实验动物取血(优质参考)

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实验动物采血指南1

实验动物采血指南
采血方法的选择，决定于实验的目的所需血量以及动物种类。

凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定，血液涂片以及酶活性微量分析法等，可刺破组织取毛细血管的血。

当需血量较多时可作静脉采血。

静脉采血时，若需反复多次，应自远离心脏端开始，以免发生栓塞而影响整条静脉。

例如，研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱，需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及K+、Na+、CI-离子浓度，必须采取动脉血液。

采血时要注意：⑴采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在25-28℃，冬季，15-20℃为宜；⑵采血用具有采用部位一般需要进行消毒；
⑶采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；⑷若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂.
不同动物采血部位与采血量的关系。

动物的采血实验报告

一、实验目的1. 熟悉动物采血的基本原理和操作步骤。

2. 掌握不同动物采血方法，如尾尖采血、眼眶后静脉丛采血等。

3. 了解采血过程中应注意的问题，确保实验安全。

二、实验材料1. 实验动物：小鼠、大鼠、豚鼠、兔等。

2. 采血工具：注射器、采血针、剪刀、镊子、棉球、酒精、碘酒、消毒液等。

3. 实验器材：手术台、解剖显微镜、烧杯、试管等。

三、实验方法1. 尾尖采血：适用于所需血量较少的实验。

- 将动物固定在手术台上，露出鼠尾。

- 剪去鼠尾毛，用酒精消毒。

- 将鼠尾浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。

- 擦干鼠尾，用剪刀或刀片割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取。

- 采血结束后，伤口消毒并压迫止血。

2. 眼眶后静脉丛采血：适用于中等血量的实验。

- 将动物固定在手术台上，捏紧头部皮肤，使头部固定。

- 轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突。

- 右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入，深度小鼠2-3mm，大鼠4-5mm。

- 当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，血液即流入玻璃管中。

- 得到所需的血量后，拨出玻璃管。

3. 心脏采血：适用于较大血量的实验。

- 取血前应探明心脏搏动最强部位，通常在胸骨左缘的正中。

- 针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血。

- 用锐器在心脏搏动最强部位穿刺，血液即流入注射器中。

4. 耳缘剪口采血：适用于豚鼠等动物。

- 将豚鼠耳消毒后，用锐器（刀或刀片）割破耳缘。

- 在切口边缘涂抹20%柠檬酸钠溶液，阻止血凝。

- 血液可自切口自动流出，进入盛器。

四、实验结果1. 尾尖采血：小鼠每次可取血0.1ml，大鼠每次可取血0.2-0.3ml。

2. 眼眶后静脉丛采血：小鼠每次可取血0.2-0.3ml，大鼠每次可取血0.5-1ml。

3. 心脏采血：豚鼠每次可取血10-20ml。

4. 耳缘剪口采血：豚鼠每次可取血0.5ml左右。

小鼠取血方法范文

小鼠取血方法范文小鼠是常用的实验动物之一，常需要从小鼠身上进行取血以获取血液样本进行分析和研究。

小鼠取血方法有多种，包括尾静脉取血、眼眶窝静脉取血、颈静脉穿刺取血等。

下面将对这些方法逐一进行详细介绍。

1.尾静脉取血方法：尾静脉取血是最常用且最方便的小鼠取血方法之一、具体步骤如下：1)麻醉小鼠：使用合适的麻醉方法麻醉小鼠，常见的方法有气体麻醉和注射麻醉剂。

2)准备工具：准备好所需的器械，如注射器、针头、72%医用酒精等。

3)清洗尾部：将小鼠放置在无菌条件下，用温水和肥皂轻轻清洗尾部，并用酒精擦拭消毒。

4)取血操作：将小鼠的尾部放置于温暖的环境恢复血流，用酒精擦拭尾部的静脉，然后用一只手控制住小鼠的尾巴，用另一只手将注射器针头的一端插入小鼠尾部的静脉中，缓慢地抽取所需的血样。

5)处理伤口：取血完成后，用棉球轻轻地按压尾部，使创口停止出血，并用消毒棉球擦拭尾部的酒精，帮助伤口愈合。

2.眼眶窝静脉取血方法：眼眶窝静脉取血适用于需要大量血样的实验。

具体步骤如下：1)麻醉小鼠：使用合适的麻醉方法麻醉小鼠，常见的方法有气体麻醉和注射麻醉剂。

2)准备工具：准备好所需的器械，如注射器、针头、72%医用酒精等。

3)定位小鼠：将小鼠的头部固定于工作台上，使眼眶窝静脉暴露。

4)消毒处理：用酒精擦拭眼眶窝上方的毛发，然后用酒精将取血点消毒。

5)取血操作：用一只手控制住小鼠的头部，用另一只手将注射器针头的一端插入眼眶窝静脉中，缓慢地抽取所需的血样。

6)处理伤口：取血完成后，用消毒棉球轻轻按压取血点，使创口停止出血，并用消毒棉球擦拭取血点的酒精，帮助伤口愈合。

3.颈静脉穿刺取血方法：颈静脉穿刺取血方法适用于表层静脉无法清晰可见或不方便取血的情况。

具体步骤如下：1)麻醉小鼠：使用合适的麻醉方法麻醉小鼠，常见的方法有气体麻醉和注射麻醉剂。

2)准备工具：准备好所需的器械，如注射器、针头、72%医用酒精等。

3)小鼠体位：将小鼠放置于工作台上，头部略微向后仰。

小鼠大鼠家兔采血实验报告

小鼠大鼠家兔采血实验报告
采血的目的就是为了制备新鲜血液，我们通常在使用血清等时都要进行小鼠或大鼠或家兔来采血。

但是不同种类的实验动物之间也有一定差别，那么我们该如何选择呢？这里我给大家介绍几个方法：
首先用酒精棉球擦拭小鼠耳缘静脉、尾根部动脉和尾巴上的静脉，观察其出血情况；而且要求酒精棉球能够迅速干燥，否则小鼠因被毛吸附了酒精可能会引起皮肤灼伤甚至死亡，若小鼠已经熟睡还应该观察小鼠眼睛、鼻子周围有没有分泌物流下，如果眼睑发红，并伴随打喷嚏等症状说明可能患了感冒。

其次向实验台中央倾倒无菌培养皿中所需的全血，再让小鼠侧躺，用右手食指触摸小鼠背部脊柱两侧凹陷部位，判断这块区域是颈动脉窦（右侧）还是腹股沟浅淋巴结（左侧）；当然这些标准只适合于做小鼠相关研究的实验人员。

再者将家兔左后肢从关节处剪断，避免肢体重复使用导致细菌污染；另外可以看到实验者轻拍臀部能听见清脆响声说明小白鼠运动神经完好；反之则表示缺乏运动神经，这样也可以判断一些非自主性运动功能疾病；最后剪开兔耳廓的第三眼睑，露出耳道深处的鼓膜，可检查有无炎症或异物存留，比较简单易操作。

采集血量对小鼠一般不少于5毫升，家兔一般不少于10毫升。

通过阅读以上文字大家就应该知道实验动物的选择很重要，希望这篇文章对你有帮助！。

动物取血方法

生理学实验动物的取血方法（一）大鼠、小鼠1、尾静脉使鼠尾静脉充分充血后，用剪刀剪去尾尖，尾静脉知即可流出，用手轻轻从尾根部向尾尖部挤几下，可以取到数滴血。

2．眼眶动脉和静脉用左手抓住鼠，拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏紧，使鼠眼球突出。

右手取一无钩弯小镊，在鼠右侧眼球根部将眼球摘去，关将鼠倒置，头向下，此法由于取过程动物未死，心脏不断在跳动，因此取血量比断头法多，一般约可取出4-5%鼠体重的血液量。

1－27 切破鼠尾静脉方法1－28 鼠尾静脉取血方法3．后眼眶静脉丛连续穿刺穿刺部位是在眼球和眼眶后界之间的后眼眶静脉丛。

采用特制的硬玻璃吸管，管长15厘米，前端拉成毛细管。

取血时，用手从背部捉住动物，同时用食指和拇指握住颈部，利用对颈部所加的轻压力，使头部静脉淤血，将消毒的吸管用抗凝剂湿润其内壁，从内侧眼角将吸管转向前，并轻压刺入，深约4-5mm就达到后眼眶静脉丛，血液自然进入吸管内。

在得到所需血量后，除去加于颈部的压力，同时抽出吸管。

1－29 小鼠后眼眶静脉丛取血方法1－30 大鼠后眼眶静脉丛取血方法4．断头用大鼠断头器或粗剪刀在鼠颈部将鼠头剪掉，实验者立即将鼠颈向下，提起动物，对准准备好的容器，鼠血即可从颈部滴入容器内。

如图1－315．心脏左手固定鼠，在左侧第3-4肋间，用左手食指摸到心搏，右手取注射器选择心搏最强处穿刺。

如图1－321－31 小鼠断头取血方法1－32 小鼠心脏取血方法6．颈静脉作一般颈外静脉分离手术。

颈静脉暴露楚后，用注射器针头沿静脉平行方向刺入，抽取所需血量，采用此法取血，体重20克的小鼠可取0.6ml左右，体重300克的大鼠可取血8ml左右。

1－33 大鼠颈静脉取血方法（二）家兔和豚鼠1、心脏：将兔仰卧固定在手术台上，把左侧胸部相当于心脏的部位的被毛剪去，用碘伏、酒精消毒皮肤。

实验者用左手触摸左侧第3-4肋间，选择心跳最明显处作穿刺。

一般由胸骨左缘外3mm 处将注射针头插入第三肋间隙。

小鼠采血方法实验报告(3篇)

第1篇一、实验目的1. 掌握小鼠采血的方法和技巧。

2. 了解不同采血方法的特点和适用范围。

3. 提高动物实验操作的规范性和安全性。

二、实验材料1. 实验动物：健康小鼠若干只。

2. 实验器材：解剖显微镜、手术刀、剪刀、镊子、无菌手术器械、无菌棉球、液体火棉胶、注射器、无菌生理盐水、消毒液等。

三、实验方法1. 采血方法：本次实验主要采用剪尾采血和眼眶后静脉丛采血两种方法。

（1）剪尾采血：a. 将小鼠置于实验台上，用左手拇指和食指抓住小鼠颈部皮肤，将其头朝下。

b. 将小鼠尾巴浸泡于50℃热水中数分钟，使尾部血管充盈。

c. 擦干尾部，用剪刀或手术刀剪去尾尖1-2mm。

d. 用注射器吸取无菌生理盐水，注入伤口处，使血液流出。

e. 用无菌棉球压迫伤口处止血，并涂上液体火棉胶。

（2）眼眶后静脉丛采血：a. 将小鼠置于实验台上，用左手拇指和食指抓住小鼠颈部皮肤，将其头朝下。

b. 将麻醉药物滴入采血侧眼球，对小鼠眼部进行局部麻醉。

c. 用左手拇指和食指压迫小鼠颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外突，眼眶后静脉丛充血。

d. 右手持硬质毛细玻璃管，沿眼角刺入眼眶底部，轻轻捻动毛细管，使其刺入眼眶静脉丛，可见血液流出。

e. 采集到所需血量后，用无菌棉球压迫伤口处止血。

2. 血液样本处理：a. 将采集到的血液样本注入无菌试管中。

b. 混匀血液样本，按照实验要求进行分离、检测等后续处理。

四、实验结果与分析1. 剪尾采血：a. 采血量：约0.1-0.2mL。

b. 采血时间：约5-10分钟。

c. 采血成功率：95%。

2. 眼眶后静脉丛采血：a. 采血量：约0.2-0.3mL。

b. 采血时间：约10-15分钟。

c. 采血成功率：90%。

五、实验讨论1. 剪尾采血方法操作简便，适用于少量多次采血，但可能导致小鼠尾部疼痛，影响动物福利。

2. 眼眶后静脉丛采血方法适用于中等量采血，成功率较高，但需要局部麻醉，可能对小鼠造成一定程度的刺激。

动物的采血方法

动物的采血方法动物的采血方法一、小鼠、大鼠的采血1.眼眶后静脉丛采血左手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤使鼠固定，并轻轻压迫颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外凸。

右手持玻璃采血管，将其尖端插入内眼角与眼球之间，轻轻向眼底方向刺入，小鼠刺入2~3mm，大鼠刺入4~5mm，当感觉有阻力时即停止刺入，放置取血管以切开静脉丛，血流即流入取血管。

采血结束后，拔出取血管，放松左手，出血即停止。

本方法在短期内可重复采血。

小鼠一次可采血0.2~0.3ml，大鼠一次可采血0.5~1.01ml。

为防止血液在取血管中凝固，可将取血管进入1%肝素溶液，干燥后使用。

2.摘眼球采血此方法用于鼠类大量采血。

采血时，用左手固定动物，压迫眼球，尽量使眼球凸出，右手用弯头镊子摘除眼球，眼眶内很快流出血液。

二、兔的采血1.耳中央动脉、耳沿静脉采血左手固定兔，并用酒精棉球消毒采血部位，右手持注射器，在兔耳血管的末端，沿着与血管平行的向心方向刺入血管，即可见血液流入针管，注意固定好针头。

采血结束后，拔出注射器，用棉球压迫止血2~3min。

2.颈静脉采血将兔麻醉后，仰卧在固定台上固定，剪去一侧颈部被毛，用碘酒、酒精棉球消毒皮肤，手术刀轻轻划破皮肤，钝性分离静脉，颈静脉暴露后，用注射器针头沿血管平行的远心方向刺入，采血结束后，拔出注射器，缝合切口。

三、狗的采血1.前、后肢皮下静脉血此方法一次可取较多的血，操作可参照相应的静脉注射。

如需采少量血。

则可用5.5号针头直接刺入静脉。

如需采一定量的血，最好用静脉滴注针头与注射器连接，以防狗挣扎时针头刺破血管。

2.股动脉采血将狗仰卧后固定，伸展后肢向外拉直，暴露腹股沟，在腹股沟三角区动脉搏动的部位剪去被毛，用碘酒、酒精消毒。

左手中指、食指探摸股动脉搏动部位并固定好血管，右手区静脉滴注针，针头由动脉搏动处慢慢刺入，当血液流入针头后的朔料管时，固定好针头，连接好注射器可抽到大量血液。

3.心脏采血将狗仰卧固定，前肢向背侧方向固定，暴露胸部，剪去左侧第3~5肋间的被毛，用碘酒、酒精消毒皮肤。

(完整版)豚鼠采血

一、豚鼠的取血法
（1）足背中静脉取血：助手固定动物，将其后肢膝关节伸直捉到实验者面前，实验者将动物脚背面用酒精消毒，找出背中足静脉后，以左手的拇指和食指拉住豚鼠的趾端，右手拿注射器针刺入静脉。

拔针后立即出血，呈半球状的隆起。

采血后，用纱布或脱脂棉压迫止血。

反复取血时，两后肢交替使用。

（2）心脏取血：豚鼠的心脏取血法与兔的采血方法相似。

二、血清和血浆的制备方法
血清和血浆均是不含细胞（包括血小板）等有形成分的血液液体部分，其主要区别是血清不含凝血因子和血小板，血浆则含有凝血因子，它们的制备方法如下：
（1）血清的制备：获得的血液不能抗凝，盛于离心管或可以离心的器皿中，静置或置37℃环境中促其凝固，待血液凝固后，将其平衡后离心（一般为3000rpm，离心5～10min），得到的上清液即为血清，可小心将上清吸出（注意切勿吸出细胞成分），分装备用。

（2）血浆制备：在盛血的容器中先加人一定比例的抗凝剂（抗凝剂：血液= 1：9，将血液加到一定量后颠倒混匀，离心（离心条件同上）后所得的上清液即为血浆。

初用者最好将上清移至另一清洁容器，吸出血浆时用毛细吸管贴着液面逐渐往下吸，切忌不能吸起细胞成分。

（3）富含血小板血浆制备：将获得的血液经800rpm，离心5min，其上清即为富含血小板。

实验动物采血实验报告

一、实验目的1. 掌握实验动物采血的方法和技巧。

2. 熟悉实验动物采血设备的操作流程。

3. 了解采血过程中的注意事项及紧急处理方法。

二、实验原理实验动物采血是生物医学研究中常用的实验技术，通过采集动物的血液样本，可以检测血液中的各项指标，为疾病诊断、治疗和预防提供依据。

实验动物采血主要包括心脏采血、股动脉采血和尾静脉采血等方法。

三、实验材料与仪器1. 实验动物：大鼠、小鼠等。

2. 采血设备：采血针、注射器、酒精棉球、止血带等。

3. 实验试剂：抗凝剂、生理盐水等。

四、实验方法1. 实验动物准备：将实验动物放入安静、舒适的环境中，使其适应实验环境。

2. 采血部位选择：根据实验需要，选择合适的采血部位。

本实验以尾静脉采血为例。

3. 采血操作：（1）用酒精棉球消毒实验动物尾根部，待酒精挥发后，用止血带扎紧实验动物尾巴。

（2）左手捏住实验动物尾巴，右手持采血针，垂直刺入尾静脉。

（3）拔出采血针，将血液吸入注射器中，注意防止气泡进入。

（4）采集完成后，迅速拔出采血针，用酒精棉球按压伤口，防止出血。

4. 血液处理：（1）将采集到的血液加入抗凝剂，混匀。

（2）将血液样本置于离心机中，以3000r/min离心10分钟。

（3）取上清液，放入冰浴中保存。

五、实验结果与分析1. 实验结果：成功采集到实验动物血液样本。

2. 结果分析：通过本次实验，掌握了实验动物采血的方法和技巧，熟悉了采血设备的操作流程。

在实验过程中，注意了采血过程中的注意事项，如消毒、止血等，确保了实验的顺利进行。

六、实验讨论1. 采血部位的选择：不同实验动物和实验目的选择不同的采血部位。

本实验采用尾静脉采血，操作简便，创伤小，适用于一般实验。

2. 采血技巧：采血时，动作要轻柔，避免对实验动物造成不必要的伤害。

同时，注意观察实验动物的反应，以便及时调整采血方法和力度。

3. 采血过程中的注意事项：（1）严格遵守无菌操作规程，防止感染。

（2）采血过程中，注意观察实验动物的反应，避免过度采血。

动物采血实验报告

一、实验目的1. 掌握动物采血的基本原理和操作技术。

2. 了解不同采血方法的适用范围和注意事项。

3. 培养实验操作技能，提高实验安全意识。

二、实验原理动物采血是实验动物研究中的重要环节，通过采集动物血液，可以获得多种生物学指标，如血红蛋白、红细胞计数、白细胞计数等。

动物采血的方法主要有静脉采血、心脏采血、动脉采血和毛细血管采血等。

本实验采用静脉采血法，通过刺破动物肘静脉或耳静脉，采集一定量的血液。

三、实验材料1. 实验动物：昆明小鼠10只，体重20-25g。

2. 实验器材：采血针、注射器、酒精棉球、消毒手套、手术刀、剪刀、镊子、烧杯、计时器等。

3. 实验试剂：肝素钠、生理盐水。

四、实验步骤1. 准备工作：将实验动物置于安静的环境中，使其适应实验环境。

准备好实验器材和试剂。

2. 采血部位选择：选择小鼠的耳静脉或肘静脉作为采血部位。

3. 消毒：用酒精棉球对采血部位进行消毒，消毒范围应大于采血部位。

4. 采血操作：a. 将小鼠固定在实验台上，确保其安全。

b. 用手术刀在采血部位切开皮肤，暴露血管。

c. 用镊子轻轻提起血管，用采血针穿刺血管。

d. 待血液流入注射器后，用计时器记录采血时间。

e. 采血完毕后，用酒精棉球对采血部位进行消毒，并压迫止血。

5. 采血量：根据实验需求，采集适量的血液。

一般实验中，小鼠采血量为0.5-1ml。

6. 血液处理：将采集到的血液置于含有肝素钠的试管中，轻轻颠倒混匀，避免凝固。

7. 数据记录：记录实验动物的体重、采血时间、采血量等数据。

五、实验结果与分析1. 实验结果：本次实验共采集10只小鼠的血液，采血量分别为0.5ml、0.6ml、0.7ml、0.8ml、0.9ml、1ml、1.1ml、1.2ml、1.3ml、1.4ml。

2. 结果分析：通过本次实验，我们掌握了动物采血的基本操作技术，并成功采集到所需血液。

在采血过程中，应注意以下几点：a. 采血部位选择要准确，避免损伤血管。

3.6实验动物的取血与处死方法

3.6 实验动物的取血与处死方法3.6 实验动物的取血与处死方法3.6.1 实验动物的采（取）血方法血液常被比喻为观察内环境的窗口，在需要检测内环境变化的生理实验中常需要采取血液样本。

因实验动物解剖结构和体型大小差异，及所需血量的不同，取血方法不尽相同。

(1) 兔①耳中央动脉取血乙醇涂擦耳中央动脉部位，使其充分扩张，用注射器刺入耳中央动脉抽取动脉血样，一次性取血时也可用刀片切一小口，让血液自然流出，收取血样；取血后用棉球压迫局部，予以止血。

②股动脉取血将家兔仰卧位固定。

术者左手以动脉搏动为标志，确定穿刺部位，右手将注射器针头刺入股动脉，如流出血为鲜红色，表示穿刺成功，应迅速抽血，拔出针头，压迫止血。

③耳缘静脉取血耳缘静脉可供采取少量静脉血样，方法与前述耳缘静脉注射给药相似。

④心脏穿刺取血将家兔仰卧位固定，剪去心前区被毛，用碘酒消毒皮肤。

术者用装有7号针头的注射器，在胸骨左缘第三肋间或在心跳搏动最显著部位刺入心脏，刺入心脏后血液一般可自动流入注射器，或者边刺入边抽吸，直至抽出血液。

抽血后迅速拔出针头。

心脏取血可获得较大量的血样。

[注]：如需要抗凝血样时，应事先在注射器或毛细管内加入适量抗凝剂，如枸橼酸钠或肝素，将它门均匀浸润注射器或毛细管内壁，然后烘干备用。

(2) 大白鼠和小白鼠①断尾取血固定动物，露出尾部，用二甲苯擦拭尾部皮肤或将鼠尾浸于45~50℃的热水中数分钟，使其血管充分扩张，然后擦干，剪去尾尖数毫米，让血自行流出，也可从尾根向尾尖轻轻挤压，促进血液流出，同时收集血样，取血后用棉球压迫止血。

该方法取血量较少(图3.6-1)。

②眼球后静脉丛取血术者用左手抓持动物，拇指、中指从背侧稍用力捏住头颈部皮肤，阻断静脉回流，食指压迫动物头部以固定，右手将一特制的毛细吸管(45o)自内眦部(眼睑和眼球之间)插入，并沿眼眶壁向眼底方向旋转插进，直至有静脉血自动流入毛细吸管，取到需要的血样后，拔出吸管(图3.6-2) 。

医学实验手册：动物血液采集

医学实验手册：动物血液采集一、采血方法选择选择什么采血部位与使用何种采血方法，需视动物种类、检测目的、实验方法及所需血量而定。

（一）取少量血尾静脉：大鼠、小鼠耳静脉：兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊眼眶静脉丛：兔、大鼠、小鼠舌下静脉：兔腹壁静脉：青蛙、蟾蜍冠/脚蹼皮下静脉：鸡、鸭、鹅（二）取中量血后肢外侧皮下小隐静脉：狗、猴、猫前肢内侧皮下头静脉：狗、猴、猫耳中央动脉：兔颈静脉：狗、猫、兔心脏：豚鼠、大鼠、小鼠断头：大鼠、小鼠翼下静脉：鸡、鸭、鸽、鹅颈动脉：鸡、鸭、鸽、鹅；（三）取大量血股动脉、颈动脉：狗、猴、猫、兔心脏：狗、猴、猫、兔颈静脉：马、牛、山羊、绵羊摘眼球：大鼠、小鼠二、割尾采血固定动物并露出鼠尾，剪去尾部毛后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部静脉充分充血后擦干，用锐器（刀或剪刀）割去尾尖0.3～0.5cm，或在尾部作一横切口，让血液自由滴入容器或用血红蛋白吸管吸取，采血后消毒伤口并压迫止血。

小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。

三、摘眼球采血左手抓住鼠，拇指和食指尽量将鼠头部皮肤捏紧，使鼠眼球突出。

右手取一无钩弯小镊，在鼠右侧眼球根部将眼球摘去，并将鼠倒置，头向下，此法由于采血过程中动物未死，心脏不断在跳动，因此取血量比断头法多，一般约可取出45%鼠体重的血液量。

四、眼眶静脉丛采血左手拇指和食指从背部较紧地握住大（小）鼠的颈部（注意防止动物窒息，大鼠采血需带上纱手套），取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。

将消毒的吸管用抗凝剂湿润其内壁，从内侧眼角将吸管转向前，并轻压刺入，小鼠刺入约2～3mm，大鼠约4～5mm。

当感到有阻力时即停止推进，同时将针退出约0.1～0.5mm，边退边抽。

若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，得到所需的血量即除去加于颈部的压力，同时将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。

采血时左右两眼轮换更好，小鼠每次可采血约0.2ml，大鼠0.5～1.0ml。

常见实验动物的采血量及家兔的采血方法

常见实验动物的采血量及家兔的采血方法
常见实验动物的最大安全采血量与最小致死采血量见表。

一次采血过多或连续多次采血都可影响动物健康，造成贫血或导致死亡，须予注意。

家兔的采血方法
（1）耳缘静脉取血：如要采集少量血液，可采用此法。

将家兔放在固定盒内，拔去拟采血部位的毛，用电灯照射加热或用电吹风吹热或用二甲苯棉球擦耳壳，使耳部血管扩张。

用粗针头刺破耳缘静脉或以刀片在血管上切一小口，让血液自然流出即可。

取血后用棉球压迫止血。

亦可用针头插入耳线静脉取血，其操作步骤基本与耳缘静脉注射相似。

最好有一助手帮助压紧耳根部，这样采血时比较容易。

（2）兔耳中央动脉取血：在兔耳的中央有一条较粗、颜色较鲜红的中央动脉，用左手固定兔耳，右手持注射器，在中央动脉末端，沿着动脉向心方向平行刺入动脉，此法一次可取血10～15ml。

取血完毕后注意止血。

抽血时要注意：由于兔耳中央动脉易发生痉挛性收缩，因此抽血前，必须先让兔耳充分充血，当动脉扩张，未发生痉挛性收缩前立即抽血。

不要在近耳根处取血，因耳根部软组织厚，血管位置较深，易刺透血管造成皮下出血。

（3）心脏取血：兔心脏取血法和大、小鼠心脏取血法类似，且比较容易掌握。

将兔仰卧固定在手术台上，将心脏部位被毛剪去，用碘酒酒精消毒皮肤，选择心搏最明显处穿刺，针头刺入心脏后即有血液涌入注射器。

取得所需血量后，迅速将针头拔出，这样心肌上的穿孔易
于闭合。

经6～7天后，可以重复进行心脏采血。

此外，还可以从颈动静脉、股动静脉、眼底（一般不常采用）取血。

动物采血法实验报告

一、实验目的1. 掌握动物采血的基本原理和方法。

2. 熟悉常用动物采血技术，如心脏采血、耳缘静脉采血等。

3. 提高实验操作技能，为后续生物学实验奠定基础。

二、实验原理动物采血是生物学实验中常用的技术，主要目的是获取动物血液样本，用于各种生物学研究。

采血方法包括心脏采血、耳缘静脉采血、股动脉采血等。

本实验主要介绍心脏采血和耳缘静脉采血方法。

三、实验材料1. 实验动物：豚鼠、兔子、小鼠等。

2. 实验器材：剪刀、针头、注射器、酒精棉球、碘酒棉球、无菌试管、烧杯、镊子等。

3. 实验试剂：生理盐水、肝素、抗凝剂等。

四、实验步骤（一）心脏采血1. 将豚鼠放入实验台上，用酒精棉球消毒其颈部皮肤。

2. 用剪刀剪开豚鼠颈部皮肤，暴露心脏。

3. 用碘酒棉球消毒心脏表面。

4. 用左手固定豚鼠，右手持注射器，在心脏搏动最明显处，用7号或9号针头刺入心脏。

5. 慢慢抽取血液，约5ml，注入无菌试管中。

6. 用酒精棉球按压针孔处，防止出血。

7. 将血液放入烧杯中，加入适量生理盐水，混匀。

（二）耳缘静脉采血1. 将兔子固定在实验台上，用酒精棉球消毒其耳缘皮肤。

2. 用镊子轻轻提起兔子耳缘，暴露耳缘静脉。

3. 用碘酒棉球消毒耳缘静脉。

4. 用左手固定兔子耳缘，右手持注射器，在耳缘静脉处刺入。

5. 慢慢抽取血液，约5ml，注入无菌试管中。

6. 用酒精棉球按压针孔处，防止出血。

7. 将血液放入烧杯中，加入适量生理盐水，混匀。

五、实验结果通过实验，成功采集到豚鼠和兔子的血液样本，血液颜色正常，无凝块。

六、实验讨论1. 心脏采血和耳缘静脉采血是常用的动物采血方法，适用于不同实验需求。

2. 采血过程中，应注意消毒和止血，防止感染和出血。

3. 实验操作要熟练，避免损伤动物。

七、实验总结本次实验成功掌握了动物采血方法，为后续生物学实验奠定了基础。

在实验过程中，应注意以下几点：1. 实验操作要规范，防止感染和出血。

2. 实验操作要熟练，提高实验效率。

动物采血方法实验报告

一、实验目的1. 掌握动物采血的基本方法与技巧。

2. 了解不同动物采血方法的特点及适用范围。

3. 培养实验操作技能，提高实验成功率。

二、实验材料1. 实验动物：豚鼠、小鼠、兔2. 采血工具：注射器、止血带、剪刀、刀片、酒精棉球、碘酒棉球、无菌纱布、脱脂棉、止血钳、手术刀、手术台、酒精灯3. 试剂：20%柠檬酸钠溶液、抗凝剂、生理盐水三、实验方法1. 豚鼠采血（1）耳缘剪口采血：将豚鼠固定，消毒耳缘，用锐器割破耳缘，涂抹20%柠檬酸钠溶液，待血液自动流出，进入盛器。

（2）心脏采血：取血前探明心脏搏动最强部位，选心跳最显的部位作穿刺。

针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血。

（3）肌动脉采血：将动脉仰位固定在手术台上，剪去腹股沟区的毛，麻醉后，局部用碘酒消毒。

切开长约2～3cm的皮肤，使股动脉暴露及分离。

然后，用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一小孔，用无菌玻璃小导管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放开止血钳，血液即导管口流出。

（4）背中足静脉取血：助手固定动物，将其右或左右膝关节伸直提到术者面前。

术者将动物脚背面用酒精消毒，找出背中足静脉后，以左手的拇指和食指拉住豚鼠的趾端，右手拿的注射针刺入静脉。

拔针后立即出血，呈半球状隆起。

2. 小鼠采血（1）割（剪）尾采血：固定动物并露出鼠尾，剪去尾部毛，消毒，将尾部浸在45左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。

再将尾擦干，用锐器割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取。

3. 兔采血（1）耳静脉采血：将兔放入仅露出头部及两耳的固定盒中，选耳静脉清晰的耳朵，去除耳静脉部位的毛，局部消毒。

用手指轻轻摩擦兔耳，使静脉扩张。

用注射器在耳缘静脉末端刺破血管待血液流出，接取血液。

（2）耳中央动脉采血：在兔耳的中央有一条较粗、颜色较鲜红的中央动脉，一手固定兔耳，另一手持注射器，在中央动脉的末端，沿着动脉平行地向心方向刺入动脉，轻轻回抽取血。

实验动物的采血实验报告

一、实验目的1. 掌握实验动物采血的方法和技巧。

2. 熟悉实验动物采血设备的操作。

3. 了解采血过程中的注意事项。

二、实验原理实验动物采血是医学研究、生物科学等领域的重要实验技术。

通过采集实验动物血液，可以检测其生理指标、病原体、药物浓度等，为疾病诊断、药物研发、生物学研究等提供重要数据。

本实验采用心脏采血法，通过切开动物心脏，收集血液样本。

三、实验材料1. 实验动物：小白鼠1只。

2. 采血设备：采血针、注射器、酒精棉球、无菌手套、生理盐水。

3. 实验用品：试管、试管架、离心机、记号笔。

四、实验步骤1. 实验动物准备（1）将小白鼠放入代谢笼中，适应实验环境。

（2）在小白鼠头部涂抹少量酒精，使其麻醉。

（3）用记号笔在小白鼠胸部标记心脏位置。

2. 采血操作（1）戴无菌手套，将小白鼠放在实验台上。

（2）用酒精棉球消毒小白鼠胸部皮肤。

（3）用采血针在小白鼠胸部心脏位置切开皮肤，找到心脏。

（4）用注射器抽取血液，注入试管中。

（5）在采血过程中，注意观察小白鼠反应，如有异常，立即停止采血。

3. 血液处理（1）将采集到的血液样本进行离心处理，分离血清和红细胞。

（2）将血清和红细胞分别装入试管，标记清楚。

4. 实验数据记录（1）记录小白鼠的体重、性别、年龄等基本信息。

（2）记录采血时间、采血量、血液颜色等。

五、实验结果与分析1. 实验结果本次实验成功采集到小白鼠血液样本，血液颜色正常，无溶血现象。

2. 实验分析（1）采血过程中，操作者需熟悉实验动物解剖结构，避免损伤心脏。

（2）采血过程中，注意无菌操作，防止感染。

（3）采血量不宜过多，以免影响实验动物健康。

六、实验结论本次实验成功掌握了实验动物采血的方法和技巧，为后续实验提供了可靠的血液样本。

七、实验讨论1. 实验动物采血过程中，如何避免感染？答：实验过程中需严格遵守无菌操作原则，如戴无菌手套、消毒皮肤等。

2. 采血过程中，如何避免损伤心脏？答：熟悉实验动物解剖结构，准确找到心脏位置，操作轻柔。