牙周膜成纤维细胞培养

我的细胞培养计划

1、培养目的：

人牙周膜成纤维细胞( human periodontal ligamentfibroblasts, PDLFs) 是牙周组织修复与重建的前体细胞之一., 在牙周病病理变化和转归中起着重要作用。因此, 希望通过较简单的实验方法能较容易地培养出生长状态良好的牙周膜成纤维细胞,为研究牙周膜的生物学特点及各种与牙周膜成纤维细胞相关的实验研究提供较好的体外模型。

2、实验室条件：

超净工作台、培养箱、倒置显微镜、冰箱、冷冻保存装置、细胞计数板和电子细胞计数仪、离心机、PH计、天平、水纯化装置、高压蒸汽消毒装置、电热干燥箱、过滤除菌装置、手术器械、培养器皿、移液器、特殊用具、杂用品。DMEM 培养基, 胶原酶, 胰蛋白酶, 小牛血清, ABC 免疫组化试剂盒。

3、培养方法：

1）、培养基: DMEM 培养基, 内含10%小牛血清、青霉素100u/ ml、链霉素100Lg / ml。

2）具体操作方法及步骤（按实际操作分步列出）；

选择12 岁~ 25 岁因正畸或阻生拔牙患者, X 线显示无根尖病变, 无骨质吸收, 牙龈正常, 主诉该牙无既往病史。在拔牙过程中不增隙也不使用牙挺, 拔除后, 用消毒刮匙刮取拔牙创骨壁中部的牙周膜, 将刮取的牙周膜立即放入盛有培养基的无菌瓶中, 送往实验室处理。

3）、组织块的冲洗: 在洁净工作台上用含双抗( 青霉素100u/ ml, 链霉素100Lg / ml ) 的HANK. S 液反复冲洗3 次, 尽量去除组织块上附着的血污等其它杂质和细菌。

4）、PBS 冲洗2次后, 加入0. 125% 胰蛋白酶及0. 1%胶原酶5ml, 37℃振荡下消化30～60min。镜下观察, 组织松散、大部分细胞游离时, 用吸管吹打使其彻底分散。将消化的细胞悬液经190目筛过滤, 收集并离心( 1000 r / min, 10 min) , 弃去上清液。

5）、加入含10%小牛血清的DMEM 培养基, 充分吹打细胞悬液, 血细胞计数板计数,将细胞按4 ×105 / 瓶接种于25cm2 培养瓶, 加入4 mlDMEM 培养基, 内含10%小牛血清、青霉素100u/ ml、链霉素

100Lg / ml, 于二氧化碳孵箱内培养。培养条件为5%CO2、95%

空气、37℃、饱和湿度。待细胞贴壁后, 隔日换液。

4、注意事项：

1）、在收集标本, 供体年龄越小越易取得成功, 标本要新鲜并及时处理。在刮除牙龈1/ 3牙周组织以避免污染的情况下, 要彻底刮下中2/ 3剩余牙周组织, 以防止牙周膜细胞成分的丢失。

2）、在消化时间上,应根据组织块的大小采用不同的消化时间。本实验采用0. 1%胶原酶和0. 125% 胰蛋白酶联合消化约50min左右, 显微镜下密切观察组织消化情况, 及时收集细胞, 消化时间过长, 将会影响细胞贴壁及成活率。

3）、在细胞贴壁方面, 通常原代细胞贴壁速度较慢, 可通过:a. 培养瓶胶原涂膜; b. 在培养瓶内盛有少量培养基并预先1、2天放置二

氧化碳孵箱内, 使用前吸出培养基, 以改善瓶壁表面性状; c. 使用进口一次性塑料培养瓶( Nunc, Danmark) 等方法, 可提高牙周膜细胞成活及贴壁速度。¼静置培养, 在原代培养最初接种24小时内, 细胞尚未完全贴壁或刚贴壁, 不可轻易震动培养瓶, 以防止刚贴壁的细胞重新漂浮。

4）、由于细胞比较娇嫩,制备单细胞悬液过程中要求操作轻、稳,吹打时忌产生气泡。另外整个制备单细胞悬液过程在冰上进行,能更好地保持细胞活力。

5）、一定要注意无菌操作。

5、目的细胞的鉴定方法：

1）、细胞形态学观察

倒置显微镜下牙周膜成纤维细胞呈星形、长梭形, 胞体丰满, 胞浆均匀, 核圆形或卵圆, 核仁清晰。

2）、免疫组化染色观察

牙周膜成纤维细胞波丝蛋白染色阳性, 细胞胞浆棕黄色着色, 角蛋白染色阴性, 证实该细胞为中胚层来源。

6、困难及解决办法：

1）、刮离牙周组织要彻底，操作过程中动作轻柔。

2）、在实验准备阶段器清洗器械时要细致认真。若忽略培养瓶内的细小的杂质，可导致在培养过程中一些杂质也在瓶内生长。

3）、自身专业技能不熟练，吹打是过多气泡产生，无菌观念不强等原因，在培养过程中导致细胞死亡。