小鼠衰老检测

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小鼠全体实验记录
1,全身拍照
衰老治疗正常组
正常组衰老治疗组
2,全身称重
寿命
1.对平均寿命(mean lifespan)/最大寿命(maximum lifespan)的影响
二、衰老性心脏肥大
1.心室中部横截面染色,观察截面大小情况,年轻小鼠较小,老年小鼠肥大。

2.心脏重量/胫骨长度(mg/mm),表征肥大状况,数值越大,衰老程度越高。

(选择原因:胫骨长度在小鼠发育成熟后不再有变化,可作为量化对比标准)
3.左心室(left ventricle,LVs)PAS染色(过碘酸雪夫染色,periodic acid Schiff stain),观察细胞横截面积大小。

(心脏肥大是因为细胞个体变大还是细胞数量变多)
4.心肌细胞(cardiomyocyte,CM)横截面积(crosssectional area,CSA)测定。

雌雄分组,每个动物选5个独立切片,结果根据平均值计算,测量方法:选取一定面积区域,数区域内细胞数量,计算出心肌细胞横截面积。

5.小鼠心脏部位取材,RT-PCR测量心房利尿钠肽(atrial natriuretic peptide,ANP),脑钠素(brain natriuretic peptide,BNP),肌浆网钙ATP酶(sarcoplasmic reticulum calcium ATPase,SERCA-2)的表达量。

6.Western测生长分化因子11 (growth differentiation factor 11,GDF11)在血浆的水平。

老年小鼠少,年轻小鼠多。

三、认知功能
1.Morris水迷宫实验(Morris water maze,MWM)。

学习逆转阶段评估短期学习记忆能力、探索阶段评估长期记忆、对象偏好评估识别记忆、对新伙伴的认可能力。

2.海马裂解物中,免疫印迹定量突触蛋白I(synapsin I)、突触素(synaptophysin)、突触后密度蛋白(postsynaptic density protein 95,PSD95)。

3.测定整个海马的基因表达谱,2090个可变表达基因分层聚类。

156个最上调和76个最下调的转录物进行基因本体富集分析的网络可视化。

4. RT-PCR评估Klotho(KI)甲状腺素转运蛋白(transthyretin ,Ttr)、Bdnf
5.来自海马裂解物的免疫印迹定量分析,包括CREB/ERK/Akt的磷酸化和总cAMP,组蛋白H3, H4 ,H2A。

四.生殖能力
1.足月妊娠成功的比例/数量(雌性小鼠)
2.后代存活数量
3.卵巢部位切片,对EGFP表达免疫分析。

五.骨质疏松
1.小鼠BMSCs中衰老标记物53BP1和c-H2AX的表达。

表达量大表示干细胞衰老。

2.左图是小鼠胫骨三维(3D)图像,中间图像是X射线图像,右图像小鼠胫骨样本的3Dmicro-CT 重建图像,计算骨体积分数BV/TV
六.其他
1.衰老抑制剂加入后21天,测定SA-β-半乳糖苷酶活性,活性降低,表示抗衰老效果好
2.加入后21天,测定细胞增殖量(与对照组比较),细胞增殖量多,抗衰老效果好
3.降低ATM磷酸化水平,以及其下游目标p-CHK2, p-p53, 和p21。

衰老相关的p16marker也
在治疗后下降
4.流式细胞仪测定线粒体膜电位(与年轻小鼠对照)
5.氧消耗量(OCR)(与年轻小鼠对照)
6.细胞外酸化速率(ECAR)(与年轻小鼠对照)
7.糖酵解/氧化磷酸化ATP的生成量(与年轻小鼠对照)
8.对活性氧ROS监测,其中DHR123对羟基自由基、过氧化氢染色,MitoSOX对超氧阴离子染色
9.细胞核形态观察(与年轻小鼠对照)
10.肝、脑组织中单胺氧化酶MAO-B活性,活性越低越年轻。

11.全血谷胱甘肽过氧化物酶GSH-Px活性和心肌脂褐素含量,GSH-Px活性高年轻,心肌脂褐素含量低年轻。

12.皮肤中羟脯氨酸Hyp的含量,含量越高越年轻。

13.各组织、脏器(皮肤,心肝脾肺肾脑等)中脂质过氧化物MDA(丙二醛)的含量,含量低年轻,超氧化物歧化酶SOD活性,活性越高越年轻。

参考文献:
Loffredo F S, Steinhauser M L, Jay S M, et al. Growth Differentiation Factor 11 is a Circulating Factor that Reverses Age-Related Cardiac Hypertrophy[J]. Cell, 2013, 153(4):828-39. Bilkeigorzo A, Albayram O, Draffehn A, et al. A chro nic low dose of Δ9-tetrahydrocannabinol (THC) restores cognitive function in old mice.[J]. Nature Medicine, 2017.
Selesniemi K, Lee H J, Niikura T, et al. Young adult donor bone marrow infusions into female mice postpone age-related reproductive failure and improve offspring survival.[J]. Aging, 2009, 1(1):49.
Shen J, Tsai Y T, Dimarco N M, et al. Transplantation of mesenchymal stem cells from young donors delays aging in mice[J]. Scientific Reports, 2011, 1(6045):67.
Kang H T, Park J T, Choi K, et al. Chemical screening identifies ATM as a target for alleviating senescence[J]. Nature Chemical Biology, 2017.。

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