家兔基础实验操作及注意事项总结教学文案
家兔的实验报告
一、实验目的1. 熟悉家兔的解剖结构，掌握家兔的解剖方法。
2. 学习家兔的生理指标检测方法，如呼吸、心跳、体温等。
3. 了解家兔在实验中的生理变化和应激反应。
二、实验材料1. 家兔一只（体重约2kg）。
2. 实验器械：解剖剪、解剖刀、镊子、解剖盘、解剖针、纱布、生理盐水、温度计、血压计等。
3. 实验试剂：0.9%生理盐水、1%盐酸肾上腺素、5%葡萄糖溶液等。
三、实验步骤1. 家兔处死：采用过量麻醉剂（如戊巴比妥钠）注射，使家兔迅速失去意识，然后进行心脏穿刺，注入空气使心脏停止跳动，随后迅速将家兔放入解剖盘中。
2. 解剖部位：家兔的头部、颈部、胸部、腹部、背部、四肢等。
3. 解剖步骤：（1）从颈部向后剪开皮肤，暴露出颈部肌肉和血管。
（2）剪开肌肉，暴露出气管和食管，剪断气管，取出气管和食管。
（3）剪开颈部肌肉，暴露出颈动脉和颈静脉，剪断颈动脉和颈静脉，取出心脏。
（4）剪开胸腔，暴露出心脏、肺脏和肝脏，剪断心脏，取出心脏和肺脏。
（5）剪开腹腔，暴露出胃、肠、脾脏、肾脏等器官，剪断胃和肠，取出胃和肠。
（6）剪开背部肌肉，暴露出脊柱和神经，剪断脊柱，取出脊柱和神经。
（7）剪开四肢肌肉，暴露出四肢骨骼和关节，剪断骨骼和关节，取出四肢骨骼和关节。
4. 生理指标检测：（1）呼吸：观察家兔的胸部起伏，计算呼吸频率。
（2）心跳：触摸家兔的颈动脉或心脏，计算心跳频率。
（3）体温：使用温度计测量家兔的体温。
（4）血压：使用血压计测量家兔的血压。
5. 观察家兔在实验过程中的生理变化和应激反应，如呼吸、心跳、体温、血压等指标的变化。
四、实验结果与分析1. 家兔的解剖结构基本完整，各器官功能正常。
2. 实验过程中，家兔的呼吸频率、心跳频率、体温和血压等生理指标均在正常范围内。
3. 在实验过程中，家兔表现出一定的应激反应，如呼吸加快、心跳加速等。
五、实验结论1. 家兔的解剖结构完整，各器官功能正常。
2. 家兔的生理指标检测方法简便，可适用于实验研究。
家兔基础实验操作及注意事项总结
家兔基础实验操作及注意事项总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1、家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2、家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3、耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
l 注：本实验所用麻醉药乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1、进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2、可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3、静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡；4、实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。
家兔基本手术操作实验报告
竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔基本手术操作实验报告篇一：家兔解剖实验一、实验目的1.通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点2.掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征3.熟练解剖动物的方法二、实验原理将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。
三、实验器材活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等四、实验步骤1、外形观察，处死家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。
颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。
前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。
尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。
肛门两侧各有一个无毛区，提起此处皮肤，开口，打开皮肤。
取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。
挣扎一会后死亡。
2、打开皮肤润湿腹部中间的毛，小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口，向上剪至颈部，用手术刀使皮肤和肌肉分离，将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。
3、开腹腔：原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察，肾脏冠切从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处，暴露腹腔。
先观察各器官的自然位置。
可观察到：胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不规则的腺体。
胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。
小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。
十二指肠呈“u”形，空肠和回肠界限不易区分。
大肠：分为盲肠、结肠和直肠三段。
盲肠为大肠的起始段，肠管最粗大，相当于一个发酵罐，其末端有蚓突，结肠表面有横褶，直肠细长。
膈肌：呈粉色，上面血多有放射状红色细丝肾脏：移开胃后，可在其下观察到两肾，分布于两侧，其前端内缘各有一小的淡黄色扁圆形为肾上腺，由肾门伸出的一条白色细管为输尿管，与肾血管、神经管相伴行，向后通入膀胱的背侧。
家兔动物实验报告
一、实验目的1. 了解家兔的生物学特性，熟悉家兔的饲养管理和实验操作技术。
2. 掌握家兔的解剖学结构，了解其生理功能。
3. 培养实验操作技能，提高动物实验研究的实践能力。
二、实验材料1. 家兔一只（体重2-3kg，健康无病）。
2. 实验器材：解剖盘、手术刀、剪刀、镊子、解剖剪、注射器、针头、酒精棉球、生理盐水、记号笔等。
3. 实验试剂：1%戊巴比妥钠、生理盐水、碘酒、酒精、生理盐水等。
三、实验方法1. 家兔准备：将家兔放入安静、清洁、通风的实验室内，适应环境1小时。
2. 实验动物麻醉：取1%戊巴比妥钠，按每千克体重40mg计算，缓慢静脉注射，直至家兔麻醉。
3. 解剖操作：（1）解剖位置：家兔仰卧于解剖盘上，四肢展开，头部朝向实验者。
（2）皮肤切口：用手术刀在腹部中线部位做一长约5cm的切口，暴露腹壁肌肉。
（3）内脏器官观察：逐层分离肌肉，暴露腹腔内脏器官，观察其形态、位置和相互关系。
（4）解剖消化系统：观察胃、小肠、大肠、肝脏、胆囊等器官的结构和功能。
（5）解剖呼吸系统：观察气管、支气管、肺等器官的结构和功能。
（6）解剖循环系统：观察心脏、血管、淋巴等器官的结构和功能。
（7）解剖泌尿系统：观察肾脏、输尿管、膀胱等器官的结构和功能。
（8）解剖生殖系统：观察雄性生殖器官（睾丸、附睾、输精管、前列腺等）和雌性生殖器官（卵巢、输卵管、子宫、阴道等）的结构和功能。
4. 实验结果记录：观察过程中，用记号笔在器官表面标记，并详细记录器官的形态、位置、结构和功能。
5. 实验结束：实验结束后，将家兔内脏器官按顺序放回原位，缝合腹部切口，恢复家兔原状。
四、实验结果与分析1. 家兔解剖结构：家兔内脏器官的形态、位置和相互关系与人类相似，但个体差异较大。
2. 消化系统：家兔的胃分为胃底、胃体和幽门，小肠分为十二指肠、空肠和回肠，大肠分为盲肠、结肠和直肠。
肝脏、胆囊、胰腺等器官也较为发达。
3. 呼吸系统：家兔的呼吸系统由鼻腔、喉、气管、支气管和肺组成。
家兔解剖实习实验报告
家兔解剖实习实验报告一、实验目的通过本次实验，旨在观察家兔的内部器官结构和生理特点，进一步了解哺乳动物的生理机制。
通过实践操作，掌握家兔解剖的基本技能，培养观察、分析和解决问题的能力。
二、实验原理家兔解剖实验过程中，首先通过静脉注射空气致死。
空气栓塞导致肺栓塞，从而使家兔发生严重的缺氧和二氧化碳储留，最终导致死亡。
实验过程中需要用到解剖盘、注射器、镊子、手术刀、手术剪等器材。
三、实验步骤及实验过程1. 兔子外形观察及处死家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。
颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。
前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。
尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。
肛门两侧各有一个无毛区，提起此处皮肤，开口，打开皮肤。
取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。
挣扎一会后死亡。
2. 解剖操作用解剖剪、镊子等沿家兔的身体正中线开始解剖，暴露出内脏器官。
首先观察心脏、肺部、肝脏、胃、肠道等器官的位置和形态特征。
然后逐个器官进行详细观察，记录其形态、大小、颜色等特征。
3. 系统观察依次观察家兔的各个系统（如消化系统、生殖系统、呼吸系统、循环系统等）。
观察各个系统的器官组成，了解各系统之间的相互作用和联系。
四、实验总结通过本次实验，对家兔的内部器官结构和生理特点有了更深入的了解。
掌握了家兔解剖的基本方法和步骤，熟悉了哺乳动物各个系统的组成和功能。
在实践操作中，锻炼了自己的动手实践能力和观察、分析问题的能力。
实验中，我们发现家兔的肝脏较大，呈暗红色；心脏位于胸腔中部，呈红色；肺部呈粉红色，表面有血管分布；胃呈淡黄色，具有明显的皱褶；肠道较长，分为小肠和大肠。
此外，我们还观察到家兔的生殖系统较为复杂，包括睾丸、卵巢、子宫等器官。
通过本次实验，我们不仅了解了家兔的解剖结构，还培养了实验操作的基本技能。
实验过程中，我们学会了如何正确使用解剖器材，掌握了家兔解剖的基本步骤。
家兔的解剖实习实验报告
家兔解剖实习实验报告一、实验目的通过本次实验，旨在观察家兔的内部器官结构和生理特点，进一步了解哺乳动物的生理结构和功能，提高我们对动物解剖学的认识和动手操作能力。
二、实验原理家兔处死采用静脉注射空气致死的方法。
向静脉注射空气后，空气栓子随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使家兔不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致死亡。
三、实验器材活家兔、解剖盘、注射器、镊子、手术刀、手术剪。
四、实验步骤及实验过程1. 家兔外形观察及处死家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。
颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。
前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。
尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。
肛门两侧各有一个无毛区，提起此处皮肤，开口，打开皮肤。
取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。
挣扎一会后死亡。
2. 解剖过程用解剖剪、镊子等沿家兔的身体正中线开始解剖，依次观察家兔的各个系统，如消化系统、生殖系统、呼吸系统、循环系统等。
3. 观察与记录在解剖过程中，详细观察各个器官的结构和位置，并用笔记、拍照等方式进行记录。
五、实验心得通过本次实验，我深刻地了解了家兔的内部器官结构和生理特点，对哺乳动物的解剖学有了更直观的认识。
在实验过程中，我掌握了解剖方法和技术，提高了动手操作能力。
同时，我也意识到动物实验的重要性，激发了我在今后学习中更加努力探索动物生理奥秘的兴趣。
六、实验总结本次家兔解剖实习实验使我受益匪浅，不仅提高了我的实践能力，也加深了我对动物解剖学理论知识的掌握。
在今后的学习和研究中，我将继续努力，为揭示动物生命的奥秘贡献自己的力量。
初中生物家兔教案
初中生物家兔教案
一、目标：
1. 了解家兔的基本特征和生活习性；
2. 掌握家兔的饲养方法和注意事项；
3. 培养学生对动物的保护意识。
二、教学内容：
1. 家兔的起源和分类；
2. 家兔的外部特征和生活习性；
3. 家兔的饲养方法和注意事项。
三、教学过程：
1. 介绍家兔的起源和分类，让学生了解家兔的演化历史和不同种类的家兔；
2. 通过图片展示和实物观察，让学生熟悉家兔的外部特征，如长耳朵、圆尾巴等；
3. 分组讨论，让学生了解家兔的生活习性和饲养方法，包括适宜的饲养环境、合理的饲料搭配等；
4. 观看相关视频或幻灯片，加深学生对家兔的了解；
5. 通过游戏或小实验等方式，培养学生对家兔的保护意识，引导他们爱护动物。
四、课堂作业：
1. 带一张家兔的照片或插图，写一篇短文介绍家兔的特征和生活习性；
2. 组织小组活动，每组设计一份家兔的饲养计划，并展示给全班同学；
3. 制作家兔宣传海报，传达保护动物的重要性。
五、评价方式：
1. 参与课堂讨论和小组活动；
2. 完成课堂作业，并发表个人见解；
3. 掌握家兔的基本知识和培养保护动物的意识。
六、延伸活动：
1. 参观动物园或农场，亲身感受家兔的生活环境；
2. 参与动物保护组织的义工活动，为家兔的保护尽一份力量。
七、反思：
通过本节课的学习，学生对家兔有了更深入的了解，也培养了保护动物的意识，希望能通过日常生活中的实践行动，保护动物的生存环境，促进人与动物的和谐共处。
机能学实验实验报告家兔
一、实验目的1. 了解家兔的基本生理结构和功能；2. 观察和记录家兔在不同生理状态下各器官系统的变化；3. 掌握实验操作技能，提高实验分析能力。
二、实验原理家兔是常用的实验动物，其生理结构和功能与人类相似。
通过对家兔进行实验，可以了解动物机体各器官系统的基本生理功能，为医学、生物学等领域的科学研究提供基础。
三、实验材料1. 家兔一只；2. 实验器材：解剖显微镜、手术刀、镊子、剪刀、针筒、注射器、生理盐水、棉球、酒精棉球等；3. 实验试剂：10%甲醛溶液、0.9%生理盐水、0.1%肾上腺素等。
四、实验方法与步骤1. 家兔麻醉：用20%氨基甲酸乙酯进行耳缘静脉注射，剂量为1g/kg体重，使家兔进入麻醉状态。
2. 解剖观察：（1）观察家兔的体表结构，包括头部、颈部、躯干、四肢等；（2）解剖观察家兔的消化系统，包括口腔、咽、食管、胃、小肠、大肠、肛门等；（3）解剖观察家兔的呼吸系统，包括鼻腔、咽、气管、支气管、肺等；（4）解剖观察家兔的循环系统，包括心脏、血管、淋巴系统等；（5）解剖观察家兔的泌尿系统，包括肾脏、输尿管、膀胱、尿道等；（6）解剖观察家兔的生殖系统，包括生殖腺、生殖管道等。
3. 实验操作：（1）心脏采血：将家兔心脏暴露，用针筒抽取心腔内血液，观察血液颜色、粘稠度等；（2）血管观察：观察家兔心脏周围血管的分布、形态、颜色等；（3）呼吸观察：观察家兔呼吸运动、呼吸频率、呼吸幅度等；（4）消化观察：观察家兔消化道的蠕动、消化液分泌等；（5）泌尿观察：观察家兔肾脏的形态、颜色、大小等；（6）生殖观察：观察家兔生殖腺的形态、颜色、大小等。
4. 实验数据记录与分析：（1）记录家兔各器官系统的形态、颜色、大小等；（2）分析家兔各器官系统的生理功能；（3）比较家兔各器官系统的生理功能与人类相似之处。
五、实验结果与分析1. 家兔的体表结构、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统均与人类相似，具有一定的生物学意义。
家兔基础实验操作及注意事项总结教学总结
家兔基础实验操作及注意事项总结基本技能操作经验总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1.家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2.家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3.耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
注：本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3.静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
兔实验技术操作范文
兔实验技术操作范文兔实验作为一种常见的实验方法，广泛应用于医学、生物学、药物研发等领域。
为了确保实验的准确性和安全性，必须严格遵守相关的技术操作规范。
以下是兔实验技术操作的一般步骤和注意事项。
1.实验动物的选择：兔子是常用的实验动物之一，具有体型适中、生理特性与人类较为相似的优点。
在选择实验动物时，应优先考虑便于获取、成本较低、易于饲养和管理的品种。
常用的实验兔品种有新西兰大白兔、杂交兔等。
2.实验动物的饲养和管理：兔子的饲养和管理是保证实验结果正确和可靠的重要环节。
兔舍应干净、通风良好，并保持适宜的温度、湿度和光照条件。
兔子的饲养应提供足够的饲料和清洁的饮水，定期清理兔舍，并定期进行兔体重的测量和健康状况的观察。
3.麻醉和麻醉复苏：在进行手术或取材前，必须对兔子进行麻醉。
常用的麻醉方法有静脉注射麻醉药物、鼻麻醉、局部麻醉等。
麻醉复苏阶段需要密切观察兔子的生命体征，保持其呼吸道通畅，及时清除呼吸道分泌物，并给予必要的支持治疗。
4.手术操作：手术操作是兔实验中的重要环节，常见的手术包括剖腹手术、心脏手术、神经手术等。
在进行手术前，必须进行消毒处理，将兔子固定在手术台上，并确保手术器械的无菌和操作区域的无菌。
在手术过程中，需要掌握正确的操作技巧，避免损伤兔子的重要器官和组织。
5.取材和标本处理：在兔实验中，常常需要进行取材和标本处理，以获得实验所需的样本。
常见的取材方式有血液、组织、器官等。
在取材前，应确保实验动物已处于安乐死状态，并在取材过程中注意保持标本的完整性和无污染。
取材后，需要按照实验要求进行相应的标本处理，如冷冻保存、固定、染色等。
6.数据采集和分析：实验结果的准确性和可靠性取决于数据的采集和分析。
在兔实验中，应注意记录实验过程中的各项数据，如动物行为、体温、体重变化等。
采集到的数据应进行统计分析，并根据实验目的进行数据解读和结果报告。
7.伦理和法规要求：在进行兔实验时，必须遵守相关的伦理和法规要求。
家兔的解剖实习实验报告
一、实验目的1. 通过对家兔的解剖，了解哺乳动物内脏系统的结构和功能。
2. 掌握哺乳动物解剖的基本技术，提高实验操作能力。
3. 深入理解哺乳动物各内脏系统的主要特征，为后续生物学课程的学习奠定基础。
二、实验原理家兔作为实验动物，其解剖结构具有代表性。
通过解剖实验，我们可以观察到家兔的消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统等内脏器官的形态和位置，了解其生理功能。
三、实验材料与工具1. 实验材料：一只已经死亡的家兔2. 实验工具：解剖盘、解剖剪、镊子、手术刀、酒精棉球、注射器、解剖针、解剖针盘、解剖镜、解剖图谱等四、实验步骤1. 家兔解剖前准备（1）将家兔放置在解剖盘上，调整姿势，使其头朝向实验者。
（2）用酒精棉球清洁家兔耳部，确保注射针能够顺利进入静脉。
2. 家兔解剖过程（1）观察家兔的外形特征，记录其身体各部位的比例、皮肤颜色、毛发分布等。
（2）从家兔耳后静脉注射空气，使其窒息死亡。
（3）观察家兔的头部解剖结构，包括颅骨、脑、眼、耳等。
（4）观察家兔的颈部解剖结构，包括颈椎、甲状腺、气管、食管、血管等。
（5）观察家兔的胸部解剖结构，包括胸骨、肋骨、心脏、肺、胸腺等。
（6）观察家兔的腹部解剖结构，包括胃、小肠、大肠、肝脏、胰腺、脾脏、肾脏等。
（7）观察家兔的盆腔解剖结构，包括生殖器官、膀胱、直肠等。
3. 各系统器官的观察与描述（1）消化系统：观察胃、小肠、大肠、肝脏、胰腺、脾脏等器官的形态、位置和功能。
（2）呼吸系统：观察气管、支气管、肺等器官的形态、位置和功能。
（3）循环系统：观察心脏、血管、淋巴系统等器官的形态、位置和功能。
（4）泌尿系统：观察肾脏、输尿管、膀胱等器官的形态、位置和功能。
（5）生殖系统：观察雄性家兔的睾丸、附睾、输精管、阴茎等器官，雌性家兔的卵巢、输卵管、子宫、阴道等器官的形态、位置和功能。
五、实验结果与分析通过本次实验，我们成功解剖了家兔的各个内脏器官，并对其形态、位置和功能有了深入的了解。
家兔基本操作实验报告
一、实验目的1. 熟悉和掌握家兔的基本操作技术，包括捕捉、固定、给药等。
2. 了解家兔生理指标的基本测量方法，如体温、呼吸频率、心率等。
3. 掌握家兔实验动物的护理和观察方法。
二、实验原理家兔作为实验动物，其生理指标和基本操作技术在医学、生物学等研究领域具有重要意义。
通过本次实验，使学生掌握家兔的基本操作技术，为后续实验奠定基础。
三、实验材料1. 实验动物：家兔（体重2-3kg）2. 实验器材：兔手术台、实验动物常用手术器械一套、气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、血压换能器、刺激电极等。
3. 实验试剂：3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品等。
四、实验方法1. 家兔捕捉与固定（1）用左手掌抓住家兔的颈部皮肤，使其呈仰卧位。
（2）用右手握住家兔的双脚，将其固定在兔手术台上。
（3）用棉线将家兔的四肢分别绑在手术台的四角。
2. 家兔给药（1）根据实验要求，选择合适的给药途径，如静脉注射、灌胃等。
（2）用注射器吸取适量试剂，缓慢注入家兔体内。
（3）观察家兔的反应，如呼吸、心率等。
3. 家兔生理指标测量（1）体温测量：用耳温枪或直肠温度计测量家兔体温。
（2）呼吸频率测量：观察家兔的胸部起伏，记录1分钟内呼吸次数。
（3）心率测量：用听诊器听诊家兔的心跳声，记录1分钟内心跳次数。
4. 家兔实验动物的护理和观察（1）保持实验环境安静、舒适。
（2）定时给家兔喂食、饮水。
（3）观察家兔的精神状态、呼吸、心率等生理指标。
五、实验结果与分析1. 家兔捕捉与固定：实验过程中，家兔能够迅速适应手术台，四肢被绑紧后无挣扎现象。
2. 家兔给药：根据实验要求，成功给予家兔相应试剂，观察家兔反应，如呼吸、心率等指标无明显异常。
兔子实验报告体会
在过去的几周里，我有幸参与了一项关于兔子生理学特性的实验。
通过这次实验，我对兔子的生理结构和功能有了更深入的了解，也体会到了科学实验的严谨性和团队合作的重要性。
以下是我对这次实验的体会。
一、实验目的与过程本次实验的主要目的是观察兔子的生理结构，了解其呼吸、消化、循环等系统的功能。
实验过程中，我们小组按照以下步骤进行：1. 准备实验器材：实验器材包括解剖台、解剖剪、镊子、解剖刀、解剖针、生理盐水、显微镜等。
2. 实验动物：选取一只健康的成年家兔作为实验动物。
3. 实验步骤：（1）麻醉动物：使用麻醉剂对兔子进行麻醉，确保实验过程中动物不会受到痛苦。
（2）解剖兔子：按照解剖学部位，依次解剖兔子的呼吸系统、消化系统、循环系统等。
（3）观察与记录：在解剖过程中，观察兔子的各个器官结构，记录其形态、大小、位置等。
（4）显微镜观察：对部分器官进行切片，利用显微镜观察其微观结构。
（5）数据整理与分析：将实验数据整理成表格，分析兔子各个器官的功能特点。
二、实验体会1. 严谨的科学态度在实验过程中，我深刻体会到了严谨的科学态度的重要性。
每一个步骤都需要严格按照实验规程进行，否则可能会导致实验结果的偏差。
例如，在解剖兔子时，如果解剖刀不锋利，就会导致兔子器官的损伤，从而影响实验结果的准确性。
2. 团队合作本次实验需要多人协作完成，每个人负责不同的环节。
在实验过程中，我们小组成员相互配合，共同完成了实验任务。
这让我认识到，团队合作在科学实验中的重要性。
只有大家齐心协力，才能确保实验的顺利进行。
3. 深入了解兔子生理结构通过本次实验，我对兔子的生理结构有了更深入的了解。
例如，兔子的呼吸系统由鼻腔、气管、支气管、肺等组成，消化系统由口腔、食道、胃、小肠、大肠等组成，循环系统由心脏、血管、血液等组成。
这些器官的结构和功能对于兔子的生存至关重要。
4. 观察与记录的重要性在实验过程中，观察与记录是必不可少的环节。
只有详细地记录实验数据，才能为后续的数据分析和论文撰写提供依据。
兔实验技术操作范文
兔实验技术操作范文兔实验是一种常见的动物实验方法，用于研究和测试各种药物、疾病和生理功能。
兔实验通常涉及到一系列技术操作，下面将详细介绍与兔实验相关的常见技术操作。
1.兔的选择和准备在进行兔实验之前，需要从健康、年龄相近的群体中选择合适的兔子。
通常选择体重在2-5千克之间的成年兔子。
选择前要确保兔子没有明显的疾病或病史。
2.麻醉和镇痛为了进行各种操作，需要先给兔子进行麻醉。
常见的麻醉方法包括静脉注射麻醉剂或通过鼻腔给予麻醉气体。
麻醉后需要给兔子提供适当的镇痛措施，以减轻术后疼痛和不适。
3.手术操作根据实验的需求，可能需要进行不同类型的手术操作。
常见的手术操作包括心脏手术、神经外科手术和腹腔手术等。
手术过程中需要注意操作的精细性和无菌操作，以防止感染和并发症。
4.体液采集在实验的不同阶段，可能需要采集兔子的血液、尿液或其他体液样品。
血液采集可以通过耳静脉抽血或心脏穿刺等方法进行。
尿液采集可以通过膀胱刺穿或膀胱导管等方法进行。
在进行体液采集前，需要采取适当的准备措施和无菌操作。
5.药物给药在兔实验中，常常需要通过不同途径给予药物。
常用的给药途径包括静脉注射、皮下注射、肌肉注射和口服给药等。
给药前需要准确计量药物剂量，并在给药后观察兔子的反应和药效。
6.观察和数据记录在实验进行过程中，需要及时记录和观察兔子的生理指标和行为变化。
比如体温、心率、呼吸等生理指标的监测，以及食欲、活动能力和行为反应的观察。
这些数据的记录对于实验结果的分析和解读非常重要。
7.实验结束和人道处置实验结束后，需要进行人道处置以减少兔子的痛苦和疾病传播。
常见的处理方式包括使用麻醉药物进行安乐死，避免引起痛苦；或将兔子交给专业的动物福利机构，进行后续的照顾和饲养。
总结起来，兔实验涉及到兔的选择和准备、麻醉和镇痛、手术操作、体液采集、药物给药、观察和数据记录以及实验结束和人道处置等一系列技术操作。
在进行兔实验时，应始终注重动物福利和伦理原则，确保操作的准确性和可靠性，以取得有意义的实验结果。
家兔基础试验操作及注意事项总结教学总结
家兔基础实验操作及注意事项总结基本技能操作经验总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1.家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2.家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3.耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作:穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色仅供学习与2交流，如有侵权请联系网站删除谢谢血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
注：本实验所用麻醉药一一乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1.进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3.静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
实验十二 家兔手术技术训练实验报告
实验十二家兔手术技术训练一．实验目的1．学习和掌握家兔的常用手术技术和麻醉技术；2．掌握家兔的气管插管术3．实践家兔的腹部手术技术，并找到输尿管4．学习家兔的开颅术。
二．实验原理1．麻醉在慢性实验或急性在体实验中，施行手术之前必须将动物麻醉。
麻醉可使动物在手术或实验过程中减少疼痛，保持安静，保证实验的顺利进行。
麻醉剂的种类繁多，作用原理不尽相同，在应用时需根据动物的种类以及实验或手术的性质慎重加以选择。
麻醉必须适度，过深或过浅均会给手术或实验带来不良影响。
麻醉的深浅可从呼吸，某些反射的消失，肌肉的紧张程度和瞳孔的大小加以判断。
常用刺激角膜以观察角膜反射。
适宜的麻醉状态是呼吸深慢而平稳，角膜反射与运动反应消失，肌肉松弛。
本实验中家兔的麻醉采用耳缘静脉注射法。
兔耳的外缘血管为静脉，中央的血管为动脉。
注射前需在注射部位剪毛，用左手食指和中指夹住耳缘静脉近心端，使其充血（亦可用动脉夹夹住），并用左手拇指和无名指固定兔耳。
用右手持注射器将针头顺血管方向刺入静脉，刺入后再将左手食指和中指移至针头处，协同拇指将针头固定于静脉内，便可缓缓注射。
如注射阻力过大或局部肿胀，说明针头未刺入血管，应拔出重新刺入。
首次注射应从静脉的远心端开始，以便进行反复注射。
2．动物的固定急性在体实验的手术过程中，必须将麻醉动物固定，以限制动物的活动，保证实验或手术的顺利进行。
实验中最常使用的动物固定方法有两种：背位固定法和腹位固定法，其中关键性的固定部位是头部和四肢。
本次家兔的实验使用背部固定法：（1）头部的固定因为无动物头夹，取线绳代替，即将线绳拉紧动物的门齿，固定于手术台前端的直棒上，以达到固定头部的目的。
（2）四肢的固定在头部固定之后，固定四肢。
四肢用绑带固定，先将绑带打结，再进动物前肢的腕关节和后肢踝关节，将绑带收紧，后肢的绑带可直接拉紧分别扎于手术台两侧的木钩上。
除特殊要求外，前肢的固定方法应为：将两前肢平放在胸部的两侧，再把捆绑前肢的两条绑带从动物背部交叉穿过，并压在对侧前肢的前臂上，最后拉紧绑带，固定于手术台两侧的木钩上。
兔实验技术操作精编
兔实验技术操作精编 Lele was written in 2021一、兔的抓取及保定1.准备的物品、器械：固定器2.简要：（1）徒手抓取（2）保定3.解说操作：徒手抓取用一只手将颈部的被毛和皮肤一起抓住提起，另一只手托住臀部。
（如图1）。
也可一手抓住兔肩胛部的皮肤，另一手托住其臀部并将兔的头部放置于臂弯中，再用前臂支撑兔体。
保定将兔放在操作台上，用一只手抓住颈背部皮肤（包括兔耳），另一只手压住腰部（或后肢）加以保定，可用于肌肉注射、灌胃等操作。
将兔放在操作台上，用左手抓住颈背部皮肤，使兔下半身固定在操作者左臂下方，用右手环抱兔前肢，适用于孕兔灌胃等操作。
如图2。
盒式保定法：将兔放入兔保定盒内，盖上盖，使兔头露在盒外，便可进行采血或注射给药等操作。
保定板保定：将兔仰卧或俯卧在保定板上，用布带保定，四肢和头部也用布带保定，即可进行心电图检查、注射给药、采血等操作。
4.注意事项盖兔盒时必须要轻，不能用力压，否则兔脊椎骨很容易骨折，造成下肢瘫痪。
将家兔放回兔笼时，先将臀部及后肢放入笼内。
抓取时禁止抓提兔耳。
抓取要稳、准、柔、快，不可过分用力抓捏腰腹部。
二、兔的采血方法1.准备的物品、器械：注射器、采血管、止血带、酒精棉球、干棉球、保定架等2.简要：耳静脉采血、耳动脉采血、后肢静脉采血、心脏采血3.解说操作耳缘静脉或耳动脉采血将兔保定于保定器内，用酒精棉球擦拭消毒。
助手固定兔耳，并压迫耳缘静脉根部，使血管充盈；操作者手持注射器，针头沿耳缘静脉平行刺入血管，慢慢抽取血液。
助手固定兔耳，操作者手持注射器，在耳中央动脉末端，使针头沿血管平行方向刺入动脉，血液即可流入注射器内。
采血完毕后立即用消毒干棉球压迫止血。
后肢静脉采血兔固定于兔保定架上，剪去胫部被毛，股部扎上止血带，使胫外侧皮下静脉充盈。
固定静脉，用左手两指固定好静脉，右手取带有针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。
兔实验技术操作【范本模板】
一、兔的抓取及保定1。
准备的物品、器械：固定器2。
简要：（1）徒手抓取（2）保定3.解说操作：3。
1徒手抓取用一只手将颈部的被毛和皮肤一起抓住提起，另一只手托住臀部。
（如图1）。
也可一手抓住兔肩胛部的皮肤，另一手托住其臀部并将兔的头部放置于臂弯中,再用前臂支撑兔体。
3。
2 保定3。
2。
1将兔放在操作台上，用一只手抓住颈背部皮肤(包括兔耳）,另一只手压住腰部(或后肢）加以保定，可用于肌肉注射、灌胃等操作。
3.2。
2 将兔放在操作台上，用左手抓住颈背部皮肤，使兔下半身固定在操作者左臂下方,用右手环抱兔前肢，适用于孕兔灌胃等操作。
如图2.3。
2.3盒式保定法:将兔放入兔保定盒内,盖上盖,使兔头露在盒外,便可进行采血或注射给药等操作。
3.2.4保定板保定：将兔仰卧或俯卧在保定板上，用布带保定，四肢和头部也用布带保定，即可进行心电图检查、注射给药、采血等操作。
4.注意事项4.1 盖兔盒时必须要轻，不能用力压,否则兔脊椎骨很容易骨折,造成下肢瘫痪。
4.2 将家兔放回兔笼时，先将臀部及后肢放入笼内。
4。
3 抓取时禁止抓提兔耳。
4。
4 抓取要稳、准、柔、快，不可过分用力抓捏腰腹部。
二、兔的采血方法1。
准备的物品、器械：注射器、采血管、止血带、酒精棉球、干棉球、保定架等2.简要：耳静脉采血、耳动脉采血、后肢静脉采血、心脏采血3。
解说操作3.1耳缘静脉或耳动脉采血3.1.1 将兔保定于保定器内，用酒精棉球擦拭消毒.3。
1。
2助手固定兔耳，并压迫耳缘静脉根部，使血管充盈；操作者手持注射器，针头沿耳缘静脉平行刺入血管,慢慢抽取血液。
3。
1.3 助手固定兔耳，操作者手持注射器,在耳中央动脉末端,使针头沿血管平行方向刺入动脉，血液即可流入注射器内.3.1。
4 采血完毕后立即用消毒干棉球压迫止血。
3.2后肢静脉采血3。
2.1 兔固定于兔保定架上,剪去胫部被毛,股部扎上止血带，使胫外侧皮下静脉充盈。
3.2.2 固定静脉,用左手两指固定好静脉，右手取带有针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器,表示针头已刺入血管，即可取血。
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家兔基础实验操作及注意事项总结基本技能操作经验总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1.家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2.家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3.耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
注：本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3.静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡；4.实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。
用粗麻绳打类蝴蝶结固定家兔四肢，用棉麻线套住家兔上切牙固定在兔台头端，使家兔四肢和头部伸展并固定。
【注意事项】1.打结最好打利于捆缚的结，避免家兔挣脱。
2.尽量使颈部抻直，避免扭曲。
5.清理兔毛【实验方法】使用弯头兔毛剪剪掉实验部位兔毛。
【注意事项】1.左手捏住要剪的兔毛，方便剪掉后及时清理。
注意不要将兔毛掕起，这样容易剪到皮肤和皮下神经，引起兔子的强烈挣扎。
2.尽量清理干净，并且避免兔毛乱飞，可在废物桶中加水防止兔毛乱飘。
6.组织切开【实验方法】1．组织切开的一般原则(1)根据实验目的要求确定手术切口的部位和大小。
如肾切除取左背部斜切口，肠切除取腹正中切口。
(2)根据不同部位的切口采用不同的执刀方法，常用的执刀方法有三种，如图1。
【注意事项】(1)切开前，应先将切口部位的皮肤(或其他组织)拉紧，使其平坦紧张而固定。
(2)刀刃与切开的组织垂直，以一次切开为佳。
(3)组织要逐层切开，并以按皮肤纹理或各组织的纤维方向切开为佳。
图1执刀方法和组织切开方法(4)组织的切开处应选择无重要血管及神经横贯的地方，以免将其损伤。
(5)选择切口时，应注意选择易于敷料或导管包扎和固定的部位。
避免术后动物活动时被碰撞、磨擦而脱落。
7.组织分离【实验方法】分离目的在于充分显露深层的组织或血管，便于手术操作。
1．组织分离的一般原则(1)根据不同部位手术的需要采用不同的分离方法。
常用的分离方法有两种：①用刀或剪作锐性分离，用剪割的方式将组织分离。
该方法常用于致密组织，如皮肤、韧带、筋膜等的分离。
②用止血钳、手指或刀柄等将组织推开或牵拉开的钝性分离。
该法多用于皮下组织、肌肉筋膜间隙等疏松组织的分离。
(2)沿正常组织间隙分离。
这样易于分离，且出血少，视野干净、清楚。
【注意事项】(1)肌肉的分离应顺肌纤维方向作钝性分离。
若需要横行切断分离，应在切断处上下端先夹两把血管钳，切断后结扎两断端以防止肌肉中血管出血。
(2)神经、血管的分离应顺其平行方向分离。
要求动作轻，柔，细心操作，不可避暴，切忌横向过分拉扯，以防断裂。
8.气管内插管【实验操作】气管插管的目的主要是为了辅助呼吸、测定气道压力、通气量以及描记呼吸曲线等。
⑴气管的暴露和分离切开皮肤后，对肌肉、气管、血管和神经的分离应用止血钳进行钝性分离。
钝性分离皮下组织，暴露颈部肌肉，分开颈部正中肌群即可看到气管。
在甲状腺下1～1.5cm处，用止血钳将气管后的软组织稍加分离，在气管下穿二条较粗的结扎线，准备结扎固定气管插管之用。
⑵气管插管在甲状腺以下约1～2 cm处，用手术剪将气管软骨环剪一倒“T”型切口，剪开气管口径约一半以上，用棉签向肺方向擦净气管内分泌物，然后再向肺方向插入气管插管。
用已穿好的粗线扎紧后，再在插管的侧管上打结，以防插管脱出。
【注意事项】1.切忌粗暴操作，小心勿伤及甲状腺及气管两侧后方的静脉；2. 不要在软骨环之间的气管组织切开，因此处血管较多，如仍有出血，可用温湿纱布压拨迫片刻，同时将兔台后部抬高，使兔头位置低下，以防止血液流入气管造成窒息，出血停止后再做插管；3. 插管前注意检查气管内有无内分泌物，有的话先清理气管后插管；插管后，若气管内分泌物或血液较多，可用一细塑料管从插管的侧管处将液体吸出。
4. 用已穿好的粗线扎紧后，再在插管的侧管上打结，以防插管脱出；5. 气管插管的过程中应随时注意观察动物的呼吸变化。
最好隔一段时间放开被夹闭的Y型管软管，避免人为性呼衰。
9.颈总动脉的分离及插管【实验操作】沿胸锁乳突肌前缘分离胸骨舌骨肌与胸骨甲状肌之间的结缔组织，在肌缝下找到呈粉红色较粗血管，用手指触之有搏动感，即为颈总动脉。
分离颈总动脉时应选在距甲状腺以下较远地方开始，防止将甲状腺前动脉切断，用玻璃分针轻轻分离该动脉与神经之间结缔组织，切勿损伤血管和神经。
在分离好的颈总动脉下面穿过两根结扎线，先结扎远心端，再用动脉夹夹闭血管近心端。
于远心端结扎线前用眼科剪呈45°角做V型切口，剪开血管管径的1/3～1/2。
将准备就绪的动脉导管插入血管2cm～3cm，用备用线将导管与血管牢固结扎并与远心端结扎线连接扎紧，以防导管滑脱出血管。
取下动脉夹，可见导管中有动脉回血，并随心跳而搏动。
用少许肝素将回血推回血管内，实时观察血压。
【注意事项】1. 分离颈总动脉时应选在距甲状腺以下较远地方开始，防止将甲状腺前动脉切断，并且切勿损伤血管和神经。
伴行血管的一束神经包括：迷走神经最粗且明亮；交感神经次之，光泽较暗；最细的是减压神经；2. 为了便于动脉插管，颈总动脉应尽量分离得长一些。
一般家兔4cm～5cm，豚鼠和大鼠2c m～3cm；3. 结缔组织尽量分离干净，否则插管时容易插到膜内；4. 两根结扎线可通过一根线对折穿过动脉下后剪断获得。
远心端结扎线和备用结扎线一定要结扎紧，避免出血；5. 动脉夹操作时一定要小心避免磨破动脉，最好将动脉夹深入颈总动脉下于动脉夹中段夹闭血管，以防夹闭不完全；6. 插入血管内插管尽量长，此时易于固定。
但是一定不要插到动脉夹夹闭处，因为插管和动脉夹都是硬性材料，两厢触碰易使动脉管破裂；7.喷血时，应迅速找到出血口，并及时夹闭近心端血管，并用棉球清理创面；若还是出血不止，则考虑是否是远心端结扎线未扎紧，这时夹闭远心端；若各种措施都不起效，则可以考虑完全结扎实验侧颈总动脉；8.若是少量出血，则可能只是毛细血管受到损伤，这是可用棉球轻轻压迫创面即可止血。
10. 输尿管插管【实验方法】下腹部剪毛，普鲁卡因局麻，在耻骨联合向上沿中线做长约4cm 的切口，沿腹白线切开腹膜，暴露出膀胱，并将膀胱翻向体外，在膀胱底部找到并分离两侧输尿管，在输尿管靠近膀胱处用线结扎，略等片刻，待输尿管略充盈后，用眼科剪剪一小口，向肾脏方向插入一根细塑料管，结扎，收集尿液。
【注意事项】1.家兔膀胱十分脆弱，分离时应用镊子探查，避免直接用手术刀或剪刀粗暴分离；2.输尿管位置较深，分离和插管时需一人协助拨开肠子和拉扯膀胱，此时需注意用力大小，用力过大时膀胱会因尿液排出而迅速缩小（并不影响实验）；3.如果可以，分离输尿管时避免损伤伴行血管，否则会大出血影响视线；4.输尿管近膀胱处结扎后，可略等片刻，待输尿管略充盈后在剪口插管，会容易很多；5.插管的管子剪口需有一定锐度，但锐度过高易损伤输尿管；插管时，可转动插管，使斜面向下，否则易撕裂输尿管。
11.处死【实验方法】空气栓塞法【注意事项】判断家兔死亡的标准可以是呼吸停止，这是可能生物电还存在波动，可能原因是心脏自律细胞还在活动，但此时心脏功能细胞其实已经停止工作，故可以判定为死亡。
12.其他注意事项1.创面长时间开放时，可撒些生理盐水或用生理盐水浸润的纱布覆盖，以防组织风干；2.切开皮肤前，可少量多点注射局麻，避免家兔因损伤皮神经而剧烈反抗。
13.整体动物体征的观察及应对1.兔耳耷拉，表示家兔饮水不足，这时需及时给家兔补充水分，否则会影响实验结果；2.家兔呼吸急促并伴有鸣声，表示家兔呼吸系统有问题，气管插管时应注意清理气管，并在不需要呼吸频率数据的时段打开Y型管软管，使呼吸通畅。
时刻注意呼吸频率的变化。
3.当血压降低时，可能是失血过多，此时家兔可能已经休克。