痰培养标本采集 与运送标准操作规程
痰培养标本的采集时间及频率
呼吸道标本的采集、送检和接种处理一、痰培养标本的采集时间及频率是什么?1、在抗生素应用前采集痰标本。
2、最好在清晨采集痰标本。
多数患者在清晨痰较多，且含菌量也多，尤其是对平时痰量少的患者，清晨采痰相对容易。
3、对于肺炎，如果能采集到比较理想的痰液时，建议一个检验周期(4天)内只送1次痰标本，不必连续送检，更不建议24小时内多次采集，除非痰液外观性状出现突然改变。
4、怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
二、痰标本的采集方法有哪些？1、自然咳痰法：留取前刷牙，用清水漱口3次(或硼酸漱口)，以除去口腔内大部分杂菌，之后先深吸气，再用力咳出呼吸道深部的痰液吐至一次性无菌痰怀(痰培养适用)或专用蜡浸小纸盒(抗酸杆菌涂片适用)内，盖好盖子。
如果患者痰液较深，或者黏稠难于咳出时，可采用3%～5%的Nacl溶液(气道刺激高反应的患者如哮喘，不宜使用)、氯化铵溶液、N-乙酰-L-半胱氨酸溶液进行雾化吸入，以帮助排痰，最佳痰液采集量为2～10m1，最低不能少于1ml。
2、特殊取痰法：由临床医生采集，根据方法的不同，主要有：纤支镜抽吸法：纤维支气管镜检查可直接从肺部感染病灶获取支气管分泌物，操作较为安全。
用支气管镜可直接在病灶部位采集高浓度的感染病原菌，但也不能完全避免咽喉部正常菌群污染，防污染保护套下采集的样本具有较大价值，常用的采集方法有：采集支气管肺泡灌洗(BAL)、经支气管镜直接吸引或用防污染样本毛刷采集!在欧美已将该方法采抜的标本作为替代金标准力法(肺穿抽吸或活检)用呼吸道感染的诊断中经人气道吸引分泌物(ETA)：经人气道吸引是目前临床对不能自然咳痰的患者较为常用的力法。
但由于气管插管等侵入性操作，原有的天然屏障防御机制受到损害，以及长期平卧后气道分泌物的坠积损伤气管局部黏膜造成黏膜的自洁能力丧失，环境微生物。
口腔菌群常下行定植下气管中而不再保持无菌状态，所以此方法采集的标本同样会受到定植菌群的污染，也应该在培养前先做合格性筛查。
痰标本采集操作流程及评分标准
·协助患者取舒适卧位，整理床单位
·洗手
（二）评分标准
所在科室考生姓名考核老师考核成绩
项目
标准分值
扣分内容
扣分
得分
操作准备
操作者
5
着装不规范-3
未按六步洗手法洗手或洗手不认真、程序错误-2
查对
3
未查对医嘱、检验项目-3
评估
10
未评估患者病情、意识、排痰情况、有无特殊需要各-2
·患者咳嗽、咳痰情况
·患者心理状态
·患者沟通、理解及合作能力
·容器贴上标签，注明科室、床号、姓名、检验项目等
·患者能自行留取痰液，嘱患者清晨醒来未进食前用温开水漱口，深呼吸后用力咳出气管深处的痰液，置于痰杯中，加盖后及时送检
·无法咳痰的患者，协助患者取适当卧位，由下向上叩击患者背部，戴好无菌手套，将集痰器分别连接吸引器和无菌吸痰管，按吸痰法将痰液吸入集痰器内，加盖送检
未解释需要注意事项-2
用物
14
未根据评估准备用物-4
少一件各-2
摆放乱-2
未贴检查标签-4
操作步骤
床旁查对
6
未查对患者、腕带各-2
安全舒适
4
未注意患者安全-2
未协助患者取舒适体位-2
留取痰标本
28
未根据患者的具体情况选择合适的留取方法-8
未保护患者隐私-6
未留取足够的量-6
污染标本-8
送检
5
未及时送检-5
痰标本采集操作流程及评分标准
（一）操作流程
操作流程
操作方法
准备
评估解释
痰标本采集
整理
痰培养标本采集与运送标准
痰培养标本采集与运送标准操作规程一、适应症1.咳嗽、脓痰，伴有发热，影像学检查出现新的或扩大的浸润影，考虑肺部感染时。
2.气道开放患者出现脓痰或血性痰，考虑肺部感染时。
3.其他考虑肺部感染的情形。
二、痰标本采集与转运流程注：a：宜在医护人员直视下留取合格痰标本；自然咳痰标本必须为深部咳痰，不能留取唾液和鼻咽腔分泌物。
b：诱导痰只适用于检测卡氏肺抱子菌和结核分枝杆菌，对其他病原菌检出效果差。
C.有气道高反应者慎用高渗NaCl诱导。
d.仅当气管插管的患者出现肺炎症状时，可采集气管导管吸出物标本(气管在插管24小时后即有定植菌，若未有肺部感染指征时送检气管吸出物，可导致结果与疾病不符)。
e.室温下应在2小时内送至微生物室，如不能及时送检，可将标本放置2〜8°C 环境保存2〜24小时；延迟送检将导致非苛养的口咽部定植菌过度生长，有临床意义的病原菌数量相对减少，低温保存会使肺炎链球菌等苛养菌的分离机会和数量减少；故若标本延迟送检，应在报告中予以说明并指出可能对培养结果的影响。
三、标本拒收标准1.显微镜下细胞学检查发现标本受口咽部菌群污染，合格痰标本鳞状上皮细胞﹤10 个/低倍视野。
2.送检标本为唾液、口咽分泌物或鼻咽部窦内引流物等。
3.痰液中含有食物残渣。
4.无标签或标签贴错；标识信息不明，未提供釆集时间及送检目的等。
5.送检时间超过2小时且未正确保存的标本。
6.收集容器有渗漏或容器存在其他不合格情况。
四、注意事项1.24小时内不要重复采集痰标本。
2.咳痰、诱导痰、气管吸出痰标本不适合做厌氧菌培养。
3.尽量在首剂抗菌药物使用前及更换抗菌药物前釆集标本。
只要有可能得到合格的痰标本，应马上釆集、送检。
4.当肺部感染患者伴有发热(≥38°C)或低体温(≤36°C)、白细胞增多或粒细胞减少等血培养送检指征时，应同时釆集血标本送检。
5.申请单应注明患者的临床诊断、症状、是否使用了抗菌药物、检测目的、标本釆集时间，并标识是普通培养、抗酸杆菌培养还是真菌培养。
微生物痰液标本采集与处理程序
微生物痰液标本采集与处理程序（一）目的有效地指导痰液细菌及真菌培养标本的采集、接收及保存，使培养结果尽量不受干扰因素影响，保证检测结果准确可靠。
（二）适用范围适用于痰液细菌、真菌、结核杆菌培养及痰液涂片标本的采集、接收及处理。
（三）工作程序1.患者准备及原始标本识别（1）应在患者进行抗菌药物治疗前留取痰液做细菌、真菌或结核杆菌培养。
留取痰液前用清水漱口3次后，用力咯出深部痰液。
（2）由临床医护人员向临床患者讲解痰液标本留取的方法、标本量及注意事项，由患者自行咯出深部痰液，并将患者一般信息的条码标识写在（贴于）痰杯上。
原始标本以"电子申请单的条码号"为唯一标识。
2.痰液细菌及真菌培养标本采集的方法、容器、类型和量（1）痰液标本采集方法：自然咳痰，要求患者清晨留取，在抗菌药物应用前留取标本。
对于痰量少或无痰的患者可采用加温至45℃左右的10%NaCI水溶液雾化吸入，使痰液易于排出。
对咳痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽。
对不能深咳的儿童及重症患者，医生应用吸引法获取标本。
经气管穿刺吸痰法：用针从环甲膜处穿刺，将痰液吸出。
经纤维支气管镜吸引法：将气管镜插入气道，吸引出深部的痰液。
后两种方法准确性好但难度高。
（2）采集容器：密封30毫升的无菌痰杯，装有无菌拭子的密封试管。
（3）送检时间：原则上采集后应尽快送检，常温运输应在2小时内。
（4）注意事项：严格无菌操作，在痰液留取、运送、接种等过程均应注意无菌操作。
严格防止标本次序混乱，按一杯一个条码。
一般痰液培养连续做3天，以提高阳性率，排除污染。
3. 痰液标本的运送（1）门诊患者的痰液标本由患者本人或家属运送及物流传输装置自动传送;住院患者的痰液标本由护士、临床专职外送卫生员运送。
（2）送检地点：按规定。
（3）标本采集后立即送检，一般要求痰液标本传输不超过2小时。
如情况特殊不能运送，需要4℃冷藏并少于24小时。
（4）痰液标本的运送必须保证运送过程中的安全，防止溢出。
痰标本采集方法及流程
痰标本采集方法及流程
痰标本采集是一项为了明确病因和病情轻重的辅助性检查。
下面是yjbys店铺为大家带来的'痰标本采集方法及流程，欢迎阅读。
痰标本分类：
1.常规痰标本：检查痰中细菌、虫卵、癌细胞等
2.痰标本培养：检查痰中致病菌，为选择抗生素提供依据
3.24小时痰标本：检查24小时的痰量，并观察诊断或做浓集结核杆菌检查
采集时间地点：
-- 请在清晨痰量多(含菌量大)时留取
-- 在自己病房完成
需要我怎么做：
1、常规标本
-- 晨起后请用清水漱口
去除口腔中杂质
-- 深呼吸数次后
用力咳出气管深处的痰液
置于标本盒内
2、痰培养标本
-- 晨起后请先用漱口液漱口
再用清水漱口
-- 深呼吸数次后
用力咳出气管深处的痰液
置于无菌标本盒内
-- 如果痰多
可轻咳出最初的部分弃去
然后再用力咳出深部痰液
3、24小时痰标本
晨起漱口后(07：00)第1口痰起
至次晨漱口后(07：00)第1口痰止
全部留在标本盒中送检
温馨提示
-- 留取痰标本时
请不要将漱口液、唾液、鼻涕等混入
如查癌细胞，应用10%甲醛溶液或95%乙醇溶液固定痰液后立即送检
如作24小时痰量和分层检查时，需要时可加少许石炭酸以防腐
-- 请将留好的标本及时放置在病区标本收集处(病区污洗间，大小便放置处)
早晨08:00点前留取可直接放置
其余时间放置时，请告知护士，以便于护士通知及时送检。
痰培养标本采集与运送标准操作规程
鹤壁京立医院痰培养标本采集与运送标准操作规程(SOP)（试行）一、目的正确采集、运送痰标本。
二、内容（一）采集目的一般可用于普通细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培养检测，经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。
（二）一般原则1 采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。
2 宜采集清晨第二口痰液。
3 对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天。
不建议24h内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。
4 怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
（三）采集方法1 自然咳痰法与雾化导痰法用物准备：无菌容器、生理盐水、化验单。
核对患者床号、姓名等。
无痰或痰量极少者可用3%～5%氯化钠溶液5ml雾化吸入约5min后留取痰液。
如有可能，应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。
嘱咐患者留取前摘取牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。
应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。
2 经人工气道吸引法用物准备：负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套、无菌容器、化验单。
核对患者床号、姓名等。
将患者头部转向操作者一侧。
进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开，连接吸引器，调节吸引器至适宜负压（成人：～；小儿：＜）。
将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，检查管道是否通畅。
折叠一次性吸痰管末端，插入口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管与吸引器分离（使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前后需吸入高浓度氧气1～2min）。
将痰液注入无菌容器内，如痰液黏稠可用一次性针筒向吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲入无菌容器内。
（四）运送与保存应在2h内送至实验室，否则应4℃冷藏，但放置时间不可超过24h。
痰标本采集与运送标准操作规程
一、痰液标本
痰培养仅用于下呼吸道感染，主要是肺部感染的诊断。
但它不是诊断肺部感染的最佳标本。
血培养、肺泡灌洗液或经气管吸取物的培养结果更加准确。
痰标本不能进行厌氧菌培养。
痰标本采集前，要判断患者是否有能力配合完成深部咳痰。
要向患者充分说明口腔清洁、深咳、避免口咽部菌群污染的意义，指导患者如何正确留取痰标本。
二、痰标本的采集时间
1．采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。
2．宜采集清晨痰液。
三、采集方法
1.自然咳痰法：嘱咐患者先用温开水漱口数次，以减少长居菌的污染（有假牙的病人应先取下假牙），然后用力咳出气管深部的痰液，吐入无菌痰杯中立即送检。
2.诱导咳痰：对无痰、少痰或痰浓不易咳出者，可用3%生理盐水5ml雾化吸入5min后留取痰液；对于小儿可采取轻压胸骨柄的方法。
3.体位引流：支气管扩张症患者，清晨起床后进行，可采集大量痰标本。
4.对咳嗽乏力或晕迷病人，可用吸痰管经鼻腔或口腔抵达气管腔内取痰。
5.双侧肺部感染伴人工气道如气管切开或气管插管患者，可用吸痰管经人工气道插至支气管水平取痰。
6.对重症、难治或伴免疫或疑似厌氧菌引起的医院内肺部感染，可采用环甲膜穿刺经气管吸引（TTB）、经胸壁毛刷（PSB）或防污染支气管肺泡（PBBL）
90。
痰培养取法
呼吸道标本的采集方法
一．咽拭采集方法
嘱病人在留取标本之前，用清水反复漱口以减少正常菌群的污染。
将拭子越过舌根到咽后壁，反复涂抹数次，注意避免拭子接触口腔和舌粘膜。
二．自然咳痰法
嘱病人清晨起床后，用清水反复漱口，然后用力自气管深部咳出当日第一口浓痰，置无菌容器中尽快送检。
痰量少或无痰的患者可采取雾化吸入10%NaOH水溶液，使痰液易于排出。
注意事项
1 痰液标本以晨痰为佳，咳前需充分漱口，减少口腔正常
菌群的污染。
2 采集的痰液标本必须是肺深部的痰液而不是唾液。
3 标本采集后应及时送检，以防某些细菌在外环境中死
亡。
4 做结核分枝杆菌检查，最好收集24小时痰液。
痰培养标本采集和运送SOP
痰培养标本采集和运送SOP
文件编号：
持有部门：医院感染管理科医务部护理部检验科各临床科室
修订时间：年月
执行日期：年月日
具体内容：
一、采集方法
1. 自然咳痰法：以早晨第一口痰为宜，并且是从气管深部咳出的痰，标本量≥1ml。
清晨进食前，在医护人员指导下，用冷开水反复漱口，深吸气后用力咳出气管深处的痰液于无菌痰盒内，盖好送检。
患者痰液不易咳出时，可在咳痰前叩背，协助排痰；无痰或痰量极少者，可给予雾化吸入，使痰液稀释易于排出。
2. 吸痰法：协助病人取平卧位、头偏向一侧,先用普通吸痰管，吸出气道外部的痰液，然后更换一次性婴儿吸痰器连接吸引器,左手折曲吸痰管，右手持无菌镊夹持吸痰管缓慢送入气道深部，打开负压，痰液会自动收集至吸痰器的无菌瓶内，关闭吸引器,折曲封闭一次性婴儿吸痰器的两个接口后送检。
3. 支气管镜采集法：用支气管镜在肺内病灶附近用导管吸引或用支气管刷直接取得标本，该方法有一定的痛苦，患者不易接受。
4．支气管肺泡灌洗法：由临床医生按相应操作规程进行，吸出支气管肺泡灌洗液送检，培养结果较为可靠。
5．胃内采痰法：适用于无自觉症状的肺结核患者和婴幼儿不会咳嗽时，通过胃管从胃内抽取。
6．填写申请单时，应注明标本来源、检验目的、采样时间和抗菌药物使用情况等相关信息。
二、标本运送
1．已采集的标本应视为潜在性生物危险品，均应置于防渗漏、相对密封的容器中收集、存储与转运。
2．标本采集后应立即送检，不能及时送检，室温保存≤2小时。
三、注意事项
1．严格无菌技术操作，避免标本污染,
2．采集标本尽量在抗菌药物使用之前。
痰培养标本采集与运送标准操作规程
痰培养标本采集与运送标准操作规程目的：正确采集痰培养标本并运送内容：一. 标本来源：痰/气管抽吸物（TA）、支气管肺灌洗吸出液、支气管刷子、气管内管、肺穿刺或活组织等。
二. 容器：洁净、广口、无菌、加盖、密封、防渗漏。
不含防腐剂和抑菌剂，一次性使用。
三. 采集方法清晨痰量多，含菌量亦大，嘱病人先用洁口液，再用清水漱口，以除去口腔中细菌，深吸气后用力咳出1－2口痰于培养皿或瓶中，痰量极少可用45℃10%氯化钠溶液雾化吸入导痰。
建立人工气道，如气管切开或气管插管者，戴无菌手套或用无菌镊子取一次性无菌专用吸痰管，一头缓慢插入气管致隆突（叶支气管）水平，一头接电动吸引器，螺旋式抽吸，吸引痰液。
四.注意事项1．以清晨第二口痰为佳。
防止唾液及上呼吸道分泌物污染。
2．在抗生素使用前采集价值高。
3．连续采集3～4次,采集间隔时间>24h。
五.结果判断1．正常人体的下呼吸道是无菌的，上呼吸道有正常菌群栖居。
2．合格痰的涂片镜检鳞状上皮细胞〈10个/低倍视野，白细胞〉25个/低倍视野，或两者比例小于1：2.5。
3．连续两次分离出相同的病原菌可认为是感染病原菌。
4．经纤维支气管镜和人工气道吸引采集分泌物分离出的细菌可认为是感染病原菌。
5．痰液与血液或胸水中分离到相同病原体，有诊断意义。
6．痰培养常见病原菌为肺炎链球菌、乙型溶血性链球菌、金黄色葡萄球菌、厌氧性球菌、结核分枝杆菌等。
7．痰中的病原菌不少属于机会致病菌，应根据病情判断。
六.临床微生物标本送检的注意事项1．标本及时送检避免干燥，不能及时送检者可暂存4℃冰箱。
如在室温下放置数小时，则定植于口咽部的非致病菌过度生长，而肺炎球菌和流感嗜血杆菌检出率则明显下降。
故标本采集后送检时间不得超过2小时。
2．送检标本应注明来源、检验目的和采样时间，使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境。
3．送检期间要予以安全防护：放标本的容器必须防漏，禁止将渗漏的标本送往实验室。
微生物痰标本处理标准操作程序
痰标本处理标准操作程序1呼吸道标本细菌培养检测结果的准确、可靠。
2深部痰标本或下呼吸道分泌物。
3无菌痰杯或咽拭子。
4BD Phoenix 100 全自动细菌分析仪。
55.1 标本采集5.1.1 采样时机：在抗生素药物使用之前采集清晨第一次痰液送检。
a) 痰标本：最好在应用抗菌药物之前采集标本。
以晨痰为最好。
对支气管扩张症或与支气管相通的空洞患者，清晨起床后进行体位引流，可采集大量痰液。
b)下呼吸道分泌物、支气管纤维镜刷片：也宜早晨空腹采集为佳。
5.1.2 采集方法a) 痰液标本采集患者清晨起床后，用清水反复漱口后用力自气管咳出第一口痰于灭菌容器内，立即送检。
对于痰量少或无痰的患者可采用雾化吸入加温至 45℃的10%NaCl 水溶液，使痰液易于排出。
对咳痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，使其咳嗽，将痰收集于灭菌容器内送检。
b) 环甲膜穿刺吸痰对于一些疑难、病情危重或免疫受损患者继发肺部感染可用一些侵入性诊断技术采集下呼吸道标本。
若采用环甲膜穿刺吸痰法取痰液标本，藉套管针自环甲膜插入消毒塑料管吸取分泌物，作病原体培养，不受口腔、咽部病原体的污染，可较准确地反映下呼吸道及肺部感染的病原菌。
本方法简便实用，阳性率高，结合定量培养可能区别假阳性。
但本检查有轻微创伤性，并发症包括皮下气肿、气管内出血等。
有出血倾向、严重心血管疾病者禁用。
c)纤维支气管镜采集法经(纤支镜)直接吸引下呼吸道分泌物，由于纤支镜通过口咽部时同样受到污染，因此认为也不比咳出的痰更好。
经纤支镜以附刷的双层套导管方式直接采集肺部分泌物，进行细菌、真菌、厌氧菌培养和免疫荧光等检查，往往能可靠地找到感染病原体。
由于其效果尚无法达到完全不受污染的情形，所以应进行定量培养，其细菌浓度＞103cfu/ml 则有意义。
经过临床评估，此种采样方式临床应用价值颇高。
采样时防污染标本刷取样应深入，且应多方向旋转及上下移动，这样取痰可提高痰培养的敏感性。
痰培养采集操作流程
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1. 评估患者。
询问患者的病史和症状。
确定患者是否符合痰培养的适应症。
门诊痰标本采集作业标准
门诊痰标本采集作业标准
◊病人留取标本前清水漱口一深呼吸数次一收腹用力咳出自支气深部的脓样或黏液样痰液一盛于无菌集痰器中一放在标本收取处
◊留取痰找结核杆菌标本时，避免混入漱口液、唾液、鼻涕等
◊做漂浮或浓集结核杆菌检验时，应采集12、24小时内的痰液
◊在治疗期留痰培养标本，应在停药48小时后留取
◊病理学检验以清晨第一口痰标本最适宜；细胞学检验以上午9-10时留痰最好标♦护士根据化验、检查单、姓名给病人标本留取器
本♦核对正确后收回标本
送♦将采集完的标本进行条码扫描
检♦按照送检时间及时送验。
临床痰培养及下呼吸道标本采集指征、采集方法、注意事项和标本运送指南
临床痰培养及下呼吸道标本采集指征、采集方法、注意事项和标本运送指南采集指征有下列体征采集体征：①咳嗽、咳痰，痰液可为脓性、血性、铁锈色或红棕色胶胨阳痰。
②咯血包括泡沫血痰、鲜血和痰中带血等。
③呼吸困难，呼吸急促或哮喘，常伴有胸痛。
④发热伴白细a胞增高尤其是中性粒细胞或CRP、PCT明显增高。
⑤胸部影像学检查提示有感染可能。
采集方法1、自然咳痰法。
以晨痰为佳，咳痰前先用冷开水、纯净水反复漱口三次，然后用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入痰杯中，1h 内送检，尽可能在用抗菌药物之前采集标本。
标本量应＞1ml。
痰量少或无痰者可采用雾化吸入加温至45℃的10%Nacl水溶液，对难于自然咳痰患者可用无菌吸痰管抽取气管深部分泌物。
2、对昏迷、重症、难治或伴免疫抑制或疑是厌氧菌引起的可采用纤维支气管镜采集法、防污染毛刷采集法、支气管肺泡灌洗法、环甲膜穿刺经气管吸引法、经胸壁针穿刺吸引法采集标本，注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群污染。
3、小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将棉拭子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上。
幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以诱发咳痰。
注意事项痰标本不能及时送检者，可暂存4℃冰箱。
室温下延搁数小时定植于口咽部的非致病菌呈过度生长而肺炎链球菌、葡萄球菌和流感嗜血杆菌检出率则明显下降。
标本运送不能及时送检的标本，室温保持＜2h,4℃冰箱保存＜12h。
一般每天只需做一次。
痰及下呼吸道标本失效无意义：1、咽拭子、咳痰、吸出分泌物做厌氧菌培养无意义。
2、申请填写完整无误，标本标识必须唯一。
3、标本容器必须符合规定。
4、痰标本呈水样或唾液样，不能有明显食物残渣、灰尘纸屑。
痰标本采集操作流程及评分标准
4
3
痰标本采集法
（一）目的
根据医嘱采集患者痰标本，进行临床检验，为诊断和治疗提供依据。
（二）注意事项
1、护士在采集过程中要注意根据检查目的选择正确的容器。
2、患者做痰培养及痰找瘤细胞检查时，应及时送检。
3、留取24小时痰液时，要注明起止时间。
痰标本采集操作流程及评分标准
项
目
操作流程及评分标准
分
值
扣分及原因
准
备
质
量
15
分
1、着装整洁、规范洗手、戴口罩;必要时戴手套。（一项不合格扣1分）
2、用物准备：治疗卡、Lis条形码，一次性使用痰杯、手电筒、压舌板，弯盘、纱布、快速手消毒液、清水适量、24h痰标本准备容积约500ml的清洁广口容器，漱口液200ml（物品少备或补备一项扣0.5分，物品摆放不合理扣1分）
8、协助患者取舒适卧位，整理床单元，告知，呼叫器放于随手可触及
15
10
10
10
5
5
全程质量
10
1、告知患者检查目的、采集方法、采集时间
2、指导患者正确留取痰标本，告知患者留取痰液之前要漱口，然后深吸气，用力咳出第一口痰，留于容器中
3、告知患者不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰中
3、检查用物是否符合要求（不符合要求扣3分）
4、核对医嘱，粘贴lis条形码
3
6
3
3
操
作
流
程
质
量
75
分
1、携用物至床旁，核对患者床号、姓名、腕带确认，评估患者身体状况
2、向患者解释标本采集的目的、意义、方法和注意事项，取得配合
3、观察患者口腔黏膜有无异常和咽部情况，查对
痰标本的采集运送、保存验收及处理流程
抽
出
痰
致病菌量少 且>3种
致病菌量 多>3种,
致病菌量多 <3种
无明显
正常菌群生长
优势菌
取优势菌鉴定+药敏
下呼吸道操作流程 （ 二）
取优势菌
鉴定+药敏
离
肺泡灌洗液
内心 菌涂
E<1%,菌落>104CFU/ml
支
及片
气
鳞及
有菌生长
管
状镜 24h细菌生长情况
刷 检
加入1ml生理 盐水或肉汤
稀释
上检 皮中 细性
❖ 支原体肺炎以不典型肺炎表现。近几年发生 率明显上升，占肺炎的10%-20%，临床上约 80%的慢性气管炎病人合并有支原体感染。
❖ 真菌性肺炎是致病性真菌和条件致病性真菌 所引起。目前以条件致病性真菌感染为主， 并呈上升趋势。常见菌以白假丝酵母菌为主， 曲霉、毛霉和隐球菌也常见。
病理状态下的痰
❖ 当气管支气管和肺受到有害因素的刺激或致病菌感 染而发生炎症时，呼吸道的黏膜充血水肿，大量炎 性细胞侵润，血管扩张，渗出增加，粘膜层的杯状 细胞和黏膜下层的腺体增生肥大，黏液分泌大量增 多，有利于清除异物，黏液分泌过多，就加重了纤 毛柱状上皮的负担，不利于黏液的排出，在细菌及 毒素的作用下，产生一些变性坏死组织细胞潴留在 支气管内，黏液和这些变性坏死的组织细胞就构成 了病理状态下的痰。
❖ 经胸壁针刺吸引物对于感染性疾病，只是偶 尔用来诊断一些原因不明的肺炎和免疫缺陷 患者的肺炎或贴近胸壁的肿块病灶的标本采 集。
❖ 胃内采痰法：清晨空腹时，将胃管插入胃内， 用注射器抽取胃液。适用于无自觉症状的肺 结核患者，尤其是婴幼儿不会咳痰，常将痰 液吞入胃内，可通过采集胃内容物作结核分 支杆菌培养。
市人民医院痰标本采集法操作规程
市人民医院痰标本采集法操作规程
目的：
根据医嘱采集患者痰标本，进行临床检验，为诊断和治疗提供依据
评估：
1、询问、了解患者身体状况，向患者解释采集标本的目的、意义、方法及注意事项，取得配合。
2、观察患者口腔黏膜有无异常和咽部情况
准备：
1、护士准备：衣帽整洁、洗手、戴口罩、必要时戴手套
2、用物准备：化验单。
常规痰标本：痰盒。
24h小时痰标本准备容积约500ml的清洁广口容器。
培养标本准备无菌集痰器、漱口溶液200ml.
操作：
1、携用物至患者床旁，核对患者
2、常规标本：患者晨起后漱口，去除口腔中杂质，深呼吸数次后用力咳出气管深处的痰液，盛于收集的痰盒中送检。
如查癌细胞，应立即送检或用95%乙醇或10%甲醛固定后送检。
3、24h痰标本：注明留痰起止时间，嘱患者将24痰吐入容器内，并嘱不可将痰液，漱口水、鼻涕等混入，及时送检
4、培养标本：清晨起床后先用漱口溶液漱口，以清除口腔内细菌，深呼吸数次后用力咳出气管渗出的痰液于无菌集痰器内，立即送检。
昏迷患者可用吸痰法吸取
5、为人工辅助呼吸者吸痰时，要戴无菌手套，将痰液收集器连接在负压吸引器上，正确留取标本
6、分类整理用物，洗手；协助患者取舒适卧位；并做好记录。
整体要求：
1、护士在采集过程中要注意根据检查目的选择正确的容器
2、患者做痰培养及痰找癌细胞检查时，应及时送检。
痰培养标准操作程序
SOP_15-9 痰培养标准操作程序一、痰培养标本采集和运送见本手册《病原微生物标本的采集运送和处原则》。
二、标本验收1.申请单验收：要求痰培养申请单除患者的基本信息以外还应包括标本收集时间、收集方式、是否已使用抗生素等，验收时应检查申请单是否填写完整。
2.标本验收：（1)制成涂片行革兰染色;(2)于显微镜低倍镜下检查(10×10),观察WBC及扁平上皮细胞存在情况,下表作为参考。
痰标本显微镜检查的分类分类※分类中1～3类不做培养,要求重新留取标本;4、5类为合格标本;第6类为气管穿刺液,※如未见到白细胞,而扁平上皮细胞>10/低倍视野,亦应重新留取标本。
（3）特殊要求则作特殊处理,如做抗酸染色查找抗酸菌等。
3.不合格标本处理：(1）对申请单信息不全者应设法与临床医师取得联系；(2）对标识不符、送检容器不合格，送检时间超过规定时间的标本应注明原因，退回，要求重新留取标本，并做记录。
三、实验室检查标本预处理：采用先用20ml生理盐水洗涤两次，经过10ml生理盐水稀释后，加入1%的PH7.6的胰蛋白酶溶液消化90min后接种。
并同时在洗涤后制作原始痰涂片，进行染色镜检。
分离培养:痰标本接种3种培养基,即血琼脂培养基、巧克力琼脂培养基（嗜血杆菌专用）、麦康凯平板。
培养条件：置烛缸普通培养18-24h如无病菌生长时，应将所有培养基继续培养24h。
四、结果观察和报告1.结果观察和评价：2.阴性培养结果报告：无致病菌生长/上呼吸道正常菌群生长。
3.阳性培养结果报告：有意义的阳性培养结果报告：细菌种属名称及标准抗菌药物敏感性试验结果。
痰标本采集法操作程序及评价标准
痰标本采集法操作程序及评价标准
修订时间2014.01 评分者日期
痰标本采集法操作程序
一、操作准备
1．护士准备：衣帽整洁，洗手，戴口罩，必要时戴手套。
2．用物准备：化验单。
常规痰标本：痰盒。
24h痰标本准备容积约500ml的清洁广口容器。
培养标本准备无菌集痰器，漱口液200ml。
二、评估患者
1．询问、了解患者身体状况，向患者解释标本采集的目的、、方法和注意事项，取得配合。
2．观察患者口腔黏膜有无异常和咽部情况。
三、操作要点
1．携用物至床旁，核对患者。
2．常规标本：患者晨起后漱口，去除口腔中的杂质，深呼吸数次后用力咳出气管深处的痰液，盛于收集的痰盆中送检。
如查癌细胞应立即送检或用95%乙醇或10%甲醛固定后送检。
3．24h痰标本。
注意留痰起止时间，嘱患者将24h痰吐入容器内，并嘱不可将痰液、漱口水、鼻涕等混入，及时送检。
4．培养标本：清晨起床后先用漱口溶液漱口，以清除口腔内细菌，深呼吸数次后用力咳出气管深处的痰液于无菌集痰器内，立即送检。
昏迷患者可用吸痰法吸取。
5．为人工辅助呼吸者吸痰时，要戴无菌手套，将痰液收集器连接在负压吸引器上，正确留取标本。
6．分类整理用物，洗手，协助患者取舒适卧位，做好记录。
四、指导患者
1．告知患者检查目的、采集方法、采集时间。
2．指导患者正确留取痰标本，告知患者留取痰液之前要漱口，然后深吸气，用力咳出第一口痰，留于容器中。
3．告知患者不可将唾液、漱口水、鼻涕等混入痰中。
痰培养标本质量控制
痰培养标本质量控制痰培养标本质量控制引言痰培养是一项常见的临床实验室检查方法，用于确定病原体引起的呼吸道感染。
为了确保痰培养结果的准确性和可靠性，标本的质量控制非常重要。
本文将介绍痰培养标本的采集、存储和运送等方面的质量控制措施，以确保实验室可以得到可靠的检测结果。
1. 标本采集1.1 采集时间痰培养标本的采集时间应尽可能在早晨。
这是因为痰在清晨常常较为稠厚，有助于提高痰中病原体的检出率。
1.2 采集方法痰样可通过自主咳嗽或刺激咳嗽来采集。
采集前可以给患者提供清水漱口，以减少口腔中的细菌数量对结果的影响。
患者被要求深吸气，然后咳嗽将痰样吐入无菌容器中。
1.3 标本量痰培养所需的标本量应达到一定的要求，一般为5～10mL。
不足的标本量可能导致病原体无法得到充分的检测。
1.4 标本处理将采集到的痰样进行处理前，应该检查样本的外观，确保没有明显的污染或黏液，否则将会影响病原体的检测。
2. 标本存储和运送2.1 存储温度采集到的痰样应尽快送到实验室进行检测。
在运送过程中，痰样应存放在4℃以下的温度下，以防止细菌的生长和繁殖。
2.2 容器选择痰样应存放在无菌容器中，以避免外部细菌的污染。
常用的容器包括无菌塑料瓶和试管等。
2.3 运送方式痰样的运送方式多样，可以通过特快专递、邮政运输或专门的医院运输系统进行。
在运送过程中，应尽量避免剧烈的摇晃或震荡，以防止痰样的损坏。
3. 质控措施3.1 临床信息记录在进行痰培养之前，必须要有完整的临床信息记录。
这些信息包括患者的年龄、性别、病史、症状等，有助于判断痰中病原体的可能种类。
3.2 培养方法选择适当的培养方法对痰样进行处理。
常用的培养方法包括血培养、肉汤培养和专门的培养基等。
在处理过程中，要严格遵守实验室操作规范，避免污染。
3.3 负对照样本每次进行痰培养实验时，还需要设置相关的负对照样本。
负对照样本是一种不包含病菌的标本，用来验证实验操作的准确性和结果的可靠性。
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鹤壁京立医院痰培养
标本采集与运送标准操作规程(SOP)
（试行）
一、目的
正确采集、运送痰标本。
二、内容
（一）采集目的
一般可用于普通细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培养检测，经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。
（二）一般原则
1 采集标本的最佳时机应在使用抗菌药物之前。
2 宜采集清晨第二口痰液。
3 对于普通细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天。
不建议24h内多次采样送检，除非痰液外观性状出现改变。
4 怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送检。
（三）采集方法
1 自然咳痰法与雾化导痰法
1.1 用物准备：无菌容器、生理盐水、化验单。
1.2 核对患者床号、姓名等。
1.3 无痰或痰量极少者可用3%～5%氯化钠溶液5ml 雾化吸入约5min后留取痰液。
1.4 如有可能，应在医护人员直视下留取清晨第二口痰。
嘱咐患者留取前摘取牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，置无菌容器内。
应尽可能防止唾液及鼻咽部分泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。
2 经人工气道吸引法
2.1 用物准备：负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套、无菌容器、化验单。
2.2 核对患者床号、姓名等。
2.3 将患者头部转向操作者一侧。
2.4 进行手卫生后将一次性吸痰管末端拆开，连接吸引器，调节吸引器至适宜负压（成人：40.0～5
3.3kPa；小儿：＜40.0kPa）。
2.5 将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，检查管道是否通畅。
2.6 折叠一次性吸痰管末端，插入口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度，放开吸痰管末端，轻柔、灵活、迅速地左右旋转上提吸痰管吸痰。
见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管与吸引器分离（使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前后需吸入高浓度氧气1～2min）。
2.7 将痰液注入无菌容器内，如痰液黏稠可用一次性针筒向吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲入无菌容器内。
（四）运送与保存
应在2h内送至实验室，否则应4℃冷藏，但放置时间不可超过24h。