双荧光素酶测试系统及海肾类对照报告基因载体
dual-luciferase
双荧光素酶报告系统作者：windyrain 2008-05-29 21:54:33标签：杂谈双荧光素酶报告基因测试∶结合萤火虫和海洋腔肠荧光素酶先进的共报告基因测试技术在用萤火虫荧光素酶定量基因表达时,通常采用第二个报告基因来减少实验的变化因素。
但传统的共报告基因(比如CAT,β-Gal,GUS)不够便利,因为各自的测试化学,处理要求,检测特点存在差异。
Promega提供一种先进的双报告基因技术,结合了萤火虫荧光素酶测试和海洋腔肠荧光素酶测试。
双荧光素酶报告基因测试系统,结合pRL载体系统,表达第二个报告基因海洋腔肠荧光素酶,在单管中进行双荧光素酶报告基因测试,快速,灵敏,简便。
系统还提供PLB裂解液,用来裂解在多孔板中培养的哺乳细胞,不需操作单个样品。
对于正在使用萤火虫荧光素酶报告基因载体的研究人员。
双荧光素酶报告基因测试系统将使他们立即体会到该系统的便利。
介绍有内参照双报告基因用于实验系统中作相关的或成比例的检测, 通常一个报告基因作为内对照, 使另一个报告基因的检测均一化。
检测基因表达时双报告基因通常用来瞬时转染培养细胞，带有实验报告基因的载体共转染带有不同的报告基因作为对照的第二个载体。
通常实验报告基因偶联到调控的启动子, 研究调控基因的结构和生理基础。
报告基因表达活力的相对改变与偶联调控启动子转录活力的改变相关，偶联到组成型启动子的第二个报告基因，提供转录活力的内对照, 使测试不被实验条件变化所干扰。
通过这种方法, 可减少内在的变化因素所削弱的实验准确性, 比如, 培养细胞的数目和活力的差别, 细胞转染和裂解的效率。
使用萤火虫荧光素酶,结合氯霉素乙酰转移酶(CAT), β-半乳糖苷酶(β-Gal), 或葡萄醛酸糖苷酶(GUS)的双报告基因,近几年已普遍使用。
但这些双报告基因组合削弱了荧光素酶操作的优势, 比如荧光素酶测试和定量可在几秒钟内进行, 但CAT, β-Gal和GUS测试法, 则在定量前需要长时间的保温。
pRL 家族海肾荧光素酶对照报告基因载体系列
pRL家族海肾荧光素酶对照报告基因载体系列产品包装目录号价格pRL-SV40 Vector 20ug E2231pRL-TK Vector 20ug E2241pRL-CMV Vector 20ug E2261pRL-null Vector 20ug E2271描述：pRL家族海肾荧光素酶(Rluc)对照报告基因载体系列是设计应用于双荧光素酶报告基因检测系统的。
pRL载体提供组成性表达的海肾荧光素酶，可与一个萤火虫荧光素酶载体联合共转染哺乳动物细胞。
海肾荧光素酶的表达为使实验的萤火虫荧光素酶报告基因正态化提供内对照值。
pRL载体包含一个编码海肾荧光素酶(Rluc)的cDNA, 这个cDNA从珊瑚虫类腔肠动物海肾(Renilla reniformis)中克隆而来。
目前有四个不同的启动子载体。
其中HSV-胸腺嘧啶核苷激酶启动子(pRL-TK)相对较弱，在提供海肾荧光素酶报告基因载体的组成性表达时特别有用。
早期SV40 增强子/启动子区域(pRL-SV40)和CMV极早期增强子/启动子区域（pRL-CMV）一般提供高水平转录，因此也许不适于应用在实验载体带有强调节因子的辅助报告基因实验中。
一般，我们建议在将要应用的目标细胞中验证一个特定辅助报告基因的性能。
与修饰过的Rluc 基因一样，所有的pRL载体都从dam-/dcm-E.coli K菌株中分离得到，允许使用对dam和dcm 甲基化敏感的限制性内切酶进行消化。
特点：●在紧靠Rluc的上游有一个T7启动子，允许进行海肾荧光素酶的体外合成。
●在Rluc的下游有一个SV40的晚期poly(A)序列，提供有效的转录终止和mRNA的聚腺苷酸化。
●原核复制起点和β-内酰胺酶基因使得pRL载体可在E.coli宿主中进行选择扩增。
●为避免DNA甲基化，所有的pRL载体均从dam-/dcm-E.coli K宿主中分离得到。
操作手册：技术公告：TB237, TB238, TB239, TB240储存条件：载体存于-20℃, 细菌菌株存于-70℃。
双荧光素实验报告
一、实验目的1. 掌握双荧光素酶实验报告系统的基本原理和操作方法。
2. 学习利用双荧光素酶报告系统检测基因表达和调控。
3. 理解双报告基因在实验中的作用及其对实验结果的影响。
二、实验原理双荧光素酶实验报告系统是一种常用的分子生物学实验方法，用于检测基因表达和调控。
该系统利用两种荧光素酶——萤火虫荧光素酶（Firefly Luciferase, FLUC）和海肾荧光素酶（Renilla Luciferase, Rluc）——作为报告基因。
FLUC在生物发光反应中具有较高的光强度和较宽的线性范围，而Rluc则具有较长的发射波长，可以作为内对照，确保实验结果的准确性和可比性。
在双荧光素酶实验中，通常将带有实验报告基因的载体共转染带有Rluc的载体到细胞中。
通过检测两种荧光素酶的活性，可以评估实验组与对照组之间基因表达和调控的差异。
三、实验材料1. 细胞系：HEK293细胞2. 载体：带有实验报告基因的载体和带有Rluc的载体3. 转染试剂：脂质体转染试剂4. 检测试剂：荧光素酶底物和荧光素酶检测仪器四、实验步骤1. 细胞培养：将HEK293细胞接种于6孔板，培养至对数生长期。
2. 载体构建：将实验报告基因克隆到带有荧光素酶报告基因的载体中，构建双荧光素酶报告基因载体。
3. 转染：按照脂质体转染试剂说明书进行细胞转染，将双荧光素酶报告基因载体和带有Rluc的载体共转染到细胞中。
4. 细胞培养：转染后继续培养细胞，收集细胞样品。
5. 荧光素酶活性检测：按照荧光素酶底物说明书进行荧光素酶活性检测，分别检测FLUC和Rluc的活性。
6. 数据分析：将FLUC和Rluc的活性进行比较，分析实验组与对照组之间基因表达和调控的差异。
五、实验结果1. 荧光素酶活性检测：通过荧光素酶底物检测，成功检测到FLUC和Rluc的活性。
2. 数据分析：实验组与对照组相比，FLUC活性显著提高，而Rluc活性无明显变化。
六、实验讨论1. 双荧光素酶实验报告系统是一种有效的基因表达和调控检测方法，可以用于研究基因功能、信号通路和细胞反应。
Dual-Luciferase 双荧光素酶报告基因检测系统
Dual-Luciferase®双荧光素酶报告基因检测系统产品包装目录号价格Dual-Luciferase® Reporter Assay System 100 次检测E19101000次检测E1960Dual-Luciferase® Reporter Assay System10-pack1000次检测E1980Dual-Luciferase® Reporter 1,000 AssaySystemPassive Lysis 5× Buffer 30ml E1941描述：普洛麦格公司的双荧光素酶报告基因(DLR™)检测系统为双报告基因检测提供有效手段。
在DLR™ 检测中，萤火虫(Photinus pyralis)荧光素酶和海肾(Renilla reniformis)荧光素酶可在单个样品中连续测量。
测量过程是：加入荧光素酶检测试剂II (LARII)产生萤火虫荧光信号，信号持续至少1 分钟，这样先测量萤火虫荧光素酶报告基因。
定量萤火虫荧光强度之后，再在同一样品中加入Stop & Glo®试剂，将上述反应猝灭，并同时启动海肾荧光素酶反应，同时进行第二次测量。
如果使用带有试剂自动注射器的荧光发光计，两个检测可在4秒内完成。
在DLR™检测系统中，两个报告基因产生的线性检测范围均在小于10-18摩尔的灵敏度范围内，两个报告基因在实验宿主细胞内均无内源活性。
另外，此系统中一体化形式的双荧光素酶检测既可快速定量检测转染细胞，也可用于快速定量检测无细胞转录/翻译反应体系中的两个报告基因。
普洛麦格公司的合成海肾基因phRL系列：普洛麦格公司曾为双荧光素酶报告基因（DLR™）检测系统设计了萤火虫荧光素酶报告基因载体和野生型海肾报告基因载体pRL系列。
phRL和pRL系列载体均提供海肾荧光素酶的组成性表达，可与任何实验用萤火虫荧光素酶载体组合，共同转染哺乳动物细胞。
双荧光素酶报告数据分析(3篇)
第1篇摘要：双荧光素酶报告系统（Dual Luciferase Reporter Assays, DLRA）是一种广泛应用于生物科学研究中的细胞功能检测技术。
通过分析荧光素酶的活性，可以评估细胞内信号通路的激活情况，从而研究基因表达调控、细胞增殖、细胞凋亡等多种生物学过程。
本文将对双荧光素酶报告数据分析的方法、注意事项以及结果解读进行详细阐述。
一、引言双荧光素酶报告系统是一种基于荧光素酶活性的细胞功能检测技术，具有灵敏度高、特异性强、操作简便等优点。
荧光素酶是一种在细胞内自然存在的酶，能够将荧光素底物催化生成荧光物质。
在双荧光素酶报告系统中，通常使用两种荧光素酶：萤火虫荧光素酶（Firefly Luciferase, FL）和海肾荧光素酶（Renilla Luciferase, RL）。
FL的荧光强度通常作为报告基因的活性，而RL的荧光强度则作为内参基因，用于校正实验误差和细胞活力。
二、实验原理双荧光素酶报告系统的基本原理是：将目的基因与荧光素酶基因（FL或RL）的启动子连接，构建报告基因质粒。
将报告基因质粒转染到细胞中，细胞内荧光素酶的活性与目的基因的表达水平成正比。
通过检测细胞内两种荧光素酶的荧光强度，可以评估目的基因的表达水平。
三、实验方法1. 构建报告基因质粒（1）设计荧光素酶基因（FL或RL）的启动子序列，并与目的基因序列连接。
（2）将连接好的基因序列克隆到载体质粒中，构建报告基因质粒。
2. 细胞培养与转染（1）培养细胞至对数生长期。
（2）用脂质体或电穿孔等方法将报告基因质粒转染到细胞中。
3. 荧光素酶活性检测（1）收集转染后的细胞，用荧光素酶底物进行孵育。
（2）使用荧光光度计检测细胞内FL和RL的荧光强度。
4. 数据分析（1）计算FL和RL的相对荧光强度（RFU）。
（2）计算目的基因的表达水平（FL/Rlu）。
四、数据分析方法1. 相对荧光强度（RFU）计算RFU = 荧光强度 / 标准曲线斜率2. 目的基因表达水平计算目的基因表达水平 = FL/Rlu其中，FL为FL的相对荧光强度，Rlu为RL的相对荧光强度。
双荧光素酶报告基因检测试剂盒-碧云天
双荧光素酶报告基因检测试剂盒产品简介：碧云天生产的双荧光素酶报告基因检测试剂盒(Dual Luciferase Reporter Gene Assay Kit)，是先以荧光素(luciferin)为底物来检测萤火虫荧光素酶(Firefly luciferase)，后以coelenterazine为底物来检测海肾荧光素酶(Renilla reniformis luciferase，简称Renilla luciferase)，并且在后续加入Renilla luciferase的底物时同时加入了抑制Firefly luciferase催化luciferin发光的物质，使后续检测仅仅测定到Renilla luciferase的活性，实现双荧光素酶报告基因检测。
萤火虫荧光素酶可以催化luciferin氧化成oxyluciferin，在luciferin氧化的过程中，会发出生物荧光(bioluminescence)。
海肾荧光素酶可以催化coelenterazine氧化成coelenteramide，在coelenterazine氧化的过程中也会发出生物荧光。
然后可以通过荧光测定仪也称化学发光仪(luminometer)或液闪测定仪测定上述荧光素酶催化的氧化过程中释放的生物荧光。
通过荧光素酶和其底物这一生物发光体系，可以极其灵敏、高效地检测基因的表达。
通常把感兴趣的基因转录的调控元件克隆在firefly luciferase的上游或其他适当的地方，构建成报告基因质粒。
然后转染细胞，适当刺激或处理后裂解细胞，测定荧光素酶活性。
通过荧光素酶活性的高低判断刺激前后或不同刺激对感兴趣的调控元件的影响。
Rinilla luciferase更多地被用作转染效率的内参，以消除细胞数量和转染效率的差异。
萤火虫荧光素酶催化luciferin发光的最强发光波长为560nm。
海肾荧光素酶催化coelenterazine发光的最强发光波长为465nm。
双萤光素酶报告基因的应用,常见载体及案例简介
双萤光素酶报告基因的应用，常见载体及案例简介双萤光素酶报告基因检测（Dual-Luciferase Reporter Assay）通常以萤火虫萤光素酶(Firefly luciferase)为报告基因，以海肾萤光素酶(Renilla luciferase)为内参基因。
所构成的报告系统具有灵敏度高、动态范围广、应用灵活等优势，广泛用于基因调控、非编码RNA靶向互作等研究领域。
Firefly luciferase（简称F-Luc）以萤光素(luciferin)为底物，在Mg2+、ATP和氧分子存在条件下，催化luciferin氧化成oxyluciferin，在此过程中发出最强波长在560nm 左右的生物萤光(bioluminescence)。
F-Luc表达框的上游启动子区域插不同功能序列，可以通过转录起始条件造成其报告萤光的变化。
在F-Luc的3’UTR区域插入待验证的靶序列，通过其翻译抑制或mRNA稳定性降低，可以反映是否存在靶向互作。
Renilla luciferase（简称R-Luc）以腔肠素（coelenterazine）为底物，在氧分子存在的条件下催化coelenterazine氧化生成coelenteramide，此过程中发出最强波长在465nm 左右的生物萤光。
R-Luc通常由固定组成型启动子驱动，在报告系统中作为校正input误差的内参信号。
生物萤光产生反应式一、应用方向1. 验证microRNA同mRNA靶向互作。
将待测mRNA的3’UTR序列插入报告基因载体，再共转入该microRNA，如果萤光素酶活性下降，则提示为其靶序列。
2. 验证microRNA同lncRNA靶向互作。
将候选的lncRNA序列插入报告基因载体中F-Luc的3’UTR区域，检测萤光素活性。
3. 启动子结构分析。
将启动子区域序列（通常2k左右）进行分段截短，或对特定位点进行突变，再分别构建入luciferase报告载体，检测其启动子活性。
双萤光素酶报告基因技术
Dual-Glo assay-选择性淬灭萤火虫萤光
Selective quench of firefly luminescence
Dual-Glo™萤光素酶检测系统
试剂盒组成
• Dual-Glo™萤光素酶缓冲液 • Dual-Glo™萤光素酶底物（冻干粉） • Dual-Glo™Stop-Glo®缓冲液 • Dual-Glo™Stop-Glo®底物
载体 - 萤火虫萤光素酶载体
•pGL3 家族
✓pGL3-Basic ✓pGL3-Control ✓pGL3-Enhancer ✓pGL3-Promoter
pGL3-Basic Map
pGL3-Control Map
pGL3-Enhancer Map
pGL3-Promoter Map
内对照载体可能存在的问题
Gal ,的两个报告基因的检测都灵敏而快速．
双萤光素酶报告基因系统比用CAT和ß-Gal做内对照 的优点
• 速度
– 样品不需预处理，不需孵育。两次检测在几秒种内 完成
• 灵敏
– 两个萤光素酶的线性范围超过7个酶浓度数量级。内 源萤光素酶背景极低
• 方便
– 一管完成检测，样品不必分份ห้องสมุดไป่ตู้
用两个萤光素酶做报告基因 （萤火虫+海肾）
• 步骤
前一天：接种细胞，六孔板X3 第二天：共转染：pGL3-Try14A和pRL-SV40 （分成两组）
pGL3-Control 和 pRL-SV40 pGL3-Basic 和 pRL-SV40
裂解细胞，测量萤光
Dual-Glo™萤光素酶检测系统
检测特点 •均质检测，为高通量检测而设计 •萤光信号稳定，2hrs内检测 •自发萤光低于检测水平
双荧光素报告基因载体
双荧光素报告基因载体：构建与应用引言双荧光素报告基因载体在生物学和医学研究中具有广泛的应用。
它能够帮助研究人员观察和分析特定基因在细胞中的表达情况。
本文将介绍双荧光素报告基因载体的构建和应用过程。
构建双荧光素报告基因载体的步骤第一步：选择荧光素基因和载体在构建双荧光素报告基因载体之前，我们需要选择合适的荧光素基因和载体。
常用的荧光素基因有荧光素酶（Luciferase）和绿色荧光蛋白（GFP）。
载体选择上可以使用质粒或病毒载体。
第二步：设计引物和限制酶切位点在构建双荧光素报告基因载体时，需要设计引物和限制酶切位点。
引物用于扩增荧光素基因，限制酶切位点用于将基因插入载体。
第三步：扩增和纯化荧光素基因使用设计好的引物扩增荧光素基因。
扩增完成后，通过凝胶电泳检测目标片段的大小并纯化出目标片段。
第四步：切割载体和插入基因将载体与限制酶进行切割。
切割后，将扩增和纯化好的荧光素基因与载体连接，形成重组载体。
第五步：转化宿主细胞并筛选将重组载体转化到宿主细胞中，常用的宿主细胞有大肠杆菌。
转化完成后，通过筛选对重组载体敏感的宿主细胞，如通过抗生素抗性筛选。
第六步：验证重组载体通过PCR扩增和测序等方法对重组载体进行验证。
确保荧光素基因已经正确插入载体。
双荧光素报告基因载体的应用荧光素酶活性检测双荧光素报告基因载体可以用于荧光素酶活性检测。
将重组载体转染到感兴趣的细胞中，然后加入荧光素底物。
荧光素酶基因的表达量与荧光素底物的降解速率成正比。
通过测量产生的荧光信号强度，可以获得基因的表达水平。
基因表达调控研究双荧光素报告基因载体还可以用于基因表达调控的研究。
通过插入启动子区域，可以观察特定条件下基因的表达变化。
比如，研究某种药物对基因表达的影响。
细胞信号通路研究使用双荧光素报告基因载体可以研究细胞信号通路。
通过将感兴趣的基因与荧光素酶基因连接，可以观察特定信号通路的活性。
这有助于理解细胞信号传递过程以及相关疾病的发生机制。
双荧光素酶报告基因系统验证miRNA的靶基因笔记
双荧光素酶报告基因系统验证miRNA的靶基因笔记(一)什么是双荧光素酶？答：双荧光素酶通常是指萤火虫荧光素酶和海肾荧光素。
其中荧火虫荧光素是从甲虫（Photinus pyralis）中分离得到，分子量为61kDa；而海肾（Renilla）荧光素酶则是从海肾（Renilla reniformis）中分离，分子量为36kDa。
这两种酶的区别之一是他们的底物和辅因子不同：萤火虫荧光素酶需要荧光素、氧气、ATP和镁离子同时存在才能发光；而海肾荧光素酶仅需要腔肠素（coelenterazine）和氧气。
萤火虫荧光素酶和海肾荧光素酶的区别之二是发光的颜色不同：萤火虫荧光素酶产生的光颜色呈现黄绿色，波长550-570nm；而海肾荧光素酶产生蓝光，波长480nm。
正是由于这两种酶的底物和发光颜色不同，所以在双报告实验中得到广泛应用，它们的发光原理如下所示：(二)为什么要采用双荧光素酶报告系统？答：单报告基因实验往往会受到各种实验条件的影响，而双报告基因则通过共转染的“对照”作为内参为试验提供一基准线，从而可以在最大程度上减小细胞活性和转染效率等外在因素对实验的影响，使得数据结果更为可信。
(三)双荧光素酶在miRNA验证其靶基因方面的原理是什么？答：双萤光素酶报告基因检测系统在细胞中同时表达萤火虫萤光素酶和海肾萤光素酶，两者没有种源同源性并对应不同的反应底物，故而没有交叉干扰。
得益于超强的光信号和超高的信噪比，本系统被广泛用于 miRNA 靶基因验证。
miRNA 主要通过作用于靶基因的3’UTR起作用，可以将目的基因3’UTR区域构建至载体中报告基因 luciferase 的后面，通过比较过表达或者干扰 miRNA 后，报告基因表达的改变（监测萤光素酶的活性变化）可以定量反映 miRNA 对目的基因的抑制作用，也即用荧光值来判断miRNA是否和靶基因结合。
(四)在利用双荧光素酶验证miRNA的靶基因方面，插入的3’UTR长度应该是多少？答：靶基因的3’UTR长度不一，将全长都插入载体中不切实际，通常只插入包括miRNA结合位点前后200bp左右的序列，大概就是400bp[1]，但也有文献插入的是80个bp[2]，有文献选择了200多个bp[3]，但严格来讲，应该选择400bp，以结合位点为中心，上游200bp，下游200bp。
双荧光素酶报告实验
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03
参考案例
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案例一
分别构建靶基因CADM1双荧光素酶报告基因载体以及与miR-XX结合位点突变的突变体：PGLOCADM1 WT和PGLO-CADM1 MUT。将两种报告质粒与过表达质粒miR-XX mimic和阴性对照质粒分别 共转染至肝癌细胞Huh7中，转染24 h后裂解细胞，12000 rpm离心1 min，收集上清。使用双荧光素酶 报告基因检测系统 (Dual-Luciferase® Reporter Assay System，E1910，Promega) 检测荧光素酶活性 。每个细胞样品中加入100 μL萤火虫荧光素酶工作液检测萤火虫荧光素酶 (Firely lueiferase)，加入100 μL海肾荧光素酶工作液检测海肾荧光素酶 (Renilla lueiferase)，以萤火虫荧光素酶与海肾荧光素酶作为 相对荧光素酶活性。实验重复3次。
报告基因检测系统 (Dual-Luciferase® Reporter Assay System，E1910，Promega) 检测荧光素酶活性
。每个细胞样品中加入100 μL萤火虫荧光素酶工作液检测萤火虫荧光素酶 (Firely lueiferase)，加入100
Step2：共转染 μL海肾荧光素酶工作液检测海肾荧光素酶 (Renilla lueiferase)，以萤火虫荧光素酶与海肾荧光素酶作为
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参考案例
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案例一
分别构建靶基因CADM1双荧光素酶报告基因载体以及与miR-XX结合位点突变的突变体：PGLOCADM1 WT和PGLO-CADM1 MUT。将两种报告质粒与过表达质粒miR-XX mimic和阴性对照质粒分别
Step1：构建载体 共转染至肝癌细胞Huh7中，转染24 h后裂解细胞，12000 rpm离心1 min，收集上清。使用双荧光素酶
双荧光素酶报告基因实验步骤
双荧光素酶报告基因实验步骤双荧光素酶报告基因实验是一种常用的生物学实验方法，用于研究基因表达、蛋白质相互作用等生物学过程。
下面将介绍双荧光素酶报告基因实验的详细步骤，希望能对您的实验工作有所帮助。
1. 质粒构建。
首先，需要将双荧光素酶报告基因构建到适当的表达载体中。
一般来说，可以选择pGL3基因表达载体，将双荧光素酶报告基因插入到该载体的多克隆位点中。
构建好的质粒可以用于转染细胞进行后续的实验操作。
2. 细胞培养。
接下来，需要选择适当的细胞系进行实验。
常用的细胞系有HEK293、HeLa等。
将选定的细胞系进行培养，直至细胞密度达到要求，可以进行后续的转染实验。
3. DNA转染。
将构建好的双荧光素酶报告基因质粒转染至培养好的细胞中。
可以选择合适的转染试剂，按照试剂说明书的操作步骤进行转染。
转染后，将细胞培养在含有适当抗性筛选剂的培养基中，以筛选转染成功的细胞。
4. 荧光素酶活性检测。
转染后的细胞需要进行荧光素酶活性检测。
首先将培养基抽取，然后加入荧光素底物，测定细胞中荧光素酶的活性。
可以使用荧光素酶检测试剂盒进行操作，按照说明书进行操作。
5. 双荧光素酶报告基因实验结果分析。
最后，根据实验结果进行数据分析。
可以通过比较不同组的荧光素酶活性来研究基因的表达水平，或者研究蛋白质的相互作用等生物学过程。
通过实验结果，可以得出相应的结论并进行讨论。
以上就是双荧光素酶报告基因实验的详细步骤。
希望对进行该实验的科研工作者有所帮助，也希望大家能够在实验中取得理想的结果。
祝实验顺利！。
双荧光素酶测试系统及海肾类对照报告基因载体
双荧光素酶测试系统及海肾类对照报告基因载体1.什么是双荧光素酶报告基因测试系统（DLR）DLR测试系统灵敏，方便，在一个系统中用于测量两个单独的荧光素酶报告基因，萤火虫荧光素酶及海洋海肾荧光素酶(Renilla reniformis)，DLR测试系统可用于细胞裂解物及无细胞的翻译系统。
2.有哪些海肾荧光素酶载体海肾荧光素酶载体pRL用于在转染的哺乳细胞中组成性地表达海肾荧光素酶。
这类载体还有T7启动子，可用T7RNA聚合物在体外合成海肾荧光素酶，有4个不同的载体：A pRL-SV40载体??? pRL-SV40载体含SV40增强子及早期启动子区域，可在多种细胞中组成性地高表达海肾荧光素酶。
pRL-SV40载体还含有SV40的复制起始区，可在表达SV40大T抗原的细胞中，如COS-1，COS-7细胞中，瞬时及附加体似地复制。
B pRL-CMV载体pRL-CMV载体含有CMV极早增强子及启动子，可在多种细胞中组成性地高表达海肾荧光素酶。
a pRL-TK载体pRL-TK载体含HSV胞嘧啶激酶启动子区域，在多种细胞中组成性地弱表达海肾荧光素酶。
b pRL-null载体pRL-null载体缺真核启动子及增强子，在海肾荧光素酶基因的上游含有多克隆位点。
3.用双报告基因有何优点一般地说，实验报告基因用于测试实验条件下基因的表达，而另一个报告基因作为内对照，以提供实验报告基因测试的归一化。
将实验报告基因的活力与内对照报告基因的活力作归一化可消除实验中不同测试间所固有的变化，这些变化减弱实验准确度，其中包括培养细胞的数目及活力的差异，细胞转染及裂解的效率。
海肾荧光素酶可用作对照报告基因及实验报告基因。
在双荧光素酶报告基因测试中，将萤火虫荧光素酶作为实验报告基因，海肾荧光素酶作为对照报告基因。
4.相比用CAT或β-半乳糖苷酶对表达数据作归一化，双荧光素酶报告基因测试系统有何优点用双荧光素酶报告基因测试（DLR）有几个优点：•快速•DLR测试不需保温或对样品作预处理。
双荧光素酶实验原理
双荧光素酶实验原理
双荧光素酶实验是一种常用的基因报告系统，能够通过观察荧光信号来定量分析特定基因的表达水平。
其原理基于双荧光素酶（Dual-Luciferase）系统，包括火萤酶（Firefly Luciferase）
和海洋鞭毛虫荧光素酶（Renilla Luciferase）两个荧光素酶。
首先，将感兴趣的基因的启动子区域与火萤酶编码区（报告基因）相连，构建成荧光素酶表达载体。
另外，还需要构建一个含有海洋鞭毛虫荧光素酶编码区的载体作为内部参照基因。
这样，在同一细胞中同时表达火萤酶和海洋鞭毛虫荧光素酶。
实验中，将这两种载体转染至细胞中。
细胞内转染后，荧光素底物（firefly luciferin和coelenterazine）与相应的荧光素酶结
合发生催化反应，产生融合的荧光信号。
接下来，利用荧光素酶检测试剂盒，分别检测火萤酶和海洋鞭毛虫荧光素酶的活性。
以火萤酶为例，实验中会加入火萤酶底物luciferin，该底物在酶的作用下会发出黄绿光信号，测量这
种荧光的强度。
同样地，还需检测海洋鞭毛虫荧光素酶的活性。
通过比较火萤酶和海洋鞭毛虫荧光素酶的相对活性，可以间接反映感兴趣基因的表达水平。
如果观察到火萤酶信号增强、而海洋鞭毛虫荧光素酶活性不变，说明感兴趣基因在表达上调。
反之，如果火萤酶信号减弱、而海洋鞭毛虫荧光素酶活性不变，说明感兴趣基因在表达下调。
这样，双荧光素酶实验可以作为分子生物学研究中的一种定量检测方法，用于研究基因的调控机制、信号通路等。
双荧光素酶报告基因
转染方法：电击法、磷酸钙法和脂质体介导法和病毒介导法。
电击法是在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入； 磷酸钙法是利用不同的载体物质携带质粒通过直接穿膜或者膜融 合的方法使得外源基因进入细胞； 病毒法是利用包装了外源基因的病毒感染细胞的方法使得其进入 细胞。 脂质体法：人工合成的阳离子脂质体和带负电荷的核酸结合后形 成复合物，当复合物接近细胞膜时被内吞成为内体进入细胞质， 随后DNA复合物被释放进入细胞核内。
PUC8 PBUDCE41 YE
pGEX-4T M13 pAdV5
(1)M13 (2)plasmid (3)λphage (4)casmid (5)BAC (6)YAC
常用的报告基因载体类型： 1）basic 载体：不含 P/E,用于检测启动 子活性。 2）control载体：含启动子，用于检测增 强子或沉默子的活性。
双荧光素酶报告基因
连接-定向克隆（最常用）
方法：双酶切 优点：防止载体自身环化
正向插入 单拷贝插入 连接效率高
双荧光素酶报告基因
转化的原理和过程
• 感受态：细菌处于容易吸收外源DNA的状态。 • 致敏：用理化方法诱导细胞进入感受态的操作。 • 转化过程： 1 对数期细菌置于冷Cacl2、Mgcl2中，制备感
报告基因分析
双荧光素酶报告基因
1. 基本概念和实验原理 报告基因: 编码可供检测的酶与蛋白质的基 因。是现代分子生物学研究领域中用于分 析结构基因旁侧区域潜在的顺式元件(如启 动子、增强子和沉默子等)和反式作用因子 相互作用关系的一种重要工具。
可作为报告基因的条件: ① 编码产物的活性不受宿主细胞的干预。 ②编码产物在宿主细胞中不存在, 易于区别。 ③编码产物的活性的测定必须具有快速、简便、 灵敏度高、重复性好的特点。 常用的报告基因：氯霉素乙酰转移酶基因(CAT)、
双荧光素酶报告基因检测
双荧光素酶报告基因检测: 一种结合萤火虫和海肾荧光素酶检测的先进辅助报告基因技术（原文在Promega notes 57第2页）摘要在用萤火虫荧光素酶定量基因表达时,通常采用第二个报告基因来减少实验误差。
但是，传统的辅助报告基因(例如，CAT,β-Gal或GUS)却不够便利,因为各自的检测化学,操作要求,测量特点有很多不同之处。
普洛麦格公司提供一种先进的双报告基因技术,是萤火虫荧光素酶检测和海肾荧光素酶检测的组合。
使用双荧光素酶报告基因检测系统,再结合一套pRL（或phRL、phRG）载体系统，即表达第二个报告基因海肾荧光素酶的载体系统,就可以在单管中进行双荧光素酶报告基因的检测,极为快速、灵敏、简便。
系统还提供被动裂解液（PLB）,用来裂解在多孔板中培养的哺乳动物细胞并定量溶解两种荧光素酶,不必要对每一个样品分别进行单独操作。
对于正在使用萤火虫荧光素酶报告基因载体的研究人员，双荧光素酶报告基因检测系统将使他们立即体会到该系统的便利。
介绍两个报告基因用在一个实验系统中，是为了进行相互测量，或称为比率测量。
通常一个报告基因作为内对照, 使另一个报告基因的测量结果正态化。
在测量基因表达时，双报告基因通常用于培养细胞的瞬时转染，即：一个含有实验用报告基因的载体与第二个作内对照的，含不同报告基因的载体共同转染培养细胞。
一般是将实验用报告基因与调控启动子偶联在一起,研究被调控基因表达的结构或生理基础。
报告基因表达活性的相对改变与偶联的调控启动子的转录活性的改变相关。
为了提供一个转录活性的内对照, 第二个报告基因与一个组成型启动子偶联，这个启动子不受各种实验条件变化的干扰。
通过这种方法, 有可能把可能削弱实验准确性的内在因素的变化降到最小, 这些内在因素包括：培养细胞的数目和健康状况的差别, 细胞转染和裂解效率的差别等。
使用萤火虫荧光素酶, 结合氯霉素乙酰转移酶(CAT), β-半乳糖苷酶(β-Gal), 或葡萄醛酸糖苷酶(GUS)的双报告基因, 近几年已普遍使用。
双荧光素酶报告基因检测与载体构建服务说明
3. 片段获取（WT，Mut） 3. 重组构建
3. 突变引物扩增
4. 构建载体
4. 测序比对
4. 突变片段重组
5. 测序比对
5. 纯度浓度测定，去内毒 5. 测序比对
素 6. 细胞转染（默认工具细
7. 纯度浓度测定，去内毒
胞）
6. 包装，质检，发货
素
7. 双荧光素酶活性检测
6. 包装，质检，发货
电子示例图
标准化文件：uptbioVC0 双荧光素酶报告与载体构建服务说明
双荧光素酶报告基因检测与载体构建服务说明
亲爱的客户，为了给您更好的提供“U 平台—双荧光素酶报告基因检测与载体构建” 技术服务，请您阅读以下说明条款：
1. 请您在与我们签约前配合填写《双荧光素酶报告基因检测与载体构建咨询表》，我 们将严格按照您填写的需求进行项目管理和成果提交。
含：载体图谱序列 .dna 文件（使用 snapgene 软件）
地址：湖南省长沙市岳麓高新区兴工国际产业园 2 栋 402
固话：0731-85572308
标准化文件：uptbioVC0 双荧光素酶报告与载体构建服务说明
含：测序峰值图文件 .ab1 文件（使用 chromas/snap基因检测与载体构建”实验内容如下，实验结束后再发 送实验报告，具体流程：
表 1. 双荧光素酶报告与载体构建实验设定流程
实验名称
双荧光素酶报告
载体构建
定点突变
实验内容
1. 在线预测序列 2. 构建方案确认
1. 目的片段获取 2. 载体片段获取
1. 确认突变需求 2. 突变方案确认
3. U 平台承诺所出具的检测结果真实、可信，并可提供所有原始材料及实验报告。 4. U 平台承诺对所有客户信息、客户成果保密，未经允许绝不透露给第三方。 5. 成果提交内容
双荧光素酶报告系统
双荧光素酶报告系统双荧光素酶报告系统（dual luciferase reporter assay system）是一种常用的生物学实验技术，用于研究基因调控、信号转导通路、蛋白质相互作用等生物学过程。
该技术利用荧光素酶和甲基荧光素酶作为报告基因，通过测定其荧光素酶活性来分析靶基因的表达水平和调控机制。
本文将介绍双荧光素酶报告系统的原理、操作步骤和应用范围，希望能够为相关研究人员提供一定的参考和帮助。
双荧光素酶报告系统的原理。
双荧光素酶报告系统利用两种不同的荧光素酶，荧光素酶（firefly luciferase）和甲基荧光素酶（Renilla luciferase）。
荧光素酶作为感光酶，能够将底物荧光素转化为可见光，而甲基荧光素酶则能将底物甲基荧光素转化为可见光。
通过测定这两种荧光素酶的活性，可以分别得到两个不同的荧光信号，从而实现对靶基因表达水平和调控机制的研究。
双荧光素酶报告系统的操作步骤。
1. 转染，将感兴趣的靶基因启动子区域克隆到双荧光素酶报告载体中，然后将该载体与甲基荧光素酶报告载体一起转染至目标细胞中。
2. 荧光素酶活性测定，在转染后一定时间，使用相应的底物分别对荧光素酶和甲基荧光素酶进行反应，然后测定其荧光素酶活性。
3. 数据分析，根据荧光素酶和甲基荧光素酶的活性测定结果，计算其相对荧光单位（RLU值），并进行比较分析，得出靶基因的表达水平和调控机制。
双荧光素酶报告系统的应用范围。
双荧光素酶报告系统在生物学研究中具有广泛的应用范围，主要包括以下几个方面：1. 研究基因调控，通过分析靶基因启动子区域的活性，揭示基因的调控机制，如转录因子的结合和调控效应等。
2. 分析信号转导通路，通过构建信号转导通路相关的双荧光素酶报告系统，研究信号分子的调控作用和相互关系。
3. 探究蛋白质相互作用，利用双荧光素酶报告系统分析蛋白质相互作用的影响因素和调控机制。
4. 高通量筛选，应用双荧光素酶报告系统进行药物筛选和基因组学研究，实现大规模的功能分析和筛选。
双荧光素酶报告基因实验
双荧光素酶报告基因实验引言。
双荧光素酶（Dual-Luciferase）报告基因实验是一种常用的生物学实验技术，用于研究基因表达调控机制。
该实验利用双荧光素酶系统，通过测定荧光素酶和荧光素酶的活性，来研究基因的转录和翻译水平。
本文将介绍双荧光素酶报告基因实验的原理、步骤和应用。
原理。
双荧光素酶报告基因实验基于双荧光素酶系统，该系统包括两种荧光素酶，火榴荧光素酶（Firefly Luciferase）和海洋荧光素酶（Renilla Luciferase）。
火榴荧光素酶是一种广泛应用的报告基因，在转录和翻译水平均可用于检测基因表达水平。
海洋荧光素酶则常用作内参基因，用于校正样品中的变异。
在双荧光素酶报告基因实验中，研究者首先将感兴趣的启动子区域或转录因子结合位点克隆到双荧光素酶报告载体中。
然后将该载体转染入目标细胞中，通过测定火榴荧光素酶和海洋荧光素酶的活性，来研究基因的转录和翻译水平。
步骤。
双荧光素酶报告基因实验的步骤主要包括载体构建、细胞培养、转染、荧光素酶活性测定和数据分析。
1. 载体构建，将感兴趣的启动子区域或转录因子结合位点克隆到双荧光素酶报告载体中，构建实验所需的报告基因载体。
2. 细胞培养，选取适当的细胞系，进行细胞培养并分装到96孔板中。
3. 转染，将构建好的双荧光素酶报告载体转染入目标细胞中，使其表达双荧光素酶。
4. 荧光素酶活性测定，使用双荧光素酶检测试剂盒，分别测定火榴荧光素酶和海洋荧光素酶的活性。
5. 数据分析，根据荧光素酶活性测定结果，计算目标基因的表达水平，并进行统计学分析。
应用。
双荧光素酶报告基因实验在基因表达调控机制研究中有着广泛的应用。
它可以用于研究转录因子结合位点的功能、筛选miRNA的靶基因、评估药物的影响等。
此外，双荧光素酶报告基因实验还可以用于高通量筛选和药物开发。
结论。
双荧光素酶报告基因实验是一种重要的生物学实验技术，它通过测定火榴荧光素酶和海洋荧光素酶的活性，来研究基因的转录和翻译水平。
293T荧光素酶报告基因实验
293T荧光素酶报告基因实验在研究转录因子和启动子的实验中，你是否想确定结合位点的序列？这些问题都可以用双荧光素酶报告基因检测系统来尝试解决。
双荧光素酶报告基因检测系统介绍基于荧光素酶（luciferase）的发光原理，科学家发明了双荧光素酶报告基因检测系统。
该系统包括萤火虫荧光素酶（Firefly luciferase）和海肾荧光素酶（Renilla luciferase）。
两者可催化各自的底物发生氧化作用产生生物荧光，产生的荧光数值大小即表示了两种酶的表达量多少。
Firefly luciferase和Renilla luciferase之所以被称为报告基因，是因为在基因表达调控研究时，利用两者表达产生的荧光比值可以监控、证实微观层面上的分子间的相互作用。
具体做法是：将靶基因的转录调控元件或5’启动子区克隆在Firefly luciferase基因的上游，或把3’-UTR区或lncRNA结合序列克隆在Firefly luciferase基因的下游，以研究启动子的强弱和转录因子对启动子的作用或miRNA对目的基因或lncRNA的调控作用（见图2）。
与此同时，引入包含Renilla luciferase基因的TK载体作为内参，以便消除细胞转染等因素带来的组间误差。
双荧光素酶报告基因检测系统中的luciferase来源于细菌、萤火虫、发光海洋生物等，可以在哺乳细胞中直接表达，无需表达后修饰，直接具备完全酶活性。
与绿色荧光蛋白（GFP）不同，它们的发光检测不需要激发光激发，且发光穿透力更强，这使其具备可定量、高灵敏度及低背景等特点。
双荧光素酶报告基因检测的应用下面从实验方案设计、实验数据处理及结果分析几个方面介绍几个案例，供大家参考。
1、利用双报告基因检测系统研究miRNA与3’UTR的相互作用实验目的：验证大鼠miR-1与靶基因ATG13 3’UTR是否发生作用，并进一步确定miR-1与ATG133’UTR的作用位点。
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双荧光素酶测试系统及海肾类对照报告基因载体
1.什么是双荧光素酶报告基因测试系统（DLR）？
DLR测试系统灵敏，方便，在一个系统中用于测量两个单独的荧光素酶报告基因，萤火虫荧光素酶及海洋海肾荧光素酶(Renilla reniformis)，DLR测试系统可用于细胞裂解物及无细胞的翻译系统。
2.有哪些海肾荧光素酶载体？
海肾荧光素酶载体pRL用于在转染的哺乳细胞中组成性地表达海肾荧光素酶。
这类载体还有T7启动子，可用T7RNA聚合物在体外合成海肾荧光素酶，有4个不同的载体：
A pRL-SV40载体??? pRL-SV40载体含SV40增强子及早期启动子区域，可在多种细胞中组成性地高表达海肾荧光素酶。
pRL-SV40载体还含有SV40的复制起始区，可在表达SV40大T抗原的细胞中，如COS-1，COS-7细胞中，瞬时及附加体似地复制。
B pRL-CMV载体pRL-CMV载体含有CMV极早增强子及启动子，可在多种细胞中组成性地高表达海肾荧光素酶。
a pRL-TK载体
pRL-TK载体含HSV胞嘧啶激酶启动子区域，在多种细胞中组成性地弱表达海肾荧光素酶。
b pRL-null载体
pRL-null载体缺真核启动子及增强子，在海肾荧光素酶基因的上游含有多克隆位点。
3.用双报告基因有何优点？
一般地说，实验报告基因用于测试实验条件下基因的表达，而另一个报告基因作为内对照，以提供实验报告基因测试的归一化。
将实验报告基因的活力与内对照报告基因的活力作归一化可消除实验中不同测试间所固有的变化，这些变化减弱实验准确度，其中包括培养细胞的数目及活力的差异，细胞转染及裂解的效率。
海肾荧光素酶可用作对照报告基因及实验报告基因。
在双荧光素酶报告基因测试中，将萤火虫荧光素酶作为实验报告基因，海肾荧光素酶作为对照报告基因。
4.相比用CAT或β-半乳糖苷酶对表达数据作归一化，双荧光素酶报告基因测试系统有何优点？
用双荧光素酶报告基因测试（DLR）有几个优点：
•快速
•DLR测试不需保温或对样品作预处理。
用被动裂解液将共转染有萤火虫及海肾荧光素酶基因的细胞裂解，制备细胞抽提物。
加入Stop&Glo试剂后，可同时湮灭萤火虫荧光素酶活力并激活海肾荧光素
酶发光，需立即测试海肾荧光素酶活性。
在几秒钟内可完成荧光素酶测试实验并作定量测试。
而其他
一些如CAT及β-gal的报告基因系统在定量前需要长时间的保温。
•灵敏度
•萤火虫及海肾荧光素酶的测试线性范围，是酶浓度的7个对数。
其他报告基因的灵敏度及线性应答受限。
通常不存在内源荧光素酶使背景活力低。
•方便
•在单管中完成测试，不需拆分样品，可用被动裂解液将培养在96孔板中的细胞快速裂解。
5.海肾荧光素酶与萤火虫荧光素酶相比的相对活性如何？
在ATP，镁，及氧存在时，萤火虫荧光素酶作用于甲虫荧光素，而来源于海洋腔肠（Renilla reniformis）的荧光素酶在氧的存在下作用于海肾荧光素。
6.将两个报告基因载体作共转染应用什么条件？
当用双荧光素酶报告基因测试系统来测量等重量的萤火虫荧光素酶及海肾荧光素酶时，可观察到它们释放的光几乎相等。
萤火虫荧光素酶的分子量为61kD，而海肾荧光素酶的分子量为36kD，当测试等重量的两个酶时，所测的海肾荧光素酶分子实际多69%。
如以每摩尔为基础，据实验确定，用双荧光素酶报告基因试剂测试的萤火虫荧光素酶的荧光强度比海肾荧光素酶强大约53%。
共转染质粒所含启动子间的反式效应有可能会影响到报告基因的表达。
当对照或实验报告基因载体含有很强的启动子/增强子时，需要特别加以注意。
载体pRL上的TK，SV40，CMV调节因子据报道可在大多数哺乳类细胞中表达，但它们在不同细胞中的表达水平不同。
载体pRL-TK中HSV胞嘧啶激酶启动子相对较弱，使海肾荧光素酶的组成性表达成低到中度水平。
早SV40极早CMV的增强子/启动子转录水平高，当实验载体所具有的调节因子较强时，这类启动子不太适用于双报告基因实验。
为使实验报告基因及对照报告基因的基因表达相对独立，每次实验时转染混和液中载体DNA的量及共转染报告基因载体的比例需作优化。
可采用实验载体与共转染报告基因载体的组成比在10：1到50：1或更大的范围，这有利于抑制启动子间的交互作用。
有时为有利于实验，共转染混和液中的实验载体应选择为少量部分。
7.需用荧光测试仪对双荧光素酶报告基因测试系统的荧光素酶作测定吗？
作DLR测试时应使用荧光测试仪。
液闪仪的灵敏度相比太低，不易获得可重复的结果。
8.作荧光素酶报告基因测试时，如何使用单或双加样的荧光测试仪？
对于单加样的荧光测试仪，在管子中预先加入荧光素酶测试试剂II，再加入细胞裂解物并测萤火虫荧光素酶的活力，接下来，用荧光测试仪上的加样管加入Stop&Glo试剂，并测海肾荧光素酶的活力。
对于双加样的荧光测试仪，在管子中加入细胞裂解物后，放入荧光测试仪中，从加样管I中加入荧光素酶测试试剂II并测萤火虫荧光素酶的活力，从加样管II中加入Stop&Glo试剂，并测海肾荧光素酶的活力。
需对背景作预测试的荧光测试仪需关闭这一功能。
9.如何从荧光测试仪中清理Stop&Glo试剂？
Stop&Glo试剂中的一个荧光素酶湮灭成份对塑料物质有一定的亲和力。
这一组份对于自动加样管的塑料管及吸管的内壁有可逆结合。
接触过Stop&Glo试剂的加样管如没充分清洗，会将残留的湮灭试剂遗漏到随后通过加样管的溶液中。
如这样的情况发生，则非常少量的污染湮灭试剂就会极大地抑制萤火虫荧光素酶的活力。
因此在使用萤火虫荧光素酶测试中，如要用自动法加样LARII，则需对已接触Stop&Glo试剂的加样管作充分的清洗。
如荧光测试仪有两个加样管，则要将每个管子固定加样一种溶液。
在完成一次实验后必须彻底清洗，请按下面的步骤清洗管子并维修仪器。
普通加样管清洗步骤：
1，用3倍于吸管箱体积的去离子水反复清洗加样管子以除去Stop&Glo试剂。
2，准备70%的乙醇作为清洗试剂，用5ml70%的乙醇将箱及加样管完全清洗，可将加样管浸泡在这一溶液30分钟后，再用去离子水清洗。
3，注意：构造加样管子的材料有很大差异，有的吸管浸泡清洗试剂的时间需超过30分钟。
配有Teflon管子的荧光测试仪不会有太大问题，而其他如Tygon浸泡清洗试剂的时间需超过12-16小时（过夜）以完全除去Stop&Glo试剂。
4，用3倍于吸管箱体积的去离子水反复清洗加样管子以除去乙醇。
Turner Designs TD –20/20荧光测试仪中加样管的清洗: TD –20/20荧光测试仪需5次预循环以100%地将加样吸管中的溶液完全清除，然后按下列方法清除残留的Stop&Glo试剂：
1.用去离子水清洗吸管10次，清除残留的Stop&Glo试剂。
2.再用70%乙醇清洗10次，并用清洗液将管子浸泡30分钟。
3.再用去离子水清洗10次，清除残留的乙醇。
10.如何保存Stop&Glo试剂？
将一定体积的Stop&Glo试剂保存在玻璃管及硅化的聚丙烯管子中，放在-70o C。
在未作处理的塑料管中，这一试剂不稳定。
11.50×Stop&Glo底物储存液的保存条件已作改变！1999二月。
Stop&Glo底物溶于Stop&Glo底物试剂中，所得50×贮液在-20o C会沉淀。
当沉淀发生时，50×贮液的颜色会改变，如用于测定海肾荧光素酶，则酶活力会降低。
最好新鲜配制50×贮液，并立即使用，如需保存，则将50×贮液保存-70o C达4周，活力不会改变。
12.被动裂解液与报告基因裂解液及细胞培养裂解试剂有何差别？这三种裂解液能同双荧光素酶报告基因测试系统（DLR）一同使用吗？
被动裂解液经特别配方以最有效地减小海肾荧光素酶底物海肾荧光素的自发荧光水平。
两个荧光素酶在被动裂解液中，室温可保存6小时。
报告基因裂解液原则上可用于制备细胞裂解物，并用于DLR测试，但实际上这不可行，因较被动裂解液会导致高一些的海肾荧光素的自发荧光水平。
细胞培养裂解试剂的海肾荧光素的自发荧光水平很高，不能被采用于制备DLR测试系统的细胞裂解物。
13.被动裂解液能裂解培养的植物细胞吗？它能裂解哺乳动物组织所得的初级细胞吗？
被动裂解液不能裂解植物细胞。
它能裂解一些类型的哺乳初级细胞。
一种细胞能否被它裂解需作测试。
14.加入Stop&Glo试剂后，还残留有萤火虫荧光素酶活性吗？
萤火虫荧光素酶能立即被Stop&Glo试剂湮灭，残留有萤火虫荧光素酶活性低于0.001%。
15.荧光素酶测试试剂II是否是荧光素酶测试系统的同一试剂？
荧光素酶测试试剂II不是荧光素酶测试系统的同一试剂。
荧光素酶测试试剂II经特定配方与Stop&Glo试剂混合，以最有效地测试海肾荧光素酶活性。
普通荧光素酶测试试剂不能替代用于DLR系统。
?
16.在测试阶段海肾荧光素酶活性的逐步丧失会使结果有何波动？
当用自动加样管加Stop&Glo试剂时，不会带来波动。
用手动加Stop&Glo试剂时，据观察，海肾荧光素酶测试结果的波动可被忽约。