流式细胞仪常用的几种检测方法
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1) 流式细胞仪常用的几种检测方法(转载) 一、测定用乙醇固定的DNA的含量 1、培养细胞的DNA含量的测定 制备单细胞悬液于200μl的PBS缓冲液中; 加入2ml预冷的70%乙醇,4℃保存; 附:细胞固定的一般步骤 取单细胞悬液1~2×106个细胞于PBS(PH=7.2)缓冲液中; 2) 300g离心5分钟,弃上清,反复两次; 3) 重悬细胞于0.5ml PBS缓冲液中; 将细胞悬液放置于2~3ml冷70%乙醇中,混匀,保存于4℃,至少30分钟。在4℃条件下可保存2~3周。 注意: 2 根据实验的要求,固定剂也可选用1~3%多聚甲醛; 2 将乙醇作为固定剂时,乙醇应预冷至0~4℃; 细胞在固定时,固定剂应缓慢滴入细胞悬液中,使固定剂的浓度缓慢增加,并不断震摇,以免细胞成团(特别是用乙醇固定时)。 2 300g离心5分钟,去上清,再重悬于400μl PBS中; 2 显微镜下观察,若有明显的黏附,须再用筛网过滤; 2 加入PI(含Rnase),避光孵育30分钟; 2 上机检测。 2、新鲜组织的DNA含量的测定 1) 用200mg湿重组织用机械法制成单细胞悬液; 2) 500g离心5分钟; 3) 弃上清,重悬于10ml染色-去污剂中; 4) 再过滤,用200目的筛网或70~80μm的筛网过滤; 5) 上机检测。 3、石蜡包埋组织切片的DNA含量的测定 从石蜡包埋切取切片50 μm厚,2~3片,制成单细胞悬液;
2) 用PBS缓冲液洗涤,500g离心5分钟,弃上清;
3) 加入PI液1ml室温避光30分钟;
4) 调整细胞浓度为1×106/ml;
5) 上机检测。
二、细胞凋亡检测及相关分子检测
1、细胞DNA含量分布(由细胞DNA降解方式检测细胞凋亡)