渤海湾浅表海水中产低温蛋白酶适冷菌的筛选

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高产碱性蛋白酶低温菌的筛选及发酵

高产碱性蛋白酶低温菌的筛选及发酵
摘要:从123株南极低温细菌中筛选到1株高产低温蛋白酶的菌株,16S rDNA系统发育分析鉴定 为Pseudoalteromonas。经生长条件优化,羧甲基纤维素钠和蛋白胨分别为发酵培养的最适碳源和 氮源,该菌在初始pH7.0~8.0、10 ℃培养5 d后产酶酶活达0.48 U/mL,约为优化前(0.27 U/mL)的 1.8倍。对粗酶液进行酶学性质初步研究,此酶在pH9.0、30 ℃下活性最高,是一种低温碱性蛋 白酶,在工业领域有很大的应用潜力。 关键词:南极细菌;碱性蛋白酶;筛选;发酵;酶学性质 中图分类号: TS 201.3 文献标志码: A 文章编号:1005-9989(2012)03-0011-05
(1.School of Marine Science and Technology, Harbin Institute of Technology at Weihai, Weihai 264209; 2.Qingzhou Branch of Weifang Tobacco Co., Ltd of Shandong, Weifang 262500)
Abstract: In this study, an effective protease-producing bacterium, named Pseudoalteromonas sp. AN64 by 16S rDNA analysis, was screened from 123 antarctic strains. Growth condition tests showed that strain AN64 cultured at pH7.0~8.0 and 10 ℃ could produce the highest protease activity with carboxymethylcellulose as carbon source and peptone as nitrogen source. After 5 days culture under optimum conditions, the protease activity could reach 0.48 U/mL which was 1.8 times of the initial. Studies on the partial enzyme characters of crude protease showed that the protease had a temperature optimum 30 ℃ and a optimum pH of 9.0, and was a cold-active and alkaline enzyme. Key words: antarctic bacteria; alkaline protease; screening; ferment; enzymatic properties

低温蛋白酶综述

低温蛋白酶综述

低温蛋白酶的研究进展与应用前景摘要:论文从来源,特征,研究方法等方面阐述了低温蛋白酶的研究进展以及其在洗涤剂、食品、废水处理等工业上的应用前景。

关键字:蛋白酶;低温蛋白酶;低温菌Abstact:The paper analyze the development of alkaline cold-active protease from their origin, characteristics, approaches of research and so on. These psychrotrophilic proteases have great potential in the industries of detergent, food, waste water treatment.Key words: protesse; alkaline cold-active protease; psychorophilic bacteria蛋白酶是目前应用最多的酶,占工业水解用酶的60%左右。

目前工业上应用的蛋白酶多数为中温蛋白酶,最适产酶温度在30-35℃,最适酶活在50℃左右。

已广泛应用于洗涤剂、饲料、皮革、食品加工等行业中[1]。

低温酶是指最是催化温度在30℃左右,在0℃仍有一定催化效率的酶,主要有嗜低温菌(psychropiles)和耐低温菌(chrotrophiles)产生。

这些菌的最适生长和产酶温度一般在20℃[7]。

低温蛋白酶具有产酶温度低,最适酶活温度低,在低温下具有更高的催化效率等特点,因而在洗涤剂、饲料、皮革、食品加工上又中温蛋白酶无法取代的优越性,也越来越受到人们的重视。

自70年代以来,世界上已有许多实验室在从事低温蛋白酶的研究,有些低温蛋白酶已用于工业生产。

如由美国华盛顿大学州立大学的海洋微生物学家研究的嗜碱性蛋白酶应用于洗涤剂工业,改变了欧洲传统的热水洗涤方式,节约能源,使加酶洗涤剂在冷水洗涤中发挥显著的效益。

深海适冷菌∑Μ9913产生的低温蛋白酶

深海适冷菌∑Μ9913产生的低温蛋白酶

海洋科学 年 第 卷 第 期深海适冷菌ΣΜ9913产生的低温蛋白酶∗陈秀兰张玉忠王运涛高培基栾裼武山东大学微生物技术国家重点实验室济南中国科学院海洋研究所青岛提要从 深的深海泥样中分离纯化得到 多株分泌蛋白酶的适冷菌 其中 株产低温蛋白酶 本文对其中一株Πσευδοµονασ≥ ° ≥ 生长的适冷性和它产生的蛋白酶的适低温特性进行了研究∀该菌株能够在 ε下正常生长 其最适生长温度为 ε 最高生长温度为 ε∀为一株适冷菌∀该菌株所产蛋白酶的比合成速率在 ε时最高 催化酪蛋白水解的最适温度为 ε 在 ε仍具有 的酶活力∀最适 为 ∀该蛋白酶的热稳定性很低 在 ε保温 即丧失 的活力 ε时的半衰期为为一典型的低温酶∀抑制剂试验表明 该蛋白酶为金属蛋白酶∀关键词深海 适冷菌 低温蛋白酶7 3关于育苗用水的盐度试验中发现 点带石斑鱼发育到后期仔鱼 育苗用水的盐度可逐渐降低到 左右 对鱼无不良影响∀另一方面 育苗要求有较大量的轮虫!桡足类 有时轮虫!桡足类在较低盐度条件下繁殖得更好 或它们是来源于较低盐度的水体∀如果将来源于较低盐度水体的生物饵料投喂到盐度为 ∗ 的育苗池中饵料生物很快沉底 最后大部分死去∀这种情况下 先将育苗用水的盐度逐渐降低 使之与生物饵料的生长环境相适应可以取得较好育苗的效果∀参考文献陆忠康∀现代渔业信息 11 ∗ΤΗΕΤΕΧΗΝΙΘΥΕΟΦΑΡΤΙΦΙΧΙΑΛΦΡΨΡΕΑΡΙΝΓΟΦΕπινεπηελυσµαλαβαριχυσ(Βλοχη&Σχηνειδερ)≤ ∞ ∏ 2 ∏(Αθυαχυλτυρε∆επαρτµεντοφΗαινανΥνιϖερσιτψ,Ηαικου Ρεχειϖεδ:ΚεψΩορδσ:Επινεπηελυσµαλαβαριχυσ ≥ √ ƒ ∏Αβστραχτ× ∏ Επινεπηελυσµαλαβαριχυσ ≥ ∏ ¬ × ∏ √ ∏ ∏ ∏√ ∏ ∏ 2本文编辑 谭雪静 极端环境下微生物的生长特性及其适应极端环境的机制是目前微生物学研究的热点∀低温菌是极端微生物之一 据× 等 年的报道 这计划海洋生物技术主题资助项目 2 2 号∀收稿日期 2 2 修回日期 2 2∞÷° ∞≥≥快报是一群生活在永久低温环境下的细菌 分为嗜冷菌和适冷菌两大类 它们都能够在 ε下正常繁殖生长 前者的最适生长温度都在 ε以下 后者的最适生长温度在 ε左右∀深海环境由于终年低温 因而存在着一个低温生态系统 包括多种低温动物和微生物∀目前 深海生物多样性和生物资源开发是一个正在兴起的热点∀有许多新的生物种类!新药物和新酶等资源有待于研究和开发∀深海低温生物经过长期的进化适应 有着适应低温环境的特殊结构与代谢机制∀它们所产的酶在低温下有着比中温酶更高的催化效率∀根据 × 等 年的定义 通常把最适催化温度在 ε左右 在 ε左右仍有一定催化效率的酶称为低温酶∀低温酶在许多行业中具有很高的应用价值∀蛋白酶是目前应用最多的一种酶∀但目前所用的基本上都是中温酶 最适酶活温度一般都在 ε左右 而由低温菌产生的低温蛋白酶的最适酶活温度基本都在 ε以下 而且 菌的最适产酶温度一般都在 ε以下≈ ∀因此 低温蛋白酶应用在食品!洗涤剂!化妆品!水产饲料等工业上 有着中温蛋白酶无法取代的优越性∀自 年代以来 世界上已有许多实验室在从事低温蛋白酶的研究∀已从海水!嗜冷的鱼类和贝类以及高山!南北极泥土等样品中分离到产低温蛋白酶的菌株≈ ∀一些低温蛋白酶已经分离纯化 对其中一些酶的结构和适冷机制也进行了研究≈ 有的已应用到洗涤剂的生产中∀但到目前为止 尚未见有从深海泥样中分离到产低温蛋白酶菌株的报道∀本实验室与中科院海洋所合作 从 深的海底泥样中分离到 多株产蛋白酶的低温菌 其中 株为产低温蛋白酶的低温菌∀经过筛选比较后 对° ≥ 菌株的生长与产酶特性!酶学性质进行了初步的研究∀材料和方法1.1样品采集由中国科学院海洋研究所地质研究室用科学一号考察船采自日本冲绳槽海域 β χ β χ∞ 深度为 的海底泥样∀1 2培养基斜面 培养基牛肉膏 鱼蛋白胨 琼脂 陈海水 ∀筛选培养基配方同文献≈ ∀用陈海水代替蒸馏水 ∀双基质固体平板筛选培养基配方与制作参考 √ 等 年的方法∀生长与产酶培养基参考 × 等 年的方法略加修改∀乳糖 甘油 豆粕汁 酵母汁 ≥ # ° ° # ≤ ∀摇瓶产酶培养基玉米粉 麸皮 豆粕 ° ° ≤ ≤ 陈海水 ∀1 3蛋白酶酶活力测定参考张树政≈ 的方法∀反应时间 酶活力为在一定温度下 每分钟催化酪蛋白水解生成 酪氨酸的酶量为 个单位 ∀结果与分析2 1产低温蛋白酶的耐冷菌的分离将约 的泥样放入有玻璃珠的 的无菌海水中 将泥样用玻璃珠振荡打散 在 ε下 振荡 ∀取上清用无菌海水稀释后涂筛选培养基平板 ε下培养 共挑取有酪蛋白分解圈的菌 多株 平板分离纯化 然后保藏在 斜面培养基上∀将得到的产蛋白酶的低温菌株接种于摇瓶培养基 三角瓶 ε 振荡培养 ∀培养液离心 上清液分别加入 个双基质固体筛选培养基平板上的小孔中 每孔 Λ 分别放在 ε下保温 ∀保温后比较同一株菌的酶液在不同温度下的分解圈的大小∀结果表明 所有菌株在 ε下的分解圈都小于 ε与 ε的分解圈 有 株菌 ε的分解圈大于 ε的分解圈 有 株菌 ε的分解圈与 ε的分解圈几乎相同 其余菌株均为 ε下的分解圈最大∀取 ε下的分解圈大于 ε下的分解圈的 株菌 测定其在 ∗ ε下的蛋白酶活性 结果表明 在底物酪蛋白浓度为 为 时的最适酶活温度均为 ε 图 通过比较这几株菌的产酶量 酶的热稳定性等 选用° ≥ 菌株做进一步的研究∀2.2Π.ΣΜ9913的菌株特征与鉴定° ≥ 的菌落为圆形 光滑 培养基上呈土黄色 稍粘 ° ≥ 菌株的特征见表 ∀为一杆状革兰氏阴性菌 大小为 ∗ Λ ≅ Λ 初步鉴定为Πσευδοµονασ属∀2.3温度对Π.ΣΜ9913菌株生长与产酶的影响° ≥ 的自然生长环境温度为 ε∀° ≥ 在 ε时在液体 中进行表面静止培养时 左右进入指数生长期 达到 ⁄ ∀采用生长与产酶培养基在不同的温度下进行摇瓶培∞÷° ∞≥≥快报≥ ∂海洋科学 年 第 卷 第 期图株低温菌所产蛋白酶在不同温度下的酶活力比较ƒ≤ √ √∏ ∏ 养 结果表明 ° ≥ 能够生长的最高温度为ε在 ∗ ε范围内 ° ≥ 在不同温度下随时间的生长和蛋白酶的合成状况如图 所示∀细菌的最适生长与酶合成温度一般分别由其比生长速率和酶合成比速率来表征∀由 ∏ 方程Ντ=Ν Λτ求解出比生长速率Ν Ντ分别指在τ τ时菌的生长量;Λ为比生长速率根据此公式利用图 中的数据求出该菌的比生长速率Λ ∀蛋白酶的比合成速率Λ∞ 即单位重量菌体内酶的合成速率 可根据下面公式计算∀ΛΝτ/Ντ τ图菌株° ≥ 在不同温度下的生长状况和蛋白酶合成状况ƒ∏ √ ∏ √ ° ≥ ∏根据此公式利用图 中的数据求出蛋白酶的比合成速率Λ∞∀° ≥ 在不同温度下的比生长速率Λ∞ Ν# Ντ表1 Π.ΣΜ9913菌株的形态和生化特征Ταβ.1ΜορπηολογιχαλανδβιοχηεµιχαλχηαρατεριστιχσοφστραινΠ.ΣΜ9913形态特征结果生化特征结果形状杆状色素黄色革兰氏染色氧化酶 芽孢过氧化氢酶 鞭毛单根 极生∂ ° 试验 运动性试验 明胶液化 需氧性∞÷° ∞≥≥快报≥ ∂图温度和 对蛋白酶酶活和稳定性的影响ƒ∞ ∏ √ ¬° ≥ 制剂∀在酶的稀释液中分别加入终浓度为 的∞⁄× ° ≥ƒ 2°后测定酶活性 结果表明° ≥ƒ对° ≥ 所产蛋白酶活完全不抑制 而∞⁄× 可抑制 2°可抑制 表说明该蛋白酶不是丝氨酸蛋白酶而很可能是金属蛋白酶∀但是 金属螯合剂∞⁄× 与 2°不能完全抑制其活性 说明其中还可能有其他的蛋白酶成分 有待于纯化后确定∀讨论建立了一种筛选产低温蛋白酶菌株的简便有效的方法利用此法从 深的海底淤泥中 分离得到的 多株产蛋白酶的低温菌∀尽管这些低温菌都能在低温 ε 下良好生长 但这些菌株所产的蛋白酶的最适酶活温度差异较大∀海洋是一个开放的环表2 蛋白酶抑制剂对Π.ΣΜ9913所产蛋白酶活力的影响Ταβ.2 ΕφφεχτσοφινηιβιτορσοντηεαχτιϖιτψοφτηεπροτεασεεξχρετεδβψΠ.ΣΜ9913抑制剂终浓度残留蛋白酶活力∞⁄× 2° ° ≥ƒ和蛋白酶的比合成速率如图 所示∀从图 可以看出 ° ≥ 菌株在 ε左右生长速率最高 在ε左右酶合成速率最高而产中温蛋白酶的中温菌一般在 ε以上生长速率和酶合成速率最高∀这表明 ° ≥ 具有适低温的特征∀根据 等 年对低温菌的定义和分类该菌株为适冷菌∀图温度对菌株° ≥ 的生长速率和蛋白酶合成速率的影响 数据来自图ƒ∞ ∏ ° ≥ ⁄ √ ƒ2.4Π.ΣΜ9913菌株所产低温蛋白酶的酶学特性最适酶活温度在底物酪蛋白浓度为下 测定° ≥ 所产蛋白酶在 ∗ ε范围内不同温度下的酶活∀结果表明 该蛋白酶在这个条件下的最适酶活温度为 ε 图 ∀测定° ≥ 所产蛋白酶在 ε的酶活表明该蛋白酶在 ε仍具有 的酶活力∀最适 用至 的不同的缓冲液稀释酶液 分别加入相应 的 的酪蛋白 在 ε下测定酶活力 结果表明 ° ≥ 所产蛋白酶在 时的酶活最高 图 ∀热稳定性将酶液在 ε与 ε下分别保温不同时间 然后测定残留酶活∀° ≥ 所产蛋白酶对热非常敏感 在 ε时的半衰期为 ∀在 ε与 ε下保温残留酶活仅为最大酶活的 和 图 ≤ ∀2.5抑制剂对酶活的影响根据反应中心的不同 蛋白酶可分为金属蛋白酶!丝氨酸蛋白酶等 不同的抑制剂可抑制不同类型的蛋白酶 苯甲基黄酰氟 ° ≥ƒ 为丝氨酸蛋白酶的抑制剂 而∞⁄× !邻菲罗啉 2° 为金属蛋白酶的抑∞÷° ∞≥≥快报海洋科学 年 第 卷 第 期境 在深海海底的低温生态环境中生长的低温菌 有些可能起源于海底生态环境 有些可能来自海洋的表面或来自大气!河流等在深海海底生存的微生物 在长期的适应进化中 都形成了能够在低温下生长的特性 这是生存所必需∀但所产的蛋白酶的特性并不尽相同∀过去通常习惯把低温菌和低温酶相提并论 但现在看两者的关系并不象以前认为的那样密切∀如作者分离到的 多株产蛋白酶低温菌中 仅 株产低温蛋白酶 其余产的都不是典型的低温蛋白酶∀说明蛋白酶分子的适应进化与菌株生长的适应进化是不同步的∀在以前的报道中 只是对产低温蛋白酶的低温菌在不同温度下的生长量和蛋白酶活性进行了研究 由此推断菌株的最适生长温度和产酶温度≈ ∀但采用生长量和蛋白酶活性反映菌株的最适生长温度和最适产酶温度并不十分准确≈ ∀本文以菌株在不同温度下的比生长速率和蛋白酶的比合成速率为指标 对° ≥ 的最适生长温度和最适产酶温度进行了详细的研究 结果表明 ° ≥ 的最适生长温度为ε最适产酶温度为 ε∀运用这种方法得出的最适生长温度和最适产酶温度比较准确∀低温酶一般具有产酶的最适低温度 最适酶活低温度 在低温下催化效率高 但热稳定性差等特征≈ ∀等 年从海拔 的高山泥土中分离的低温菌Ξαντηοµονασµαλτοπηολια产生的低温碱性金属蛋白酶 最适酶活温度 ε 最适 值在 ε下保温酶活性下降 ∀该高山低温菌产生的蛋白酶特性与中温菌差异不大∀≥ 等≈报道 从海洋贝壳中分离的低温菌Αλτεροµονασ产生的产低温碱性金属蛋白酶最适酶活温度 ε 最适 ∗ ε下酶活下降 ∀ 等≈从海洋冷水鱼的消化道中分离的低温菌Πσευδοµονασ产生的金属蛋白酶最适酶活温度为ε ε下 酶活丧失 是目前已经报道的低温金属蛋白酶中酶活最大酶活温度最低!热稳定性最差的蛋白酶∀但该蛋白酶的最适 为中性金属蛋白酶∀从深海淤泥中分离的耐冷菌° ≥ 所产的低温蛋白酶 最适酶活温度 ε 最适 酶活性被∞⁄× 所抑制 是目前报道的酶活温度最低的碱性金属蛋白酶∀该蛋白酶热稳定性非常差 ε下酶活即丧失 较 等≈报道的低温中性金属蛋白酶的热稳定性还差 是目前报道的金属蛋白酶中热稳定性最差的蛋白酶 这可能与该菌株长期生活在低温 ε 环境中有关深海淤泥是分离低温微生物与低温酶的良好材料∀有关° ≥ 所产低温蛋白酶的分离纯化!酶学特性及嗜冷机制正在进一步研究之中∀深海微生物资源是目前国际上极端微生物研究的热点之一≈ 本文从深海淤泥中筛选到产低温蛋白酶的耐冷菌 并对其生长与产酶特性和粗酶性质做了初步研究 为今后低温酶的嗜冷机制研究及其在水产!洗涤剂!化妆品!皮革!食品等工业上的应用研究奠定基础∀参考文献张树政∀酶制剂工业∀北京 科学出版社 ∀ 高培基!曲音波!钱新民等∀微生物生长与发酵工程∀济南 山东大学出版社 ∀× εταλ..ΛεττερσινΑππλιεδΜιχροβιολογψ,≥ εταλ..Βιοσχι.Βιοτεχη.Βιοχηεµ., 61∏ √ Αππλ.Ενϖιρο.Μιχροβιολ., 65≤ εταλ..ΒιοχηιµιχαετΒιοπηψσιχαΑχτα,ΠΣΨΧΗΡΟΤΡΟΠΗΙΛΙΧΑΛΚΑΛΙΝΕΠΡΟΤΕΑΣΕΦΡΟΜΑ∆ΕΕΠΣΕΑΠΣΨΧΗΡΟΤΡΟΠΗΙΛΙΧΣτραινΠσευδοµονασσπ.ΣΜ9913≤ ∞ ÷ ∏2≠∏2• ≠∏ 2 ° 2÷ 2 ∏ΣτατεΚεψΛαβοφΜιχροβιαλΤεχηνολογψ,ΣηανδονγΥνιϖερσιτψ,ϑιναν,ΙνστιτυτεοφΟχεανολογψ,ΧηινεσεΑχαδεµψοφΣχιενχεσ,Θινγδαο, Ρεχειϖεδ: √ΚεψΩορδσ:⁄ ° °Αβστραχτ¬∏ ∞÷° ∞≥≥快报≥ ∂∞÷° ∞≥≥快报¬ × ¬ )))Πσευδοµονασ ≥ ° ≥ ∏ ≥ ° ≥ ∏ ε × ∏ ∏ ∏ ε ∏ ε ∏ ° ≥ × ∏ ∏ ε × ∏ ∏ ε √ × ∏ √ ∏ ∏ ε × ∏ × √∞⁄×本文编辑 刘珊珊 6个虾种基因组∆ΝΑ多态性分析∗许玉德孙晟厦门大学生命科学学院中国科学院海洋研究所青岛提要采用 °⁄方法检测了罗氏沼虾 Μαχροβραχηιυµροσενβεργιι)!绿须虾(Αριστευσϖιριλισ)!长毛对虾(Πεναευσπενιχιλλατυσ)!日本对虾(Π.ϕαπονιχυσ)!斑节对虾(Π.µονοδον)和周氏新对虾(Μεταπεναευσϕοψνερι 等 个虾种的基因组⁄ 的多态性∀用 个随机引物扩增得到 个⁄ 片段 根据这些片段的共享度计算出遗传距离并构建系统树∀所得结果从⁄ 水平上反映出虾类在科属种不同分类阶元亲缘关系的远近 并为虾类现行的分类系统提供了分子生物学依据∀关键词虾类 基因组⁄ 随机扩增多态性⁄随机扩增多态性⁄ °⁄ 技术是以检测物种基因组⁄ 多态性为目的能够高效!准确地提供许多个体基因组的许多位点的⁄ 序列多态性数据 并且可以此作为分子遗传标记 研究物种间的亲缘关系和系统进化 在生物的遗传多样性!物种的分类和遗传育种研究等方面已经得到了广泛的应用取得了可喜的进展≈∀作者用 °⁄技术研究十足目中分属于 个科 个属的 个虾种的基因组⁄ 的多态性 从⁄ 分子水平上分析虾类在不同分类阶元的遗传差异和分子标记为虾类资源的分类鉴定和系统进化研究提供分子遗传学依据∀材料与方法1 1材料实验动物试验用虾购自福建省厦门市同安区养虾场和水产交易市场 共 种 罗氏沼虾 Μαχροβραχηιυµροσενβεργιι),绿须虾(Αριστευσϖιριλισ),长毛对虾(Πεναευσπενιχιλλατυσ),日本对虾(Π.ϕαπονιχυσ),斑节对虾(Π.µονοδον)和周氏新对虾(Μεταπεναευσϕοψνερι)∀主要试剂随机引物购自 公司× 酶购自°公司 琼脂糖为≥ 公司产品 其余均为国产分析纯试剂≈ ∀仪器°≤ 仪为美国°∞公司产品 型号° ∞ ≤ ∏ ⁄ × ≤ ∀1 2方法基因组⁄ 的提取和纯化每种虾取 尾 从其尾部取等量肌肉组织剪碎混合 ° ≥液漂洗 取 样品加 ×∞缓冲液 × 2 ≤ ∞⁄× 冷冻匀浆 加 体积≥⁄≥混匀 ε水浴离心 取上清 用等 福建省厦门市同安区水产局高级工程师张庆勉协助实验材料的采集和鉴定工作 特此致衷心感谢∀收稿日期 2 2 修回日期 2 2。

渤海和北黄海海域沉积物中可培养产蛋白酶、脂肪酶细菌的多样性研究

渤海和北黄海海域沉积物中可培养产蛋白酶、脂肪酶细菌的多样性研究

渤海和北黄海海域沉积物中可培养产蛋白酶、脂肪酶细菌的多样性研究渤海和北黄海是中国重要的海域之一,其海洋生物多样性在生态系统中起着重要的作用。

海洋细菌是海洋生态系统中重要的微生物群体,它们在海洋污染治理和生物资源开发中具有重要的潜力。

本文通过对渤海和北黄海海域沉积物中可培养产蛋白酶、脂肪酶细菌的多样性进行研究,以期为海洋微生物资源的开发利用提供参考。

为了获取渤海和北黄海海域沉积物样品,我们在不同的站位采集了一系列样品。

通过将采集到的样品进行稀释均匀后接种于不同的培养基上,我们成功地分离获得了多个细菌菌株。

通过形态观察、生理生化特性检测以及16S rRNA基因序列分析,我们确定了每个细菌菌株的菌种。

在菌株的分类过程中,我们发现了多种产蛋白酶、脂肪酶的细菌,包括柠檬酸细菌、副溶血弧菌、嗜盐菌等。

其中,柠檬酸细菌是一类广泛存在于海洋环境中的细菌,它们具有较高的产蛋白酶和脂肪酶活性。

副溶血弧菌则是一类产生多种外源蛋白酶和脂肪酶的细菌,在海洋环境中起着重要的生态功能。

通过对菌株的酶活性分析,我们发现这些细菌在产蛋白酶、脂肪酶方面具有较高的活性。

这些酶活性对于海洋生物的生长和代谢具有重要的调控作用,也为海洋生态系统中的有机质降解提供了重要的能源。

此外,我们发现不同菌种之间的酶活性存在差异,这表明不同的细菌在海洋环境中具有不同的功能和适应性。

综上所述,渤海和北黄海海域沉积物中的可培养产蛋白酶、脂肪酶细菌具有较高的多样性。

这些细菌在海洋环境中具有重要的生态功能和潜力,在海洋微生物资源的开发利用中具有重要的应用价值。

然而,由于海洋微生物的复杂性和多样性,目前我们对海洋细菌的了解还不够全面。

因此,我们需要进一步开展深入的研究,以充分发掘海洋微生物资源的潜力,为海洋环境的保护和可持续利用提供科学依据综合上述研究结果,我们确定了渤海和北黄海海域沉积物中的可培养细菌菌种,并发现了多种产蛋白酶和脂肪酶的细菌,包括柠檬酸细菌、副溶血弧菌和嗜盐菌。

产低温蛋白酶海洋细菌的筛选及发酵条件

产低温蛋白酶海洋细菌的筛选及发酵条件

1 材 料和 方 法
11 样 品采集 .
20 09年 1 0月上旬于渤海秦皇岛海域东经 196 北纬 3 。3附近 , 1。0 , 99 采集海水样品共 2 份。 0
12 培养基 .
121 营养琼脂培养基 牛肉膏 5 / , .. L蛋白胨 1 / , 2 / , g 0gL琼脂 0gL作为菌体初筛和斜面菌种保藏用 。 122 筛选培养基 葡萄糖 05 L K 2O 05sL K H O 05sL 酪蛋 白 1 / , .. . , H P 4 . / , 2 P 4 . / , 0gL 琼脂 2 / , OgL 用于筛选蛋白酶产生菌。 12 3 种子培养基 葡萄糖 5 L蛋 白胨 1 L 。. , O 。 12 4 基础发酵培养基 葡萄糖 05g L K H 0 . / , H P 4 . / , .. . / , 2 P 4 5sL K 20 5gL 蛋白胨 1 L 0 0 O 。以上培 养基 p . 74均用陈海水代替蒸馏水配制 , 1 H72— ., 1 ℃灭菌 3 i。 2 0mn
15 1 培养时间对菌株产酶的影响 挑 1 .. 环菌株接入种子培养基 ,8 mn 震荡培养 1 , 10 / i, r 2 以体积分 h 数为 00 的菌液转接发酵培养基 , 0r i, .1 1 rn 2 8 / a 5℃震荡培养 , 分别培养 1 ,43 ,8 6 , , 22 ,6 4 ,07 h测定发 2 酵液中蛋白酶活力 。
株 H M.6 初步鉴定 为黄 色杆菌属 , Y 1, 设计单 因素和正交试 验 , 确定该菌 的最 佳发 酵条 件。结果表 明, 在装液
量 5 L 0m 液体培养基 的 20 L三角瓶 中, 5 m 以体积分数 00 的接种量、 .1 摇床转速 10r i 条件下 , 8 rn / a 2 5℃培养

一株产低温碱性蛋白酶海洋细菌Pseudoalteromonas flavipulchra HH407的筛选与生长特性

一株产低温碱性蛋白酶海洋细菌Pseudoalteromonas flavipulchra HH407的筛选与生长特性
岛 26 7) 6 0 1

要 :对从连 云港 海域 筛选的一株 产低 温碱 性蛋 白酶 的 海 洋适 冷 茵 HH4 7进行 的鉴 定 和生 长 0
特性研 究结 果表 明 , 茵为革 兰氏 阴性 杆 菌 , 该 好氧 , 生鞭 毛 , 芽孢 及 荚膜 , 端 无 大小 为 O 4 . m . ~O 7

李 丹 , 陈 丽。 李 富超 王 淑 军。 李华钟 , , , ,
( .江南大 学 医药 学院 , 苏 无 锡 2 4 2 ;2 1 江 1 1 2 .江 南大 学 工 业生 物技 术教 育部 重点 实验 室, 苏 江 无锡 2 4 2 ; .淮海工 学院 海 洋学 院, 112 3 江苏 连 云港 2 2 0 ; .中国科 学院 海洋研 究所 , 20 5 4 山东 青
cr h a。该 茵 的生长 温度范 围为 0 0℃ , ~4 最适 生 长温 度 为 2 0℃ ; H 范 围 为 5 5 1 . , p . ~ 10 最适 生 长
p 值 为 8 5 Na 1 量 浓 度 范 围 为 0 5 1 / L, 适 生 长 Na 1 量 浓 度 为 4g d 无 N C 时 H .; C 质 . ~ 3g d 最 C质 / L, a1
Ai ln o e s ka i e Pr t a e
I n , CHEN i, A Da L。
LIFuc a ‘ W ANG h — u 。 —h o , S uJ n ,
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( .S h o f e ii ea d P a ma e tc ,Ja g a ie st ,W u i 1 1 2 Ch n 1 c o l d cn n h r c u is in n n Un v r iy o M x 4 2 , ia;2 2 .Ke a o a o y o n u — yL b rt r f d s I

产低温蛋白酶极地菌株的筛选及Pseudoalteromonas sp. QI-1产蛋白酶粗酶性质

产低温蛋白酶极地菌株的筛选及Pseudoalteromonas sp. QI-1产蛋白酶粗酶性质
2 .国家海 洋局 第一海 洋研 究所 海 洋生 物活 性物质 重点 实验 室 , 岛 2 6 6 ) 青 6 0 1

要 : 过 酪蛋 白平 板 法从 实验 室极 地 微 生 物 资 源 库 中 筛 选 到 10株 在 低 温 条 件 ( 通 3 4℃ ) 具 有 蛋 白酶 活性 的 菌 下
fo t e p lrmir b a e o r e y a c s i lt t o rm h o a c o ilr s u c s b a en p ae meh d, a d t e p y o e e i n lss o h ta n n h h lg n t a ay i f t e sr i s c wi a g rc s i y r lz to a o sc ri d o t T e u t h we h t8 ioae t ihe rt — t lre a en h d o y ain h lswa are u . her s lss o d t a s lt swi h g rp oe h h a e a t i eo g d t e d a trro a ,5 wel,S e n Ua a d Ps c o a tr e p cie y B sn s ci t b l n e oPs u o l on n s bl l vy e i h wa e n y hrb ee ,r s e tv l . y u i g
c a atrs c fcu ep oe s x rtdb su o l rmo a p h r cei iso r d rtaee cee yP e d at o n ss .QI1 t e -
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低温几丁质酶生产菌的筛选鉴定与产酶条件研究

低温几丁质酶生产菌的筛选鉴定与产酶条件研究
印染 、造 纸 、农业 、环 保等 方 面都 有广 泛 用途 ‘ 4 J 。
海 洋 约 占地 球 表面积 的 7 0 %, 具有 高盐 ( 3 . 5 %) 、
高压 (>1 0 0Mp a )、 低 温 、低光 照 、寡营 养等特 点 ,
以及 无光 照 、局 部 高温 ( 4 0 0 ℃ )等 极端 生态 环境 , 其 中平均 温度 为 5 ℃的海 水 占总海 水 的 9 0 %, 为适 应 低温 环境 , 在 其 中生活 的微 生物 , 必 然具 备低 温环 境 下 高催化 活性 的酶 系[ 8 - 1 0 1 。本研 究从 海洋 底 泥样 品 中 筛 到高产 低温 几丁 质酶 菌株 , 并 通过 形态 学对 其进 行 鉴定, 详 细优 化 其生长特 性 与产 酶 条件 ,旨在获 得新 酶源 微 生物 资源 , 为酶 的 克隆表 达及 工业 生产 奠 定基
石 出 。
自然 界 中几 丁质 的 降解 主 要 通 过产 几丁 质 酶 的微 生 物 代谢 完成 。 几 丁质 酶( C h i t i n a s e , E C3 . 2 . 1 . 1 4 ) 是 专一 降解 几丁 质 为几 丁寡 糖或 几 丁单糖 的 一组酶 的 总称p J 。主 要 由 内切几 丁质 酶 ( c h i t i n a s e ,E C 3 . 2 . 1 . 1 4 ) 、外 切几 丁质 酶 ( c h i t i n a s e ,E C 3 . 2 . 1 . 1 4 )和 1 3 - N一 乙酰 己糖 胺 酶
至一 8 ห้องสมุดไป่ตู้ ℃。
的作 用[ 5 - 6 1 。根 据 几丁 质酶 氨 基酸 序 列 同源 性不 同, 将 其 分为 1 8和 1 9两个 家族 。其 中 , 1 8家族几 丁质

海洋低温淀粉酶菌株的筛选、鉴定及酶学性质研究

海洋低温淀粉酶菌株的筛选、鉴定及酶学性质研究
2 . L i a o n i n g T e c h n o l o g yo fM a r i n e Mi c r o b i o l o g i c a l E n g i n e e r i n gRe s e a r c h Ce nt e r , Da l i a n 1 1 6 6 2 2 , Ch i n a ;
me t h o d p r e l i mi n a r y s c r e e n i n g a n d s h a k e l f a s k f e r me n t a t i o n s e c o n d a r y s c r e e n i n g , a n d t h e e n z y me a c t i v i t y wa s 6 . 2 5 U/ m1 . T h r o u g h mo r p h o l o g i c a l ,
3 . S c h o o l o f Li f e S c i e n c ea n dBi o t e c no h l o g y , Da l i n a U n i v e r s i t yo fT e c h n o l o g y , Da l i n a 1 1 6 0 2 4 Ch i n a j
摘 要: 以大 连 黄 海海 泥 和 海水 为样 品 , 采用 稀 释 涂布 板 透 明 圈法 初 筛 、 摇 瓶 发酵 复筛 , 得 到 一 株 淀粉 酶 高 产 菌Z X S . 5 , 测得 酶 活
为6 . 2 5 I 『 / 瑚I , 。 通 过 形态 学 、 生 理 生化 及 1 6 S r D N A序 列鉴 定 , 菌株 Z X S 一 5 为 荧光 假单 胞 菌 ( P s e u d o mo n a s l f u o r e s c e n s ) 。该酶 的最适 作 用 温度为2 5℃, 酶 的热 稳 定 性 相 对 较 差 ; 最适作用p H值 为 8 . 0 , 属于碱性酶, 该 酶 在 酸 性 条件 下稳 定性 较 差 ; B a 、 C u 2 + 、 乙二 胺 四 乙酸 ( E DT A ) 对 该 酶 抑制 性 较强 , F e 、 z n 、 Mn 2 +  ̄ j - 该酶 的 活性 影 响不 明显 , Mg + 2 , N a 对 该 酶激 活 作用 较 弱 , C a 2 + X  ̄ " 该 酶激 活作 用较 强 。 关键 词: 低 温 淀粉 酶 ; 鉴定; 荧光 假单 胞 菌 ; 酶学 性质 中 图分 类 号 : Q9 3 — 3 3 1 文 章编 号 : 0 2 5 4 — 5 0 7 1 ( 2 0 1 7 ) 0 8 ~ 0 0 5 7 — 0 5 d o i : l 0 . 1 1 8 8 2 / j . i s s n . 0 2 5 4 — 5 0 7 1 . 2 0 1 7 . 0 8 . 0 1 3

海洋高产低温葡萄糖氧化酶菌株的筛选、鉴定及酶学性质研究

海洋高产低温葡萄糖氧化酶菌株的筛选、鉴定及酶学性质研究

海洋高产低温葡萄糖氧化酶菌株的筛选、鉴定及酶学性质研究李蓉'乔慧'王晓辉'张庆芳U,迟乃玉(1.大连大学生命科学与技术学院,辽宁大连116622;2.辽宁省海洋微生物工程技术研究中心,辽宁大连116622)摘要:从黄海和渤海海泥样品中筛选高产低温葡萄糖氧化酶(GOD)菌株并进行鉴定,对其所产GOD的蛋白分子质量和酶学性 质进行初步研究。

获得一株高产葡萄糖氧化酶菌株(编号G01),根据菌株形态特征及ITS序列分析,初步鉴定该菌株为壳青霉 (Penicii/iurncrustosum)。

结合十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳和酶谱分析,得出菌株G01所产葡萄糖氧化酶分子质量约为95 ku,初步判断为五聚体,为一种新酶。

酶学性质研究表明:该酶最适反应温度为25 T;,在0 T;时仍保留有50%以上的酶活,热稳定性差,为典型低温酶;最适反应pH值为4.5,对pH敏感;能促进酶活,K+、Na+对酶活基本无影响;而以32+{32+以氏+、以2+、特别是?^+对酶活 有明显抑制作用。

酶学性质表明该酶作为一种新酶,在低温和水产饲料领域有良好应用前景。

关键词:低温葡萄糖氧化酶;壳青霉;筛选;鉴定;酶学性质中图分类号:Q93-331 文章编号:0254-5071 (2018)05-0017-05 doi:10.11882/j.issn.0254-5071.2018.05.004Screening, identification and enzymatic properties o f a high-yield low-temperature glucoseoxidase-producing strain from marineLI Rong1,2, QIAO Hui1,2, WANG X iaohui^ ZHANG Qingfang1,2, CHI Naiyu1#(J.Colleg^e ofL^ife Scien^ce and Biotechnology, Dalian University, Dalian 116622, China;2.Liaoning Technology o f M arine M icrobiological Engineering Research Center,Dalian 116622, China)Abstract: The strains with high-yield glucose oxidase (GOD) production from the marine mud sample of Huanghai and Bohai Sea were screened and identified. Then the protein molecular mass and enzymatic properties of glucose oxidase were preliminarily studied. Finally,a strain named G01 with high-yield glucose oxidase production was obtained,and based on the morphological characteristics and ITS sequence analysis of the strain; it was identified as Penicillium crustosum.By sodium dodecyl sulphate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) and zymogram tests,the glucose oxidase produced by strain G01 had a molecular mass of approximately 95 ku,and was preliminarily judged as a pentamer and was a novel enzyme. The optimum reaction temperature of the enzyme was 25 V,.It still retained more than 50% of the enzyme activity at 0 V,,and its thermal stability was poor that indicated it was a typical low-temperature enzyme. Its optimum reaction pH was 4.5, and it was sensitive to pH. Mn2+ promoted the en­zyme activity; K+ and Na+ had no effect on enzyme activity; while Mg2+,Ca2+,NH4+,Cu2+,especially Fe3+,significantly inhibited the enzyme activity. The enzymatic properties indicated that the enzyme,as a new enzyme,had a good application prospect in the cryogenic and aquatic feed field.Key words:low-temperature glucose oxidase; Penicillium crustosum; screening; identification; enzymatic property葡萄糖氧化酶(glucose oxidase,GOD)EC1.1.3.4 是一类同源二聚体糖蛋白酶,能够以分子氧为电子受体,高效催 化葡萄糖转化为葡萄糖酸并产生过氧化氢[1-2]。

海洋低温脂肪酶菌株的筛选鉴定、诱变育种及酶学性质研究

海洋低温脂肪酶菌株的筛选鉴定、诱变育种及酶学性质研究

魏计东,于 爽,张庆芳,等.海洋低温脂肪酶菌株的筛选鉴定、诱变育种及酶学性质研究[J].江苏农业科学,2018,46(15):195-200.doi:10.15889/j.issn.1002-1302.2018.15.052海洋低温脂肪酶菌株的筛选鉴定、诱变育种及酶学性质研究魏计东1,2,于 爽1,2,张庆芳1,2,迟乃玉1,2(1.大连大学生命科学与技术学院,辽宁大连116622;2.辽宁省海洋微生物工程技术研究中心,辽宁大连116622) 摘要:以海泥、海水为样品,经初筛、复筛得到1株脂肪酶高产菌FS119,测得酶活为17.8U/mL。

通过形态学、生理生化特征及16SrDNA序列分析,鉴定菌株FS119为液化沙雷氏菌(Serratialiquefaciens),对液化沙雷氏菌FS119进行物理化学合成诱变,筛选出1株高产诱变菌株FS119-1,该菌株遗传性能稳定,酶活达到24.9U/mL,为原始菌株的1.4倍。

该低温脂肪酶的最适反应温度为30℃,0℃时仍然有酶活;最适pH值为9,酸碱稳定性良好;K+、Ca2+、Mg2+、Ba2+对脂肪酶的活性有明显促进作用,Cu2+、Mn2+、EDTA对脂肪酶活性有严重抑制作用。

关键词:海洋;低温脂肪酶;鉴定;诱变;液化沙雷氏菌;酶学性质 中图分类号:Q556+.1;S182 文献标志码:A 文章编号:1002-1302(2018)15-0195-05收稿日期:2017-03-04基金项目:国家“863”计划(编号:2014AA093512)。

作者简介:魏计东(1991—),男,山东邹城人,硕士研究生,主要从事微生物与酶工程研究。

E-mail:weijidongsk@163.com。

通信作者:迟乃玉,博士,教授,主要从事微生物与酶工程研究。

Tel:(0411)87403861;E-mail:cny7566@126.com。

脂肪酶(lipase,EC3.1.1.3),又称甘油三酰酯水解酶,是一类重要的工业酶,可以在油水界面上催化甘油三酯生成脂肪酸和甘油,以及甘油一酯和甘油二酯;广泛存在于动物、植物各种组织及微生物中,是最早研究的酶类之一[1]。

海洋低温BS041208菌株选育及发酵培养基的研究(Ⅰ)

海洋低温BS041208菌株选育及发酵培养基的研究(Ⅰ)

海 洋是 生命 的起 源 , 有 高 盐 、 压 、 温 、 光 具 高 低 低
照 、 营养等 特 点 ,0 的海 水 平 均 温 度 为 5 或 更 寡 9% ℃ 低, 深海 的温 度 一 般 为 3 ±1 。 由海 洋 嗜冷 菌 和 ℃ ℃
1 2 4 培 养 方 法 ..
在 1 0mL三 角 瓶 中 , 入 3 0 装 0 mL种 子 培 养 基 , 接入 斜 面 菌 种 , 2 培 养 4 , 为 液 体 种 子 。在 1℃ 8h 作 5 0mL三 角 瓶 中 , 入 1 0mL发 酵 产 蛋 白酶 的培 0 装 2 养 基 ,2 1 ℃培 养 2d 取培 养液 于 40 0rmi 心 , , 0 / n离 上 清液 即为蛋 白酶 粗酶 液 , 测定 蛋 白酶 活性 。
摘 要 以从渤海和黄海分 离出的 4 0株在低 温条件下 生长 良好 的菌株 为 出发菌株 , 0 利用常规 筛选方法筛选 出
2株低 温 蛋 白 酶 产 生 菌 ( ai u u t i) 经 UV、 E 、 TG、 MS LC B c lssbis 。 l l D SN E 、 i1单 独 及 复 合 诱 变 , 育 出 一 株 选
学生 物工 程学 院分 离 自渤 海和 黄海 。
1 2 培 养基 和培 养方 法 .
1 2 1 斜 面 培 养 基 ..
0 1 0 14 0 2 00 2 7 0 2 9 0 3 6 0 4 2 0 4 8 3 1 38 3 1 3 3 3 4 3 8 3 1 3 2 1
为研究 对 象 , 在 开 发 海洋 低 温 微 生 物 酶 制 剂 , 中 意 文
1 0mL发 酵 液 , 0 / n离 心 2 n 蒸 馏 0 40 0r mi 0 mi , 水清 洗 2次 ,0 6 ℃烘 干 , 重 。 称

海洋低温过氧化氢酶菌株的筛选及酶学性的研究

海洋低温过氧化氢酶菌株的筛选及酶学性的研究

mi x t u r e o f t h e B o h a i B a y .I t wa s n a me d S e r r a t i a l i q u e f a c i e n s C Z A1 2 0 2 t h r o u g h t h e s t u d y o f mo r p h o —
Ao J i e ,CH I Na i - y u ,DoU S h a o - h u a ’ ,ZH ANG Qi n g — f a n g ’ 。
( 1 . Co l l e g e o f Bi o e n g i n e e r i n g ,Da l i a n Un i v e r s i t y,Da l i a n 1 1 6 6 2 2,Ch i n a ; 2 . Li a o n i n g Te c h n o l o g y Re s e a r c h Ce n t e r o f Ma r i n e Mi c r o b i o l o g i c a 1 En g i n e e r i n g ,Da l i a n 1 1 6 6 2 2 ,Ch i n a )
保持 6 O mi n条件 下 , 酶 活 可保 留 7 O 。初 始酶 活达 到 1 0 7 . 8 U/ mL。
关 键词 : 海 洋微 生物 ; 1 6 S r DNA; 低 温过氧化 氢酶 ; 酶 学性 质 ; 液 化 沙雷 氏茵
中图分 类号 : TS 2 6 4 . 2 文 献标识 码 : A d o i : 1 0 . 3 9 6 9 / j . i s s n . 1 O 0 O 一9 9 7 3 . 2 0 1 3 . 0 3 . 0 0 8 文 章编 号 : 1 0 0 0 —9 9 7 3 ( 2 0 1 3 ) 0 3 —0 0 3 1 一O 5

海洋低温过氧化氢酶菌株的筛选及酶学性的研究

海洋低温过氧化氢酶菌株的筛选及酶学性的研究

海洋低温过氧化氢酶菌株的筛选及酶学性的研究
奥杰;迟乃玉;窦少华;张庆芳
【期刊名称】《中国调味品》
【年(卷),期】2013(038)003
【摘要】从渤海湾海域海泥海水混合物中分离获得一株产低温过氧化氢酶菌株CZA1202,通过菌株的形态特征、生理生化和16 S rDNA序列鉴定为Serratia liquefaciens.对其醇学性质进行初步研究,CZA1202所产过氧化氢酶最适反应温度30℃,最适pH 7.0,在pH7.0~9.0范围内较稳定,在35℃保持60 min条件下,酶活可保留70%.初始酶活达到107.8 U/mL.
【总页数】5页(P31-35)
【作者】奥杰;迟乃玉;窦少华;张庆芳
【作者单位】大连大学生命科学与技术学院,辽宁大连116622;辽宁省海洋微生物工程技术研究中心,辽宁大连116622
【正文语种】中文
【中图分类】TS264.2
【相关文献】
1.过氧化氢酶优良基因菌株的筛选及其酶学性质研究 [J], 刘冬;季石美;汪成富
2.海洋低温脂肪酶菌株的筛选鉴定、诱变育种及酶学性质研究 [J], 魏计东;于爽;张庆芳;迟乃玉
3.海洋低温淀粉酶菌株的筛选、鉴定及酶学性质研究 [J], 周新尚;逄飞;窦少华;乔慧;迟乃玉
4.海洋低温肌氨酸氧化酶生产菌株的筛选、鉴定及酶学特性研究 [J], 迟乃玉;刘洋;于爽;希伦;李美玉;张庆芳
5.海洋低温甾醇酯酶菌株的筛选鉴定及其酶学特性研究 [J], 任楠楠;王晓辉;迟乃玉;张庆芳
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渤海海域低温G O D 菌株筛选及鉴定

渤海海域低温G O D 菌株筛选及鉴定

近年来,随着现代生物科技的不断发展,酶制剂因其安全、环保、高效、多功能等优点,在当前食品、饲料、医疗检验等领域的发展与应用越来越重要[1-2]。

葡萄糖氧化酶(G l ucos e O xi D as e ,G O D )是一种重要的工业用酶[3-4],能够在有氧环境下专一性地催化β-D -葡萄糖(C 6H 12O 6),生成葡萄糖酸(C 6H 12O 7)和过氧化氢(H 2O 2)[5-6]。

因此,G O D 具有脱氧、杀菌等作用,在食品保鲜、饲料添加剂、医疗检测等方面应用广泛[7-8]。

例如,硫醇/金自组装膜上组装葡萄糖氧化酶可延长电极的寿命,同时增强抗干扰能力,尤其对抗坏血酸的干扰可以基本消除,这对于设计新的生物传感器有着较大的意义[9-11]。

此外在饲料加工过程中加入G O D 可提高饲料的品质、减少霉变发生、延长保质期,还有助于改善动物肠道健康、增强免疫力、提高生产性能,是安全有效的抗生素替代产品[12]。

目前,我国G O D 制剂的总体生产技术水平落后于国外,尚未形成适度的生产规模,主要依赖进口。

黑曲霉和青霉是目前工业生产G O D 最主要的菌株,在生产过程中存在副产物较多、易污染等问题[13]。

此外商品化的G O D 基本为中温型(50±5)℃,这就导致其在实际使用过程中存在自然环境下作用效果不理想的问题。

为了解决上述问题,需要发掘新的产低温G O D 的微生物资源。

海洋微生物资源十分丰富,海洋中独特的低温、高压、高盐等自然环境使海洋微生物所产生的酶类通常具有耐低温等区别于陆地微生物酶的独特特性,具有更为广泛的应用前景[14-16]。

目前关于海洋产低温G O D 的微生物分离筛选的研究报道十分少见。

石漱玉[17]、徐德峰[18]等从海泥中已经发现存在产低温G O D 的细菌。

因此,笔者所在项目组的研究以大连渤海海域采集到的海泥和海鱼作为样品,采用平板显色法分离和筛选产低温G O D 的海洋微生物,用分光光度法测定G O D 的酶活力,选渤海海域低温G O D 菌株筛选及鉴定文章编号:1674-9146(2019)03-019-04高齐霖1,2,肖安超1,2,王海伦1,2,张庆芳1,2,胡善松1,2,迟乃玉1,2,刘春莹1,2[基金项目]国家重点研发计划项目(2018Y FC0311100);辽宁省自然基金指导计划项目(20180551160);大连大学大学生创新训练计划项目(2018013)收稿日期:2019-01-14;修回日期:2019-02-14作者简介:高齐霖(1997-),男,浙江杭州人,在读本科,主要从事微生物与酶工程研究,E-m ai l :972821791@ 。

低温蛋白酶产生菌的筛选及其酶学性质的初步研究

低温蛋白酶产生菌的筛选及其酶学性质的初步研究

低温蛋白酶产生菌的筛选及其酶学性质的初步研究莫清珊;张会图;田耀;孙同韦;冯士元;孙军;路福平【摘要】从南印度洋深海沉积物中筛选获得1株产低温蛋白酶的嗜冷菌株11815,经16S rDNA鉴定,结合菌株的形态结构特征和生理生化特性分析,确定其为动性球菌属(Planococcus sp.).该菌株的最适生长温度及最佳产酶温度均为20,℃,经发酵条件初步优化后,48,h内摇瓶水平的蛋白酶产量可达280,U/mL;酶学性质分析结果显示:该菌株所产蛋白酶的最适作用温度为37,℃,最适pH为8.0,30,℃条件下可保持最高催化活力的80%以上,而在25~30,℃仍具有较高的催化活力(保持最高催化活力的50%以上).该菌株所产蛋白酶属于典型的低温蛋白酶,在常温下具有较好的催化活性,因此在食品加工业及冷水洗涤剂开发等方面具有较高的研究价值.%A psychrophilic bacterium 11815 was isolated from the deep sea mud of southern Indian ocean to produce cold-adapted protease and the product was identified asPlanococcussp. according to its morphological and physiochemical char-acteristics as well as 16S rDNA sequence analysis. The optimal temperature for its growth and protease production was 20,℃and the protease production reached 280 U/mL after 48 h fermentation in shake flask. The optimal pH and temperature for producing protease were 8.0 and 37,℃. At 30,℃,the relative activity reached 80% of the highest activity. Even at lower tem-peratures from 25,℃ to 30,℃,the relative activity still reached more than 50% of the highest activity. These enzymatic prop-erties indicate that the protease producedby the newly isolated psychrophilic strain belongs to the class of cold-adapted pro-teases and possesses a high application potential in food processing and cold-water detergents.【期刊名称】《天津科技大学学报》【年(卷),期】2015(000)003【总页数】5页(P19-23)【关键词】低温蛋白酶;动性球菌;分子鉴定【作者】莫清珊;张会图;田耀;孙同韦;冯士元;孙军;路福平【作者单位】天津科技大学生物工程学院,天津 300457;天津科技大学生物工程学院,天津 300457;天津科技大学生物工程学院,天津 300457;天津科技大学生物工程学院,天津 300457;天津科技大学生物工程学院,天津 300457;天津科技大学海洋科学与工程学院,天津 300457;天津科技大学生物工程学院,天津300457【正文语种】中文【中图分类】Q786低温蛋白酶是指最适催化温度在40,℃以下,并且在20~30,℃仍能保持较高酶活(50%以上)的一类蛋白水解酶[1].由于其最适催化温度接近自然环境中的温度,因此在应用过程中可省去加热或冷却过程,与中高温蛋白酶相比具有节能、省时等特点,在食品及洗涤行业具有广泛的应用前景.低温蛋白酶多数来源于冰川、极地、高山、深海等低温环境中的嗜低温或耐低温微生物[2–3].这些低温微生物为了适应其所处的低温环境,常可表达分泌一些在低温条件下仍具有较高催化活性的胞外酶或胞内酶,因此从耐低温或嗜低温微生物中筛选获得低温蛋白酶已成为发掘新型工业用低温酶制剂的主要方法[4].目前已发现的产低温蛋白酶菌株有来源于冰川冻土中的地衣芽孢杆菌(Bacillus licheniformis)和短小杆菌(Curtobacterium luteum)、来源于南极地区的梭状芽孢杆菌(Clostridium sp.)和嗜冷杆菌(Psychrobacter proteolyticus)、来源于海洋浮冰中的科尔韦尔氏菌属(Colwellia sp.)、来源于寒漠地区的微小杆菌(Exiguobacterium sp.)以及来源于其他寒冷环境中的沙雷氏菌(Serratia sp.)、弧菌(Vibrio sp.)、黄单胞菌(Xanthomonas maltophilia)、希瓦氏菌属(Shewanella sp.)产黄青霉(Penicillium chrysogenum)等.这些菌株所产低温蛋白酶的最适催化温度大部分均在30~40,℃,只有少数几种的最适催化温度低于20,℃,但稳定性很差.国内对低温蛋白酶及其产生菌的研究起步较晚,研究对象多集中在来源于冰川及冻土中的假单胞菌属 (Pseudomonas)、黄杆菌属(Xanthomonas)、产气单胞菌属(Aeromonas)等.本研究则从深海沉积物中分离到1 株产低温蛋白酶动性球菌(Planococcus sp.),并对该菌株的生长特性、产酶特性及其所产蛋白酶的酶学性质进行了研究.1 材料与方法1.1 菌株来源嗜冷菌株由天津科技大学孙军教授提供的南印度洋的深海沉积物中分离得到.1.2 主要试剂和仪器连接酶、Taq DNA 聚合酶、dNTP、T 载体、DNA Marker,宝生物工程(大连)有限公司;酪蛋白、琼脂粉、缓冲液试剂,上海生工生物工程有限公司.PCR 仪、凝胶成像仪、电泳系统,美国Bio-Rad公司;1500–201 型全波长酶标仪,美国热电公司.1.3 培养基酪蛋白筛选培养基:酪蛋白20,g,琼脂15,g,人工海水定容到1,L,调节pH 到7.5~8.0.发酵培养基:ZoBell 2216E 培养基.1.4 产低温蛋白酶菌株的分离与鉴定1.4.1 产低温蛋白酶菌株的分离取深海沉积物样品1,g,加入20,mL 生理盐水,涡旋振荡混匀.按10 倍稀释法稀释成10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7 6 个稀释度的稀释液,每个稀释度各取0.2,mL 稀释液涂布于3 个酪蛋白筛选培养基平板上,并分别于4、20、25,℃培养72,h.选取菌落周围有明显蛋白水解圈的菌落于酪蛋白分离培养平板上进行三区划线纯化培养.根据水解圈直径dH与菌落直径dc的比值确定菌株低温条件下产蛋白酶能力的大小.1.4.2 16S,rDNA 的克隆及系统进化分析菌体基因组提取参照文献[5]进行;以上述基因组为模板,以细菌 16S rDNA 通用引物 27,F(5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'),1492,R(5'-AGT AAGGAGGTGATCCAACCGCA-3')对16S rDNA 进行PCR 扩增.PCR 反应条件为:94,℃预变性5,min,然后94,℃ 60,s,55,℃ 90,s,72,℃ 120,s,循环30 次,72,℃ 延伸10,min.扩增产物经0.8%琼脂糖凝胶电泳回收后克隆至T 载体,并委托北京华大基因公司测序.将所得序列在NCBI 网站进行 Blastn 比对(/BLAST),确定与其相关的种属特性.1.4.3 菌株形态及生理生化特性鉴定最适生长温度、菌落形态、革兰氏染色、氧化酶活性检测、过氧化氢酶活性检测、明胶液化实验参照文献[6]进行.1.5 蛋白酶粗酶液的制备及酶活测定将种子培养液以2%的体积比接种至50,mL 发酵培养基,分别在不同温度下(15、20、25,℃),200,r/min振荡培养52,h,定时取样,考察不同培养温度对产酶的影响.收集菌液于4,℃、10,000,r/min 离心30,min,收集上清液.以酪蛋白为底物的酶活的测定方法参照文献[7]进行;根据QB/T 1803—1993《工业酶制剂通用试验方法》,以1,mL 酶液在37,℃、pH 8.0 条件下,每分钟反应产生1,μg 酪氨酸所需要的酶量为1 个酶活力单位(U/mL).粗酶液用缓冲溶液稀释至适当浓度,作为待测酶液.缓冲液配制1%的酪素溶液作为底物并将粗酶液稀释适当的倍数.取1,mL 稀释的酶液,37,℃保温2,min,加入同样温度的底物 1,mL,于37,℃反应10,min,加入2,mL 质量分数10%三氯乙酸终止反应.静置离心,取1,mL 上清液,加入5,mL 0.4,mol/L Na2,CO3溶液、1,mL福林酚试剂,混匀,40,℃保温20,min,测定吸光度A680.以灭活酶液为空白对照.1.6 酶学性质分析1.6.1 温度对蛋白酶酶活的影响分别将1,mL 粗酶液与1,mL 水解酪蛋白溶液(1%,pH 8.0)混匀,分别在4~50,℃ 测定酶活力,以酶活力最高时为100%,计算其他条件下的相对酶活力.1.6.2,pH 对蛋白酶酶活的影响用不同pH 的乳酸钠缓冲液(pH 2.0、3.0、4.0、5.0)、磷酸盐缓冲液(pH 6.0、7.0、7.5、8.0)、硼砂缓冲液(pH 9.0、10.0)将待测酶液进行适当的稀释,在37,℃及相应pH 条件下测定酶活,酶活数值最大者计为100%,所对应的pH 即为待测酶最适反应pH,其他pH 下的酶活与最高酶活的比值即为其相对酶活.1.6.3 蛋白酶的热稳定性检测将粗酶液分别在10、37、45,℃保温30、60、90、120,min 后测定残余酶活,以未进行保温处理的酶活力值作为对照,设定其相对酶活力为100%,得出酶活力随保温时间变化的曲线.1.6.4 不同金属离子及化学试剂对蛋白酶酶活的影响将待测酶液置于不同浓度(5、1,mmol/L)的Ca2+、Mg2+、Cu2+、Ni2+、Co2+、Zn2+、Mn2+、Ba2+缓冲液中,4,℃保温1,h,在pH 10.0、37,℃条件下测定残留的酶活.将待测酶液置于EDTA、PMSF、β-ME 缓冲液中,4,℃保温1,h,在pH 10.0、37,℃条件下测定残留的酶活.2 结果与分析2.1 产低温蛋白酶菌株的筛选低温培养条件下不同菌株的蛋白水解圈形成情况如图1 所示.在低温培养条件下(4~10,℃),经透明圈筛选以及划线纯化后复筛,共获得3 株具有分泌表达蛋白酶能力的菌株,分别将其编号为11813、11815 以及11816.其中菌株11815 的蛋白酶分泌表达能力较强,在培养温度为10,℃的条件下,24,h 内,其蛋白水解圈直径与菌落直径的比值(dH/dc)最高可达2.77;而在相同条件下,菌株11813 及11816 的dH/dc则分别仅有1.78 和1.60.图1 低温培养条件下不同菌株的蛋白水解圈形成情况Fig.1 Cold protease transparent zone formed by strains在不同培养温度下,分别对上述3 株产蛋白酶菌株进行液体发酵培养,菌株11815 在4~37,℃均可生长,其最适生长温度为20,℃左右,当温度大于等于40,℃时,则生长极为缓慢甚至停止生长;菌株11813及11816 的最适生长温度与菌株11815 相似,因此均属于典型的耐冷菌.由于菌株11815 的产蛋白酶能力较强,因此作为下一步重点研究对象.2.2 菌株11815的分析鉴定菌株11815 属革兰氏阳性菌,呈球形或卵圆形,直径约1.0~1.2,μm,呈双球状或连珠状排列;菌落形态圆形,颜色橙黄色,表面光滑、边缘齐整.该菌属好氧性或兼性厌氧菌,可较好利用葡萄糖、果糖、淀粉等碳源,能够利用硫酸铵、蛋白胨、水解酪蛋白等氮源;具有氧化酶、过氧化氢酶活性,明胶液化实验呈阳性.该菌16S rDNA 全长序列为1,450,bp,与动性球菌(Planococcus antarcticus) DSM 14505 的相似度为99%,结合形态特征和生理生化特性,将其鉴定为动性球菌属.2.3 温度和pH对菌株11815产酶的影响在摇瓶发酵条件下,研究不同培养温度(15、20、25,℃)对菌株11815 产酶的影响,结果如图2 所示.结果表明:该菌株的最佳生长温度与最适产酶温度相一致,均为20,℃,发酵培养48,h 可达到产酶高峰,产酶量约为280,U/mL.在菌体培养的初级阶段,菌体的生长量与产酶量呈正比;当菌体生长达到平衡期后,菌体量不再增加,而粗酶液中的蛋白酶活性则开始下降,这可能与蛋白酶的自身降解有关.从上述实验结果推断:该蛋白酶的表达应为组成型表达,只与菌体量有关,而与其他诱导因素无关.因此在发酵过程中设法提高菌体浓度,同时在发酵液中加入适量蛋白酶抑制剂,可有效提高蛋白酶产量.图2 培养温度对产酶的影响Fig.2 Effect of culture temperature on enzyme productionpH 对菌株产酶的影响较小,初始pH 在6~8 之间,菌株11815 均可稳定生长并产酶.2.4 酶学性质分析2.4.1 酶的最适作用温度及热稳定性检测在不同温度下分别对菌株11815 发酵液中的蛋白酶活性进行了检测,结果如图3 所示.该菌株所产蛋白酶的最适作用温度为37,℃左右,并且在25~30,℃均有较好的催化活性(最高催化酶活的50%以上),与其他低温蛋白比较发现,蛋白酶SKPB5 以及焦曲霉(Aspergillus ustus)、假单胞菌(Pseudomonas)strain DY-A分泌的蛋白酶等,最适温度在 40~42,℃[8–10],11815 分泌的蛋白酶的最适作用温度更低.因此,该菌株所产蛋白酶的最适作用温度与自然环境中的温度基本一致,在使用过程中可以省去加热及冷却的过程,具有节能环保等应用属性.图3 蛋白酶的作用温度与相对酶活的关系Fig.3 The relationship between protease temperature and the relative enzyme activity酶的热稳定性实验结果如图4 所示.该菌株所产蛋白酶的热稳定性较低,37,℃保温20,min 或45,℃保温60,min 后,酶活仅剩原来的10%;50,℃保温10,min 后,则催化活性完全丧失;该蛋白酶只有在10,℃以下才能保存较长的时间;这一特性与大多数低温蛋白酶[7–9]相似,主要与低温蛋白酶本身较为松散的蛋白结构及其较高的分子柔性有关.图4 蛋白酶的热稳定性Fig.4 Effects of temperature on the stability of protease activity2.4.2 酶的最适作用pH分别在不同pH 条件下测定菌株11815 所产蛋白酶活力,酶活力随pH 变化的曲线如图5 所示.该酶在pH 4.0~10.0 均具有催化活力,其最适作用pH为8.0 左右;当pH 升至9.0 时,其酶活约为最高酶活的70%左右,当pH 升至10.0 时,酶活大幅下降,仅为最高酶活的25%;当pH 降至7.0 时,酶活力约为最高活力的82%.因此,该菌株所产蛋白酶为低温蛋白酶.图5 蛋白酶的作用pH与相对酶活的关系Fig.5 The relationship between pH of protease and the relative enzyme activity2.4.3 不同金属离子及化学试剂对蛋白酶酶活的影响不同金属离子及化学试剂对蛋白酶酶活的影响见表1.表1 不同的金属离子、抑制剂对蛋白酶酶活的影响Tab.1 Effect of various metal ions and inhibitors on protease activity注:空白为最适pH 和最适温度下未添加金属离子及化学试剂情况下的酶活.金属离子Ca2+对该菌株所产蛋白酶有激活作用,Mn2+对其基本没有影响;Mg2+、Ba2+、Fe3+、Zn2+、Co2+、Ni2+则对其有一定的抑制作用,Ni2+对其抑制作用最强,浓度为1.0,mmol/L 的Ni2+可抑制90%以上的酶活,因此组氨酸可能是该酶的活性中心之一;EDTA 对该酶有一定抑制作用,某些金属离子可能对维持酶分子的三维结构有重要作用;另外,该酶被PMSF 强烈抑制,因此该菌株所产蛋白酶的活性位点应包括His、Ser 以及羧基氨基酸.3 结语从南印度洋深海沉积物中分离得到1 株产低温蛋白酶菌株,经菌种鉴定为动性球菌(Planococcus sp.).该菌株的最适生长温度为20,℃左右,可在10~25,℃进行快速生长代谢;并在20,℃以下具有表达分泌低温蛋白酶的能力,最适的培养温度为20,℃,摇瓶发酵条件下,48,h 内的蛋白酶产量可达280,U/mL.酶学性质分析结果显示:该菌株所产蛋白酶的最适作用pH 为8.0,最适作用温度为37,℃,当催化温度降至30,℃时,酶活可保持在80%以上,并且在4,℃条件下仍具有水解蛋白的能力.EDTA 对该酶有一定抑制作用,PMSF 对该酶具有强烈抑制作用,因此该菌株所产蛋白酶的活性位点应包括His、Ser 以及羧基氨基酸.该酶热稳定性较差,50,℃仅保温1.0,min,则酶活完全丧失.由该菌株所产蛋白酶的上述特性表明,该酶属于典型的低温蛋白酶,具有一定的研究及开发价值.本课题组还将对该低温蛋白酶的编码基因进行分离与克隆,并进一步尝试在其他宿主菌中实现其高效异源表达.参考文献:[1]Joshi S,Satyanarayana T.Biotechnology of cold-activeproteases[J].Biology,2013,2(2):755–783.[2]Pawar R,Zambare V,Barve S,et al.Application of protease isolated from Bacillus sp.158 in enzymatic cleansing of contactlenses[J].Biotechnology,2009,8(2):276–280.[3]Kuddus M,Ramteke P W.Recent developments in production and biotechnological applications of cold-active microbial proteases[J].Critical Reviews in Microbiology,2012,38(4):330–338.[4]林永成,周世宁,乐长高.海洋微生物活性代谢产物化学[J].大学化学,1996,11(6):1–7.[5]萨姆布鲁克 J,拉塞尔D W.分子克隆实验指南[M].黄培堂,译.3 版.北京:科学出版社,2002.[6]东秀珠,蔡妙英.常见细菌鉴定系统手册[M].北京:科学出版社,2001. [7]张树政.酶制剂工业:下册 [M].北京:科学出版社,1984:446–447.[8]Kasana R C,Yadav S K.Isolation of a psychrotrophic Exiguobacterium sp.SKPB5(MTCC 7803)and characterization of its alkalineprotease[J].Current Microbiology,2007,54(3):224–229.[9]Damare S,Raghukumar C,Muraleedharan U D,et al.Deep-sea fungi as a source of alkaline and cold-tolerant proteases[J].Enzyme and Microbial Technology,2006,39(2):172–181.[10]Zeng R,Zhang R,Zhao J,et al.Cold-active serine alkaline protease from the psychrophilic bacterium Pseudomonas strain DY-A:Enzyme purification and characterization[J].Extremophiles,2003,7(4):335–337.。

深海适冷菌SM9913产生的低温蛋白酶

深海适冷菌SM9913产生的低温蛋白酶

深海适冷菌SM9913产生的低温蛋白酶陈秀兰;张玉忠;王运涛;高培基;栾裼武【期刊名称】《海洋科学》【年(卷),期】2001(025)001【摘要】从1855m深的深海泥样中分离纯化得到200多株分泌蛋白酶的适冷菌,其中3株产低温蛋白酶,本文对其中一株Pseudomonassp.SM9913(P.SM9913)生长的适冷性和它产生的蛋白酶的适低温特性进行了研究。

该菌株能够在0℃下正常生长,其最适生长温度为15℃,最高生长温度为35℃。

为一株适冷菌。

该菌株所产蛋白酶的比合成速率在10℃时最高,催化酪蛋白水解的最适温度为35℃,在0℃仍具有3%的酶活力。

最适pH为8.0。

该蛋白酶的热稳定性很低,在40℃保温10min即丧失85%的活力,40℃时的半衰期为6min,为一典型的低温酶。

抑制剂试验表明,该蛋白酶为金属蛋白酶。

%More than 200 psychrotrophilic strains excreting protease were isolated from 1 855 meter deep sea silt and were puri-fied. 3 strains of them excreted psychrotrophilic protease. The psychrotrophilic characteristics of the protease excreted by one of the three strains—— Pseudomonas sp. SM9913(P.SM9913) were preliminarily studied. Strain P. SM9913 could grow at 0 ℃ . The optimum temperature for growth was about 15 ℃ . And the highest temperature for growth was 35 ℃ , which sug gested that stain P. SM9913 was psychrotrophilic. The highest specific synthetic rate of the protease occurred at about 10 ℃ . The optimum temperature of the protease for casin catalysis was 35 ℃ , and the highest protease activity for casincatalysis was at pH8.0. The protease was susceptible to heat treatment, and the half time for the decrease of protease activity was 6 minutes when incubated at 40 ℃ . These results showed that this protease was psychrotrophilic. The activity of the protease was inhibited by EDTA, indicating that this protease belonged to metalprotease.【总页数】5页(P4-8)【作者】陈秀兰;张玉忠;王运涛;高培基;栾裼武【作者单位】1State Key Lab of Microbial Technology, Shandong University,;State Key Lab of Microbial Technology, Shandong University,;State Key Lab of Microbial Technology, Shandong University,;State Key Lab of Microbial Technology, Shandong University,;中国科学院海洋研究所【正文语种】中文【中图分类】Q5【相关文献】1.深海适冷菌Pseudomonas sp.SM9913的适冷生长机制探讨 [J], 陈秀兰;张玉忠;栾裼武;高培基2.对深海适冷菌Pseudomonas sp.SM9915分泌不同适冷蛋白酶的研究 [J], 陈秀兰;张玉忠;高培基;栾锡武3.产低温碱性蛋白酶海洋适冷菌SY的筛选 [J], 陈静;王淑军;黄炜;牛天贵;陆兆新4.深海适冷假交替单孢菌Pseudoaltermonas sp.SM9913产适冷蛋白酶的条件优化 [J], 李建伟;潘军;何海伦;陈秀兰;张玉忠;高培基5.离子对深海适冷菌Pseudoalteromonas sp. SM9913胞外蛋白酶分泌的影响[J], 边斐;何海伦;陈秀兰;张玉忠因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

抗白色念珠菌海洋真菌的筛选及抑菌活性初探

抗白色念珠菌海洋真菌的筛选及抑菌活性初探

抗白色念珠菌海洋真菌的筛选及抑菌活性初探王勇勇;蒙春蕾;蔡爽;黄敏;孟庆恒;孙建华【期刊名称】《中国酿造》【年(卷),期】2015(034)002【摘要】实验以白色念珠菌为对象,对从渤海湾不同站位分离获得的55株海洋丝状真菌进行了抗真菌活性菌株的筛选.从中筛选得到了BH431、BH515、BH531和BH09721 4株抑菌活性较高的菌株,并进一步对不同浓度发酵液的抑菌活性及代谢物性质进行了检测.结果显示,4株海洋真菌对野生型白色念珠菌SC5314均具有较强抑菌活性,其最小抑菌浓度分别为65 g/mL、19 g/mL、54 g/mL、23 g/mL;其中BH431和BH515菌株还显示出对基因敲除型菌株RM1000的抑菌活性,最小抑菌浓度分别为32 g/mL、39 g/mL.4株海洋真菌所产生的活性代谢物具有较好的酸碱适应性,活性物质分子质量<6 000 u;其中BH431菌株的活性代谢物还具有良好的热稳定性.【总页数】5页(P55-59)【作者】王勇勇;蒙春蕾;蔡爽;黄敏;孟庆恒;孙建华【作者单位】天津师范大学生命科学学院,天津300387;天津师范大学生命科学学院,天津300387;天津师范大学生命科学学院,天津300387;天津师范大学生命科学学院,天津300387;天津师范大学天津市动植物抗性重点实验室,天津300387;天津师范大学天津市动植物抗性重点实验室,天津300387【正文语种】中文【中图分类】Q939.9【相关文献】1.北极海洋沉积物可培养细菌多样性及抗植物病原真菌活性菌株筛选 [J], 赵惠娅;方海霞;王燕;刘同军;林学政2.抗黄瓜枯萎病原真菌海洋链霉菌的筛选及其多样性分析 [J], 王皓;刘秋;姜勇;郝峰;李艳;王会岩3.广西红树林海洋微生物的分离及抗白色念珠菌的快速筛选 [J], 洪亮;杨建;解修超;陈绍兴;林丽飞4.抗农业病害真菌的海洋细菌筛选·发酵及分离初步研究 [J], 曲均革;余诚成;陈月新5.涠洲岛珊瑚礁海洋真菌的分离鉴定及其抗MR S A活性筛选 [J], 卢护木;詹振宇;李蜜;罗双宇;高程海;罗小卫;刘永宏因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

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渤海湾浅表海水中产低温蛋白酶适冷菌的筛选陈秀兰 张玉忠 高培基 张武昌 王荣山东大学微生物技术国家重点实验室济南中国科学院海洋研究所青岛提要从渤海湾浅表海水中分离到 株产蛋白酶的低温菌 对其中 株产蛋白酶活力较高的菌株的生长特征和其所产蛋白酶的酶学性质进行了研究∀这 株菌的最适生长温度都在∗ ε 最高生长温度都在 ∗ ε 属于典型的适冷菌∀这 株菌中 ≥ 的产酶活力最高 为 ∀这 株菌所产蛋白酶的最适酶活温度均为 ∗ ε∀最适 在 ∗范围内 为中性或碱性蛋白酶∀这些蛋白酶的热稳定性普遍较低 ≥ 所产蛋白酶的热稳定性最高 在 ε保温 仍具有 的酶活∀这些低温蛋白酶在洗涤剂!饲料!食品等工业上将可能有应用价值∀关键词海水 适冷菌 低温蛋白酶氨基酸含量及体内的消化酶活性方面 但对影响其氨基酸组成和变化的一些重要因子的研究工作还很少 而且 其体内某些组织中生物学活性很强!在代谢调控方面有特殊意义的酶和小肽等方面的研究工作则更有待开展∀参考文献马英杰!张志峰!马爱军∀水产学报 20 ∗王汝娟!黄定墨!朱武成∀中国海洋药物 15 ∗王安利!王维娜!王建平等∀中国动物科学研究∀北京 中国林业出版社 ∀ ∗孔繁明∀水产学报∀ 21 ∗ × • ≤ ⁄ εταλ..ΑθυαχυλτυρεΡεσεαρση, 29 ∗× ≥ εταλ..Αθυαχυλτυρε, 157 ∗≥ √ ° ≥ ∂ ΑρχηιϖεσΙντερνατιοναλεσδεΠηψσιολογιεετδεΒιοχηιµιε,∗≥ ≥ ΠροχεεδινγοφτηεΙνδιανΝατιοναλΣχιενχεΑχαδεµψΠαρτΒΒιολογιχαλΣχιενχε, 62∗≥ ∏ ° ≥ ∏ ΙνδιανϑουρναλοφΕξπεριµενταλΒιολογψ, 35 ∗ ƒ 2 ∏ ΦοοδΧηεµιστρψ,60 ∗ 本文编辑 刘珊珊蛋白酶是目前应用最多的酶 占工业水解用酶的 左右∀目前工业上应用的蛋白酶多为中温蛋白酶 最适产酶温度在 ∗ ε 最适酶活温度在 ε左右∀已广泛应用于洗涤剂!饲料!皮革!食品加工等行业中≈ ∀低温酶是指最适催化温度在 ε左右 在 ε左右仍有一定催化效率的一类酶∀低温蛋白酶一般由低温菌产生 它具有产酶温度低 最适酶活温度低 在低温下具有更高的催化效率等特点 因而在洗涤剂!饲料!皮革!食品加工等工业上应用有着中温蛋白酶无法取代的优越性∀也越来越受到人们的重视∀自 年代以来 世界上已有许多实验室在从事低温蛋白酶的研究∀已从海水!嗜冷鱼类和贝类以及高山!南北极的泥土等样品中分离到产低温蛋白酶的菌株≈ ∀不同来源的低温菌种类不同 产生的低温蛋白酶在性质上也不同 一些低温蛋白酶已经得到了纯化 有的已应用到洗涤剂生产中∀海洋生物技术 资助项目 2 2 号 国家自然科学基金资助项目 号∀收稿日期 2 2 修回日期 2 2ΑΡΤΙΧΛΕ研究论文#海洋科学 年 第 卷 第 期低温菌生活在终年低温的环境下 分嗜冷菌和适冷菌两类∀它们都能够在 ε下正常生长繁殖∀前者的最适生长温度在 ε以下 后者的最适生长温度一般为 ε左右∀高纬度海水由于常年温度较低 因而是分离适冷菌的理想样品∀作者与中科院海洋所合作 从渤海湾采来的海水中分离 株产蛋白酶的适冷菌 对其中 株产酶高的菌株的生长特征与粗酶性质进行了比较研究∀材料和方法1 1样品采集由中科院海洋研究所在渤海湾 β χ∗ β χ∞ β χ∗ β χ 范围内 水深 ∗ 的深度内 于 年 月上旬采取海水样品 个∀1 2培养基培养基常规 培养基 用陈海水配制 ∀筛选培养基参考文献≈ 用陈海水代替蒸馏水 ∀发酵培养基玉米粉 麸皮 豆粕° ° ≤ ≤ 陈海水 ∀1 3蛋白酶活力测定采用ƒ 2酚法≈ ∀以 酪蛋白为底物∀酶活力为在一定温度下 每分钟催化酪蛋白水解生成 Λ 酪氨酸的酶量为 个单位∀结果与分析2 1海水细菌的富集与产蛋白酶低温菌的筛选将海水样品用无菌微孔滤膜 Λ 富集 富集后的滤膜浸入 液体海水培养基 三角瓶 每瓶装 培养液 ε 振荡培养 将富集培养基 用无菌海水稀释后涂筛选培养基平板 ε培养 结果发现共有 多株菌有酪蛋白分解圈 表明它们都是分泌胞外蛋白酶的低温菌∀测定酪蛋白分解圈直径与菌落直径的比径 挑选比值大的菌落 株 用平板分离纯化后 保藏于 固体斜面上∀将 株比值最大的菌株分别编号为≥ 2 ≥ ≥ ≥ ≥ ∀通过染色鉴定发现 这 株菌均为杆状革兰氏阴性菌∀2 2温度对菌株生长的影响测定 株菌在不同温度下的生长状况表明 所选 株菌在 ∗ ε都能生长 ≥ 2≥ ≥ 的最高生长温度为 ε ≥ 2 ≥ 的最高生长温度为 ε 这 株菌的最适生长温度均在 ∗ ε 表 ∀这些特征表明 这 株菌均属于适冷菌∀2 3蛋白酶产酶活力的比较将≥ ≥ ≥ ≥ ≥ 株菌于 ε摇瓶培养 三角瓶 每瓶装 培养液 后 离心 测上清液中蛋白酶活力∀结果如图 所示 株菌的产酶活力各不相同 ≥ 的蛋白酶产酶活力最高 达 ∀≥ 2 最低 产酶量为 ∀由于这些菌都是野生菌株 未经过诱变 因此产酶活力普遍较低∀图 株菌的蛋白酶产酶活力ƒ × √ ¬ ≥ ≥ ≥ ≥≥2 4蛋白酶酶学性质最适酶活温度中温蛋白酶的最适酶活温度一般都在 ε以上 目前工业上所用的蛋白酶的最适酶活温度一般都在 ε左右∀而从渤海湾分离到的 株适冷菌中 ≥ 和≥ 所产蛋ΑΡΤΙΧΛΕ研究论文#≥ ∂海洋科学 年 第 卷 第 期白酶的最适酶活温度均为 ε 其余 株为 ε 表 ∀由此看来 低温菌由于生存环境温度较低 经过长期的进化适应 其生理代谢机制也可能发生变化 为了能更好地利用环境中的资源 它们分泌的胞外蛋白酶的最适酶活温度也较低∀最适 用 ∗ 的缓冲液稀释酶液 加入相同 的底物进行反应 测定 株菌所产蛋白酶在不同 下的酶活∀结果表明 ≥ 2在 时酶活最高 为中性蛋白酶 ≥ 2 ≥2 ≥ 2 在 为时酶活最高∀而≥ 2 在 时酶活最高 为碱性蛋白酶 表∀海水 一般为 ∗ 从本文的结果来看 海洋细菌分泌的胞外蛋白酶的最适 与环境 相差不大这可能也是细菌对环境长期进化适应的结果∀热稳定性将 株菌所产的蛋白酶在ε和 ε下分别保温 和 然后测定残留酶活∀结果如表 所示 株菌所产蛋白酶的热稳定性各不相同∀≥ 2 所产蛋白酶热稳定性最好 在 ε和 ε下保温 残留酶活分别为∀而≥ 2 所产蛋白酶对热最敏感 在 ε和 ε下保温 残留酶活分别为 和 ∀低温酶为了在低温下保持较高的催化效率 一般具有很强的柔顺性和很弱的刚性 这种结构特征也导致了酶的稳定性较低∀讨论高纬度海水终年温度较低 因而存在着大量低温微生物∀本文从渤海湾浅表水层中分离到一批能在 ε下良好生长的适冷菌∀其中 株高产蛋白酶菌株的最适生长温度均为 ∗ ε 最高生长温度为∗ε∀这比一般的中温菌的最适与最高生长温度都低 而与渤海湾浅表水层的温度比较一致∀适冷菌广泛存在于海洋中是海洋生态系统中的主要分解者∀在海水!鱼!贝中都分离到产蛋白酶的适冷菌≈它们在海洋生态系统中氮的循环中起着重要作用∀产低温蛋白酶的菌除了从海洋中分离到以外还从高山和南极的泥土中分离到∀从种类上看 主要为Πσευ2δοµονασ属,Ξαντηοµονασ属,Αεροµονασ属,Αλ2τεροµονασ属,Σηεωανελλα属,Βαχιλλυσ属等≈ ∗ ∀这些适冷菌所产蛋白酶的最适酶活温度一般都在 ∗ ε但也有 ∗ ε∀本文中 株菌所产蛋白酶的最ΑΡΤΙΧΛΕ研究论文#≥ ∂适酶活温度均为 ∗ ε∀从本文结果与发表的结果可以看出低温菌所产蛋白酶的最适酶活温度均高于其生存的环境温度和其最适生长温度这说明菌的进化与酶的进化可能是不同步的 而且低温菌可能是由中温菌进化来的∀蛋白酶是洗衣粉中的重要用酶∀目前洗衣粉中所用的酶均为中温碱性蛋白酶 最适 左右 最适酶活温度 ε左右∀但由于洗衣机的普遍使用 目前洗衣的发展趋势是使用自来水洗涤而自来水的温度一般不超过 ε因此 洗衣粉中的中温蛋白酶由于水温低 酶活很小 效率很低 用量大∀本文筛选到的≥ 2 菌株所产蛋白酶的最适酶活温度 ε最适∀如果用这种低温蛋白酶代替洗衣粉中的中温蛋白酶可以提高效率 节省用量∀因此低温蛋白酶在洗涤工业中有着很好的应用前景∀另外在饲料!化妆品!牙膏等工业中也有着很好的利用价值∀参考文献张树政∀酶制剂工业∀北京 科学出版社 ∀ ∗≥ εταλ..Βιοσχι.Βιοτεχη.Βιοχηεµ., ∗× εταλ..ΛεττερσινΑππλιεδΜιχροβιολογψ, ∗∏ √ Αππλ.Ενϖιρο.Μιχροβιολ., ∗≤ εταλ..ΒιοχηιµιχαετΒιοπηψσιχα, ∗本文编辑刘珊珊 ΣΕΛΕΧΤΙΟΝΟΦΤΗΕΠΡΟΤΕΑΣΕ2ΕΞΧΡΕΤΕ∆ΠΣΨ2ΧΗΡΟΤΡΟΠΗΙΛΙΧΒΑΧΤΕΡΙΑΣΤΡΑΙΝΣΦΡΟΜΤΗΕΣΗΑΛΛΟΩΣΕΑΩΑΤΕΡΙΝΒΟΗΑΙΒΑΨ≤ ∞ ÷ ∏2≠∏2° 2•∏2•(1ΣτατεΚεψΛαβοφΜιχροβιαλΤεχηνολογψ,ΣηανδονγΥνιϖερσιτψ,ϑιναν, (2ΙνστιτυτεοφΟχεανολογψ,ΧηινεσεΑχαδεµψοφΣχιενχεσ,Θινγδαο, Ρεχειϖεδ: ∏ΚεψΩορδσ:≥ ° °Αβσταχτ2 ¬ ¬ ∏ ∏ × ∏ ∏ 2 ε 2 ε √ ≥ ≥ ¬ √ × ∏ 2 ∏ 2 ε ∏ 2 × ∏ ¬ ≥ √ √ ∏ ε ∏ ×√ ∏ ΑΡΤΙΧΛΕ研究论文#。

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