生长速率法
杀菌剂生物测定技术
2.含毒介质培养法
有3种： （1）抑菌圈法 （2）生长速率法 （3）最小浓度法
（1）抑菌圈法的原理
基本原理是在已经接种供试菌的洋菜培养基 （通常在培养皿内）表面，利用各种方法（管 碟法，滤纸片法，孔碟法 ）使药液和培养基接 触，恒温培养一定时间后，由于药剂的渗透扩 散作用，施药部位周围的病菌被杀死或生长受 到抑制，从而产生了抑制圏。根据抑菌圈的大 小来比较不同杀菌剂的毒力大小。
用十字交叉法测量抑菌圈的直径
孔碟法
用灭菌后的打孔器直接在凝固好的 含孢培养基上打成圆孔，将定量的药 液滴入圆孔中，恒温培后测量抑菌圏 的大小，进行杀菌剂毒力比较。
影响抑菌圈法测定结果的因素
主要有以下几个方面的
1 对供试菌的要求 在较粗放的比较 杀菌剂毒力的测定中，对菌种的要求不 必过严，只要在培养基中容易培养而且 抑菌圈清楚的均可采用。
孢子萌发的标准
以病菌孢子作为指示物进行杀菌剂毒力测定。 用孢子液和不同浓度的药液混合，恒温保湿培养， 培养一定时间后即可检查孢子萌发率。一般在低 倍镜下，每处理随机检查200个孢子。
抑制率计算
孢子萌发率（%）＝萌发孢子数/检查孢子数X100 若对照组有20%以上孢子不萌发，则应重做。
对照萌发率－处理萌发率 抑制孢子萌发率（%）＝－－－－－－－－－X100
抑菌圈法示意图
注意事项
上述操作应尽量在无菌条件下进行，
以防污染
操作室的温度最好在26～28℃左右，
如室温太低，则50℃左右的培养基在操作 过程中迅速冷凝，无法制作平板
十字交叉法测量抑菌圈的直径 ，消除误
差
滤纸片法
（1） 配制不同浓度的药液
（2） 配孢子悬浮液
（3） 制含孢子的平板
农药生物测定(1)
1、标准目标昆虫：是指被普遍采用的，具有一定代表性和经济意义，以及抗药力稳定均匀的农药杀虫毒力和毒效指示试虫群体。
2、毒力：是指药剂本身对不同生物发生直接作用的性质和程度。
3、药效：是在田间或接近田间的条件下所测定的药剂对生物的作用效果。
4、致死中量的置信限：即致死中量的可靠范围，亦即供试昆虫种群致死中量真值的波动范围。
5、内吸杀虫剂：凡是可以通过植物根茎叶以及种子等部位渗入植物内部组织，随着植物体液传导植株，不妨碍植物的生长发育，而对害虫具有很高毒效的化学物质，称为内吸杀虫剂。
6、内吸杀虫作用：昆虫由于受内吸杀虫剂的毒杀作用而致死亡的过程，称之为内吸杀虫作用。
7、杀菌剂室内生物测定：将杀菌物质作用于细菌、真菌或其它病原物（包括线虫）,根据其作用效果的大小来判断药剂毒力。
8、除草剂的生物测定：利用生物体（作物试材、杂草试材，主要指有害生物）对除草剂的反应，来测定除草剂的毒性及其效果的基本方法。
9、杀虫剂室内生物测定：在实验室条件下，以昆虫（包括螨类）对杀虫剂的反应来鉴别某一种农药或某一类化合物的生物活性测定的一种基本方法。
1、杀虫剂生物测定存在的问题（1）评判标准单一（2）人为地固定检查时间（3）无统一的标准试虫（4）一般用校正死亡率表示核心是没有系统评判生物测定结果的方法和标准。
2、影响杀虫剂毒力测定的主要因素分析（1）杀虫剂和溶剂杀虫剂：其理化性质是决定毒力的根本原因。
溶剂：对药剂本身的理化性质一般不产生影响，但不同溶剂会影响昆虫表皮。
（2）环境条件温度：影响到处理前---养虫；影响到处理过程中---挥发、吸收等；影响到处理后---昆虫的死亡率。
湿度：一般不影响杀虫剂的穿透性及作用速度，也不影响解毒过程，通常它只影响昆虫对杀虫剂的忍受力。
光照条件以及昆虫在药剂处理前后的食物供应，营养条件等也会影响到测定结果。
（3）供试昆虫：不同种类的昆虫敏感性不同；同种昆虫不同品系对杀虫剂的敏感性也不同；昆虫不同发育阶段对杀虫剂的敏感性也不同（卵期通常对杀虫剂的敏感性比较低，通常以为有杀虫卵作用的杀虫剂，有很多主要是杀了初孵幼虫）；昆虫的性别与生殖对杀虫剂的敏感性（一般雌性昆虫对杀虫剂的敏感性比雄性昆虫低，但对有机磷杀虫剂来讲，则雌性个体比雄性个体感受性低。
霉菌--生长速率法
菌落生长速率的表示方法 菌落达到一个给定的大小所需要的时间（天或小时） 在单位时间内菌落直径的大小
生长速率法常用的菌种 苹果腐烂病菌（Valsa mali） 小麦纹枯病菌（Rhzoctonia solani ） 棉花枯萎病菌（Fusarium oxysporium） 葡萄白腐病菌（Coniothyrium diplodiella） 小麦全蚀病菌（Gaeumannomyces graminis） 辣椒疫霉病菌（Phytophthora capsici）
6
7
五、实验数据及其处理 纯生长量=菌落平均直径-菌饼直径 抑菌率（%）=[(对照菌落纯生长量-处理菌落纯生长量/ 对照纯生长量]×100%
8
50%多菌灵对苹果腐烂病菌的抑制作用(生长速率法)
菌落直径（mm）
药 剂
浓度（mg/L）
浓度 对数
ⅠⅡ
ⅢⅣ
平均
ห้องสมุดไป่ตู้
抑制 （%）
机 率 值
9
机率值
6 y = 0.9624x + 2.8171
大家好
1
实验十 杀菌剂的生物测定--生长速率法
2
一、实验目的 学习并掌握杀菌剂的生物测定方法之一--生长速率法
二、实验原理 生长速率法是杀菌剂毒力测定的常规方法之一，适用于不 长孢子而菌丝生长较快的真菌，是通过菌落生长的速度快 慢来衡量药剂的毒力大小 生长速率法又叫含毒介质法，它是将供试药剂与培养基混 合，以培养基上菌落的生长速度来衡量化合物的毒力大小。 一般多用于那些不产孢子或孢子量少而菌丝较密的真菌
4
三、试剂和仪器设备 高压灭菌锅、超净工作台、酒精灯、接种针、纱布、吸 管、消毒培养皿、打孔器、无菌小烧杯 PDA培养基 病原菌（苹果腐烂病菌） 供试杀菌剂(多菌灵)
生物生长发育的数学模型
生物生长发育的数学模型随着科技的发展以及生物学研究的深入，人们对于生物生长发育的认识也越来越深入。
不仅我们了解了各种生物的发育过程，还尝试建立了不同的数学模型来描述这些过程。
在本文中，我们将探讨一些常见的生物生长发育数学模型，并且简单介绍这些模型的应用和意义。
1、S型生长模型S型生长模型是最为常见的生物生长模型之一，常用于描述生物种群的生长发展和各种发育序列的演变。
S型生长模型一般由以下公式表示：Nt=K/(1+a*exp(-rt))其中，Nt代表种群数量、K代表种群的最大容量、r代表增长速率、a代表一些常量。
S型生长模型的数学意义比较明确，它将生物种群的生长发展过程分为三个阶段：指数生长期、转折期和饱和期。
在指数生长期，种群数量增长非常迅速，直到达到一定数量之后，增长速率开始逐渐减缓，最后到达饱和状态。
S型生长模型在现实生活中的应用非常广泛，例如在农业和生态学领域中，人们可以利用该模型来预测不同农作物或生态系统的生长发展和变化趋势。
2、Gompertz模型Gompertz模型也是一种用于描述生物生长发育的数学模型，它是在S型生长模型的基础上进一步发展而来。
与S型生长模型相比，Gompertz模型更具有灵活性和复杂性，它可以描述更多不同类型生物种群在生长发展过程中的变化趋势。
Gompertz模型一般由以下公式描述：Nt=K*exp(-exp(rt-ln(K)/N0*(t-to)))其中，Nt代表种群数量、K代表种群的最大容量、r代表增长速率、N0代表起始种群数量、t-to代表增长周期。
Gompertz模型的数学意义比较复杂，它描述了一种生物种群在增长发展过程中受到各种环境和生态因素的影响，从而产生了不断变化的生长速率。
在实际应用中，Gompertz模型常用于生物群落生态学和生命科学领域，在研究某个生态系统或生物种群的生长发展规律时具有重要作用。
3、Logistic模型Logistic模型是另一种常见的用于描述生物生长发育的数学模型。
生长速率法
菌落生长速率的表示方法 菌落达到一个给定的大小所需要的时间（天或小时） 在单位时间内菌落直径的大小 生长速率法常用的菌种 苹果腐烂病菌（Valsa mali） 小麦纹枯病菌（Rhzoctonia solani ） 棉花枯萎病菌（Fusarium oxysporium） 葡萄白腐病菌（Coniothyrium diplodiella） 小麦全蚀病菌（Gaeumannomyces graminis） 辣椒疫霉病菌（Phytophthora capsici）
实验十 杀菌剂的生物测定--生长速率法
一、实验目的 学习并掌握杀菌剂的生物测定方法之一--生长速率法 二、实验原理 生长速率法是杀菌剂毒力测定的常规方法之一，适用于不 长孢子而菌丝生长较快的真菌，是通过菌落生长的速度快 慢来衡量药剂的毒力大小 生长速率法又叫含毒介质法，它是将供试药剂与培养基混 合，以培养基上菌落的生长速度来衡量化合物的毒力大小。 一般多用于那些不产孢子或孢子量少而菌丝较密的真菌
机率值
4 3 1 2 浓度对数 3
六、问题讨论 根据实验结果比较各种供试药剂之间对病原菌菌丝生长 的抑制作用
三、试剂和仪器设备 高压灭菌锅、超净工作台、酒精灯、接种针、纱布、吸 管、消毒培养皿、打孔器、无菌小烧杯 PDA培养基 病原菌（苹果腐烂病菌） 供试杀菌剂(多菌灵)
四、实验步骤
将培养基加热溶化，冷却至45-50℃，加入供试药液制成 含药液的培养基，并分别倒入培养皿中冷却 以无菌操作手续，用打孔器打取圆形菌块后用接种针挑至 培养皿中央，然后将培养皿置于培养箱（27℃）中培养即可 于处理后不同时间观察测定菌丝的生长情况
五、实验数据及其处理 纯生长量=菌落平均直径-菌饼直径 抑菌率（%）=[(对照菌落纯生长量-处理菌落纯生长量/
植物生理学 植物的生长生理
植物生理学植物的生长生理植物的生长生理一、植物生长和形态发生的细胞基础1.细胞的生长分化规律细胞周期:从亲代细胞分裂结束到子代细胞分裂结束的时期称为细胞周期。
细胞生长的控制细胞生长受多种因素的影响：受核质遗传基因的控制，因为细胞核与细胞质的数量比只能维持在一定的范围内；受细胞壁以及周围细胞作用力的影响；受环境因素的制约。
2.细胞分化的控制因素细胞分化的分子机理细胞分化的分子基础是细胞基因表达的差别。
同一植物体中的细胞都具有相同的基因，因为它们都是由同一受精卵分裂而来的，而且其中的每一个细胞在适宜的条件下有可能发育成与母体相似的植株。
在个体的发育过程中，细胞内的基因不是同时表达的，而往往只表达基因库中的极小部分。
这就是个体发育过程中基因在时间和空间上的顺序表达。
细胞的基因是如何有选择性地进行表达，合成特定蛋白质的，即基因是如何调控的，这是细胞分化的关键。
从某种意义上讲，具有相同基因的细胞而有着不同蛋白质产物的表达，即为细胞分化。
细胞分化的控制因素：（1）极性是细胞分化的前提极性是指细胞（也可指器官和植株）内的一端与另一端在形态结构和生理生化上的差异。
主要表现在: 细胞质浓度的不一，细胞器数量的多少，核位置的偏向等方面。
极性的建立会引发不均等分裂，使两个子细胞的大小和内含物不等，由此引起分裂细胞的分化。
(2)植物激素在细胞分化中的作用；植物激素可以诱导细胞分化。
3.细胞全能性与组织培养技术植物细胞的全能性是指植物的每个细胞都携带一个完整的基因组，具有发育成完整植物的潜力。
组织培养:指在无菌条件下，在培养基中离体分离培养植物组织(器官或细胞)的技术。
其理论基础是植物细胞的全能性。
（1）组织培养的概念与分类植物组织培养是指植物的离体器官、组织或细胞在人工控制的环境下培养发育再生成完整植株的技术。
用于离体培养的各种植物材料称为外植体。
根据外植体的类型，又可将组织培养分为：器官培养、组织培养、胚胎培养、细胞培养以及原生质体培养等。
实验二 生长速率测定
实验二微藻培养与生长速率测定一、目的要求掌握海洋微藻的培养方法、显微镜计数及生长速率的计算。
二、原理选取典型微藻，首先显微镜计数微藻的细胞浓度，然后以一定浓度接种该藻于灭菌加富海水中，于培养箱中一定光照强度与光周期下培养，并定期取样测定藻液细胞浓度，据此计算出该微藻的生长速率。
三、器材与步骤藻种：假微型海链藻，三角褐指藻培养基：灭菌海水与营养盐母液（实验一中已配置）三角瓶（500mL）22个，血球计数板22个，显微镜，光照培养箱2台，计数器，照度计。
胶头滴管，超净工作台步骤1.用胶头滴管吸取一定量的微藻母液，滴一滴于血球计数板上，让藻液自然地吸入到盖玻片下2.置于显微镜下，在一定放大倍数下观察，并计数3.根据血球计数板标示，计算出藻液的细胞浓度4.按照每mL 500个细胞的密度，计算出300mL培养基所需藻液体积5.用移液管吸取一定体积藻液，加入到500mL三角瓶中6.量取300mL（减去藻液体积）培养基，加入到三角瓶中7.将三角瓶放置于光照培养箱中，记录放置位置的光强情况以及光照培养箱光周期。
8.第5天开始（第二周周二，实验当天定为第0天），每天定点于超净工作台中，将藻液摇匀，然后吸取一定量的藻液，在显微镜下观察并计数细胞浓度，以C0，C5，C6和C7分别表示第0，5,6,7天的细胞浓度。
四生长速率的计算根据细胞浓度的计数情况，计算微藻的生长速率，计算公式如下：第5至第6天的比生长速率μ6=ln (C6/C5)第6至第7天的比生长速率μ7=ln (C7/C6)第0至第7天的平均比生长速率μ=ln(C7/C0)/7五思考题比较μ，μ6与μ7是否存在明显差别？如存在明显差别，其可能原因是什么？。
农药生物测定实验指导
农药生物测定实验指导（研究生）实验一培养基的制作、灭菌和病原菌的接种、培养一、实验目的：1、熟悉并掌握微生物用培养基的制作及灭菌的原理及使用；2、熟悉并掌握微生物的接种、培养及保存方法。
二、实验原理：培养基是供微生物生长的基物，分液体和固体两种。
按成分又可分为天然培养基、半组合培养基和组合培养基。
培养真菌所用的培养基一般用马铃薯培养基，它是半组合培养基，制作比较简单，且能够完全满足微生物的营养要求。
灭菌是杀死所有微生物，保证培养基不被杂菌污染的重要手段之一。
灭菌的方法有四种：热力灭菌、过滤灭菌、化学灭菌和物理灭菌。
热力灭菌在微生物灭菌中占主要地位，分干热灭菌和湿热灭菌。
干热灭菌是利用热空气来灭菌，将玻璃器皿等放入烘箱中加热，一般用160-170℃处理1小时或150℃处理2小时，适用于经高温处理不易损坏的干燥物质。
湿热灭菌，即高压蒸汽灭菌，是将灭菌物放入灭菌锅内，维持一定的蒸汽压力，一般为1公斤/cm2左右（相当于121℃），维持半小时，以确保杀死所有微生物，适用于高温高压下不易分解变质的物质和玻璃器皿。
湿热灭菌比干热灭菌效率高。
病原菌接种培养是杀菌剂毒力测定经常进行的工作之一，因培养基性状不同，可采用不同的接种方法。
本实验是练习在固体培养基上接种。
固体培养基的接种方法分倾注和斜面两种接种方法。
接种后的菌种，必须放在适温下培养，在培养期间注意观察菌种的生长情况和有无杂菌污染，温度要保持恒温，培养成熟的菌种必须很好地保存。
三．主要仪器及试材：1、实验器皿：培养皿、容量瓶、移液管、无菌水、PDA培养基[注：以上器皿须经灭菌。
]2、实验仪器：超净工作台、灭菌锅、培养箱、打孔器、酒精灯等。
四．实验方法与步骤：（一）、培养基的制作：1、培养基的组成（PDA）：去皮马铃薯块200克葡萄糖（或蔗糖）10-20克琼脂17-20克水1000ml2、步骤：（1）、在大烧杯中加入1000ml的水，作上标记；（2）、称取去皮马铃薯200克，切成小块，放入盛有水的烧杯中，煮沸30分钟左右，将薯块捞出，留下汁液；（3）、称取17-20克琼脂（事先用水浸泡），加入烧杯中，煮溶后，称取葡萄糖（或蔗糖）10-20克，加入汁液中溶解。
生长速率法
抑制病原真菌菌丝生长实验——生长速率法一、实验目的学习并掌握杀菌剂的生物测定方法之一—生长速率法。
二、实验原理生长速率法又叫含毒介质法，它是将供试药剂与培养基混合，以培养基上菌落的生长速度来衡量化合物的毒力大小。
一般多用于那些不产孢子或孢子量少而菌丝较密的真菌。
三、实验仪器与设备电子天平（感量0.1mg），生物培养箱，培养皿，移液管或移液器，接种器，卡尺，高压灭菌锅，超净工作台，酒精灯，纱布，打孔器等四、实验材料（1）供试农药通用名：戊唑醇(Tebuconazole)，化学名：(RS)-1-(4-氯苯基)-4,4-二甲基-3-(1H-1,2,4三唑-1-基甲基)戊-3-醇。
（2）供试病菌试验真菌应选择在人工固体培养基上菌丝能沿水平方向、有一定生长速率且周缘生长较整齐的真菌，如番茄灰霉病菌（Botrytis cinerea）、水稻纹枯病菌（Rhizoctonia solani）、小麦赤霉病菌（Fusarium graminearum）和番茄早疫病菌（Alternaria solani）等。
（3）其他实验材料PDA培养基五、实验步骤1.药剂配制戊唑醇（98%原药）溶于丙酮配成5000ppm母液。
设计5个系列浓度，有机溶剂最终含量不超过2%。
2.药剂处理在无菌操作条件下，根据实验处理将预先融化的灭菌培养基定量加入无菌三角瓶中，从低浓度到高浓度依次定量吸取药液，分别加入上述三角瓶中，充分摇匀。
然后倒入直径为9cm的培养皿中，制成相应浓度的含药平板。
实验设不含药剂的处理作空白对照。
3.接种将培养好的病原菌，在无菌条件下用直径为4mm的灭菌打孔器，自菌落边缘切取菌饼，用接种针将菌饼接种于含药平板中央，盖上皿盖，皿盖朝下，将培养皿置于适宜温度的培养箱中。
六、结果调查与统计分析根据空白对照培养皿中菌的生长情况调查病原菌菌丝生长情况。
用卡尺测量菌落直径，单位为mm。
每个菌落用十字交叉法垂直测量直径各一次，取其平均值。
婴幼儿生长速率分析方法的研究现状
㊃卫生服务评价㊃婴幼儿生长速率分析方法的研究现状李燕1, 熊忠贵2ʌ基金项目ɔ 湖北省卫生计生委面上项目(W J 2017M 129)ʌ作者单位ɔ 1武汉科技大学医学院,湖北武汉,4300702湖北省妇幼保健院儿童保健科,湖北武汉,430070ʌ通信作者ɔ 熊忠贵,E -m a i l :x i o n g z h o n g g u i @h b f y.c o m ʌ摘要ɔ 婴幼儿生长速率是生长发育基础研究的前沿领域㊂婴幼儿生长速率的分析方法包括Z 评分法㊁两点指数法㊁两点平均法㊁J B 生长模型㊁分段线性混合模型和偏度系数-中位数-变异系数法,影响因素的分析方法包括多元线性回归法㊁平移法和G L M 广义线性模型㊂对目前国内外常用的婴幼儿生长速率的分析方法进行综述㊂ʌ关键词ɔ 婴幼儿; 生长速率; 影响因素; 分析方法ʌ中图分类号ɔ R 174 ʌ文献标志码ɔ A D O I :10.3969/j.i s s n .1673-5625.2024.02.026R e s e a r c h S t a t u s o fA n a l y s i sM e t h o d s o f t h eG r o w t hR a t e s f o r I n f a n t s a n dY o u n g Ch i l d r e n L IY a n *,X I O N G Z h o n g g u i .*S c h o o lo f M e d i c i n e ,W u h a n U n i v e r s i t y o f S c i e n c e a n d T e c h n o l o g y ,W u h a n ,430070,C h i n aʌA b s t r a c t ɔ T h e g r o w t h r a t e s f o r i n f a n t s a n d y o u n g ch i l d r e n a r e t h e f r o n t i e r o f f u n d a m e n t a l r e s e a r c h f o r g r o w t h a n d d e v e l o p m e n t .T h e a n a l y s i sm e t h o d s o f t h e g r o w t h r a t e s f o r i n f a n t s a n d y o u n g c h i l d r e n i n c l u d e Z -s c o r e s ,2-p o i n t e x po -n e n t i a lm e t h o d ,2-p o i n t a v e r a g em e t h o d ,J e n s s -B a y l e y 's g r o w t h m o d e l ,pi e c e w i s e l i n e a rm i x e d m o d e l ,a n dL a m b d a -M u -S i g m a m o d e l .T h e a n a l y s i sm e t h o d s o f i n f l u e n c i n g f a c t o r s i n c l u d em u l t i p l e l i n e a r r e g r e s s i o nm o d e l ,s u p e r i m po s i -t i o nb y t r a n s l a t i o na n d r o t a t i o n ,a n d g e n e r a l i z e d l i n e a rm o d e l .T h ea n a l y s i sm e t h o d so f t h e g r o w t hr a t e s f o r i n f a n t s a n d y o u n g c h i l d r e nw e r e r e v i e w e da t h o m e a n da b r o a d i n t h i s s t u d y .ʌK e y wo r d s ɔ I n f a n t s a n d y o u n g c h i l d r e n ; G r o w t h r a t e s ; I n f l u e n c i n g f a c t o r s ; A n a l y s i sm e t h o d s 婴幼儿生长速率是国际上研究生长发育状况比较热门的评价指标㊂2006年世界卫生组织颁布的生长参数基于全球多中心研究,收集0~24个月儿童大样本的纵向资料和18~60个月儿童的横向资料,作为评价儿童生长速率的国际标准[1]㊂与单纯的体格发育相比,生长速率能更清晰地反映儿童生长发育的轨迹,敏感地监测儿童生长发育的偏离情况[2],有效避免或减少累积性营养不良和身材矮小等不良后果㊂婴幼儿体格生长的评价包括生长水平㊁生长速率和匀称度三方面内容㊂目前,婴幼儿生长水平(横断面资料)的分析方法已有较多综述性研究,而生长速率(纵向监测资料)的分析方法尚缺少系统性研究㊂本文就目前国内外常用的婴幼儿生长速率的分析方法进行综述,以进一步完善婴幼儿生长速率的评价内容㊂1 生长速率概念及评价方法婴幼儿生长速率(gr o w t hr a t e )是指通过定期连续的体格测量,获得在一定时间内体格发育的增长值,它是决定生长发育水平的关键指标[3]㊂婴幼儿生长速率能够准确㊁科学评估婴幼儿的生长发育,预测婴幼儿的生长潜力,发现婴幼儿生长发育的偏离轨迹[4-5]㊂在临床研究中,婴幼儿生长速率主要采用绝对值和相对值评价㊂相对绝对值法来说,相对值法不受种族㊁性别及年龄等差异的限制,已得到广泛的临床应用㊂1.1 生长速率的评价方法1.1.1 绝对值法 采用婴幼儿特定年龄段体质量㊁身长(高)的绝对增长值表示㊂计算公式为:生长速率=后一年龄点测量值-前一年龄点测量值㊂有关研究显示,正常出生体质量(n o r m a l b i r t hw e i g h t ,N B W )和低出生体质量(l o w b i r t h w e i g h t ,L B W )婴儿,其体质量3~6月龄分别增长(1.95ʃ0.61)k g ㊁(1.79ʃ0.44)k g ,6~12月龄分别增长(1.80ʃ0.48)k g ㊁(1.70ʃ0.49)k g;身长3~6月龄分别增长(7.15ʃ1.54)c m ㊁(7.38ʃ1.46)c m ,6~12月龄分别增长(8.60ʃ1.35)c m ㊁(8.49ʃ0.96)c m ,N B W 组和L B W 组婴儿在不同年龄段体质量㊁身长生长速率无显著性差异[6]㊂绝对值法受种族㊁性别及年龄等差异的限制,在临床中一般应用较少㊂1.1.2 相对值法 采用婴幼儿特定年龄段身长或体质量绝对值的差值除以间隔时间表示㊂计算公式为:生长速率=(后一年龄点测量值-前一年龄点测量值)/两个年龄点间隔时间(月)㊂一项出生队列研究表明,婴儿身长生后0~1月增长4.95c m ,1~3个月每月增长3.72c m ,3~6个月每月增长2.14c m ,6~9个月每月增长1.42c m ,9~12个月每月增长1.19c m ;体质量生后0~1月增长1.32942中国社会医学杂志2024年4月第41卷第2期 C h i n e s e J o u r n a l o f S o c i a lM e d i c i n e ,A pr i l 2024,V o l .41,N o .2k g,1~3个月每月增长1.19k g,3~6个月每月增长0.54k g,6~9个月每月增长0.33k g,9~12个月每月增长0.31k g[7],随着年龄的增长,婴幼儿生长速率逐渐变缓㊂相对值法不受种族㊁性别及年龄等差异的限制,在临床中得到广泛应用㊂2生长速率的分析方法婴幼儿生长速率总体的变化趋势在不同的年龄阶段存在明显的差异㊂生长速率的分析方法包括Z评分法㊁两点指数法㊁两点平均法㊁J B生长模型㊁分段线性混合模型和偏度系数-中位数-变异系数法㊂在临床研究中,可根据不同的研究对象采取不同的分析方法㊂2.1Z评分法2009年世界卫生组织采用Z评分法(Zs c o r e m e t h o d)计算婴幼儿生长速率㊂Z评分法可客观地评价婴幼儿生长速率,但不能反映生后适应的生理条件,如生理性体质量下降等[8]㊂计算公式:Z评分=(实际测量值-该性别该月龄平均值)/该性别该月龄标准差,生长速率=(后一年龄Z评分-前一年龄Z评分)/两个年龄点间隔时间(月)[9]㊂S e púl v e d a-V a l b u e n a等[10]根据婴幼儿6㊁12㊁18月龄年龄别体质量Z评分(w e i g h t f o ra g ezs c o r e, WA Z)和身长别体质量Z评分(w e i g h t f o r l e n g t hz s c o r e,W L Z)的差值将追赶生长分为:缓慢(< -0.67)㊁正常(ȡ-0.67和ɤ0.67)和快速(>0.67)㊂一项回顾性队列研究表明,婴儿3月龄的喂养方式会影响其后的生长速率,配方奶喂养可导致生长速率的曲线上移,增加婴儿超重㊁肥胖的风险[11]㊂Z 评分法不受种族㊁性别及年龄等因素的影响,适用于不同婴幼儿生长速率的比较研究㊂2.2两点指数法P a t e l等[12]首次使用两点指数法(2-p o i n t e x p o-n e n t i a lm e t h o d)计算婴幼儿生长速率㊂然而,S i m o n 等[13]研究指出,与Z评分法相比,两点指数法计算生长速率与实际结果存在较大差异㊂计算公式:生长速率=[1000ˑl n(W n/W1)]/(D n-D1),其中W1为起始体质量(g),W n为观察第N天体质量(g), D n-D1代表时间间隔(d)㊂有关研究表明,在没有重大疾病的情况下,支持极低出生体质量儿生后的目标生长速率通常为15~20g/(k g㊃d)[14]㊂两点指数法不受疾病严重程度等临床因素的影响,适用于所有婴儿生长速率的评估㊂2.3两点平均法2005年P a t e l等[12]提出使用两点平均法(2-p o i n t a v e r a g em e t h e d)计算婴幼儿生长速率㊂计算公式:生长速率=[1000ˑ(W n-W1)]/{(D n-D1)ˑ[(W1+W n)/2]},其中W为体质量(g),D为天数,1代表间隔时间的开始,n代表间隔时间的结束㊂F e n t o n等[15]指出,评估增重速率的时间隔间应选择5~7天及以上,可减少干扰因素,提高评估精确度㊂A b d a l l a h等[16]使用两点平均法计算早产儿的体质量增长速率,指出极低出生体质量早产儿出院后前4周及随后4周的体质量增长速率小于15g/(k g.d)是生长失败的独立因素㊂两点平均法易受婴幼儿常见临床因素的影响,适用于临床研究及科研总结[17]㊂2.4J B生长模型2005年D o m m e l e n等采用J B生长模型(J e n s s-B a y l e y'sG r o w t h M o d e l)描述儿童从出生到8岁的生长情况[18]㊂J B模型方程:y i j=e A i+e-B i.t i j+e C i. (1-e-e-D i.t i j),其中y i j表示第j次测量时儿童i的体质量或身长,t i j表示以天单位的年龄,A i㊁B i㊁C i㊁D i 表示第i次儿童的函数参数,由此推导其一阶导数方程:生长速率=e-B i+e C i-D i-e-D i.t i j[19-20]㊂J B生长模型包含反映特定阶段的生长参数,受样本量的影响较大,适用于拟合个体体质量和身高曲线,从而模拟个体生长轨迹,同时可通过其一阶导数计算获得个人体质量及身高(长)的增长速率[20]㊂2.5分段线性混合模型1998年由S i n g e r提出使用分段线性混合模型(p i e c e w i s e l i n e a rm i x e dm o d e l),又称线性样条多层次模型(l i n e a r s p l i n e sm u l t i l e v e lm o d e l s)分析个体增长轨迹[21]㊂计算公式:y i j=β0+u0j+ðc+1k=1βk+u k j s i j k+e i j,其中β0, ,βc+1是每组节点之间的平均截距和平均斜率的固定系数,u k j为个体j从t k-1到t k平均斜率的差值,u0j是个体j与平均截距的差值㊂M o n j a r d i n o等[22]在一项大样本出生队列研究中采用分段线性模型获得了体质量和身长增长速率,并指出体质量或身长的快速增长与儿童骨量之间存在正相关关系㊂分段线性混合模型十分灵活,允许使用所有可用的数据,能有效处理重复数据产生的共线性和缺少部分数据所产生的偏差,突出了婴幼儿不同生长时段和不同婴幼儿生长速率的差异,其局限性在于生长速率的线性假设[23]㊂2.6偏度系数-中位数-变异系数法1992年由统计学家C o l e和G r e e n共同提出的偏度系数-中位数-变异系数法(L a m b d a-M u-S i g m a, L M S)(L为B o x-C o x转化的正态幂λ估计值,M为中位数,S为变异系数),是被广泛应用于建立生长参考曲线的一种统计方法,不仅适用于正态分布资料,而且适用于大部分偏态分布资料[24]㊂计算公式:C100a(t)=M(t)[1+L(t)S(t)Z a]1/L(t),-3ɤZ aɤ3[8]㊂2009年世界卫生组织利用预测的L㊁M㊁S值,使用常用的L M S公式,分别构建不同年龄及性别婴幼儿体质量㊁身长㊁头围的增长速率曲线[5,8],从而制定生长速率的百分位数标准㊂L M S 法可构建婴幼儿光滑的生长速率曲线,准确估计生052中国社会医学杂志2024年4月第41卷第2期 C h i n e s e J o u r n a l o f S o c i a lM e d i c i n e,A p r i l2024,V o l.41,N o.2长速率的正常值范围及变化趋势,但易受体质量指数等混杂因素的影响[25]㊂3影响因素的分析方法各种生物及环境因素的交互作用共同影响婴幼儿的生长速率㊂影响因素的分析方法包括多元线性回归法㊁平移法和G L M广义线性模型㊂应采取一定的方法排除干扰因素,突出重要因素及其交互作用,提高婴幼儿生长速率的干预效果㊂3.1多元线性回归模型多元线性回归模型(m u l t i p l e l i n e a r r e g r e s s i o n m o d e l)是一种经典的统计学分析方法㊂参数模型: y︿=β0+β1x1+ +βi x i,其中β0是常数项,x i为自变量,βi是偏回归系数㊂一项研究采用多元线性回归模型分析婴幼儿生长速率的相关影响因素,依据危险因子对早产婴儿生长速率的贡献大小,共有孕周㊁出生身长两个有利变量和性别㊁分娩次数两个不利变量与早产婴儿身长的生长速率存在关联;孕周㊁出生体质量两个有利变量和分娩次数㊁妊娠高血压综合征两个不利变量与早产婴儿的体质量生长速率存在关联[7]㊂多元线性回归模型可分析因变量与多个自变量的线性依存关系,量化影响因素的作用,但受适用条件限制,不能提出针对性的决策建议,且需要判断多个自变量之间复杂的交互作用[26]㊂3.2平移模型平移模型(s u p e r i m p o s i t i o nb y t r a n s l a t i o na n d r o t a t i o n,S I T A R)是B e a t h基于形状不变模型(s h a p e i n v a r i a n tm o d e l,S I M)展开简化婴儿生长模型的描述,它于2010年被C o l e等[27]命名并推广,是具有单一拟合曲线的形状不变模型㊂参数模型: y i j=a0+a i+h[t-β0-βie x p(-γ0-γi)]+εi j,y i j是个体i在年龄j的测量值,a0㊁β0㊁γ0是固定效应,a i㊁βi㊁γi是个体i的随机效应,分别代表个体生长曲线相较于平均曲线在大小㊁时间和速度3个维度上的变化,h(t)是一条三次样条曲线,εi j是独立的正态分布误差[28]㊂平移模型可用于解释婴幼儿生长曲线的非线性形状,可直观了解生长速率突增的时间和强度,量化婴幼儿的增长差异,有助于研究临床协变量及治疗干预措施对生长速率的影响,具有评估生长轨迹和使用所有可用数据而不考虑测量时间和频率的优势[29],但对一些更具复杂性和极端值的样条模型拟合度不佳㊂3.3广义线性模型广义线性模型(g e n e r a l i z e d l i n e a r m o d e l s, G L M)是于1972年由N e l d e r等首次提出的统计学分析方法[30]㊂参数模型:η=α+ʏx(t)β(t)d t,g-1 (η)=E(Y|x)=μ,V a r(Y|x)=V(μ),其中,g(㊃)是联系函数,V是方差函数[31]㊂一项研究采用广义线性模型分析了维生素D补充及总摄入水平与婴儿体质量增长过快风险的关联性,该研究指出婴儿期维生素D补充有助于降低体质量增长过快风险,维生素D补充水平介于400~717I U/d时,可能对预防体质量增长过快最为有效[32]㊂G L M模型的结构及使用方法相对简单,可对连续或离散型随机变量进行分析,已广泛应用于各领域,但因要求同一个体每次测量值相互独立,且因变量需满足正态分布或指数族分布,其应用受到一定限制㊂4结论婴幼儿生长速率是生长发育临床评价的重要指标,是生长发育基础研究的前沿领域㊂婴幼儿生长速率的研究类型包括绝对值法和相对值法,两者计算方法简单,相对值法因不受年龄㊁性别等限制,应用相对更广泛;婴幼儿生长速率的分析方法包括Z评分法㊁两点指数法㊁两点平均法㊁J B生长模型㊁分段线性混合模型和偏度系数-中位数-变异系数法,Z评分法㊁两点指数法和分段线性混合模型受常见临床因素影响小,适用于不同婴幼儿生长速率的比较,J B生长模型和偏度系数-中位数-变异系数法可模拟个体生长轨迹,但易受样本量或体质量指数等因素干扰;影响因素的分析方法包括多元线性回归法㊁平移法和G L M广义线性模型,其中多元线性回归法可量化影响因素的作用,但不能排除影响因素间交互作用的干扰,平移模型可直观了解生长速率突增的时间和强度,有利于分析治疗干预措施的影响,但不能较好拟合具有极端值和复杂性样条模型,广义线性模型使用方法相对简单,但要求因变量具有特定分布,应用受到一定限制㊂因此,采取合适方法评价婴幼儿生长速率及其影响因素,可及时采取有效干预措施,促进婴儿生长发育,为儿童保健及其相关工作提供科学㊁准确的参考依据㊂参考文献[1]张萍,孙费敏,夏泽源,等.湖北省城市早产儿与足月儿体格生长状况的比较研究[J].中国妇幼卫生杂志,2022,13(2):11-14.[2]丁俊杰,高丽英,曹英,等.建立母乳喂养1㊁2和3月时生长速率曲线:基于母乳与配方粉喂养的多中心随机对照试验[J].中国循证儿科杂志,2017,12(2):81-86.[3]中华医学会儿科学分会内分泌遗传代谢学组,中华医学会儿科学分会儿童保健学组,中华儿科杂志编辑委员会.儿童体格发育评估与管理临床实践专家共识[J].中华儿科杂志,2021,59(3):169-174. 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细菌生长速率计算公式
细菌生长速率计算公式生长速率常数（R）：是指微生物每小时分裂次数，R=n/(t2-t1)代是（G）：是指细胞每分裂一次所需的时间，又称世代时间或增代时间，G=1/R(n是繁殖代数，t是培养时间）每繁殖一代所需的时间G：生长速率常数的倒数计算式的推导：x2=x1·2n→lgx2=lgx1+nlg2∴n=（lgx2-lgx1）/lg2=3.322（lgx2-lgx1）R=n/（t2-t1）=3.322（lgx2-lgx1）/（t2-t1）G=1/R=（t2-t1）/[3.322（lgx2-lgx1）]测算细菌的数量方法：1.计数器测定法：即用血细胞计数器进行计数.取一定体积的样品细胞悬液置于血细胞计数器的计数室内,用显微镜观察计数.由于计数室的容积是一定的(O.1mm3),因而根据计数器刻度内的细菌数,可计算样品中的含菌数.本法简便易行,可立即得出结果.2.活细胞计数法：常用的有平板菌落计数法,是根据每个活的细菌能长出一个菌落的原理设计的.取一定容量的菌悬液,作一系列的倍比稀释,然后将定量的稀释液进行平板培养,根据培养出的菌落数,可算出培养物中的活菌数.此法灵敏度高,是一种检测污染活菌数的方法,也是目前国际上许多国家所采用的方法.使用该法应注意：∴一般选取菌落数在30～300之间的平板进行计数,过多或过少均不准确；∴为了防止菌落蔓延,影响计数,可在培养基中加入0．001％2,3,5-氯化三苯基四氮唑(TTC)；∴本法限用于形成菌落的微生物.广泛应用于水、牛奶、食物、药品等各种材料的细菌检验,是最常用的活菌计数法.3.比浊法：比浊法是根据菌悬液的透光量间接地测定细菌的数量.细菌悬浮液的浓度在一定范围内与透光度成反比,与光密度成正比,所以,可用光电比色计测定菌液,用光密度(OD值)表示样品菌液浓度.此法简便快捷,但只能检测含有大量细菌的悬浮液,得出相对的细菌数目,对颜色太深的样品,不能用此法测定.4.测定细胞重量法：此法分为湿重法和干重法.湿重法系单位体积培养物经离心后将湿菌体进行称重；干重法系单位体积培养物经离心后,以清水洗净放人干燥器加热烘干,使之失去水分然后称重.5.测定细胞总氮量或总碳量：氮、碳是细胞的主要成分,含量较稳定,测定氮、碳的含量可以推知细胞的质量.此法适于细胞浓度较高的样品.。
生长速率标准差数值
生长速率标准差数值
生长速率的标准差是指测量一组个体在生长速率上的变异程度，数值越大表示个体之间在生长速率上的差异越大，数值越小，则表示个体之间在生长速率上的差异越小。
生长速率标准差的数值大小与所研究的对象、测量方法以及研究样本的大小有关。
一般来说，标准差的数值越大，说明个体之间在生长速率上的差异越大，反之则差异越小。
需要注意的是，生长速率是一个涉及时间的概念，因此在计算标准差时需要考虑时间间隔的影响。
一个较大的时间间隔可能会导致生长速率的标准差数值较大，因为较长的时间间隔可能会导致个体之间的变异程度增大。
总之，生长速率的标准差数值的大小可以反映个体在生长速率上的差异程度，数值越大说明差异越大，数值越小则差异越小。
bertalanffy生长方程及其方程组的参数估计
Bertalanffy生长方程是一个描述生物体生长过程的数学模型。
这个模型假设生物体的生长速率与其当前大小成反比，即生长速率随着生物体的增大而减小。
Bertalanffy生长方程的一般形式为：$$ W(t) = W_0 \cdot e^{(r \cdot (1 - e^{-k \cdot t}))} $$其中：* $W(t)$ 是在时间$t$ 时的生物体大小（例如体重、长度等）。
* $W_0$ 是生物体在$t = 0$ 时的初始大小。
* $r$ 是生物体的内禀增长率（intrinsic growth rate），表示生物体在没有任何环境限制下的最大生长速率。
* $k$ 是生长速率衰减的常数，表示生长速率随时间衰减的速度。
* $t$ 是时间。
这个方程可以进一步简化为：$$ W(t) = W_\infty \cdot (1 - e^{-k \cdot t}) $$其中$W_\infty$ 是生物体在长时间$t$ 后的渐近大小（即最大可能大小）。
方程组参数的解释：1. $W_0$：初始大小。
这通常是通过实验测量得到的，表示生物体在开始观察时的大小。
2. $r$：内禀增长率。
这个参数通常通过实验数据拟合得到，它表示生物体在没有任何环境限制下的最大生长速率。
3. $k$：生长速率衰减常数。
这个参数也通常通过实验数据拟合得到，它表示生长速率随时间衰减的速度。
4. $W_\infty$：渐近大小。
这个参数表示生物体在长时间后可能达到的最大大小。
它可以通过$W_0$ 和$r$ 计算得到，即$W_\infty = W_0 \cdot e^r$。
在实际应用中，这些参数通常通过实验数据拟合得到。
例如，可以通过观察不同时间点生物体的大小，然后使用非线性回归等方法来估计这些参数的值。
这些参数对于理解生物体的生长过程以及预测其未来的大小变化非常有用。
叶片生长速率的测定原理
叶片生长速率的测定原理叶片生长速率是指叶片的长度或面积在一定时间内增加的速率。
叶片生长速率的测定是植物生理学中的一个重要实验技术，以了解植物对外界环境条件的响应和生长发育的调控。
叶片生长速率的测定原理主要包括以下几个方面：1. 叶片长度测定法：这是最常用的测定叶片生长速率的方法之一。
它通过测量叶片的长度变化来计算生长速率。
首先，在实验开始前，需要确定测量的起始点，通常选取叶片的基部或者某个标记物作为起始点。
然后，在一定时间段内，每隔一段固定的时间测量叶片的长度变化，并记录下来。
最后，通过计算所得的长度变化与时间的比率，即可得到叶片的生长速率。
2. 叶片面积测定法：除了长度，叶片的面积也是叶片生长的重要指标之一。
叶片面积包括两个方面的变化，即面积的扩大和面积的增长。
测定叶片面积的方法可以采用直接测量和间接测量两种方式。
直接测量是通过将叶片放在特定仪器上进行测量，如光电叶面积测定仪或扫描仪等。
间接测量则是通过测量叶片的长度和宽度来计算面积，具体可以采用图像处理软件或者数码相机等工具完成。
3. 叶片质量测定法：叶片生长速率的测定还可以根据叶片的质量变化来进行。
首先，在实验开始前，需要称取一定数量的叶片样品的初始质量。
然后，在一定时间段内，每隔一段固定的时间重新称取叶片样品，从而测定叶片的质量变化。
最后，通过计算所得到的质量变化与时间的比率，即可得到叶片的质量生长速率。
4. 叶片光合速率测定法：叶片的生长速率与光合速率密切相关。
光合速率是指光合作用中光合产物的合成速率，常用单位为光合产物的质量或者能量单位与时间的比值。
通过测定叶片的光合速率，可以间接推测叶片的生长速率。
光合速率的测定方法较为复杂，需要运用光合速率仪或者气体交换系统等专门设备进行测量。
总的来说，叶片生长速率的测定原理主要是通过测量叶片的长度、面积、质量或光合速率的变化，并将其与时间进行比较，计算出叶片的生长速率。
这些测定方法可以用于不同类型的植物，而且可以通过对不同环境条件的调控或药物处理等改变生长速率，以研究植物对环境的适应机制以及生长发育的调控机制。
菌丝生长速率法
菌丝生长速率法
菌丝生长速率法是一种常用的微生物学实验方法，用于测量菌丝的生长速率。
该方法主要包括以下步骤：
1. 准备培养基：选取适当的培养基，加入所需的营养成分，进行灭菌处理，使其无菌。
2. 接种菌株：将待测菌株接种进培养基中，确保接种量适当。
3. 培养：将培养基装入培养皿中，在适当的温度、湿度和通风条件下进行培养。
4. 观察生长：在一定时间内，定期观察菌丝的生长情况，并记录下来。
5. 计算生长速率：根据观察结果，计算出菌丝的生长速率，一般以菌丝长度的增加量为指标。
菌丝生长速率法可以用于研究不同菌株的生长特性，比较不同培养条件对菌丝生长的影响，评价抗菌剂的药效，以及筛选具有生物活性的化合物等。
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名词解释生长速率法的特点
名词解释生长速率法的特点名词解释生长速率法（Compound Annual Growth Rate, CAGR）是一种常用的统计指标，用于衡量一项数据在一段时间内的平均年增长率。
它的计算方法是将每年的增长率取对数，然后进行累加，并求出平均数。
生长速率法的特点有以下几点：1. 平均增长率的衡量：生长速率法通过计算平均年增长率来衡量数据的增长情况。
与简单增长率相比，CAGR更能反映数据的长期趋势。
它能够剔除年度波动的影响，提供一个更准确的增长率指标。
2. 考虑时间价值：CAGR考虑了时间对数据增长的影响，通过将增长率进行对数化和累加，能够有效地体现长期投资的效果。
这种方法能够使投资者更好地评估资产的增长潜力，而不受短期波动的影响。
3. 独立于初始值和结束值：与简单增长率相比，CAGR不依赖于初始值和结束值。
无论初始值和结束值是多少，CAGR都能提供一个统一的评估标准。
这种特点使得CAGR在不同数据之间的比较更具有可比性。
4. 适用于复杂增长模式：生长速率法适用于各种复杂的增长模式。
无论数据是呈线性增长、指数增长还是非线性增长，CAGR都能够提供一个综合的平均增长率。
这使得CAGR成为衡量各种商业指标的常用方法。
5. 信息丰富度高：通过计算CAGR，可以获得丰富的增长信息。
除了总体的平均增长率外，还可以根据具体的年份计算每年的增长率，并对增长率进行分析和比较。
这些信息对于投资者、分析师和经济学家等都具有重要意义。
需要注意的是，CAGR并不是解决所有增长率问题的绝对指标。
它只是一种计算方法，不能完全代表数据的增长情况。
在使用CAGR时，还应该结合其他指标来进行综合评估，以便更全面地了解数据的增长趋势和潜力。
综上所述，名词解释生长速率法是一种常用的统计指标，通过计算平均年增长率来衡量数据的增长情况。
它考虑了时间价值，独立于初始值和结束值，并适用于复杂增长模式。
CAGR提供了丰富的增长信息，但在使用时需要结合其他指标进行综合评估。
实验一b生长速率测定
实验一（2）微藻培养与生长速率测定一、目的要求掌握海洋微藻的培养方法、显微镜计数及生长速率的计算。
二、方法及原理选取典型微藻，首先显微镜计数微藻的细胞浓度，然后以一定浓度接种该藻于灭菌加富海水中，于培养箱中一定光照强度与光周期下培养。
由于硅藻采取二分裂的繁殖方式，通过定期取样测定藻液细胞浓度，可计算得出该微藻的生长速率。
三、器材与步骤藻种：三角褐指藻培养基：灭菌海水与营养盐母液（实验一中已配置）灭菌三角瓶（500mL）20个（牛皮纸封口），灭菌量筒5个（500mL，牛皮纸封口），移液枪及灭菌枪头若干套（1mL），血球计数板20个，显微镜，光照培养箱2台，计数器，辐射照度计，胶头滴管，50mL烧杯20个，200mL烧杯2个，超净工作台1-2台。
步骤1.超净工作台中，取约5-10mL藻液至50mL烧杯中，用胶头滴管吸取一定量的微藻母液，滴一滴于血球计数板上，让藻液自然地吸入到盖玻片下。
2.置于显微镜下，在一定放大倍数下观察，并计数3.根据血球计数板标示，计算出藻液的细胞浓度4.按照每mL 50个细胞的密度，计算出400mL培养基所需藻液体积5.用移液枪吸取一定体积藻液，加入到500mL三角瓶中6.用量筒量取400mL培养基，倒入至三角瓶中，用牛皮纸封口7.将三角瓶放置于光照培养箱中，记录放置位置的光强情况以及光照培养箱光周期设置（12：:12）及温度（20o C）。
8.第3天开始（第二周周一，实验当天定为第0天），每天定点于超净工作台中，将藻液摇匀，吸取20mL左右的藻液，首先测定其pH值，然后吸取一定量在显微镜下观察并计数细胞浓度，以C0，C3，C4，C5和C6分别表示第0，3,4,5,6天的细胞浓度。
注意事项：a.实验过程注意无菌操作，防止污染藻液造成实验失败。
b.计数及转移时应将藻液摇匀，防止藻体沉淀产生误差。
四生长速率的计算根据细胞浓度的计数情况，计算微藻的生长速率，计算公式如下：μ (d-1) = ln (Cb/Ca)/(tb−ta),Ca与Cb分别代表在第a和第b天测得的细胞浓度，ta和tb分别代表第a天和第b天。
植物生长在一定时间内呈现慢快慢的节奏
个人收集整理仅供参考学习植物生长在一定时间内呈现慢快慢的节奏，这种快慢节奏与季节和昼夜变化有关，植物或器官的生长速率随昼夜或季节的变化而发生有规律性的变化，这种现象称为植物生长的周期性。
从定义中可见，植物生长的周期的可分为昼夜周期性和季节周期性。
（一）昼夜周期性植物生长随昼夜交替而呈现的有规律变化，就是昼夜周期性。
随昼夜交替，光照，温度、水分也发生周期性的变化，从而影响到植物的生长速率。
植物生长速率有两种表示方法，一是以干物质积累量为指标，二是以株高或体积为指标。
如果以干物质积累量为指标，白天的生长速率大于夜间，如果以株高、鲜重、或体积为指标，生长速率随昼夜交替呈现三种变化，（1）在水分充足的条件下，白天光照充足，温度适合，生长速率大于夜间。
（2）白天光照过强，温度较高时，蒸腾过于强烈，失水多，体内出现水分亏缺，生长受到抑制，这时白天生长速率小于夜间。
（3）当白天与夜间温度相近时，白天和夜间的生长速率相近。
植物生长的昼夜周期，不仅受昼夜交替的影响，而且受植物内生机制—生物钟的影响的调节。
（二）季节周期性植物生长随季节变化而呈现的有规律变化，就是植物生长的季节周期性。
由于地球公转，引起日照长度和气温的季节性变化，而日照长度和气温又影响植物的生长，使植物的生长呈现有规律的变化。
以多年生木本植物为例，春季气温升高，光照逐渐增强，植物开始生长，夏季旺盛生长，由于较高日照较长较强，秋季，日照逐渐缩短，气温降低，生长受抑，进入休眠状态，冬季生长完全停止，处于休眠状态。
这种变化周而复始，年复一年。
（三）生物钟生物钟是指植物在长期进化过程中形成的生理活动随昼夜交替呈现周期性变化的内在控制机制。
生物钟是生物的内生计时系统。
生物钟的计时周期是近似24小时。
因此也称为近似昼夜节奏。
植物的生长，运动，细胞分裂，某些酶活性都受生物钟的调节，受生物钟调节的最典型例子是菜豆叶片的就眠运动。
菜豆叶片在白天呈水平状态，夜间下垂，称为就眠，如菜豆连续光照，或连续黑暗，并使温度处于恒定，菜豆叶片仍然在白天时平展，夜间时下垂，这种运动的周期不是24h，而在22-28h，说明菜豆叶片的就眠运动受体内的一种内生机制控制，这就是生物钟。
全自动血培养仪工作原理
全自动血培养仪工作原理
一、检测原理
全自动血培养仪采用细菌生长速率法和荧光法进行检测。
其基本原理是利用细菌在生长过程中释放的代谢产物，如二氧化碳、氢、氧气等，以及荧光物质，如细菌细胞壁中的荧光物质在特定波长光下发出荧光，通过检测这些物质的变化，判断是否存在细菌生长。
二、样本处理
全自动血培养仪的样本处理通常包括以下步骤：
接收样本：仪器通过自动机械臂或人工操作将样本管放入仪器中。
稀释样本：仪器将样本与稀释液混合，降低样本浓度，以便于检测。
移除和过滤：仪器使用过滤膜或其他技术去除大颗粒杂质和细胞碎片。
分瓶培养：仪器将过滤后的样本分装到多个培养瓶中，每个培养瓶中含有一个不同的营养基质。
检测：仪器通过检测代谢产物的变化和荧光物质的发光强度，监测各培养瓶中细菌的生长情况。
数据分析：仪器对收集到的数据进行分析，判断是否为阳性结果。
报警：仪器在检测到阳性结果时发出警报，通知医护人
员处理。
三、温度控制
血培养仪的温度控制是关键环节之一，因为细菌的生长速度与温度密切相关。
仪器通过精确控制培养瓶内的温度，模拟人体内的环境，使细菌能够正常生长。
此外，仪器还需对环境温度进行监控，确保仪器正常运行。
四、数据分析
全自动血培养仪在检测过程中会收集大量数据，包括代谢产物和荧光物质的浓度、温度等。
这些数据经过分析后可判断是否存在细菌生长。
仪器通常采用算法对数据进行分析，根据代谢产物和荧光物质的变化趋势，判断是否存在阳性结果。
这些算法经过不断优化和改进，以提高阳性检出率和降低假阳性率。
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抑制病原真菌菌丝生长实验——生长速率法
一、实验目的
学习并掌握杀菌剂的生物测定方法之一—生长速率法。
二、实验原理
生长速率法又叫含毒介质法，它是将供试药剂与培养基混合，以培养基上菌落的生长速度来衡量化合物的毒力大小。
一般多用于那些不产孢子或孢子量少而菌丝较密的真菌。
三、实验仪器与设备
电子天平（感量0.1mg），生物培养箱，培养皿，移液管或移液器，接种器，卡尺，高压灭菌锅，超净工作台，酒精灯，纱布，打孔器等
四、实验材料
（1）供试农药通用名：戊唑醇(Tebuconazole)，化学名：(RS)-1-(4-氯苯基)-4,4-二甲基-3-(1H-1,2,4三唑-1-基甲基)戊-3-醇。
（2）供试病菌试验真菌应选择在人工固体培养基上菌丝能沿水平方向、有一定生长速率且周缘生长较整齐的真菌，如番茄灰霉病菌（Botrytis cinerea）、水稻纹枯病菌（Rhizoctonia solani）、小麦赤霉病菌（Fusarium graminearum）和番茄早疫病菌（Alternaria solani）等。
（3）其他实验材料PDA培养基
五、实验步骤
1.药剂配制
戊唑醇（98%原药）溶于丙酮配成5000ppm母液。
设计5个系列浓度，有机溶剂最终含量不超过2%。
2.药剂处理
在无菌操作条件下，根据实验处理将预先融化的灭菌培养基定量加入无菌三角瓶中，从低浓度到高浓度依次定量吸取药液，分别加入上述三角瓶中，充分摇匀。
然后倒入直径为9cm的培养皿中，制成相应浓度的含药平板。
实验设不含药剂的处理作空白对照。
3.接种
将培养好的病原菌，在无菌条件下用直径为4mm的灭菌打孔器，自菌落边缘切取菌饼，用接种针将菌饼接种于含药平板中央，盖上皿盖，皿盖朝下，将培养皿置于适宜温度的培养箱中。
六、结果调查与统计分析
根据空白对照培养皿中菌的生长情况调查病原菌菌丝生长情况。
用卡尺测量菌落直径，单位为mm。
每个菌落用十字交叉法垂直测量直径各一次，取其平均值。
根据测得的结果计算菌丝生长抑制率，计算该农药的抑制率，评价供试药剂对靶标菌生长的抑制活性。
纯生长量=菌落平均直径-菌饼直径
抑菌率（%）=[(对照菌落纯生长量-处理菌落纯生长量/对照纯生长量]×100%。