医院血培养标本采集运送与报告标准操作规程
血培养标本的采集与运送操作规程
血培养标本的采集与运送操作规程一目的1、确保血标本样本培养的准确性。
2、采集血标本做细菌培养。
二用物准备一次性换药弯盘、碘酊、75%酒精、血培养瓶2套、10ml注射器2支、止血带三操作方法及程序1、洗手、戴口罩。
2、消毒用消毒液消毒培养瓶橡皮塞待干后使用。
用消毒液从穿刺点向外面划圈消毒至消毒区域直径达5cm以上待消毒液挥发干燥后30S穿刺采血。
消毒方法75%酒精消毒---碘酊消毒---75%酒精消毒待干。
3、采集部位外周静脉血、中心静脉血。
4、外周血标本采集参照护理部静脉血采集法。
5、中心静脉血标本采集遵循以上消毒方法对导管的肝素帽或输液接头进行消毒然后用10ml射器回抽导管5ml后弃掉然后用10ml注射器采集血样标本后立即注入血培养瓶内。
再用10ml无菌生理盐水脉冲式冲洗导管管腔内的残留血后给予封管液3ml进行封管封管后夹闭导管或继续输液治疗。
6、穿刺取血后排尽针头内空气直接注入血培养瓶勿更换针头先注入厌氧瓶、绕后注入需氧瓶轻轻混匀以防血液凝固。
同时采集标本间隔时间小于5分钟。
7、立即送实验室室温放置不超过12小时。
四注意事项1、检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2、采血部位通畅为肘静脉切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
3、采血时机发热高峰1小时内或开始时最好在使用抗生素之前或停用抗菌药物24h后。
4、采血次数应该同时分别在两个不同部位采集血标本在两个不同部位分离到同样菌才能确定时病原菌。
5、采血量以培养基与血液之比10：1为宜成人每次每培养瓶采血8-10ml婴幼儿2ml。
6、运送要求所有标本采集后都应立即送往实验室最好在2小时内。
血培养瓶送到检验科放入培养箱之前不应暂存于冰箱内。
血液培养标本采集的注意事项血培养标本采集和运送是血液细菌培养成功的重要环节！但由于标本的采集和运送常有护士或医生完成,所以也是最容易忽视的事情，由于不了解问题所在，引发的主要后果是血培养阳性率下降，这也是目前国内血培养阳性率低的主要原因。
血培养标本的采集注意事项和运送
血培养标本的采集注意事项和运送血流感染的发生发展可以严重威胁患者的生命，其正确诊断不仅可以减少抗菌药物的误用和滥用，同时可以大大地改善患者的预后，降低患者的病死率，减少医疗花费。
本文向读者详细介绍血培养标本采集时间、套数、血量要求、样本运输、皮肤消毒注意事项、导管相关性血流感染以及感染性心内膜炎诊断规范、快速鉴定血培养中的念珠菌、MRSA、葡萄球菌等新方法。
提醒广大医务工作者严格执行血流感染的诊断规范，快速报告实验结果，强调及时与临床，提高血流感染诊断水平的重要意义。
1、采血时间研究表明，大量入血的时间为患者寒颤发热前1小时，在此期间，应同时（或间隔30-60 min）采集2-3套血培养，只有在怀疑患者有感染性心内膜炎或其它血管内感染（如导管相关性感染）时，才有必要间隔较长时间多次采集血培养。
2、血培养数量在每次败血症期间，推荐采集2-3套血培养。
对于成人，不应仅做1套血培养，不仅因为采血量不足，而且1套血培养的结果较难解释。
由于在开始抗菌治疗后，患者中的致病菌不会立即清除，2-5天内无须重复进行血培养。
但对于感染性心内膜炎患者，应多次进行血培养以评估和指导治疗；由金葡球菌引起的败血症（非感染性心内膜炎），应在48-96 小时重复培养以判断其是否为复杂性金葡菌败血症。
3、血培养采血量采血量对于败血症的检测非常重要。
对于成人，采血量在2-30 ml 时致病菌的检测与血量成正比，虽然采血量增长至40 ml（甚至更高）时血培养阳性率仍在提高，但已经不再与采血量成正比。
对于婴幼儿，采血量不应超过患儿总血量的1%。
4、血标本在需氧瓶和厌氧瓶间的分配在常规血培养中，推荐成对使用需氧瓶和厌氧瓶。
如果采血量低于推荐血量，应将血标本先注入需氧瓶，再将剩余血液注入厌氧瓶，因为大部分败血症是由需氧或兼性细菌及酵母菌引起的。
如果仅做需氧培养，每套培养应使用2个需氧瓶并保证有足够的血量。
5、皮肤消毒以避免污染为减少皮肤菌群对血培养的污染，应对静脉穿刺点进行消毒。
采集血培养标本与运送流程
实验室接收标本后，需将标本放入自 动血培养仪进行培养，或按照手工培 养方法进行操作。
已接种的血培养瓶应在规定条件下保 存，避免阳光直射和高温环境。
异常情况处理与报告
01
02
03
04
如发现标本存在异常情况，如 溶血、凝血、污染等，应立即 通知临床科室并重新采集标本
。
对于培养结果为阳性的标本， 应立即进行涂片镜检和初步鉴 定，并及时报告临床科室。
有效期内。
采血针和注射器
应选择合适的采血针和 注射器，确保无菌、无
热原。
其他物品
包括棉签、纱布、止血 带、标签等。
患者准备
01
患者应处于安静状态， 避免剧烈运动和情绪波 动。
02
采集前应向患者解释采 集目的、方法和注意事 项，取得患者配合。
03
患者应洗净双手或使用 消毒剂进行手部消毒。
04
对于需要穿刺的部位， 患者应配合采集人员摆 好体位，方便穿刺。
对标本进行外观检查，观察是否有溶血、凝固、污染等现象。
按照实验室规定进行标本处理，如离心、分装等，确保后续检测的准确 性。
持续改进方向与措施
加强人员培训，提高操作人员的专业技能和质量控制 意识。
定期对采集、运送和接收处理过程进行质量评估，发 现问题及时改进。
采用先进的信息化管理系统，实现标本采集、运送、 接收处理全过程的实时监控和数据分析，为持续改进 提供有力支持。
03
血培养标本采集流程
消毒与穿刺部位选择
消毒
采用碘伏或70%酒精进行皮肤消 毒，消毒范围直径至少为5cm， 待消毒液干燥后进行穿刺。
穿刺部位选择
成人首选肘部静脉，新生儿和婴 幼儿可选颈外静脉或股静脉。避 免在静脉留置导管或静脉输液的 通路中采集标本。
标本采集、运送标准操作规程
4 7
血培养 淋球菌培养
立即 30分钟
1小时 30分钟
阳性结果3天以上，阴性结果7天 2天
8
真菌培养
1小时
2小时
3天后
细菌室项目检验周期表
9 解脲、人型支原体培养及药敏、衣原体培 养 1小时 2小时 2天后
11
一般涂片革兰氏染色
1小时
2小时
5小时
当天下午
12
涂片找抗酸杆菌
1小时
2小时
5小时
当天下午
Байду номын сангаас
查询申请医师，补足标本信息。
仅有申请单而无标本或无菌容器内无标本
与原送检部门联系，退回申请单，要求重送标本
标本外漏及明显受污染（如开塞） 标本收集不符合采集要求 样本混入消毒液 或防腐剂
与原送检部门联系，退回申请单，建议重送标本。 退回申请单，及时通知临床，告知正确收集方法，要求重送标本 退回申请单，及时通知临床，建议重送标本。
13
新型隐球菌墨汁染色
1小时
1小时
5小时
当天下午
• 注： 1. 细菌室正常上班时间为周一至周六
全天、周日上午；其他时间（包括中午、 夜班、周日下午、）常规培养请送急诊化 验室。 • 2．各类血清学检测周一至周五做；支原体、 衣原体检查周一至周六上午做，其余时间 标本一律不接收。 • 3． 空气培养、物表监测周六、周日不做， 于周一至周五打电话给细菌室告之数量。
【标准操作程序】
• 3. 粪便样本
养：
• 5.1采集指征： • 当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集粪便标本，进行细菌培
粪便涂片镜检白细胞＞5/HP 体温＞38.5℃ 重症腹泻 血便或便中有脓液 未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人
血培养操作指南
山东省立医院血培养操作指南当微生物侵入血液迅速繁殖超出机体免疫系统清除这些微生物得能力时形成菌血症或真菌血症（统称血流感染），并可感染血管外组织, 临床上应该进行急症处理,应尽快采集血液进行培养。
血培养就是采集患者血液标本并接种到培养瓶中，用以发现、识别引起菌血症或真菌血症得病原微生物，就是诊断菌血症与真菌血症得基本而重要得方法。
血培养结果对感染性疾病得诊断、治疗与预后都有极为重要得临床意义。
1、标本得采集与运送1、1 血培养得临床指征（须100%送检率）：1、1、1发热（≥38℃）或低温（≤36 ℃）伴下列一项：A 寒战；B 肺炎；C 留置导管超过5天；D 白细胞>1、8万/mm3;；E 感染性心内膜炎；F 收缩压低于90mmHg；G 无其她原因可以解释得感染；H PCT或CRP升高；1、1、2发热≥39、5 ℃注意事项：1、怀疑脑膜炎患者应同时进行血培养；2、对新生儿可疑菌血症,还应同时做尿液与脑脊液培养。
3、老年菌血症患者可能不发热或体温不低，如伴有身体不适、肌痛或卒中，可能就是感染性心内膜炎得重要指征。
1、1、2 血培养得标本采集时机：只要怀疑患者有血流感染得可能，在考虑使用抗菌药物之前，都应立即采集血培养标本。
若患者已行抗菌药物治疗，则应选择含有抗菌药物吸附物得培养瓶，并在下一次抗菌药物应用前采血培养。
细菌通常在寒战与发烧前1小时入血，此时为采集血培养标本进行病原菌培养得最佳时机。
1、1、3 血培养得次数：要求：对怀疑菌血症、真菌血症得患者，推荐同时或短时间间隔（10分钟内）从不同部位（如双臂）采集2～3套血培养标本，做到“双瓶双侧”。
如有必要，可同时或短时间间隔内从下肢静脉采血接种第三套培养瓶。
在采集血培养后得2至5天内，不需要重复采集血培养只有在疑似感染性心内膜炎或导管相关性感染患者得连续性菌血症时在不同时间点采血才有必要。
说明：以一个需氧瓶与一个厌氧瓶为一套血培养，作为常规血培养组合。
血培养运送采集指南
陕西省人民医院血培养申请、标本采集和运送指南血流感染指当微生物侵入血液迅速繁殖超出机体免疫系统清除这些微生物的能力时，形成菌血症或真菌血症，并可感染血管外组织。
一般地，应通过血培养进行病原学诊断，其对感染性疾病的诊断、治疗和预后具有极为重要的临床意义。
为规范我院血培养的申请、标本采集和送检，特制定陕西省人民医院血培养申请、标本采集和运送指南，请严格遵照执行。
1.血培养的临床指征患者出现以下一种或同时具备几种临床表现时可作为血培养的重要指征：①发热（≥38 ℃）或低温（≤36 ℃）；②寒战；③白细胞增多（>10.0×109/ L，特别是有“核左移”时）；④粒细胞减少（<1.0 ×109/ L）；⑤血小板减少；⑥皮肤、黏膜出血；⑦昏迷；⑧多器官衰竭；⑨血压降低；分压<32mmHg）等。
⑩呼吸加快（呼吸率>20/分或CO22.血培养的申请临床医师申请血培养时，应在填写一般项目的同时注明临床诊断、与感染有关的症状、体征以及影像学证据等，同时应注明抗生素、激素应用情况等。
并请在采集血液标本并注入相应的培养瓶后，在申请单上注明采血量和采集时间。
3.血培养标本的采集3.1.采集时机怀疑血流感染时，应在使用抗菌药物之前，立即采集血培养标本。
若患者已行抗菌药物治疗，应在下一次抗菌药物应用前采血培养。
采集血培养标本进行病原菌培养的最佳时机为寒战和发烧前1小时。
3.2.血培养的次数对怀疑菌血症、真菌血症的成人患者，应采集两套血培养（1套血培养=1个需氧瓶+1个厌氧瓶）送检。
可同时或短时间间隔（30-60分钟）从不同部位（如双臂）采集两份静脉血，每份血标分别注入一个需氧瓶和一个厌氧瓶送检。
当怀疑感染性心内膜炎或导管相关性感染患者的连续性菌血症时，应在不同时间点采集血培养，具体见6.1和6.2。
婴幼儿患者，应采集两份血培养。
可同时或短时间间隔（30-60分钟）从２个不同部位（如双臂）采集两份静脉血，每份血标注入一个需氧瓶中送检。
血培养标准操作程序
SOP_15-8 血培养标准操作程序一、血培养标本采集和运送见本手册《病原微生物标本的采集运送和处原则》。
二、标本验收1.申请单验收：要求血培养申请单除患者的基本信息以外还应包括标本收集时间、收集方式、是否已使用抗生素等，验收时应检查申请单是否填写完整。
2.标本验收：(l）检查标本标识是否与申请单相符；(2) 检查标本容器有无溢漏、渗出；(3）检查送检时间是否超过规定的标本保存时间。
3.不合格标本处理：(1）对申请单信息不全者应设法与临床医师取得联系；(2）对标识不符、送检容器不合格，送检时间超过规定时间的标本应注明原因，退回，要求重新留取标本，并做记录。
三、实验室检查细菌培养：1.培养基选择:培养基的质量对血液细菌培养阳性率的高低有非常重要的作用。
市售培养基良莠不齐,选购时要慎之又慎注意质量,以知名大厂家生产者为宜。
国内报告应用不同培养基的两组血培养结果,1组阳性率为9.7%,另1组为16.1%,可见培养基影响之大。
抗凝剂现多用聚茴香脑磺酸钠(sodiumpolyanetholsulfonate,SPS)浓度为0.025%～0.05%。
因兼有抗凝、抗补体、抗吞噬及拮抗某些抗生素的作用,故较其他抗凝剂为优。
2.培养条件:尽管病原菌仍以需氧菌和兼性厌氧菌为主,但亦有少部分为真菌、厌氧菌或L型菌感染。
特别是真菌感染有增加趋势可占病原菌的10%以上。
所以必要时应选取相应培养基在不同环境下培养。
3.盲传:肉眼和仪器都不能确保在瓶外观察到所有的阳性菌生长,因此在培养终结时应盲目传代1次,以防漏检。
四、结果观察和报告1.结果观察和评价：血培养的结果应及时快速通知临床医师。
采取以下措施：即每日开始工作时，首先检查血培养，如有细菌生长，立即处理。
（1）疑有细菌生长者，经涂片、革兰染色、镜检后，电话通知主管医生；（2）此后6-8h，应报初步药敏试验结果。
电话通知，通报敏感的抗生素；（3）任何时候当平板生长菌落，立即完成鉴定及标准化的药敏试验，发出结果报告；（4）对临床特别需要了解血液培养信息的患者，肉汤增菌24h、48h、72h仍为阴性标本，通知主管医生，以便作相应处理。
血培养标本的采集与运送操作规程
血培养标本的采集与运送操作规程一目的1、确保血标本样本培养的准确性。
2、采集血标本做细菌培养。
二用物准备一次性换药弯盘、碘酊、75%酒精、血培养瓶2套、10ml注射器2支、止血带三操作方法及程序1、洗手、戴口罩。
2、消毒用消毒液消毒培养瓶橡皮塞待干后使用。
用消毒液从穿刺点向外面划圈消毒至消毒区域直径达5cm以上待消毒液挥发干燥后30S穿刺采血。
消毒方法75%酒精消毒---碘酊消毒---75%酒精消毒待干。
3、采集部位外周静脉血、中心静脉血。
4、外周血标本采集参照护理部静脉血采集法。
5、中心静脉血标本采集遵循以上消毒方法对导管的肝素帽或输液接头进行消毒然后用10ml射器回抽导管5ml后弃掉然后用10ml注射器采集血样标本后立即注入血培养瓶内。
再用10ml无菌生理盐水脉冲式冲洗导管管腔内的残留血后给予封管液3ml进行封管封管后夹闭导管或继续输液治疗。
6、穿刺取血后排尽针头内空气直接注入血培养瓶勿更换针头先注入厌氧瓶、绕后注入需氧瓶轻轻混匀以防血液凝固。
同时采集标本间隔时间小于5分钟。
7、立即送实验室室温放置不超过12小时。
四注意事项1、检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2、采血部位通畅为肘静脉切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
3、采血时机发热高峰1小时内或开始时最好在使用抗生素之前或停用抗菌药物24h后。
4、采血次数应该同时分别在两个不同部位采集血标本在两个不同部位分离到同样菌才能确定时病原菌。
5、采血量以培养基与血液之比10：1为宜成人每次每培养瓶采血8-10ml婴幼儿2ml。
6、运送要求所有标本采集后都应立即送往实验室最好在2小时内。
血培养瓶送到检验科放入培养箱之前不应暂存于冰箱内。
血液培养标本采集的注意事项血培养标本采集和运送是血液细菌培养成功的重要环节！但由于标本的采集和运送常有护士或医生完成,所以也是最容易忽视的事情，由于不了解问题所在，引发的主要后果是血培养阳性率下降，这也是目前国内血培养阳性率低的主要原因。
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程一、血培养指征患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24h后，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血流程（一）消毒1、培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
2、皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待消毒液挥发干燥后（常需30s以上）穿刺采血。
（二）静脉穿刺和培养瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内的空气，直接注入血培养瓶，勿换针头（如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头），先注入厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
（三）注意事项1、检验单需要注明抗菌药物使用的情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2、采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3、采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4、细菌性心内膜炎：在24h内取血3次，每次间隔不少于30min；必要时次日再做血培养2次。
5、采血量：以培养基与血液之比10：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
采血量过少会明显降低阳性率。
成人每次每培养瓶采血8～10ml，婴幼儿每次每培养瓶采血2ml。
四、运送要求1、所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在2h内。
血培养标本采集与运送标准操作规程
1．贾淑梅临床医院感染管理与控制第四军医大学出版社：2005（3）：25
2．美P R默里、E J巴伦、M A法勒、F C特诺维、R H约克临床微生物学手册(上下)科学出版社2005-6
血培养标本采集与运送标准操作规程
适用对象：需采集血培养标本的科室
文件编号：RJ-IC-SOP-XBBCJ
编写者：糜琛蓉
审核者：倪语星
版次：01
编写日期：2007-5-30
审核日期：2007-6-10
执行日期：2007-7-1
注：本文件程序仅供本院医务人员使用，未经同意，不得翻印
目的：正确采集血培养标本并运送
内容：
一.采集方法
1.培养瓶消毒程序：消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
2.皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待消毒液挥发干燥后采血。
3.静脉穿刺和培养瓶接种程序：用10ml注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，勿换针头（如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头），采血后直接注入血培养瓶，先注5ml于厌氧培养瓶，并注意避免注入空气，后注其它培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固或严格按厂商推荐的方法采血。
4.血液中常见细菌为金黄色葡萄球菌、表皮葡萄球菌、A群、B群链球菌、肺炎链球菌、肠球菌、肺炎克雷伯菌、铜绿假单胞菌等。
四.临床微生物标本送检的注意事项
1．所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在２小时内。如果不能及时送检，置于室温环境。
2．送检标本应注明来源、检验目的和采样时间，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。
3.采血时机：在患者发热期间越早越好，最好在抗菌治疗前，以正在发冷发热前半个小时为宜或在停用抗生素24小时后。
4.采血次数及间隔：对需马上做抗菌治疗的急性发热性疾病（如脑膜炎、细菌性肺炎）或需紧急手术的患者，如（急性骨髓炎、化脓性关节炎等），应立即从两臂分别取2份标本。对感染性心内膜炎患者，在24h内取血3次，每次间隔不少于30min；必要时次日再做血培养两次。对发热原因不明者两次抽血间隔60min；必要时于24~48小时后再抽血2次。因为1次血培养不足以说明问题，且会遗漏阳性结果。国外有人统计1次血培养可检出菌血症的80%，2次检出90%，3次检出99%。国内统计17家医院1次血培养阳性率10.8%，18家医院2次以上血培养阳性率14.8%
血培养标本采集和运送标准操作规程
血培养标本采集和运送标准操作规程（SOP）一、采集血培养的重要指征：(一)发热（≥38℃）或低温（≤36℃）(二)寒战(三)白细胞增多（>10x109／L，特别有“核左移”，未成熟的白细胞增多）(四)粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1x109／L）(五)血小板减少(六)皮肤粘膜出血(七)昏迷(八)多器官衰竭二、采血时机(一)尽可能在抗菌药物使用前；(二)对已经使用抗菌药物的病人，最好在下次用药前采集；(三)寒战和发热初起时采血可提高培养阳性率，心内膜炎（持续性菌血症）例外；(四)怀疑血流感染时应尽早采血，不要强调体温超过38℃才抽血，而错过时机。
三、血培养标本采集次数（一）留置深静脉导管且怀疑导管相关血流感染：1.希望保留深静脉导管者至少2套（1套血培养定义：从一个部位如静脉穿刺或静脉导管所获血液的培养，不论被接种在1个还是多个血培养瓶内）血培养，其中至少一套来自外周静脉，另一套从导管采集，两个来源的采血时间必须接近（建议≤5分钟），并各自做好标记；2.决定拔除深静脉导管者从独立的2个外周静脉部位，无菌采集2套血培养，同时无菌下取出导管并剪下5cm导管末梢送实验室（实验室采用Maki半定量平板滚动培养）（二）未留置深静脉导管或怀疑的BSl并非导管相关1.怀疑血流感染时，独立的外周静脉无菌采集2套血培养2.当怀疑骨髓炎、脑膜炎、肺炎和肾盂肾炎合并菌血症时，在抗菌药物使用前从不同部位抽取2套血培养，两个来源的采血时间必须接近（建议≤5分钟），各自做好标记；3.对不明原因的发热、亚急性心内膜炎，抽取3套血培养；心内膜炎患者起始采集的3套血培养24小时内报告阴性，则继续采集2套血培养；（三）在采血2～5天内，无需重复做血培养，细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症除外。
四、皮肤消毒及采血步骤(一)皮肤消毒前，先检查血培养瓶有无损坏或超过保质期，用75％酒精消毒血培养瓶橡皮塞并干燥；(二)用2根安尔碘棉签，以穿刺点为圆心，以约5cm直径画圈进行皮肤消毒，作用时间至少30s。
血培养标本采集与运送标准操作规程
血培养标本采集与运送标准操作规程一、血培养指征患者出现以下一种或同时具备几种临床表现时，可作为血培养的重要指征：①发热（≥38°C）或低温（≤36°C）②寒战③白细胞增多（计数大于10×109/L，特别有“核左移”未成熟的或杆状核的白细胞）；④粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1.0×109/L）；⑤血小板减少；⑥皮肤粘膜出血⑦昏迷，休克⑧多器官衰竭⑨CRP、PCT升高⑩临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，尽可能在患者寒战开始时，发热高峰前30-60分钟采血，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24h后。
三、采血流程(一)采血前进行手卫生，如需用手固定血管，应戴无菌手套。
(二)消毒1．培养瓶消毒：用75%酒精消毒培养瓶橡皮塞，待自然干燥60s。
2．皮肤消毒三步骤：①以采血点为中心，由内向外以75%酒精，待干30s以上。
②用2%碘酊作用30S或安尔碘作用60S，从穿刺点向外画圈消毒，直径达3 cm以上. ③用75%酒精脱碘。
对碘过敏的患者，在第一步的基础上再用75%酒精消毒60s，待酒精彻底挥发干燥后采血。
(二)静脉穿刺和培养瓶接种用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶（勿换针头），轻轻混匀以防血液凝固。
或采用负压血培养瓶及一次性采血针将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
四、注意事项1．标本注明血液采集时间和部位。
2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4．细菌性心内膜炎：在24 h内取血3次，每次间隔不少于30 min；必要时次日再做血培养2次。
血培养的采集、运送、培养指导原则
连续3d，每天采集2套。 7．采自静脉植入装置如留置导管或留置口的
血培养会伴有高的污染率。
采血频率
血培养在采集后的2至5天内，不需要重复 采集，因为进行治疗后的2至5天内血液中 感染的细菌不会马上消失。
两种例外： 感染性心内膜炎
（1）改变靶蛋白结构 如：RFP耐药菌RNA多聚酶的-亚基 结构改变造成的耐药。 （2）增加靶蛋白数量 如：金葡菌对甲氧西林的耐药 （3）生成耐药靶蛋白 如：金葡菌产生青霉素结合蛋白PBP2A， 与β-内酰胺类抗生素亲和力极低导致耐药
3.降低细胞膜的通透性使药物不易进入菌体内 如：细菌对-内酰胺类、四环素的耐药 4.改变代谢途径 如：耐磺胺药的细菌自身产生PABA /直接利用叶酸转化为二氢叶酸 5.主动流出作用 喹诺酮类
物有毒性，因此不能被用于血培养样本采集和培 养
十、皮肤消毒和污染的预防
1． 首先用70%酒精擦拭静脉穿刺部位待30秒钟以上。 2． 然后用一根碘酊或碘伏棉签消毒皮肤（1%-2%碘
酊30秒或10%碘伏消毒60秒），从穿刺点向外以 1.5cm~2cm直径画圈进行消毒。 3． 最后用70%酒精脱碘。 严格执行三步消毒后，可行静脉穿刺采血。
八、培养基
多种商业化的培养基可用于血培养 含不同改良配方的培养基可改善检出率，
因为没有一种单一的培养基可以检出所有 的细菌
九、添加剂
树脂、活性炭：吸附抗生素有助于对已经接受抗 生素治疗病人血培养的检出率 。
抗凝剂 抗凝剂中聚乙烯磺酸钠（SPS）：最常用； 能抑
制血清和吞噬细胞的抗细菌反应。 其他抗凝剂如肝素，EDTA和枸橼酸钠则对微生
血培养标本的采集方法及运送
血流感染严重威胁患者的生命
明确诊断是各种病原菌感染 减少抗菌药物的误用和滥用 大大地改善患者的预后 减低患者的病死率，减少医疗费用
1.及时采集微生物标本作病原学检查 2.在抗菌药物使用前采集标本 3.采样时严格执行无菌操作 4.采样后立即送检 5.棉拭子标本宜用运送培养基 6.混有正常菌群污染标本，不可置肉汤培养 7.标本容器须灭菌处理，但不得使用消毒剂。 8.送检标本应注明来源和检验目的
不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染 率。如果必须从留置导管内采血，也应同 时从外周静脉采集另外一个血培养标本以 帮助阳性结果的判读提供解释。
在采血之前，血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精 消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。 严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤 操作，并等待足够的消毒时间。
发热≥38℃，低温≤36℃ 寒战 9 白细胞增多（＞10*10 /L，特别是核左移） 粒细胞减少，血小板减少 皮肤、黏膜出血 血压降低、昏迷、多器官衰竭、呼吸加快 （＞20/分）
成人患者：推荐同时采集２套（不同部 位）血培养标本。（即双瓶双臂同时采 集血培养标本4瓶。） 婴幼儿患者：推荐同时采集不同部位血 培养标本2瓶（使用儿童专用需氧培养瓶， 婴幼儿患者厌氧菌所致菌血症比较罕 见）。
标本采集时机 标本采集方法 标本的质与量 标本的运送与保存 镜检筛选合格标本（退检制度） 高质量、多种分离培养基 培养环境
采集与运送
山东省临床实验室血培养指导原则 和操作指南
山东省卫生厅医政处 山东省临床检验中心
对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在 考虑使用抗菌药物之前，应立即采集 血培养标本。 必须同时或间隔短时间内采集２套以 上血培养标本。 寒战和发热初起时采血可提高培养阳 性率。 怀疑血流感染时应尽早采血
血培养标本采集与运送标准操作规程
血培养标本采集与运送标准操作规程一、引言血培养标本采集与运送是临床微生物学中非常重要的步骤，对于准确诊断和治疗疾病起着关键作用。
本文旨在规范血培养标本的采集与运送操作，以提高标本质量、减少污染及误诊率。
二、采集前准备1. 确认患者身份：核对患者的姓名、年龄、性别等个人信息，确保无误。
2. 选择合适的采集器械：根据采集需求，选择适当的采集器械，如无菌针头、无菌试管、培养瓶等。
三、采集操作1. 患者准备：告知患者采集过程，让其了解并配合操作。
保证患者处于舒适、稳定的状态。
2. 消毒程序：对采集部位进行消毒，常用消毒剂如酒精、碘酒，按照规程进行彻底消毒。
3. 采集血样：将无菌针头插入患者的静脉或血管，抽取适量血液，并根据需要分装入无菌试管或培养瓶中。
4. 混匀标本：轻微摇晃或轻拍血样容器，确保血液与培养液充分混合。
四、采集后处理1. 采集器械处理：丢弃使用过的针头、试管等器械，并进行相应的处理，如焚烧或贴有“感染性废物”标签的特殊垃圾袋中。
2. 患者鼓励：告知患者采集已完成，感谢其的配合并鼓励其继续配合后续治疗。
五、运送操作1. 标本标识：确保标本上有患者的姓名、住院号、采集日期和时间等必要信息，以免混淆或丢失。
2. 运送容器：选择合适的运输容器，如耐压、耐震动、密封好的容器，确保标本在运输过程中不泄漏或受到破坏。
3. 防护措施：运送标本时，保持容器稳定，避免与其他容器、物品摩擦和震动，防止标本破损或污染。
4. 运送温度：根据不同培养需求，将标本置于适当的温度条件下运送，如冷藏、冷冻或常温等。
确保温度在规定范围内，避免标本质量受损。
5. 运送时效：尽量缩短标本送达实验室的时间，以保持标本的活性和准确度。
在运送前与实验室联系，确认实验室接收时间和运送方式。
六、备注事项1. 采集者要佩戴符合要求的个人防护装备，包括手套、口罩、防护眼镜等，以确保采集过程中不发生交叉感染。
2. 采集器械和容器要严格按照规定进行消毒、清洁和灭菌，以杀灭或去除潜在污染的微生物。
血培养操作规范
血培养操作规范一、血标本采集和运送1．采血指征：一般患者出现以下一种体症时可作为采血的重要指征：发热(≥38℃)或低温(≤36℃)，寒战，白细胞增多(计数大于10，000×109/L，特别有“核左移”未成熟的或杆状核白细胞)，皮肤粘膜出血，昏迷，多器官衰竭，血压降低，CRP升高及呼吸快，特殊患者(如血液病)出现粒细胞减少(成熟的多形核白细胞<1000×109/L)，血小板减少等，或同时具备上述几种体症的临床可疑菌血症应采集血培养。
新生儿菌血症，应该增加尿液和脑脊液培养。
对入院危重感染患者在未进行系统性抗菌药物治疗之前，应及时采集血培养。
2．皮肤消毒程序：严格执行以下三步法：1）70％酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。
2)1％～2％碘酊作用30s或10％碘伏60s，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上。
3)70％酒精脱碘。
对碘过敏的患者，用70％酒精消毒60s，待酒精挥发干燥后采血。
3．培养瓶消毒程序1)70％酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用60s。
2)用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞子表面残余酒精，然后注入血液。
4．静脉穿刺和培养瓶接种程序1)在穿刺前或穿刺期间，为防止静脉滑动，可戴乳胶手套固定静脉，不可接触穿刺点。
2)用注射器无菌穿刺取血后，勿换针头直接注入血培养瓶，或严格按厂商推荐的方法采血。
3)血标本接种到培养瓶后，轻轻颠倒混匀以防血液凝固。
立即送检，切勿冷藏。
4．采血量成人采血量是8～l0ml，儿童l～5ml。
血液和肉汤之比为1：5～l：10。
5．血培养份数和采血时间采血培养应该尽量在使用抗菌药之前进行，在24h内采集2～3份血培养(一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份血培养)。
对间歇性寒战或发热应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1h采血液，或于寒战或发烧后lh进行。
特殊的全身性和局部感染患者采血培养的建议：1)可疑急性原发性菌血症、真菌血症、脑膜炎、骨髓炎、关节炎或肺炎，应在不同部位采集2～3份血标本。
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程
血培养标本采集、运送与报告标准操作规程一、血培养指征患者出现寒战，体温超过38°C或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：1．医院内肺炎2．留臵中心静脉导管大于72小时3．感染性心内膜炎4．骨髓炎5．有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状6．临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况二、采血时机一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24小时后，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血标准流程1.采集容器：根据检验申请单到检验科标本接受室领取血培养瓶。
2.采集时间及频率（1）急性脑膜炎、骨髓炎、关节炎细菌性肺炎和肾盂肾炎发热患者，应在抗生素治疗或更换前，从不同部位采集血液标本，做2次血液培养（应在抗生素治疗前完成）。
（2）疑似心内膜炎患者：急性病例，在抗生素治疗或改变前1～2小时，从各个不同部位采血3次做血培养培养；亚急性病例，第一天24小时内，相隔1小时连续采集3次血标本培养，若24～48小时全部阴性，再采集2～3次血标本培养；若已经抗生素治疗患者，连续3天，每天取2次血液标本。
3.采集方法（1）选择合适的采血部位，严格无菌操作用双针采血系统（或注射器）直接穿刺静脉，去除培养瓶上的封盖帽，用75%乙醇棉球消毒橡皮塞，待干。
(2)以双针采血管另一端的针头穿刺血培养瓶，使血液定量流入厌氧瓶，将针头从厌氧瓶内拔出，插进需氧瓶中再注入定量的血标本。
用注射器抽血时，将一定量的血先注入厌氧瓶后再注入需氧瓶。
(3)标本采集后，用无菌棉球压迫穿刺点，叮嘱病人压紧穿刺点5分钟，用75%乙醇去除血培养瓶上的血液并进行消毒，在血培养瓶上表明采血部位（左/右）。
(4)骨髓标本的采集：穿刺采集的骨髓标本注入儿童培养瓶内送检（血培养瓶瓶盖的消毒同上），如标本量太少，可同时接种于血琼脂平板送检。
(5)中心静脉留臵导管血标本的采集：用75%乙醇消毒导管及周围皮肤，在用碘伏按同样的方法消毒，待干，拔去导管盖，消毒针心，先插入无菌注射器抽取至少0.5～1ml血液废弃（以消除干扰因素和导管末端的污染），另取一无菌注射器抽取0.5～1ml血液注入儿童血培养瓶内送检，然后在导管内注入肝素或无菌生理盐水。
血培养标本采集与转运
血培养标木采集与转运标准操作规程一、采血指征1.菌血症，可疑感染患者出现以下任一指征，应考虑采集血培养。
（1)体温〉38°C或 36°C；（2）寒战；（3）外周血白细胞计数增多（计数＞10.0X×109/L,特别是有“核左移”时）或减少（计数﹤4.0×109/L ）;）＜ 32 mmHg；（4）呼吸频率＞20次/分钟或动脉血二氧化碳分压（PaCO2（5）心率＞90次/分钟；（6）皮肤黏膜出血；（7）昏迷；（8）多器官功能障碍；（9）血压降低；（10）炎症反应参数如C反应蛋白、降钙素（PCT）、1,3-β-D-葡聚糖（G试验）升高等。
2.同时伴有以下情况之一时,应立即釆集血标本。
（1）医院获得性肺炎；（2）留置中心静脉导管、PICC等血管导管＞48小时；（3）有免疫功能缺陷伴全身感染症状。
2.感染性心内膜炎凡原因未明的发热,持续在1周以上，伴有心脏杂音或心脏超声发现赘生物，或原有心脏基础疾病、人工心脏瓣膜植入患者，应多次进行血培养检测。
3.导管相关血流感染患者带有血管导管超过1天或者拨出导管未超过48小时，出现发热（体温〉38°C）、寒战或低血压等全身感染表现,不能除外导管相关血流感染可能的，应多次进行血培养检测。
二、采血釆集时机、套数、采血量1.菌血症（1）.使用抗菌药物治疗前釆集；如患者已经使用抗菌药物治疗，应在下一次用药之前或选择含有吸附抗菌药物成分的血培养瓶。
（2).急性发热患者，应在10分钟内采集（3).成人每次采集2〜3套,同时分别在不同部位采集，每个部位应需氧和I 厌氧培养各一瓶，每瓶采集8〜10 ml,或按照说明书。
|（4).儿童应立即采集；在两个部位分别采集，通常仅采集需氧瓶；采血量一般不超过总血量1％，或参考说明书。
（5).儿童在有以下高危因素时应考虑厌氧瓶培养：其母亲产褥期患腹膜炎、慢性口腔炎或鼻窦炎、蜂窝组织炎,有腹腔感染的症状或体征，咬伤，接受类固醇治疗的粒细胞缺乏患儿。
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医院血培养标本采集、运送与报告标准操作规程
一、血培养指征
患者出现寒战，体温超过38℃或低体温，怀疑血流感染时，尤其存在以下情况时，应抽血做细菌和真菌培养：医院内肺炎；留置中心静脉导管超过72 h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状；临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采血时机
一旦怀疑有血流感染可能，应立即采血做血培养，最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24 h后，以寒战、发热时采集为宜。
三、采血流程
(一)消毒
1．培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡皮塞，待干燥后使用。
2．皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5 cm以上，待消毒液挥发干燥后(常需30 s以上)穿刺采血。
(二)静脉穿刺和培养瓶接种
成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头(如果行第二次穿刺或用头皮针取血时，应换针头)，先注于厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶，轻轻混匀以防血液凝固。
近年来，临床普遍采用负压血培养瓶，将血从患者静脉直接吸入血培养瓶，减少污染环节。
(三)注意事项
1．检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染，否则不应从留置静脉或动脉导管取血，因为导管易被皮肤正常菌群污染。
3．采血次数：对于成年患者，应该同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分离到同样菌种才能确定是病原菌。
4．细菌性心内膜炎：在24 h内取血3次，每次间隔
不少于30 min；必要时次日再做血培养2次。
5．采血量：以培养基与血液之比10：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。
采血量过少会明显降低阳性率。
成人每次每培养瓶采血8～10 ml，婴幼儿每次每培养瓶采血2 ml。
四、运送要求
1．所有标本采集后都应立即送往实验室，最好在2 h 内。
如果不能及时送检，宜置于室温环境。
血培养瓶送到检验科放入培养箱前，不应暂存于冰箱内。
2．送检标本应正确粘贴条形码，注明采样时间和送检时间。
3．安全防护：放标本的容器必须防漏，禁止将渗漏的标本送往实验室。
五、报告要求
(一)紧急口头(电话)报告
血培养出现阳性报警时，立即进行革兰氏染色、镜检，并在最短时间内将结果向临床主管医生进行紧急口头(电话)报告。
口头报告包含以下内容，并记录在案。
(1)报告者全名(或工号)；
(2)报告的时间；
(3)所联系医生的全名(或工号)；
(4)报告镜检结果并强调其紧急价值；
(5)确认临床医生收到报告并复述结果。
(二)最终结果(书面)报告
(1)无菌生长(培养5天无需氧菌和厌氧菌生长)；
(2)阳性培养结果(最终鉴定结果、最终药敏结果)。
(三)其他报告和记录
1．标本被拒收时，需即刻通知临床立即重新采血，并记录在案。
2．最终结果与紧急口头报告结果不符，需要变更时，需立即通知临床，同时必须在书面报告上提供正确的结果，注明变更的内容。
3．其他需临床注意的事项的记录，如：采血量不足、标本转运时间过长、标本采集份数不够等。