及基于电化学的腐 蚀停刻技术也出现了,随之而来的是“体硅加工”技术。
MEMS的发展过程
20世纪80年代:
“表面微加工”技术在加速度计、压力传感器和其他微电子 机械结构制作中得到了应用。
1982年,K. Petersen的综述性论文 “Silicon as a mechanical materials” ,概 括了当时MEMS最高水平的微加工技术和 微机械器件,被看作是MEMS研究进入系 统化阶段的标志,开创了MEMS发展的纪 元。
1、微型化特点
4、集成化特点
2、多样化特点
3、稳定性特点
5、批量化特点
6、广义化特点
MEMS的应用
Application Fields of MEMS
由于MEMS器件和系统具有体积小、重量 轻、功耗小、成本低、可靠性高、性能优异、 功能强大、可以批量生产等传统传感器无法比 拟的优点,因此在航空、航天、汽车、生物医 学、环境监测、军事以及几乎人们接触到的所 有领域中都有着十分广阔的应用前景。
MEMS的发展过程的重要历史事件
1939年
1948年 1954年 1958年 1959年 1962年 1965年
P-N结半导体 (W. Schottky)
晶体管 (J. Bardeen, W.H. Brattain, W. Shockley) 半导体压阻效应 (C.S. Smith) 集成电路(IC) (J.S. Kilby) “There is plenty of room at the bottom” (R. Feynman) 硅集成压力驱动器 (O.N. Tufte, P.W. Chapman, D. Long) 表面微机械加速度计 (H.C. Nathanson, R.A. Wichstrom)
群体遗传学的关键技术及应用
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群体遗传学的关键技术及应用随着生物技术的不断发展和进步,越来越多的课题涉及到了群体遗传学。
那么,群体遗传学究竟是什么呢?群体遗传学是研究群体中的基因变异、分布和遗传演化以及遗传流动的学科。
在这个领域,研究人员通常需要采用一系列的关键技术,以帮助他们更好地探究群体遗传学的奥秘。
一、PCR技术PCR技术是在群体遗传学中非常重要的一种分子生物学技术。
这种技术可以迅速扩增DNA,并且扩增出的DNA可以用于各种遗传分析,例如DNA测序、位点分型、基因组扫描等等。
群体遗传学的研究人员通常会用PCR技术来扩增DNA,并且将扩增出的DNA转化为可进行遗传分析的数据。
二、微卫星技术微卫星技术是一种核心基因分型技术,在群体遗传学研究中非常重要。
微卫星是通过多态性来区分基因和染色体的遗传标记。
一般来说,微卫星不会造成基因功能的改变,但是可以通过与不同外显子DNA序列进行比较来区分基因型。
在群体遗传学中,微卫星技术可以用来比较不同群体之间的遗传差异以及区分直系亲属和非直系亲属。
三、DNA测序技术DNA测序技术是一种用来测定DNA序列的技术。
这种技术可以为研究人员提供精确的DNA信息,例如测定特定基因的多态性、发现仔猪的单倍型、以及确定个体基因组中的新鲜基因。
在群体遗传学中,DNA测序技术是非常重要的,因为它可以提供关于群体遗传演化的丰富信息。
四、基因组扫描技术基因组扫描技术是一种旨在解析群体遗传学中与跨物种比较相关的遗传因素的技术。
这种技术可以使用遗传标记来检测有复杂遗传因素参与的性状,并通过分析大量各个体之间的基因组序列,以便发现DNA序列上的差异。
在群体遗传学中,基因组扫描技术可以用来检测与单个基因不同等位基因的关联性,以及探索跨物种比较相关的基因。
应用除了在研究中应用,群体遗传学还有许多实际运用。
例如,群体遗传学可以用来研究人口流动和遗传兼容性、探索气候变化对生态系统的影响、以及改良动植物的品种和遗传特性等等。
群体遗传学的研究结果还可以为医学领域提供有用的信息,例如通过检测群体遗传学变异来发现致病基因的存在,以及研究群体遗传学测序数据来开发新型的癌症和神经退行性疾病的治疗方法等等。
小型卫星研发技术与应用
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小型卫星研发技术与应用第一章:引言近年来,随着科技的不断发展,小型卫星研发技术与应用逐渐成为热点话题。
小型卫星指的是质量在1-500千克之间的卫星,相比传统的大型卫星,其具有体积小、成本低、研制周期短等特点。
本文将重点讨论小型卫星的研发技术和应用领域。
第二章:小型卫星的分类与研发技术小型卫星按功能可分为通信卫星、遥感卫星、科学探索卫星等。
按载荷载体可分为CubeSat(立方卫星)、PocketQube(迷你卫星)、MicroSat(微卫星)等。
小型卫星研发技术主要包括以下几个方面:1. 结构设计技术:小型卫星的结构设计要求轻量化,同时又要具备足够的刚度和强度。
常用的设计方法有立方体结构、平行四边形结构等。
2. 载荷集成技术:小型卫星的载荷集成包括传感器、通信设备、电源系统等的安装和连接。
由于空间有限,需要采用高度整合的设计方法。
3. 姿态控制技术:小型卫星的姿态控制是指卫星保持特定方向和姿态的能力,确保传感器正常工作,同时避免碰撞和不必要的能量消耗。
常见的姿态控制方法有轮式控制、推进器控制等。
4. 载荷研制技术:小型卫星的载荷主要包括光学摄像机、微波雷达、温度传感器等。
在研制过程中,需要考虑载荷的适应性、可靠性和性能指标。
第三章:小型卫星的应用领域小型卫星由于其灵活、低成本的特点,在多个领域得到了广泛的应用:1. 通信领域:小型卫星可以用于提供地球覆盖的通信服务,构建星座网络,实现全球范围内的移动通信。
2. 遥感领域:小型卫星搭载光学或雷达载荷,可以获取地球表面的高分辨率图像,用于环境监测、农业调查、资源勘探等。
3. 空间科学领域:小型卫星可以用于天文观测、空间物理研究等,为科学家提供价值重大的数据和观测结果。
4. 教育领域:小型卫星研发相对较为简单和廉价,适合用于教育和培训目的。
学生可以参与其中,提高自己对卫星技术的理解和应用能力。
第四章:小型卫星的挑战与前景尽管小型卫星具有一定的优势和应用前景,但也面临一些挑战:1. 载荷限制:小型卫星由于体积和重量的限制,无法携带过多的载荷,限制了其功能的发展。
微卫星DNA分析技术在分子系统学中的应用
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微卫星DNA分析技术在分子系统学中的应用随着科技的不断发展,微卫星DNA分析技术在分子系统学中的应用日益成熟和普及。
微卫星是指短重复序列,由不超过10个碱基组成,无编码功能,分布广泛且保守性低,因此非常适合用作物种间、种群间和个体间遗传结构的研究。
本文将就微卫星DNA分析技术在分子系统学中的应用,从分子系统学的基本概念、微卫星DNA分析技术及其优势、分子系统学在分类学、物种鉴定和种群遗传学等领域的应用方面进行介绍。
一、分子系统学的基本概念分子系统学是系统学的一个分支,研究物种进化关系及系统发育史。
随着分子生物学和生物信息学的发展,离子条件等发生了质的飞跃,其中微卫星DNA分析技术成为了分子系统学中重要的研究手段之一。
微卫星DNA指的是一种遗传物质,它的信息量非常大,能够对同一物种甚至不同物种间的遗传差异进行分析,是分子系统学中的重要分析手段。
二、微卫星DNA分析技术及其优势微卫星DNA分析技术是分子生态学/分子系统学的一项基础技术,其基本原理是利用PCR技术扩增目标微卫星位点,根据PCR 产物的大小和组合情况进行鉴定,再利用DNA测序技术将目标微卫星位点的序列进行分析,从而获得微卫星DNA遗传信息。
微卫星DNA分析技术有很多优势,如高度稳定、信息丰富、检测灵敏度高、重复性好、通用性强等,可以应用于物种间、种群间以及个体间的遗传关系研究,是当今分子生态学/分子系统学中受到广泛认可的重要技术。
三、微卫星DNA在分类学中的应用分类学是生物学的一个重要分支,它研究物种间的分类关系及其分类法则,而微卫星DNA技术在物种分类学中广泛应用。
通过微卫星DNA技术,可以对物种内部的遗传差异进行研究,从而了解物种间或种群间的遗传分化程度,进而了解物种的分布、迁移和形成历史,为物种的分类和系统发育等提供了重要的分子生物学依据。
四、微卫星DNA在物种鉴定中的应用物种鉴定是生态学和保护生物学中的一个重要研究内容。
微卫星DNA技术可以应用于物种鉴定研究中,特别是在对难以识别的物种进行鉴定上,如鱼类、昆虫、鸟类等。
微卫星标记技术及其在鸡遗传多样性研究中的应用
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行 血 缘 鉴 定 和 血 缘 控 制 . 传 多 样 性 评 遗 估等研究。
遗 传基 因 图谱 。D G r r 【 19) e ot i 9 7用 a等  ̄ (
8 %蚕 沙替 代 精 料 育 肥 。羊 的 生 长 速 0
1 微 卫 星 DNA标 记 的 特 点 11 微 卫 星DN . A的结 构
2 1 增 重 效 果 .
关 键 词 鸡 微 卫 星 标记
遗传
应 用
增 重 结 果 见 表 3 试 验 1 每 只 。 组
羊 增 重 89 , 比对 照 组 每 只 羊 增 .5
微 卫 星 D A M coa lt D A 1 称 础 ,其 多态 性 可能 是 由于 减 数 分 裂 过 N ( irst le N 又 e i
2 o 年 l 月 上 市 价 格 1 元 /g 算 : 个 基 因组 且 分 布均 匀 等特 点 ,在 畜 禽 遗 传 07 1 4 k计 3 饲 料 用 量 为2 g 经 测 算 , 合 精 料 谱 [] 作D A 纹 图 、 4k, 配 2、 -制 5 N 指 定位 功能 基 因 和数 平 均 每 千克 11元 , .5 蚕沙 每千 克 0 元 。 . 6
试 验 羊 群 效 益 分 析 比较 见 表 4 。
本 次 试 验 羊 采 食 青 粗 饲 草 相 同 , 本 D A 记 突 变 速 度 快 、 有 多 态 性 高 , 共 位 基 因数 越 多 。大 多数 微 卫 星 D A 成 N 具 N 标 具 呈
相 同 故 未 列 入 比较 : 净 增 产 值 以 显 性 遗 传 , 准 确 判 别 等 位 基 因 。 布 于 整 有 种 间 特异 性 , 具 有 家 系 内特 异 性 。 能 遍 也
中国对虾微卫星四重PCR技术的建立及其在模拟放流效果评估方面的应用

系 进行 溯源 跟踪 , 以在 中 国对 虾 放 流 效 果 评 估 中 所
存 在 潜 在 的应用 价值 。S kn e io等 研 究 了基 于微
卫 星标记 的牙 鲆 ( a a i ty l a e s 系谱 追 踪 P r l h h s i cu ) c ov 以及 增殖 放 流工 作 , 们 也 提 出 了利 用 特 定 中 国对 我
( a ma i o e h I d ) 定 。 Ph r eaBit c . 测 t 2 2 方 法 .
2 材 料 与 方 法
2 1 实 验材料 .
2 2 1 引 物筛选 及荧 光标 记 .. 实 验所 用 的引物 其 中 3对 为 已公开 多态 件丰 富 的位点 , 另外 5对 为 实验 窒 自主 开 发 。根 据 引 物 退 火温度 的不 同 , 8 引物 分 为两绀 , 别命 名 为高 将 对 分
伤害, 不易 于大规 模 操作 , 养 殖过 程 中会 有标 记 丢 且 失 现象 , 一定程 度 上影 响 了育种 参 数 的精 确 估 算 。 在
与 此 同时 , 在传统 的水 产动物 增殖放 流工 作 中 同样 是
对放 流个体 进行物理 标识 , 这些 标识 都存 在上 述 的缺 点 与不足 。因此 , 在增 殖 放 流 的效 果 评估 中 , 要 开 需 发一 种新型 的标识技 术对放 流效果进 行精确评 估 。 目前对 中国对 虾进 行标 识放 流的 主要 是外 部标 识 与标 记 , 子 标记 等标 识 方 法 较 少 [ 。微 卫 星 分 分 3 子标 记 为多 态性 丰 富 的共 显 性 标 记 , 合 孟 德 尔 遗 符
丰叉 用 量 。 目寸
个 家 系 的 6个父 母 本 进 行 多 重 P R反 应及 基 【 扫 C 天 1 描 分析 , 到 每个 个 体 分 别在 8个 微 卫 星位 点 的扩 得
应用微卫星技术比较两个实验小鼠群体遗传结构的差异

2020年12月第30卷㊀第12期中国比较医学杂志CHINESE JOURNAL OF COMPARATIVE MEDICINEDecember,2020Vol.30㊀No.12光姣娜,左琴,魏杰,等.应用微卫星技术比较两个实验小鼠群体遗传结构的差异[J].中国比较医学杂志,2020,30(12):42-49.Guang JN,Zuo Q,Wei J,et al.Genetic structure differences in different laboratory mouse populations analyzed by microsatellites [J].Chin J Comp Med,2020,30(12):42-49.doi:10.3969/j.issn.1671-7856.2020.12.007[基金项目]国家科技重大专项(2017ZX10304402-002-006)㊂[作者简介]光姣娜(1995 ),女,硕士研究生㊂研究方向:分子遗传学㊂E-mail:guangjn2018@ [通信作者]王洪(1977 ),女,研究员,研究方向:实验动物遗传质量控制㊂E-mail:littstar@岳秉飞(1960 ),男,研究员,博士㊂研究方向:动物遗传学㊂E-mail:y6784@ ㊀∗共同通信作者应用微卫星技术比较两个实验小鼠群体遗传结构的差异光姣娜,左㊀琴,魏㊀杰,周佳琪,王㊀洪∗,岳秉飞∗(中国食品药品检定研究院,北京㊀102629)㊀㊀ʌ摘要ɔ㊀目的㊀应用微卫星标记比较两个实验小鼠群体的遗传结构组成㊂方法㊀应用36个微卫星标记分析两个实验小鼠群体的遗传结构组成㊂从两个群体中各提取38份基因组DNA,进行PCR 扩增和基因测序,应用统计分析软件PopGen1.32和Littleprogram0.6计算两个群体的遗传结构参数㊂结果㊀A 群的平均等位基因数为2.4839,平均杂合度为0.3376,平均多态性信息含量为0.2875㊂B 群的平均等位基因数为3.4839,平均杂合度为0.4806,平均多态性信息含量为0.4088㊂结论㊀两个实验小鼠群体的遗传结构组成存在差异,长期封闭繁育导致群体遗传结构发生改变㊂建议对封闭群实验动物种群进行定期的遗传结构监测,确保实验动物的遗传质量㊂ʌ关键词ɔ㊀实验小鼠;遗传结构监测;微卫星标记;ddYʌ中图分类号ɔR-33㊀㊀ʌ文献标识码ɔA㊀㊀ʌ文章编号ɔ1671-7856(2020)12-0042-08Genetic structure differences in different laboratory mouse populationsanalyzed by microsatellitesGUANG Jiaona,ZUO Qin,WEI Jie,ZHOU Jiaqi,WANG Hong ∗,YUE Bingfei ∗(National Institutes for Food and Drug Control,Beijing 102629,China)㊀㊀ʌAbstract ɔ㊀Objective ㊀The genetic structure composition of the ddY mouse population,which was bred inisolation for a long time,was compared with that of the newly introduced ddY mouse population by microsatellite analysis.Methods ㊀Thirty-six microsatellite loci were analyzed.Thirty-eight DNA samples were randomly collected from each of the two groups.The DNA samples were then amplified by PCR and the PCR products were sequenced.PopGen1.32andLittleprogram0.6were used to process the data.Results ㊀The average allele number of group A was 2.4839,the average heterozygosity was 0.3376,and the average polymorphism information content was 0.2875.Group B had an average allele number of 3.4839,average heterozygosity of 0.4806,and an average polymorphism information content of 0.4088.Conclusions ㊀The genetic structure of the two laboratory mouse populations was different,and closed breeding result ed in genetic structure changes in the populations.It is necessary to monitor the genetic structure of closed laboratory animalpopulations regularly to ensure the genetic quality of populations.ʌKeywords ɔ㊀laboratory mice;genetic structure monitoring;microsatellites;ddY㊀㊀ddY 小鼠是一种可自发出现多种疾病,具有较高建模成功率的实验小鼠,多种疾病包括肺癌,恶性淋巴瘤,卵巢癌,乳腺癌,以及自发性肾小球肾炎等[1-3]㊂其中,ddY 小鼠自发性肾病的症状以及基因位点与肾小球肾炎患者的临床状况十分相似[3]㊂由于具备其他品系实验小鼠没有的独特优势,ddY 小鼠已经成为应用前景良好的实验小鼠㊂实验动物封闭群是指在不从外部引入新个体的条件下,至少连续繁殖4代以上的实验动物种群[4]㊂封闭群实验动物的繁育特点有可能导致实验小鼠群体发生遗传漂变,突变或选择,进一步引起群体遗传结构的改变㊂遗传结构组成的变化会直接影响实验动物的表现型,直接决定实验结果的准确性㊁科学性和可比性㊂因此,定期对长期封闭繁育的封闭群实验动物群体进行遗传质量监测是非常必要的㊂微卫星标记和SNP 标记是广泛应用于大鼠㊁小鼠㊁兔㊁猫㊁小型猪等多种实验动物的遗传质量检测方法[5-7]㊂相较于SNP 技术,微卫星检测技术具有更丰富多态性,并且具有较好的保守性,其可以检测同一群体不同个体之间的遗传差异,以定量的方式精确展现实验动物的遗传状况[8]㊂与SNP 相比,采用较少的微卫星位点即可实现对封闭群小鼠的遗传质量检测㊂本研究旨在应用微卫星技术监测两个ddY 实验小鼠群体的遗传结构,分析长期封闭繁育对实验动物群体遗传结构的影响,探讨对封闭群实验动物群体进行定期遗传结构监测的必要性㊂1㊀材料和方法1.1㊀实验动物A 群:本单位2013年从日本脏器制药有限责任公司引进的ddY 小鼠,已在本单位屏障系统繁育6年㊂B 群:本单位2019年从日本脏器制药有限责任公司引进的ddY 小鼠㊂从两个群体中各自随机选取38只,雌雄各半,SPF 级,28~30g,8周龄ddY 小鼠的鼠尾1~2cm㊂ddY 小鼠均于本单位屏障系统中繁育[SCXK (京)2017-0005]㊂小鼠取材操作于中国食品药品检定研究院动物实验设施内进行[SYXK(京)2017-0013]㊂所有实验操作均符合 3R 原则,经中国食品药品检定研究院动物福利伦理审查委员会审批(中检动(福)第2019(A)001号)㊂1.2㊀主要试剂与仪器100bp DNA marker(批号:A2601A)和PCR 反应试剂盒(批号:R007A)均购自TaKaRa 公司;50 TAE Buffer(批号:F521KA1898)购自生工生物工程股份有限公司㊂PCR 仪:Veriti 96well Thermal cycler(美国ABI 公司);电泳仪:Power Pac Basic (美国Bio-Rad 公司);凝胶成像分析仪:GL 212Pro(美国Kodak 公司)㊂1.3㊀实验方法1.3.1㊀DNA 提取酚氯仿抽提法提取基因组DNA,用琼脂糖凝胶电泳和微量分光光度计检测其完整性,纯度和浓度㊂所有DNA 样本的A260/280均为1.7~1.9,样品纯度合格;DNA 样本稀释到50ng /μL 作为DNA 工作液,-20ħ保存备用㊂1.3.2㊀引物的选择本实验采用的36个微卫星位点均来自本实验室前期研究成果[9],文献中未注明的6个微卫星位点引物序列信息详见表1㊂由北京擎科新业生物技术有限公司标记正向引物的5 端并合成引物㊂表1㊀6个微卫星位点引物序列信息Table 1㊀Primer sequence of six microsatellites loci位点Locus 引物序列(5 ң3 )Primer sequence染色体位置Chromosome荧光标记FluorescenceD1Mit7F:TGGTAGAGGAAGGTGCACGR:CAGGGGAGTAGTACCACCA1FAM /D2Nds3F:CCAAGCTTCCTTGTGCAAGTAR:AAGCCCAAAGTCCATCAGTGG 2TAMRA /D3Mit21F:AAGCTCTACAGCGGAAGCAC R:CTGGGGAGTTTCAGGTTCCT 3TAMRA /D9Mit24F:CCTTCTAAACACAGGCTTTTTGAG R:CTGATGATCACCTCATTTCCTGAG9HEX /D14Mit5F:CACATGAACAGAGGGGCAG R:GTCATGAAGTGCCCACCTTT 14HEX /D17Mit23F:TCGAGCTGGTTGAACGAAC R:CGGGAAAGCATGGAATTTAA17FAM/1.3.3㊀PCR扩增与优化20μL PCR反应体系:H2O13.8μL,10ˑBuffer 2μL,dNTP Mixture1μL,上下游引物各1μL,样品DNA1μL,Taq酶0.2μL㊂PCR扩增程序:94ħ,5 min;94ħ,30s,退火温度,30s,72ħ,30s,35个循环;72ħ,7min㊂其中不同引物的退火温度(annealing temperature,Tm)不同㊂扩增产物5μL 与6ˑloading Buffer1μL混匀上样,用2.5%琼脂糖凝胶以200V,30min进行电泳,紫外凝胶成像仪拍照记录㊂1.3.4㊀测序PCR扩增结果由北京擎科新业生物技术有限公司进行STR测序㊂1.4㊀统计学方法根据STR测序结果,将数据转换为AA,BB,AB 样格式,应用PopGen1.32软件分析两个群体的等位基因数㊁有效等位基因数㊁期望杂合度㊁观测杂合度㊁平均杂合度以及香隆指数㊂通过等位基因数和各个等位基因频率在统计软件Littleprogram0.6中计算多态性信息含量㊂用统计分析软件SPSS21作独立样本t检验比较两个群体之间遗传结构参数的差异,结果用平均数ʃ标准差( xʃs)表示㊂2㊀结果2.1㊀两个群体遗传结构信息中单态性的微卫星位点选取的36个微卫星位点均匀分布于小鼠所有染色体㊂其中有5个位点在A群和B群均为单态性位点,另5个位点在A群中为单态性位点而在B 群中为多态,具体位点名称详见表2㊂两个群体中均为单态的微卫星位点,多态性欠佳,在后续遗传结构的分析中不予采纳㊂表2㊀36个微卫星位点名称和相关信息Table2㊀36㊀microsatellite loci and their related information序号No.位点Locus退火温度(ħ)Temp等位基因范围Allele range荧光标记Fluorescence 1D1Mit36554100HEX 2D2Mit1554150~200FAM 3D3Mit2964150FAM 4D4Mit235һ55100FAM 5D5Mit48һ57200HEX 6D6Mit10254150~200FAM 7D7Mit28160100~150FAM 8D8Mit3360200HEX 9D9Mit2365200HEX 10D10Mit1254200~250HEX 11D11Mit459250~300TAMRA 12D12Mit7һ60100FAM 13D13Mit357200HEX 14D14Mit566200HEX 15D15Mit5һ54100FAM 16D16Mit955100~150HEX 17D17Mit1154150~200FAM 18D18Mit1955100~150HEX 19D19Mit1654100~150FAM 20DXMit1658100HEX 21D1Mit760100FAM 22D2Nds3һһ62250TAMRA 23D3Mit21һ60200~250TAMRA 24D6Mit862200TAMRA 25D6Mit15һһ60200~250TAMRA 26D7Mit12һһ58200TAMRA 27D8Mit1463150FAM 28D9Mit2159200TAMRA 29D9Mit2460150HEX 30D12Nds1154200TAMRA 31D14Mit354200~250TAMRA 32D15Mit1560150TAMRA 33D17Mit23һһ54150FAM 34D17Nds358100~150HEX 35D18Mit9һһ60150~200TAMRA 36D19Mit360200TAMRA 注:һһ:该位点在A群和B群均为单态;һ:该位点在A群中为单态而在B群为多态㊂Note.һһ,The site is monomorphic in groups A and B.һ,This site is monomorphic in group A,while polymorphic in group B.2.2㊀PCR 反应条件退火温度的优化以初选退火温度(annealing temperature,Tm)对样本进行PCR 扩增,30个位点得到特异性扩增,6个位点出现非特异扩增条带㊂后续优化这6个位点的退火温度:D5Mit48(52ħң57ħ),D11Mit4(52ħң59ħ),D13Mit3(52ħң57ħ),D6Mit8(52ħң62ħ),D15Mit15(52ħң60ħ),D19Mit3(52ħң57ħ),使之均扩增出理想条带㊂以D6Mit8为例,Tm 值为60ħ时凝胶图谱有非特异性扩增条带(图1)㊂将Tm 值分别做60ħ,61ħ,62ħ梯度,结果发现产物特异性逐渐变好㊂图2是优化后A 群38个样本在D6Mit8位点上的凝胶图㊂注:1~38:A 群体ddY 小鼠DNA 样本号;M:100bp DNA Marker,分子量从大至小依次为500㊁400㊁300㊁200㊁100bp㊂图2㊀退火温度为62ħ时A 群体38个样本在D6Mit8微卫星位点上的凝胶图谱Note.1~38,Numbers of ddY mice genomic DNA in group A.M,100bp DNA marker (500,400,300,200,and 100bp).Figure 2㊀Gel map of 38samples from group A at site D6Mit8at the annealing temperature of 62ħ2.3㊀STR 测序结果STR 测序通过检测DNA 的具体长度,精确区分相差1bp 的DNA 片段并以不同峰型显示结果[10]㊂图3为A 群1号样本扩增产物在D4Mit235和D7Mit281位点上的STR 测序结果㊂其中D4Mit235注:4:A 群体中4号样品在Tm 分别为60ħ,61ħ,62ħ时的凝胶图;14:A 群体中14号样品在Tm 分别为60ħ,61ħ,62ħ时的凝胶图;M:100bp DNA Marker㊂图1㊀不同退火温度条件下的D6Mit8微卫星位点PCR 结果电泳图Note.4,Results of No.4in group A when Tm was 60ħ,61ħand62ħ,respectively.14,Results of No.14in group A when Tm was 60ħ,61ħand 62ħ,respectively.M,100bp DNA Marker.Figure 1㊀Electrophoresis of PCR products at site D6Mit8atdifferent annealing temperatures位点上为单峰,属于纯合(图3A);而D7Mit281位点上则为双峰,属于杂合(图3B)㊂2.4㊀两个实验小鼠群体的遗传结构信息遗传结构参数可定量的体现实验动物群体的遗传结构组成㊂去除2.1表2中两个群体均为单态的5个位点后,利用31个微卫星位点分析两个群体的遗传结构参数㊂表3和表4分别是A 群和B 群的遗传结构参数分析结果㊂统计分析结果如表5所示,除有效等位基因数外,两组在其余遗传参数均有显著差异㊂3㊀讨论本实验应用31个多态性良好的微卫星位点进行扩增和测序后分析发现,ddY 小鼠两个群体的观测杂合度㊁期望杂合度㊁平均杂合度㊁等位基因数㊁多态性信息含量㊁香隆指数均有显著差异㊂平均杂合度是反映群体遗传多样性的重要遗传指标,若封闭群杂合度为0.5~0.7,则说明封闭群遗传质量良好[11]㊂A 群和B 群平均杂合度分别是0.338和0.481㊂统计结果显示两组在杂合度方面有显著差异(P <0.01),表明两个群体遗传杂合度均较低,但相较于A 群,B 群ddY 小鼠遗传多样性更丰富㊂等位基因数是指同一微卫星位点上不同等位基因的数量[12],等位基因与有效等位基因数越接近,则该群体内的等位基因分布越均匀,遗传一致性越高[12]㊂A 群平均等位基因数和平均有效等位基因数分别是2.484和1.743;B 群平均等位基因数和平均有效等位基因数为3.484和2.130㊂这种等位基因数和有效等位基因数出现偏差的现象在吴盈萍等[12]㊁万倩倩等[13]关于伊犁鹅的研究中也有出现,可能由封闭群动物的定向选育,群体规模缩小,遗传多样性降低导致㊂多态性信息含量(polymorphism information content,PIC)主要用于评估微卫星位点用于研究群体多态性的价值,是与等位基因数目和等位基因频率相关的直观表现遗传多态性的遗传参数[14],PIC >0.5表示高度多态,0.25<PIC<0.5表示中度多态,PIC<0.25表示低度多态[15]㊂A 群PIC 的平均数为0.287,B 群为0.4088㊂虽然两个封闭实验动物群体都处于中度多态,但多态性信息含量有显著差异(P <0.01)㊂由此可见,ddY 小鼠在繁育过程中未能完全实现随机交配,以致近交程度升高㊂微卫星标记,又称短串联重复序列,由2~6bp 重复碱基核心序列和侧翼序列组成,微卫星序列的重复碱基通常有数个到数十个拷贝,具有多态性丰富㊁保守性好㊁易操作和实用性强[16]等优点,是国际实验动物学会(ICLAS)[17]和实验动物国家标准GB 14923-2010推荐研究群体遗传结构组成和遗传多样性的重要工具[9,18]㊂近年来,美国杰克逊实验室和Charles River 实验室均采用微卫星方法对实验动物质量进行监测,国内也有很多研究者筛选出不同组微卫星位点监测不同品系小鼠,大鼠,兔,小型猪等实验动物以及伊犁鹅,坡鹿等畜牧动物的遗传质量[19-21]㊂为使一组微卫星位点尽可能完整体现特定实验动物群体的遗传多样性,我们需对微卫星位点进行筛选和优化㊂参考王洪等[9]和Barker (1994)提出的建议,初步筛选均匀分布于小鼠所有染色体的微卫星位点㊂多个群体内均为单态的微卫星位点不能体现群体的遗传多样性,可提供的遗传信息含量很少,属于群体间保守位点,常用于鉴别不同近交系实验动物[22-24]㊂本实验旨在分析ddY 小鼠A 群体和B 群体的遗传结构组成及遗传多样性是否有明显差异㊂因此,在后续的遗传结构分析中,剔除两个群体均为单态的5个微卫星位点,保证实验数据的可靠性㊂实验中的STR 测序是通过毛细管电泳检测DNA 片段通过激光扫描窗口的实际时间而计算出DNA 片段长度[25]㊂非特异性扩增条带会影响STR 测序结果甚至导致STR 测序结果出现错误㊂在进行STR 测序之前,确保PCR 扩增出特异性良好的条带对实验结果准确性至关重要,而退火温度是PCR 扩增结果最主要的影响因子㊂本实验通过优化退火条件使PCR 扩增出理想条带,为STR 测序实验结果准确性提供了先决条件㊂注:A:D4Mit235位点;B:D7Mit281位点;横坐标为DNA 片段长度;纵坐标为波峰高度㊂图3㊀D4Mit235和D7Mit281位点的STR 测序图谱Note.A,Locus D4Mit235,B,Locus D7Mit281,X-axis is DNA length,Y-axis is peak height.Figure 3㊀STR sequencing results of locus D4Mit235and D7Mit281序号No.位点Locus因数Na 基因数Ne 观测杂合度Obs_Het 期望杂合度Exp_Het 平均杂合度Ave_Het 香隆指数I 含量PIC 伯格平衡HWE 1D1Mit3652 1.8710.4740.4720.4650.6580.357P >0.052D2Mit153 1.5810.290.3720.3670.5980.309P >0.053D3Mit294 2.0970.4210.530.5230.9980.484P <0.014D4Mit2351100000单态性Monomor phism 5D5Mit481100000单态性Monomor phism6D6Mit1022 1.2320.2110.1910.1880.3370.171P >0.057D7Mit2812 1.7610.5260.4380.4320.6240.339P >0.058D8Mit335 3.8770.50.7520.742 1.410.696P <0.019D9Mit233 1.9290.4740.4880.4820.8410.433P >0.0510D10Mit122 1.8940.50.4780.4720.6650.361P >0.0511D11Mit44 1.5580.1580.3630.3580.6310.311P <0.0112D12Mit71100000单态性Monomor phism13D13Mit33 1.1750.1580.1510.1490.3310.143P >0.0514D14Mit52 1.8450.3420.4640.4580.6510.353P >0.0515D15Mit51100000单态性Monomor phism16D16Mit92 1.2320.2110.1910.1880.3370.171P >0.0517D17Mit112 1.0270.0260.0260.0260.070.026P >0.0518D18Mit192 1.8190.4740.4560.450.6420.349P >0.0519D19Mit163 2.3890.7370.5890.5810.9760.514P >0.0520DXMit164 2.270.3420.5670.56 1.0080.503P <0.0121D1Mit72 1.8450.3950.4640.4580.6510.353P >0.0522D3Mit211100000单态性Monomor phism 23D6Mit82 1.9950.3160.5050.4990.6920.3740.01<P <0.0524D8Mit143 1.9040.50.4810.4750.7150.374P >0.0525D9Mit213 1.6510.4210.40.3940.6290.326P >0.0526D9Mit242 1.3620.2110.270.2660.4360.231P >0.0527D12Nds113 1.66700.4060.40.6620.339P <0.0128D14Mit32 1.6670.2370.4050.40.5890.32P <0.0129D15Mit152 1.170.1580.1470.1450.2760.135P >0.0530D17Nds36 4.9710.9740.810.799 1.6750.769P <0.0131D19Mit32 1.2320.1580.1910.1880.3370.171P >0.05均值Mean / 2.484 1.7430.2970.3420.3380.5620.287/标准差St.Dev/ 1.180.8350.2360.2260.2230.4010.198/㊀㊀本研究中ddY 实验小鼠两个群体的遗传结构参数存在显著差异㊂研究结果表明,经过长期封闭繁育,实验小鼠A 群体的遗传结构已经发生改变㊂本单位2019年引进的ddY 实验小鼠B 群的群体遗传多样性更丰富,更符合封闭群实验动物群体的遗传结构特征㊂因此,长期封闭繁育的实验动物群体应定期进行遗传质量监测,保证群体遗传结构的稳定性,从而确保动物实验结果的准确性㊁重复性和科学性㊂序号No.位点Locus因数Na 基因数Ne 观测杂合度Obs_Het 期望杂合度Exp_Het 平均杂合度Ave_Het 香隆指数I 含量PIC 伯格平衡HWE 1D1Mit3653 2.0100.7110.5090.5020.7430.389P >0.052D2Mit153 1.2360.2110.1930.1910.3760.177P >0.053D3Mit295 1.9450.2900.4920.486 1.0010.458P <0.014D4Mit2352 1.3960.2900.2870.2840.4580.243P >0.055D5Mit484 2.4130.5260.5930.586 1.0710.5300.01<P <0.056D6Mit1025 1.3520.2110.2640.2600.5760.249P >0.057D7Mit2812 1.9780.4740.5010.4950.6880.372P >0.058D8Mit334 2.7190.6840.6410.632 1.0840.559P >0.059D9Mit235 2.4070.6840.5920.585 1.0290.497P <0.0110D10Mit122 1.9950.4210.5050.4990.6920.374P >0.0511D11Mit44 2.0310.4740.5140.5080.8480.423P >0.0512D12Mit72 1.0820.0790.0770.0760.1660.073P >0.0513D13Mit35 2.7140.4210.6400.632 1.1690.569P >0.0514D14Mit52 2.0000.9470.5070.5000.6930.375P <0.0115D15Mit54 1.9320.6050.4890.4820.9410.451P >0.0516D16Mit92 1.2640.1320.2120.2090.3640.1870.01<P <0.0517D17Mit112 1.4980.4210.3370.3320.5150.277P >0.0518D18Mit193 2.3070.7900.5740.5670.9110.472P <0.0119D19Mit163 2.6040.5530.6240.616 1.0260.546P >0.0520DXMit167 3.4060.5530.7160.706 1.4210.657P <0.0121D1Mit72 1.9780.5790.5010.4950.6880.372P >0.0522D3Mit212 1.9950.5260.5050.4990.6920.374P >0.0523D6Mit83 2.0350.8950.5150.5090.7500.392P <0.0124D8Mit142 1.9660.5530.4980.4910.6850.371P >0.0525D9Mit215 2.1550.6580.5430.5360.9840.473P <0.0126D9Mit243 1.3440.2370.2590.2560.4980.237P >0.0527D12Nds114 2.7900.6580.6500.642 1.1050.573P >0.0528D14Mit32 1.9990.6050.5060.5000.6930.375P >0.0529D15Mit155 2.4580.6580.6010.593 1.0340.508P >0.0530D17Nds39 5.2890.8160.8220.811 1.8190.785P >0.0531D19Mit321.7300.3950.4280.4220.6130.333P >0.05均值Mean / 3.484 2.1300.5180.4870.4810.8170.409/标准差St.Dev/ 1.6910.7850.2180.1640.1620.3320.150/表5㊀两个实验小鼠群体遗传结构参数的比较Table 5㊀Comparison of genetic structure parameters of group A and group B遗传结构参数Parameter群体GroupsAB等位基因数Na 2.48ʃ1.18a 3.48ʃ1.69a有效等位基因数Ne 1.74ʃ0.83 2.13ʃ0.78观测杂合度Obs_Het 0.30ʃ0.24a 0.52ʃ0.22a 期望杂合度Exp_Het 0.34ʃ0.23a 0.49ʃ0.16a 平均杂合度Ave_Het0.34ʃ0.22a 0.48ʃ0.16a 香隆指数I 0.56ʃ0.4a 0.82ʃ0.33a 多态信息含量PIC0.29ʃ0.2a0.41ʃ0.15a注:a:该项遗传结构参数在两个群体之间有显著差异,即P <0.01㊂Note.a,There is a significant difference in the genetic structure parameter between the two groups (P <0.01).参考文献:[1]㊀Chino F,Sato F,Sasaki S.Retrovirus particles in spontaneouslyoccurring and radiation-induced tumors in ddY mice[J].ActaPatholog Japon,1981,31(2):233-247.[2]㊀Suzuki H,Suzuki Y.Murine models of human IgA nephropathy[J].Seminars in Nephrol,2018,38(5):513-520. 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微型卫星:低成本太空探索方案

微型卫星:低成本太空探索方案近年来,随着科技的迅速发展和商业航天的崛起,微型卫星逐渐成为太空探索领域的重要组成部分。
与传统大型卫星相比,微型卫星具备了更低的发射成本、更短的开发周期和更高的灵活性等显著优势,使得其在科学研究、环境监测、通信服务等应用中的作用愈加凸显。
本文将探讨微型卫星的定义、发展历程、技术特点及其在低成本太空探索中的应用。
微型卫星的定义微型卫星通常是指质量在10至100公斤之间的小型卫星。
根据国际上普遍采用的划分标准,微型卫星可以细分为几种类型,如纳米卫星(1-10公斤)、微卫星(10-100公斤)等。
它们体积小、重量轻,因而在发射时可以与其他载荷共享火箭,从而有效降低发射成本。
这一特点使得微型卫星在过去十年中迅速成为各国航天机构及私营企业争相研发的热点。
微型卫星的发展历程微型卫星的发展可以追溯到20世纪90年代,当时一些高校和研究机构开始尝试制造小型科研卫星。
2003年,第一颗真正意义上的商业微卫星——“DOVE”号被发射,这标志着微型卫星商业化进程的开始。
随后,随着发射能力的提升及技术不断进步,越来越多的国家和企业纷纷加入到微型卫星的研发中。
进入21世纪以来,微型卫星得到了飞速发展。
在美国,NASA和其他私人航天公司如SpaceX、Blue Origin开始积极布局微型卫星市场。
在中国,由于国家对空间科学与技术的大力支持,各类院校和科研机构也相应地展开了一系列微型卫星项目,如“雀翱”等。
微型卫星的技术特点1. 低成本设计微型卫星的一大优势就是其低成本设计。
这是由于其使用了模块化设计理念,可以根据任务需求对不同模块进行组合和优化。
此外,很多微型卫星采用现有的商业现成部件(COTS),进一步降低了制造和开发成本。
2. 快速开发与发射能力与传统大型卫星相比,微型卫星从概念到发射所需的时间大幅缩短。
一般情况下,微型卫星的开发周期仅需几个月至一年,而大型卫星则可能需要五年以上。
这使得科研人员能够快速响应新出现的科研需求,实现灵活调度。
微卫星标记简述

微卫星标记的简述微卫星标记(microsatellite),又称为短串联重复序列(simple tandem repeats, STRs)或简单重复序列(simple sequence repeats),是均匀分布于真核生物基因组中的简单重复序列,由2~6个核苷酸的串联重复片段构成,由于重复单位的重复次数在个体间呈高度变异性并且数量丰富,因此微卫星标记的应用非常广泛。
微卫星位点通常通过PCR扩增,扩增产物通过电泳分析并根据大小分离等位基因进行检测。
PCR扩增后的等位微卫星可以用多种方法检测,如荧光标记、银染。
微卫星存在于大多数生物的基因组中,被广泛的应用于遗传杂交育种和绘制染色体遗传图谱等领域。
高度多态的微卫星还可以用来在人群进行个体识别。
实验步骤1. 客户收集标本(血液或组织等标本)并提取DNA。
2. 设计引物序列并扩增,琼脂糖电泳检测结果。
3. 合成荧光标记引物。
4. 进行PCR扩增,产物通过测序仪器电泳检测, 获得扩增片段大小。
5. 分析测序仪器读出的数据,给结果图谱。
微卫星DNA 也称简单串联重复序列( Simple Sequence Repeats,简称SSRs)或简单串联重复序列多态性(Short Tandem Repeat Polymorphism,简称STRP)。
微卫星DNA 是真核生物基因组重复序列中的主要组成部分,主要由串联重复单元组成,每单元长度在1-10bp 之间,1 个SSR 的总长度可达几十到几百个bp。
每个微卫星DNA 都由核心序列和侧翼序列组成,其核心序列呈串联重复排列。
侧翼DNA 序列位于核心序列的两端,为保守的特异单拷贝序列,能使微卫星特异地定位于染色体常染色质区的特定部位。
Weber 将微卫星分为3 类:单纯(pure) SSR、复合(compound) SSR,和间隔(interrupted) SSR。
所谓单纯SSR 是指由单一的重复单元所组成的序列,如(AT) n;复合SSR 则是由2 个或多个重复单元组成的序列,如(GT)n(AT)m;间隔SSR 在重复序列中有其它核苷酸夹杂其中,如(GT)nGG(GT)m。
微型卫星:低成本太空探索方案

微型卫星:低成本太空探索方案随着科技的不断进步,太空探索已经不再是大国和大型科研机构的专利。
微型卫星的出现为全球范围内的低成本太空探索提供了全新的视角和可能性。
本文将深入探讨微型卫星的发展历程、技术特点以及在未来太空探索中的应用前景。
微型卫星的定义及分类微型卫星是指质量在100千克以下的卫星,通常用于科学研究、技术验证和商业应用。
根据不同的质量和尺寸,微型卫星可进一步细分为以下几类:纳米卫星(Nano-satellite):质量在1千克到10千克之间,通常用于教育、科研等领域。
微卫星(Micro-satellite):质量在10千克到100千克之间,能够承载更多的仪器和设备,适合进行一些科学实验和数据采集。
小型卫星(Small-satellite):质量上限在500千克左右,在商业应用中逐渐获得认可。
微型卫星由于其体积小、成本低、发射灵活等特点,近年来受到各国政府、研究机构及私营公司的广泛关注。
微型卫星的发展历程微型卫星的发展可以追溯到20世纪末,当时随着电子元器件的小型化及制造技术的进步,使得构建微型卫星成为可能。
1998年,美国国家航空航天局(NASA)的“月球勘测轨道器”(Lunar Reconnaissance Orbiter)中就包含了一台名为“月球后裔计划” (Lunar Prospector) 的小型卫星。
这标志着微型卫星在太空探索中首次获得成功应用。
进入21世纪后,多国开始研究和发射微型卫星。
例如,2001年,日本发射了名为“阿波罗”的微型卫星,开启了日本在这一领域的探索之路。
2003年,中国成功发射了“翔宇-1”小型卫星,为后续的发展奠定了基础。
随着技术的不断成熟,越来越多的微型卫星被设计并投入使用,其中以CubeSat形式的小卫星尤为突出。
微型卫星的技术特点微型卫星相较于传统大型卫星,在多方面表现出显著的优势:体积与重量微型卫星的小巧设计使得其不仅仅是发射成本的降低,更是在空间上的灵活性提高。
微小卫星发展

欢迎共阅微小卫星技术的发展航天器体积和质量的大型化、功能复杂化,已导致航天器的研制、开发、生产、发射、运行和维护费用迅速膨胀,而功能复杂化又使其技术上的可靠性和管理上的安全性不可避免地下降了,从而增加了失效概率。
上述原因一方面使已经发展航天技术地;济与技术实力。
随着微电子技术的发展,MOEMS)50,用户对卫星容量需求的增加,从80:一是继续发展大型复杂化卫星,卫星的重量和成本都大幅度增加;二是发展可快速研制、生产和发射的低成本小卫星。
小卫星迅速发展的原因可概括为如下几点:(1)高新技术的进步是现代小卫星发展的重要推动力和必然结果。
(2)冷战结束和军备竞赛的减弱,使空间项目更加注重实效,这促进了小卫星的发展。
(3)经济和社会发展对卫星应用需求的迅速扩大,也促进了以小卫星为基础的星座系统开发。
(4)高技术条件下的现代战争对发展小卫星提出了迫切的需求。
(5)科学实验和新技术验证都需要通过发展小卫星来实现。
(6)提高发射频度、降低风险的需要。
微小卫星概念在小卫星发展的基础上,100kg~500kg的卫星称为微小卫星(MICROSAT),10kg微卫星,但却,现又提出用功能密度(,但这种方法又难于直观给出小微小卫星发展的本质是为了更进一步地提高现代小卫星的功能密度,它必须依靠微电子、微机械、轻质材料等高新技术的支持;而要实现“快、好、省”的发展特点,则需要采用全新的设计思路和技术途径,特别是微型技术的采用。
纳米卫星采用微型技术,反过来又牵引了微型技术的快速发展。
未来微小卫星将要涉及的技术包括:(1)先进微型化化学推进系统;(2)全新发射概念;(3)微型探测系统;(4)高集成度电子器件包;(5)高自主性星地操作规程;(6)简化定轨程序;(7)远距离下行数据的星载射频通信能力((8)轻质、高效太阳电池阵;(9)轻质、高输出功率蓄电池;(10)模块化电源系统((11)微型热传导及热控系统等。
(1)(2));(3)(4)(5)(6)用于姿态控制的微型固体燃料发动机。
微卫星分子标记技术在遗传学实验教学中的应用--科研转化为实验教学的实践和探索

微卫星分子标记技术在遗传学实验教学中的应用--科研转化为实验教学的实践和探索李洁;梁前进;靳溪;王红芳【摘要】The transforming of scientific research into experimental teaching is an important way to improve the quality of undergraduate experimental teaching.During the genetics experimental teaching,the introduction of genetic molecular markers techniques can help students understand the research method and application value of this technology.In the present experiments,the microsatellite molecular markers were applied for analyzing the genetic information of chloroplast DNA from the seed of pinus tabulaeformis.The result can be used to determine the sources of pollen grains and environmental changes that affect pollen diffusion conditions.The teaching practice shows that transforming scientific research into teaching experiments can not only provide new materials and methods for the experimental teaching,but also benefit the students to cultivate and train their scientific thinking ability,innovative spirit and practical ability.%在遗传学实验教学中,遗传分子标记实验的引入有助于学生深入理解该技术的研究方法和应用价值。
微卫星DNA与生物标记物的研究与应用

微卫星DNA与生物标记物的研究与应用随着科学技术的发展,微卫星DNA成为了生物学和遗传学研究中最重要的手段之一。
微卫星DNA是指重复序列长度在1-6个核苷酸的DNA序列,也被称为简单序列重复(SSRs)。
微卫星DNA在生物物种之间的遗传差异较大,并且具有高度的多态性和稳定性,因此已经广泛应用于遗传变异、基因型鉴定、亲缘关系分析、种群、遗传进化和基因底图等方面的研究中。
微卫星DNA在生物标记物研究中的应用在生物标记物研究中,微卫星DNA被广泛应用于不同类型的生物标记物的鉴定和分类。
这些生物标记物包括物种标记、个体标记和基因型标记。
物种标记微卫星DNA可以用于物种鉴定和分子系统学的研究中。
由于微卫星DNA具有个体差异性,因此可以用来区分各种生物物种。
比较微卫星DNA条带的长度和形状,可以鉴定不同物种之间的差异,用于确定野生动物的种类,以及监测不同生态环境中的物种多样性和生境变化。
个体标记微卫星DNA是个体标记的理想选择。
它们可以为研究人员提供一种高度敏感的方法,以确定对具有相似性状和功能的生物个体进行识别和鉴定。
微卫星DNA因为其多态性和稳定性,可以帮助鉴定动物个体的性别、年龄、生育状况等信息。
该技术可以广泛地应用于动物的基因记录和生态学调查。
基因型标记微卫星DNA在基因型记录和家谱研究中具有重要作用。
微卫星DNA可以用作一种指纹序列,可以帮助确定哪些DNA与那些个体相关。
这种技术广泛应用于繁殖学研究、育种和与疾病相关的基因分析中。
这对于育种和疾病基因的筛查有着非常重要的意义。
小结微卫星DNA技术发展地越来越成熟和完善,它不仅已被应用在生物多样性研究和资源保护方面,还推动了分子遗传育种和基因鉴定技术的发展。
微卫星DNA技术的应用使得人们理解到了生物的进化历程、个体差异、物种间的正反馈及其遗传背景,有助于人们更好地了解生物多样性及其遗传演变,推进基础科学的进展,以及解决人类面临的现实问题。
预计未来的微卫星DNA研究将进一步深入到更多的领域,从而解决更多生物多样性和资源保护的问题。
小型卫星技术的发展现状与未来趋势

小型卫星技术的发展现状与未来趋势随着科技的不断进步和人类对空间探索的需求,小型卫星技术作为一种新兴的卫星技术开始崭露头角。
小型卫星不仅具备成本低廉、灵活性高等特点,还能够满足不同领域的需求,因此备受业界和学术界的关注。
本文将探讨小型卫星技术的发展现状及其未来的趋势。
小型卫星技术的发展现状主要可以从以下几个方面进行分析。
首先,小型卫星的发射成本较低,这为更多的机构和公司提供了进入航天领域的机会。
传统的大型卫星往往需要耗费大量的资金和资源,而小型卫星则可以通过共享发射成本来降低整体的投入。
其次,小型卫星技术在商业应用方面具备潜力。
随着人们对通信、导航、地球观测等技术需求的增加,小型卫星成为了满足这些需求的一种选择。
利用小型卫星搭载的高分辨率摄像头,可以实现更加精确的地球观测;通过部署一系列的小型通信卫星,可以覆盖更广泛的区域,提供更加便捷的通信服务。
这些商业应用将为小型卫星技术的发展提供持续的动力。
此外,小型卫星技术的进步还为科学研究和教育领域带来了新的机遇。
小型卫星不仅可以用于观测地球,还可以用于深空探测和航空器试验。
相比于传统的大型探测器,小型卫星更加便于研发和部署,还可以进行多源协同观测,为科学家提供更加详尽的数据。
另外,小型卫星搭配开放的教育资源,也为学生和教师提供了更加实践的科学教学平台,从而激发学生对航天技术的兴趣。
小型卫星技术在未来的趋势也是备受关注的话题。
首先,随着技术的不断进步,小型卫星将更加趋于多样化和专业化。
传感器、通信设备和推进系统等关键技术不断创新,使得小型卫星能够承担更加复杂的任务。
例如,利用纳米卫星可以实现更加高精度的空间测量和定位系统;利用微卫星可以搭载更多的实验设备,实现深空探测。
其次,小型卫星技术还将加强和其他领域的融合。
与人工智能、无人机等技术结合,可以实现自主任务规划和机器学习等功能。
此外,与地面网络的无缝对接和航空器的协同工作,也将进一步提高小型卫星系统的效率和可靠性。
水产生物微卫星标记技术研究进展及其应用

水产生物微卫星标记技术研究进展及其应用一、本文概述随着现代生物技术的飞速发展,微卫星标记技术(Microsatellite Markers)已成为水生生物学研究中不可或缺的工具。
本文旨在全面综述水产生物微卫星标记技术的最新研究进展,包括其在水生生物遗传多样性分析、种群遗传结构解析、亲缘关系鉴定、遗传图谱构建、基因定位以及辅助育种等多个领域的应用。
本文还将探讨微卫星标记技术在未来水产生物学研究中的发展趋势和潜在挑战。
我们将对微卫星标记技术的基本原理和特点进行简要介绍,以便读者对该技术有一个清晰的认识。
随后,我们将重点回顾近年来微卫星标记技术在各类水产生物(如鱼类、甲壳类、贝类等)中的研究应用,以及所取得的重要成果。
在此基础上,我们将分析当前研究中存在的问题和不足,并对未来发展方向进行展望。
通过本文的阐述,我们期望能为从事水产生物学研究的学者和技术人员提供有益的参考和启示,推动微卫星标记技术在水产生物学领域的应用和发展。
二、微卫星标记技术的基本原理和方法微卫星标记技术,也称为简单序列重复(Simple Sequence Repeats, SSRs)或短串联重复(Short Tandem Repeats, STRs),是一种基于DNA序列多态性的分子标记技术。
其基本原理是利用生物基因组中广泛存在的微卫星DNA序列,这些序列由1-6个碱基组成的重复单元串联而成,重复次数在不同个体或品种间存在差异,从而表现出多态性。
微卫星位点的筛选和引物设计:通过生物信息学方法,从已知的基因组序列中筛选出微卫星位点,然后利用这些位点的序列信息设计特异性引物。
PCR扩增:以基因组DNA为模板,利用设计的特异性引物进行PCR 扩增,扩增产物即为包含微卫星序列的DNA片段。
电泳检测和数据分析:将PCR产物进行凝胶电泳,根据DNA片段的大小差异进行分离,然后通过凝胶成像系统观察并记录结果。
通过对电泳图谱的分析,可以计算出微卫星序列的重复次数,从而得到不同个体或品种间的多态性信息。
小卫星技术的研究与应用
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小卫星技术的研究与应用引言随着科技的迅速发展,小卫星技术逐渐成为热门技术,并得到了广泛的应用。
在许多领域中,如通信、军事、气象和环境监测等方面,小卫星技术为我们提供了更高效和更灵活的工具。
本文旨在介绍小卫星技术的概念、分类和应用,以及其在未来的发展前景。
第一章:小卫星技术的概念和分类小卫星是一种质量轻、功耗小的卫星,重量通常小于500千克,功耗低于500瓦特,一般具有3种形式:微卫星(mass<10kg),小卫星(mass<100 kg),中型卫星(mass<500 kg)。
对比传统的大卫星,小卫星的设计更为灵活,成本更为低廉,所以受到了越来越多的关注。
根据应用领域的不同,小卫星可以进一步分为以下几类:1.通信卫星:用于卫星通信、互联网服务和其他数据传输应用。
2.地球观测卫星:用于气象、大气环境、海洋和陆地监测和探测。
3.导航卫星:用于地球广域或区域定位、地图制作、导航等。
4.科学研究卫星:用于天文、地球物理、物质科学等研究。
第二章:小卫星技术的应用1.通信小卫星技术在通信领域中应用非常广泛,主要包括两方面的应用:辅助通信和主导通信。
辅助通信是指使用小卫星作为信号转发站,以优化数据传输服务。
主导通信则指直接使用小卫星来达成传输目的,如 Elon Musk 的 Starlink 卫星网络,旨在提供全球的高速互联网服务。
2.地球观测小卫星在地球观测方面有很广泛的应用,如地球大气和海洋监测、森林、农田资源调查等,这些应用也为人类的环保和可持续发展做出了巨大贡献。
同时,小卫星的灵活性和轻便性也使得它们可以快速响应灾害事件,如洪水、地震等,进行快速、高效的应急响应。
3.导航小卫星也用于导航领域,如俄罗斯的 GLONASS 系统、美国的GPS 系统以及欧盟的 Galileo 系统等。
小卫星具有灵活、精度高、价格低廉等优势,因此得到了广泛应用。
4.科学研究小卫星在天文、地球物理、物质科学等领域的应用非常广泛。
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基因组中各微卫星位点除重复数不同外,其碱基组成和结构是相似的,因此可以以微卫星的核心序列如(AC)n、(TG)n等作为多位点探针,在基因组中同时检测多个位点。由于不同个体、品种(系)或群体在被检测位点上存在一定的差异,通过电泳及杂交,这些差异将表现为杂交带的有无,即产生微卫星DNA指纹图。B.Beyerman等通过DNA指纹印迹技术,利用简单重复序列(GATA)1和(GTG)5作探针,证实了大麦和甜菜DNA指纹印迹区带的显著差异。
2.3 通用性与保守性
微卫星DNA所在区域在生物的基因组中是比较保守的,某一物种的微卫星引物可在相关密切的物种中使用,这使得减少获取微卫星的工作量和加快比较基因组作图的工作进度成为可能。
2.4 共显性遗传
微卫星DNA呈孟德尔共显性遗传模式,可以区别纯合显性个体和杂合显性个体,这为遗传研究提供了更多的可供分析的信息。
1.微卫星DNA的特点及分类
微卫星DNA具有丰富的多态性,主要表现在核苷酸重复单位数目的多态性和重复序列中核苷酸的替换多态性。一般认为,一个微卫星DNA核心序列重复数目越高,其等位基因数目也就越多,多态性就越丰富。微卫星DNA遵循孟德尔遗传规律,能够稳定地从上一代传给下一代,且等位基因间呈现共显性遗传。除此以外,微卫星标记还具有DNA用量少、反应速度快、操作简易、结果重复性好等特点。
3.6 分子标记辅有很大的潜力,它改变了从表型值推断基因型值的选择过程。分子标记辅助选择相对于传统的表型选择来说,可以获得更大的遗传进展,尤其对于低遗传力性状、限制性状和后期表达的性状,能增大选择强度,缩短世代间隔,提高选择的准确性。Zhang等利用微卫星标记来预测产量和估计杂种优势。
微卫星DNA分子标记及其应用
点击次数:1327 发布日期:2009-9-18 来源:本站 仅供参考,谢绝转载,否则责任自负
微卫星(Microsatellite,MS)又称短串联重复(Short Tandem Repeats,STR)或简单序列重复(Simple Sequnce Repeat,SSR),是指基因组中以少数几个核苷酸(多数为2-4个)为单位多次串联重复组成的长达几十个核苷酸的序列。其中最常见的是双核苷酸重复,如(AC)n、(TG)n等,微卫星DNA广泛分布在真核生物的基因组中,大约每隔10-550kb就存在一个微卫星。微卫星DNA由于具有特异性的PCR扩增、多态信息容量(PIC)高、引物通用性好、突变率高、共显性等特点,已经被广泛应用。
遗传连锁图谱是利用遗传标记进行连锁分析来反应遗传标记之间的相对关系。现在使用最广泛的是微卫星标记。其基本原理是:以微卫星位点为基础,在基因组中每隔一定距离找一个多态性的微卫星标记,当这些标记达到足够的饱和度(约每隔10-20cm一个,并覆盖90%的基因组)后,则可借助微卫星标记找到基因组中的任何功能基因和QTL,并进行连锁分析,从而确定QTL在图谱的位置、与标记之间的遗传距离和QTL的表型效应。Akkaga等将121个微卫星标记整合到水稻四个群体的RFLP框架图上,平均每16-20cm就有一个微卫星标记。拟南芥、水稻、番茄、土豆和玉米在遗传图谱上1cm分别相当于物理距离的150kb、300kb、500kb、1000kb和1500kb。相信随着分子遗传标记技术尤5.2 微卫星突变的产生机制
微卫星突变的遗传学机制现在尚不清楚,目前大多认为微卫星的不稳定性或者与DNA重组过程中的不等交换有关,或者与DNA复制过程中的“滑链错配”有关。
Johnson和Pupko等认为,两条染色体间的DNA重组过程中发生的不等交换以及基因转换可能是引起微卫星多态性产生的主要原因。而Levinson等认为在DNA复制合成的过程中,发生了局部解链,有微卫星存在的区域新生链和模板链相对滑动,产生错配,使得一个或者几个重复单位形成环状未能参与配对,从而导致了微卫星多态性的产生。
2.5 微卫星的多态性
多数SSR无功能作用,增加或减少几个重复序列的频率高,因而在品种间具有广泛位点变异,比RFLP及RAPD分子标记更具有多态性。
2.5.1 微卫星突变
微卫星的突变率很高,从而产生了很多等位基因,这就导致了微卫星的高度多态性,一般认为,微卫星丰富的多态性是微卫星不稳定性(microsatellite instability,MI)的表现。微卫星的突变速率在不同物种以及同一物种的不同位点甚至在同一位点的不同等位基因间都存在着很大的差异。在哺乳动物中,大多数的微卫星的突变率估计为每世代10-6-10-2人类家系的微卫星平均突变速率为10-4;黑腹果蝇受控雌性系中的突变率为每个位点10-6左右。当微卫星被表达在缺乏有效错配修复系统的寄主中时,其不稳定性要比正常时高(5-10)×103左右。
3. 微卫星分子标记技术的应用
微卫星DNA 作为遗传标记具有很大的优越性。近年来随着研究的不断深入,对微卫星标记的研究不仅具有重要的理论意义, 而且还具有较好的应用前景。
3.1 微卫星多态性分析
在自然界中,生物个体表现出来的各种遗传变异,在本质上就是DNA 的差异,因此通过研究DNA的变异来分析群体的遗传结构及遗传多样性更为直接。微卫星其重复单位数量可能不完全相同,因而形成多态性,即SSR 分子标记,这可能是由于有丝分裂过程中同源微卫星间的不等交换或复制过程“链滑”(strand slippage) 作用造成的。微卫星多态性反映着物种的进化历史,共有的等位基因在该物种基因组中最为古老、保守。与蛋白质标记技术相比较,利用微卫星标记估计的群体遗传杂合度和遗传距离明显优于蛋白质多态性标记,而且在分析遗传关系较近的种群和品种时,微卫星标记比蛋白质标记具有更为准确的数值。
3.3 基因定位及构建遗传连锁图谱
由于微卫星重复单位数量多,重复单位片段短,且重复程度不一样,同一类微卫星可分布在整个基因组的不同位置上,可将随机PCR标记沿着染色体锚定在已知位置,因而可以用作功能基因定位。由于微卫星标记来源于基因本身的序列,因而通过对微卫星标记的定位,也就相应地定位了其来源基因。Beckmman和Soller 认为, 多态的签条微卫星( Sequence - tagged Microsatellite site ,STMS) 对基因定位提供了有效的标记。
3.5 用于种质鉴定和品种分类
由于微卫星座位的复等位性,使它易于鉴别同一物种的不同基因型。Guilford等利用(GA个微卫星标记就能足以区分21个苹果品种。Akagi等利用高度多变的含(AT)n的17个微卫星标记,成功地区分了59个亲缘关系极近的粳稻品种。Aranzana MJ用SSR对100个桃品种进行分析,用7个多态性微卫星位点得到32个等位基因,可区分78个不同的基因型。
3.2 群体遗传多样性
Powell 等指出微卫星比其他分子标记如RFLP、RAPD、AFLP 更能揭示遗传多样性。Scott 等根据从5000个葡萄表达序列标签( ESTS) 中分离的124 个微卫星而设计的16 对SSR 引物,对7 个葡萄资源进行分析。结果证明: 在3’非翻译区(3’U TR) 分离的微卫星在品种间具有较高的多态性;在5’非翻译区(5’U TR) 分离的微卫星在种和品种间具有较高的多态性;而在编码区分离的微卫星在种和属间具有较高多态性。Fahima 等的实验证实,单子叶植物大麦及双子叶植物鹰嘴豆也存在串联排列( GTAT) n和简单重复序列( GACA) n ,而且显示出高度多态性。Plaschke 等用23 个SSR 标记对40 份欧洲小麦品种进行检测,共发现142 个SSR多态性位点,平均每个SSR 标记能检测到6.2 个多态性位点。郭小平等用137 对有扩增产物的引物对2 个玉米自交系B14 和B96 进行分析,发现有67 对引物显示多态性,反映了这2 个自交系在遗传物质上的差异。杨官品等用一个多拷贝微卫星DNA 标记分析了238 份栽培水稻的遗传多样性及遗传多样性从农家品种到现栽培品种的动态变化,共检测出16 种长度变异类型和32种表现型,表现了较高的多态性。Turuspekov Y等用微卫星引物分析了代表日本主要栽培地区的18 种大麦品种的遗传多样性,Shannon信息含量最高的是Kanto 地区,为0.524;而含量最低的是Tohoku 地区,为0.264。遗传距离从Tohoku 和Tozan 地区的0.105 到Shikoku 和Kyushu 地区的0.88 。通过聚类分析表明,同一地区栽培的品种大都归为一类,这反应了大麦在日本在栽培不但受历史亲缘关系的影响,同时也有地理和环境因素的影响。Tanya P 等用SSR 对5 个韩国大豆品种、8 个泰国大豆品种和3 个野生大豆进行了遗传多样性分析。
2.1 微卫星标记杂合程度高
由于微卫星位点的等位基因数相当多,因而杂合程度高,多态信息含量(PIC)大,在区分亲缘关系极近的个体(群体)时的效率比PFLP高。
2.2 微卫星位点可通过PCR扩增
由于小卫星的等位基因一般比较大,在PCR扩增时有一定局限性。而使用微卫星进行PCR扩增,其使用样品数量少。另外,由于微卫星序列较短,即使降解的DNA也有可能包含足够用来扩增的微卫星位点,这一特点使那些保存差的样品也可能成为有价值的研究材料。
2.微卫星分子标记方法的优点
微卫星在基因组中是均匀分布的。Winter 等人的研究表明, 除着丝粒及端粒区域外, 染色体的其他区域均广泛分布有微卫星位点。Litt 和Luty以及Weber 和May各自用热稳定Tag 酶的PCR 方法证明, 微卫星具有丰富的多态性。用微卫星作为遗传标记与其他DNA分子标记(包括RFLP、RAPD 和小卫星DNA等) 相比具有以下优点。
4. 展望
微卫星DNA的研究近年来已取得了明显进展,但微卫星DNA标记还存在很多问题,如微卫星DNA分子突变机制尚不完全清楚、PCR引物在不同物种间保守性较差、对于不同物种要进行特异性引物设计等,但微卫星DNA仍然是研究当前种内遗传变异中分辨率最高、揭示力最强的核DNA标记。相信随着微卫星DNA研究的不断深入,微卫星必将会在各个领域中有着更为广泛的应用。