CHO细胞(中国仓鼠卵巢细胞)表达系统

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CHO细胞(中国仓鼠卵巢细胞)表达系统
CHO细胞表达系统原理
分子生物学、分子免疫学等学科的发展使基因工程疫苗具有越来越重要的地位。

在基因工程疫苗研究的动物细胞表达系统中,最具代表性的就是中国仓鼠卵巢细胞(Chinese Hamster Ovary,CHO)。

它是用来表达外源蛋白最多也最成功的一类细胞。

本文就CHO细胞表达系统在疫苗研制中的应用做一综述。

CHO细胞表达体系及其特点
诞生于70年代末的基因工程药物因其具有其他药物无法比拟的优点,已迅速成为制药工业中一个引人瞩目的领域。

1995年美国基因工程药物销售额约为48亿美元,1997年超过60亿美元,年增长率达20%以上。

各国政府将其视为新的经济增长热点而给予了大力支持。

基因工程药物研究与开发的主要环节包括:①基因的克隆和基因工程菌的构造;②重组细胞的培养;③目的产物的分离纯化等。

针对这些主要环节,研究人员正致力于高效表达、培养工艺及下游分离纯化等方面的研究。

随着基因工程技术的不断发展,目前已有多种表达系统可用于生产具有医疗价值的人或动物来源的蛋白质(表1)。

大肠杆菌(E.coli)是使用最早的表达系统,其显著优点是易于操作,产量高,成本低,但由于用E.coli生产的蛋白质药物因缺乏糖基化而在人体内易被降解,因此它的药放大大降低。

此外,它还存在易产生内毒素和包涵体的问题。

真核细胞中CHO细胞是目前重组糖基蛋白生产的首选体系;因为与其他表达系统相比,它具有许多优点:
①具有准确的转录后修饰功能,表达的糖基化药物蛋白在分子结构、理化特性和生物学功能方面最接近于天然蛋白分子;
②具有产物胞外分越功能,便于下游产物分离纯化;
③具有重组基因的高效扩增和表达能力;
④具有贴壁生长特性,且有较高的耐受剪切力和渗透压能力,可以进行悬浮培养,表达水平较高;
⑤CHO细胞属于成纤维细胞(fibroblast),很少分泌自身的内源蛋白,利于外源蛋白的启分离。

但CHO细胞培养成本高,条件难掌握,易污染,在一定程度上影响了它的广泛应用。

目前已有越来越多的药用蛋白在CHO细胞中获得了高效表达(表2),其中部分药物已投放市场,倒如EPO、GCSF等。

CHO细胞属于成纤维细胞,既可以贴壁生长。

也可以悬浮生长。

目前常用的CHO细胞包括原始CHO 和二氢叶酸还原酶双倍体基因缺失型(DHFR-)突变株CHO。

近年来,为降低生产成本和减少血制品带来的潜在危害性,动物细胞生产开始使用无血清培养基(SFM),但SFM往往导致细胞活力差,贴壁性差,分泌外源蛋白的能力差等缺点。

另有研究者尝试将类胰岛素生长因子IGF基因和转铁蛋白基因转入CHO细胞获得能自身分泌必需蛋白的“超级CHO”,无需在培养基中转铁蛋白和胰岛素,细胞可在SFM中生长良好。

与其他表达系统相比,CHO表达系统具有以下的优点:
(1)具有准确的转录后修饰功能,表达的蛋白在分子结构、理化特性和生物学功能方面最接近于天然蛋白分子;
(2)既可贴壁生长,又可以悬浮培养,且有较高的耐受剪切力和渗透压能力;
(3)具有重组基因的高效扩增和表达能力,外源蛋白的整合稳定;
(4)具有产物胞外分泌功能,并且很少分泌自身的内源蛋白,便于下游产物分离纯化;
(5)能以悬浮培养方式或在无血清培养基中达到高密度培养。

且培养体积能达到1000L 以上,可以大规模生
产。

表1 用于生产基因工程药物的表达系统
表达系统 特点
产量 原 核
生 物
大肠杆菌(E.coli) 具有原核细胞良好的可操作
性,成本低.产率高,但不
能进行糖基化修饰,胞内分
泌形成包涵体。

外源蛋白占细菌总蛋白量:胞内表达10%~70%,胞外表达 0.3~4% 酵母(yeasts) 兼具原核细胞良好 的可操作性和真核系统的后加工能
力,但 存在产量低及过度糖
基化等问题。

外源蛋白占菌体总蛋白量:~10% 甲醇营养型酵母
(Methylotroph yeasts)
第二代酵母表达系统,部分
克服了利甩 酵母表达的过度糖基化缺点,有较好的分泌牲,产量较高,但 产品结构与天然分子仍有一些差异 外源蛋白占菌体总蛋白量:10~30% 昆虫杆状病毒系统 具有高等真核生物表达系统
的优点,产品的抗原性免疫
原性和功能与天然蛋白质相似,表达水平较高,但其糖基化程度较低,形式较为单

发酵液中目的产物含量:
1~500mg /L



物 哺乳动物细胞
产品的抗原性、免疫原性和
功能与天然 蛋白质最接近,糖基化等后加工最准确,表
达水平较低 发酵液中目的产物含量 ;0.2 ~ 200mg /L
表2 某些利用CHO 细胞表达的外源基因
药用蛋白
产量 G-CSF
90μg/1x106ce11/24h 5~5.6μg /ml /72h 生物秀-专心做生物w w w .b b i o o .c o m
FSH
14mg /L /24h EP0 10085U /m]
Pro -UK
500—1000IU /106ce11/24h 800—1500IU /106ce11/24h
IL -6 36.8μg /106ce11/24h
IL -12 105U /ml
IFN(7)
4 9μg /ml AT Ⅲ
67.9±80μg /106ce11/24h C^MPATH-1H
131.1mg /L /122h GP1
0.64mg /ml
TIMP 180μg /ml
CHO 细胞无血清培养
1.CHO 细胞
CHO 细胞即中国仓鼠卵巢细胞(Chinese hamster ovary),该细胞具有不死性,可以传代百代以上,是
目前生物工程上广泛使用的细胞。

全世界批准正式应用于人类疾病治疗或疾病预防的基因工程产品约有三
十多种,其中只有一种(乙肝疫苗)是由酵母菌生产的,其余所有产品都是由CHO 细胞和大肠杆菌生产的,大肠杆菌不能形成有活性的二聚体(如白介素2),也不具有糖基化的功能(如EPO),而CHO 却具有如上的
功能,因此CHO 成为表达复杂生物大分子的理想宿主。

另外CH0细胞在基因工程使用中还有一个优点,该细胞属于成纤维细胞(fibroblast),是一种非分泌型细胞,它本身很少分泌CHO 内源蛋白,因此对目标蛋
白分离纯化工作十分有利。

2.CHO 细胞血清培养
传统上CHO 细胞的培养都是在DMEM /F12基础培养基中添加5~10的小牛血清(用于重组蛋白)或
胎牛血清(用于杂交瘤生产)单抗来完成的,血清除了供给细胞的营养成分外,还能促进细胞开始合成DNA ,对细胞的增殖有很大的作用。

实验证明,血清在细胞的体外培养中提供了细胞增殖所必需的生长因子。


哺乳动物的血清价格昂贵,成本高不适于今天的大规模工业化生产。

而且哺乳动物血清作为补加物,存在
许多问题,首先血清的来源存在问题,血清来源于特定的地区,因而如果该地区发生灾荒或牛群中流行疾
病,都可导致血清失去供应源。

血清批量之间的差异大,重复性差,由于血清来源于动物,动物个体或群
体的差异及时间上的差异都能导致每个批号的血清不完全一样。

从重组蛋白生产的角度来看,出于Q 和Qc 的要求,每换一个批号的血清,都包含大量的验证工作,这就给生产带来很大的麻烦。

另外血清来源于动物因此经常被污染,污染的血清往往导致细胞生长缓慢,蛋白产量下降,甚至导致细胞死亡。

目前购自各大公司的血清虽能消灭细菌和所有支原体,但很难保证除
去所有的病毒污染。

血清的成分十分复杂,经研究表明,血清除含有促进生长的活性成分外,还含有一定
的细胞毒性物质和抑制物质,对细胞有去分化作用,影响细胞功能的表达 血清复杂的成分也给基因工程
表达产物的下游工作带来很大的困难,因此成分明确,价格经济的无血清培养基成为CHO 细胞培养的一
种必然需求。

3. CHO 细胞的无血清培养基
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从血清培养所面临的问题,我们不难看出:人们急切地需要找到能够替代血清的物质,从而解决血
清培养所面临的这一问题。

五十年代起,科学家就开始研究无血清培养基。

要发展无血清培养基,必须找
到适当的具有血清功能的因子,由于血清的成分不清而且十分复杂,具有多种促进细胞生长和增殖的因子,因此要找到血清替代物是相当困难的。

人们已经发现一些物质单独或一起使用可以替代血清。

这些物质分
别是微量元素、生长因子、激素、脂蛋白、脂肪酸、酶抑制剂。

微量元素是细胞代谢所必需的,是无血清
培养基的主要添加物之一,铁、锌、硒等都是不可缺少的,有些资料证明还需要铜、锰、钼、钒等元素,这些元素在血清培养中由血清提供,在无血清培养中需要补加。

促生长因子是无血清培养基的主要补加物
之一。

现在研究者已经从血清、各种组织和生物成分中用生物工程的方法,制取了各种促细胞生长物,如
表皮生长因子(EGF),成纤维细胞生长因子(FGF),血小板生长因子(PDGF)、生长调节素(SM)等。

现已证明
很多激素具有促进细胞生长的作用,胰岛素能促进细胞利用葡萄糖和氨基酸,无血清培养基缺乏对细胞的
保护,血清培养残余的胰蛋白酶对血清的损伤十分严重,因而无血清培养基必须添加酶抑制剂。

脂类是细
胞膜的主要成分,添加脂类可以促进细胞增殖,随着无血清培养基研究的进一步深入,无血清培养基将越
来越完善。

无血清培养试验步骤
1.实验材料
CHO 细胞株购于俄罗斯Soym Agromed ,无血清培养基(CHO-S-sFM1I)购于Gibeo 公司。

2.实验方法
2.1 无血清培养基的配制
用90ml 纯水溶解制备1升量的袋装Gibeo CHO-S-sFM1I ,加人2.45g NaHC03,用 1N NaOH 将pH
调为8.0,再用1N HC1调回至pH7.1,定容后用0.22μm 滤器过滤除菌。

2.2 CHO 细胞的适应
用含血清的常规培养基和无血清培养基1:1(v/v)悬浮细胞,接种量为3×105个/ml 。

在37℃,8%培养
箱中培养,使细胞密度达5×105个/m1。

然后用等体积的CHO-S-sFM1I 将细胞稀释到3x 105个/ml ,继续
培养,重复上述操作,直至血清浓度降为0.1%后,用完全无血清培养基培养到3×106个/ml 。

再以3×l05
个/ml 接种,传50代,至此完成适应工作。

2 3 细胞计数参阅《组织培养技术4》的方法,用血球计数板计数。

2.4 CHO 细胞表达EPO 水平应用MIT 比色法测定。

4.无血清培养基的发展
目前的无血清培养基已进入第三代,第一代无血清培养基虽然不含有血清,但含有大量的动物或植
物蛋白,如BSA 或激素等,虽然它所含的总体蛋白要低于血清,但蛋白的含量依然很高,八十年代末,
九十年代初,研究人员开发出了第二代无血清培养基,它完全不用动物来源的蛋白,如 LTI 公司生产的 CH0~S —SFM I ,它采用悬浮的CHO 表达蛋白,培养基蛋白含量很低(少于100~g/m1),使重组蛋白的纯
化简单,目前市售的无血清培养基主要是这一类。

第三代无血清培养基现在已经出现,它完全不含有蛋白
或含量极低,如 LTI 公司最近推出的CHO —I —PFM ,培养基不含任何蛋白质,没有任何动物、人类蛋白
或多肽,为表达产品的下游处理工作提供极大方便。

目前无血清培养基的价格还很高,不亚于大规模的工
业化生产,因此降低无血清培养基的成本,开发出无血清、无蛋白、低成本的无血清培 养基日益受到人
们的重视。

随着生物工程产品的开发和推广,它的应用愈来愈广泛,相信在将来的生物制药行业它将具有
广阔的市场前景和应用空间。

CHO 细胞表达系统常见问题及解析
1.问:请问有人养过CHO 细胞吗?文献报道说用DMEM 培养基来养,但我不太清楚具体是高糖还是低
糖?
参考见解:CHO 细胞用高糖DMEM 养就可以了,比较好养,10%血清,小牛和胎牛都可以,长得比
较慢,跟你所用的血清有一定的关系,大概需要两天传一次代。

在塑料板上比玻璃板上好养,感觉如果在生物秀-专心做生物w w
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玻璃板上养而且不包被的话,好像细胞不易伸展开来。

2.问:要转染钾通道pcDNA3.1入细胞,是选cho 细胞呢还是hek293细胞?cho 细胞转染效率高吗?
参考见解:表达一个蛋白的时候,首先要确认你的蛋白确实表达了,因为有很多原因可以导致蛋白
表达出问题(质粒序列有错误,质粒纯度低,表达的蛋白不稳定,转染效率太低等)。

所以在做任何功能
性实验之前,必须要先确认蛋白的表达,通常的实验有:
1.采用免疫荧光法。

由于需要荧光二抗,比较贵。

但直观,可以确定转染效率,采用好的显微镜时,可以大致知道表达蛋白在细胞中的位置。

2.WESTERN-BLOT 。

可以确认表达的蛋白分子量,以及表达的量。

但不直观。

3.构建一个N 或C 端带荧光蛋白的质粒。

这样比较费时间,同时携带的荧光蛋(通常使用GFP )有
可能干扰蛋白的正常功能。

但好处是转染后可以很方便的观察转染效率,蛋白在细胞中的位置等。

当然以上方法都无法知道质粒有无发生突变,所以如果你的蛋白有表达但没有功能,首先要做一个DNA
测序确认你的序列没有问题。

事实上质粒发生突变的机会比大多数人想象的要多得多!
3.问:由于我要用CHO 细胞生产基因工程抗体,用什么培养基能够很好的使之良好的生长
参考见解:培养CHO 细胞最好用F12,并且由于F12中加入了一些微量元素与无机离子,因此可以
在血清很少的情况下应用,是无血清培养中常用的基础培养基,特别适合进行单细胞培养和克隆化培养。

我们的前辈曾用F12在无血清的条件下成功的克隆出CHO 细胞。

无血清培养CHO 细胞有两种方法:一种是直接向试剂公司购买只适用于培养CHO 细胞的无血清培
养基(好像HyClone 就有);第二种方法实际上是有血清培养,只不过血清浓度很低罢了,可以近似的认
为无血清。

在第二种方法里,又可以分出两条途径:你可以分步进行,也可以一步到位。

分步法是,CHO
细胞先在含10%血清的常规培养基里培养,再到含5%血清的培养基里培养,再到含2.5%血清的培养基
里培养,依此类推,培养基里的血清不断下降,直到一个能让CHO 细胞良好生长的最低血清浓度。

一步
到位法就是省去中间的步骤,直接由起点的血清浓度到终点浓度。

4.问:我要做稳定转染,表达融合蛋白并将蛋白质纯化来检测其功能。

仅仅把目的基因插入pcDNA3.1,没有插入其他的基因或者tag 。

现准备转染CHO 细胞。

就相关问题想问问:
1.有的文献上没有署名K1或是DHFR,普通所写的CHO 细胞是指那种?野生型CHO 细胞又是指的哪
种?
2. 这三种细胞是不是因为CHO-K1和CHO/DHFR-有扩增基因GS 和DHFR,可以更为有效的扩增进
而表达,比野生型CHO 在转染中更起作用?
3.如果就我的实验要求,CHO-K1或者CHO/DHFR-更加适合,那么转染CHO-K1是不是可以直接转
染?而转染CHO-DHFR-需要和携带DHFR-的标记质粒共转染?
参考见解:做稳定表达是需要把目的基因克隆到一定的载体上的,这个载体同时可以过表达一个抗
性基因,如果载体整和到基因组上,这个抗性已经能够克服筛选压力,而这个时候你的目的蛋白也得到了
有效的表达。

1.野生型CHO 就是CHO-K1
2. CHO -DHFR-是指DHFR缺陷型细胞,DHFR作为筛选标记.
3.你用pc DNA3.1的话,可以直接转染CHO-K1,加G418筛选即可.
5.问:最近作试验需要用到CHO 细胞,老师从广西带回两瓶,本来用的是DMEM 培养液,由于我没有
接触过细胞这方面的知识,上网查了下培养液,说1640就可以,就仓促用了1640,两天过去了贴壁很不
好,估计是要完了,求救。

参考见解1:
1。

带回来的细胞瓶汇合度大概多少?一般送人的细胞汇合度大概80-90%,且瓶里加满培养液,再
包装。

细胞生长旺盛,便于处理。

加满培养液的目的是防止运输过程中倒置,细胞接触不到培养液而死亡
或活力下降。

培养时应该分瓶培养。

我想你应该分瓶了吧,我们一般1:3分瓶。

不分瓶培养可想而知了。

2。

如果上述没错的话,准备好正确的完全培养液,将生长不好的细胞瓶中的细胞消化收集,合并一
下,铺底大概30%。

正常培养。

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3。

关键掌握住起始细胞的密度和严格的操作。

因为这细胞已很常见。

方法正确不存在长不好的问题。

除非你的老师带回来的细胞存在问题。

参考见解2:
37度预热胰酶,吸除培养瓶中的培养液,PBS (无钙镁)洗涤细胞1次后,加入少量胰酶,覆盖细
胞即可。

轻轻摇动(前后左右)。

镜下观察细胞状态,一旦出现细胞回缩形态变圆即停止消化(防止过渡
消化)。

加入完全培养液(必须含胎牛血清)终止消化反应。

湾头吸管顺序吹打细胞,小心避免产生气泡
(对细胞有害)。

镜下观察细胞,细胞分散即可后续操作。

如果是新手,保留上清以防不测,别倒掉。

6.问:最近要养CHO 细胞,要作些准备,但不知道其培养也是什么,谢谢
参考见解:这是一篇已发表的CHO 细胞培养的方法.
CHO 细胞培养:CHO 细胞株置于RPMI 1640 培养基中,内含10%灭活小牛血清,青霉素100 IU/mL ,链霉素100 IU/mL ,置于37℃,5%CO2的培养箱(德国Heraeus )中培养。

每隔48 h 换培液,当单层培养
细胞汇合以后,用0.25%胰蛋白酶消化,传代培养。

将培养瓶中的CHO 细胞按1×105/mL 传代移入培养
板中,待进入对数生长期后(约24 h )加药。

这是细胞的供给源:
CHO 细胞由中科院上海生物化学和细胞生物学研究所提供。

7.问:这两个月,CHO 细胞在反应器上总是在前两天很难密度长上去,同期转瓶生长正常,基本排除细
胞及培养基的问题,换罐做也出现同种现象,可排除反应器问题。

与曾经在此罐上正常生长的一批相比,只是接入培养液体积由1.5升该为0.8升,其他条件均相同,反应器控制系统无异常。

不知问题到底出在
什么地方
参考见解:根据我自己的经验,如果你的种子细胞和培养基都确保没问题的话,试试一下几点:
1.接种时留一些细胞悬液,种回到方瓶或转瓶中,用与大罐相同的培养基同时培养,观察48小时内
的生长情况,如果方瓶长势良好而罐子有问题,那就是操作的问题了
2.不知道你的罐子800mL 能否确保搅拌、通气等参数的控制效率,只看仪表显示是不够的,有时液
位太低可能探测到的不是真实值,你可以在接种前用水试试,把各种条件设的极端一些,容易发现问题
3.有可能的话再做一次1.5L 培养,看能否重现6月的结果,因为你说所有条件都一样可能是不准确
的,有疏漏的地方
8.问:我培养的cho 细胞,在塑料基质的方瓶中贴壁和生长情况很好,形态也很正常,但是接入转瓶后贴壁情
况很差,不伸展或伸展需要的时间很长.请问这主要是什么原因?
参考见解:我觉得可能的原因有如下几点:
1 细胞本身贴壁生长的能力较弱,一般细胞在塑料器皿上的贴附能力强于玻璃器皿,这样的话,就
选择塑料器皿好了。

其实塑料培养瓶等也是可以重复使用的,清洗干净,泡酸,冲洗干净,凉干之后,射
线照射消毒或者就是紫外消毒也行,我们实验室就这样重复用培养板,没有什么问题。

当然,太旧的还是
扔了好了。

2 培养液PH 不好也会影响贴壁,配的时候加好缓冲试剂,不嫌麻烦的话调定PH 在7.2左右。

使用
时间较长的培养液由于在空气中暴露时间长,ph 会有变化
3 消化时候处理不合适,比如胰酶消化过久,有EDTA 的话,去除不干净也影响贴壁的。

消化完了
之后要吸干净消化液,用培养液漂洗细胞,或者吹下来之后离心,换加新鲜培养液
4 血清也可能影响贴壁,我观察过,细胞在胎牛血清中贴壁明显快于新生牛血清,尤其是Hyclone
的血清,不过很贵
9.问:最近我养CHO 细胞,是从别人那里得来得。

给我得时候细胞有一半是圆形一半是梭行的。

但是养
着养着就大部分成圆形,而且有的像荷包蛋一样,而那些还是梭形的细胞里面出现了空泡一样的东西,还
有渐渐像融化了一样。

是什么原因,我一直很头疼,不知道该怎么办,下面的实验无法进行,苦恼啊!
参考见解:听您的描述估计很可能是支原体污染。

建议马上丢弃该细胞,因为支原体污染很难去除,为避免影响您实验室其他的细胞操作一定不要犹
豫。

您可以重新索取或购买状态好的CHO 细胞。

10.问:由于接种密度稍低一些,CHO 细胞在2L 转瓶中培养5天左右很难消化下来,即使消化下来也是生物秀-专心做生物w w
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成团的,请问为什么?加完血清的培养基又重新过滤了,会不会对细胞的生长速度有影响,一般培养三天
就能张满,谢谢
参考见解:1:首先考虑一下你的胰酶有没有问题,也有可能是胰酶的浓度不够?
2:成团也可能是细胞太多了,因此在消化时应该延长消化的时间,同时传代时尽量吹散成单细胞悬
液!
3:消化后传代时多弃去些细胞试试,也可以多传几瓶,三瓶,四瓶都是可以的!
CHO 细胞表达系统在疫苗研制中应用
分子生物学、分子免疫学等学科的发展使基因工程疫苗具有越来越重要的地位。

在基因工程疫苗研究
的动物细胞表达系统中,最具代表性的就是中国仓鼠卵巢细胞(Chinese Hamster Ovary ,CHO)。

它是用来表
达外源蛋白最多也最成功的一类细胞。

本文就CHO 细胞表达系统在疫苗研制中的应用做一综述。

1.CHO 细胞表达体系及其特点
CHO 细胞属于成纤维细胞,既可以贴壁生长。

也可以悬浮生长。

目前常用的CHO 细胞包括原始CHO
和二氢叶酸还原酶双倍体基因缺失型(DHFR-)突变株CHO 。

近年来,为降低生产成本和减少血制品带来的
潜在危害性,动物细胞生产开始使用无血清培养基(SFM),但SFM 往往导致细胞活力差,贴壁性差,分泌
外源蛋白的能力差等缺点。

另有研究者尝试将类胰岛素生长因子IGF 基因和转铁蛋白基因转入CHO 细胞
获得能自身分泌必需蛋白的“超级CHO ”,无需在培养基中转铁蛋白和胰岛素,细胞可在sFM 中生长良好。

与其他表达系统相比,CHO 表达系统具有以下的优点:
(1)具有准确的转录后修饰功能,表达的蛋白在分子结构、理化特性和生物学功能方面最接近于天然
蛋白分子;
(2)既可贴壁生长,又可以悬浮培养,且有较高的耐受剪切力和渗透压能力;
(3)具有重组基因的高效扩增和表达能力,外源蛋白的整合稳定;
(4)具有产物胞外分泌功能,并且很少分泌自身的内源蛋白,便于下游产物分离纯化;
(5)能以悬浮培养方式或在无血清培养基中达到高密度培养。

且培养体积能达到1000L 以上,可以大
规模生产。

2.CHO 细胞表达疫苗
2.1 乙肝疫苗
CHO 细胞表达疫苗的种类不多,多数处于研究阶段。

目前只有 CHO 表达乙肝疫苗 已投入生产,这
是除酵母表达乙肝疫苗以外,唯一已用于人类使用的基因工程亚单位疫苗。

使用酵母表达乙肝疫苗虽然获
得了很大成功,但是酵母系统还存在着许多缺陷,最重要的一点,酵母不能模拟蛋白在人体肝细胞中的翻
译后修饰、蛋白折叠、大分子组装以及糖基化。

这些特点正是抗原在动物细胞中引起免疫反应所必须的。

而 CHO 细胞表达的蛋白更接近人体来源的乙肝表面抗原。

1991年中国预防医学科学院病毒学研究所联合
长春生物制品研究所等单位研制成功了由 CHO 细胞表达的基因工程乙肝疫苗,并于1992年批量上市。


疫苗是以S 蛋白为靶抗原的乙肝疫苗,与酵母表达的乙肝表面抗原同属于第2代乙肝疫苗。

许多实验证明,乙肝病毒(rmv)衣膜蛋白的PreS 部分在引发人体免疫反应中起着重要作用。

因此由 CHO 细胞中表达的含S 和PreS2基因的乙肝表面抗原,被誉为第三代乙肝疫苗。

以色列生产的新 型疫苗。

包含了S 、PreS1、PreS2等3个基因,在CHO 中表达的蛋白形成22 μm 大小的颗粒,含有衣膜所有的抗
原表位。

目前已投入市场的CHO 表达基因重组乙肝疫苗主要有:法国巴斯德研究所Gen Hevac B 、以色列 Bio-Technology General 公司的Bio-Hep-B 、瑞士的Hepreeombe 等。

在美国以酵母表达的乙肝疫苗为主的
同时,CHO 表达的乙肝疫苗占据了欧洲市场。

中国长春生物制品所的乙肝疫苗 已正式生产。

在现有的安
全性记载中,动物细胞表达的生物产品尤其CHO 表达的产物的安全性很好。

在已批准进入临床或生产的
动物细胞表达的乙肝疫苗的使用中,没有发现严重的副反应。

在免疫原性方面,我国 CHO 生产的乙肝疫苗的免疫原性与血源疫苗没有差异,明显优于酵母重组疫
苗。

还有调查显示,新生儿接种国产乙肝CHO 疫苗第1年的抗HBs 阳性率为98.25%,抗体GMT 为77.64,生物秀-专心做生物w w w .b b i o o .c o m。

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