200只大鼠内眦取血的操作体会
200只大鼠内眦取血的操作体会
EDTA 钾抗凝,目前,生化测定采用肝素钠抗凝。
熟练掌握不同采血管的功能和要求,就会杜绝1.3中第二次采血和1.4中第一次采血出现的错误。
1.3中第二次采血由于使用了EDTA 钾抗凝管,血中的Ca 2+、M g 2+被EDTA 钾络合,测出的Ca 2+、M g 2+明显降低。
M g 2+又是ALT 的必须辅助因子,ALT 的活性受到抑制,所以结果较第一次明显降低。
1.4中第一次采血出现的结果是因为抗凝剂与血的比例高造成。
有文献证明,随着血液和抗凝剂比例的逐步下降,首先表现为TT 检测时间缩短[2]。
笔者曾做过10例30个凝血试验的观察(每例血各与3.2%枸橼酸纳5∶1、7.5∶1、9∶1比例抗凝),发现随着血液与抗凝剂比例的逐步下降(由5∶1※7.5∶1※9∶1),PT 和TT 时间缩短,Fib 值增高。
因此,护士要按要求采集抗凝血,避免由于抗凝剂与血的比例不合格带来的错误结果。
2.3 注意事项 (1)采血要准确,避免溶血,因为溶血可使心肌酶学、TT 、K +、胆红素等项目发生改变或测不出;(2)急诊分析时,一定要用抗凝管采血,因为血样分离的快才能早出结果,注意血与抗凝剂的比例并混匀;(3)标本要及时送检,避免标本放置时间过长造成血糖、CO 2、Na +、K +等的改变。
护理工作的规范采血关系到检验结果的准确可靠,二者要互相配合才能使医院的服务质量不断提高。
【参考文献】[1] 徐涛,王荣廷.临床检验基础[M ].北京:人民卫生出版社,1986,150.[2] 陈俊,王利建,吴健媛,等.抗凝比例对凝血检测项目T T的影响[J ].江西医学检验,2003,21(1):59.(收稿日期:2005-09-20)(护理学栏目编辑:张玉亭)技术方法200只大鼠内眦取血的操作体会周晓春,陈 龙,刘绍晨(承德医学院,河北承德 067000)【关键词】大鼠;内眦;采血【中图分类号】R -332 【文献标识码】B 【文章编号】1004-6879(2005)04-0328-02 大鼠是科研常用的实验动物,在实验中要采集大量的血液标本比较困难[1]。
大鼠眼内眦采血的体会
［ 关键词 ］大 鼠； 内眦 ； 采血 ［ 中图分类号 ］Ｒ ４ ４ ６ ． １ １ ； Ｑ ９ ５ － ３ ３ ６ ［ 文献标识码］Ｂ ［ 文章 编号］１ ６ ７ ２ — ５ ０ ４ ２ （ ２ ０ １ ４ ） ０ ３ － ０ ３ ２ ４ － ０ １
Ｓ ｕ ｒ ｇ Ａ ｍ， ２ ０ １ ０， ９ ２（ １ ０ ） ：１ ９ ９ ２—１ ９ ９ ６ ．
［ ５ ］ Ｌ ｊ Ｍ， Ｒ ｏ ｎ ｇ Ｗ， Ｐ ａ ｎ Ｘ， ｅ ｔ ａ １ ． Ｓ ｉ ｎ ｇ ｌ ｅ － ｌ ｅ ｖ ｅ ｌ ｃ ａ ｌ ｃ ｉ ｉ ｆ ｅ ｄ ｃ ｅ ｒ ｖ ｉ ｃ ａ ｌ ｄ ｉ ｓ ｋ ｈ ｅ ｒ ｎ ｉ ａ ｔ ｉ ｏ ｎ ｉ ｎ ａ １ ３ － ｙ ｅ ａ ｒ — ｏ ｌ ｄ ｇ ｉ ｒ ｌ ［ Ｊ ］ ． Ｏ ｒ ｔ ｈ ｏ ｐ ｅ ｄ ｉ ｃ ｓ ， ２ ０ １ ２ ， ３ ５（ ８ ） ： ｅ １ ２ ９ ７ — １ ３ ０ １ ． ［ ６ ］ Ｅ ｃ ｐ Ｃ ， Ｂ ｅ ｎ ｎ ｉ ｓ Ｓ ， Ｂ ｌ ａ ｕ ｗ ｂ ｌ ｏ ｍ ｍ ｅ Ｔ ， ｅ ｔ １ ａ ． Ｓ ｐ ｏ ｎ ｔ ａ ｎ ｅ ｏ ｕ ｓ ｒ ｅ ｓ ｏ ｒ ｐ ｔ ｉ ｏ ｎ ｏ ｆ ｔ ｈ ｏ －
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３ ２ ４・
局 解 手 术 学 杂 志 ２ ０ １ ４年 第 ２ ３卷 第 ３期
８１ Ｏ．
Ｊ Ｒ Ｅ Ｇ Ａ Ｎ Ａ Ｔ Ｏ Ｐ Ｅ Ｒ Ｓ Ｕ Ｒ Ｇ， ２ ０ １ ４ ， Ｖ ｏ １ ． ２ ３ ’ Ｎ ｏ ． ３
ｃ ｏ ｍｅ ｓ ｉ ｎ ｐ ａ ｔ ｉ ｅ ｎ ｔ ｓ ｗ ｉ ｔ ｈ ｃ ｈ ｒ ｏ ｎ ｉ ｃ ｋ ｉ ｄ ｎ ｅ ｙ ｄ ｉ ｓ ｅ ａ ｓ ｅ［ Ｊ ］ ． Ｂ ｌ ｏ ｏ ｄ Ｐ ｕ ｒ ｉ ｆ ， ２ ０ ０ ９ ， ２ ７
交流：大鼠-PK-取血操作
大鼠眼眶取血流程
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பைடு நூலகம்
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约4-5mm。当感到有阻力时即停止推进， 同时，管退出约0.1-0.5mm，边退边旋 转；
C 不要使用管的尖锐锋利端插入， 易留玻璃碎片在眼内，造成持续伤害， 使得下次反抗增加；
D 拿管的手要保持干净，带血渍的 手指不要接触管的两端，易造成凝血， 可用醇水擦洗。
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大鼠眼眶取血流程
4固定采血
5去管止血
Step5.取血完成，立即 除去颈部压力，将采血 器拔出，按压止血
Step 5 A 当得到所需的血量后，即
除去加于颈部的压力，同时，将 采血器拔出，以防止术后穿刺孔 出血。
B 尽量把眼睛周围的血渍搽 干净，避免结块影响下次取血。
6样品摇匀 Step6.血样管轻轻混匀， 防止凝血、溶血
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药物性质
预实验建立
给药途径
注射 一般 呈现 降低 趋势，给药后较短时间内采集的点数适当增加； 灌胃 存在Cmax-tmax，需通过考察tmax，根据一般原则，适当调整时间间隔。
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大鼠眼眶取血流程
1.将大鼠按压在鼠 笼上，拇+中+食指 固定住头部
3.右手持毛细管从眼 内眦部，与鼠面成45 ℃夹角，旋转刺入
小鼠心脏取血心得体会
小鼠心脏取血心得体会
1、麻醉小鼠，选取小鼠刚麻好状态，此时心跳快，有利于观察搏动及取血。
2、固定好小鼠，胸部酒精消毒，暴露胸部皮肤，有利于观察小鼠心脏搏动。
3、方法一：（正常左位心）左手按压小鼠肋骨下方，使得胸腔饱满。
观察小鼠心
脏搏动最强点，并用右手触摸轻轻按压寻找最强搏动点（一般在胸骨下方稍靠左的位置）。
垂直进针约8毫米（无很强突破感，有扎入肉的感觉，言语有限，自行体会……），左手固定针头（很重要），防止跑偏，抽吸，若无血液流出，可慢慢沿着同一方向调整进针深度，再抽吸即可。
若仍无，建议直接拔出针，重新寻找下针点。
若有很强的落空突破感，估计是没扎到心脏。
4、方法二：（很难搞的右位心），左手按压小鼠肋骨下方，使得胸腔饱满。
若有
很强的心脏搏动，即可按方法一行。
若无，寻找小鼠胸骨，中间上方硬硬的一块。
胸骨下方进针，后续方法同前。
大鼠取血方法
大鼠取血方法1. 割（剪）尾采血：当所需血量很少时采用本法。
每鼠一般可采血10余次以上。
小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3〜0.5ml。
1.4見尖采血才法将大杖囲進好•阳50乜左右SL水根池城部妁2 血骨充血后•用球消黑、擦干BU匕用消澎手术旳的去尾尖3 ■ 10mi叭魅后从用根那向尼尖檢忙血fl朋尖流岀。
此法町采L5-2 mL2. 鼠尾刺血法：大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查），可采用本法。
先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。
用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉, 拔出针头时即有血滴出，一次可采集10〜50mm3。
如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。
3. 眼眶静脉丛采血：体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml ;体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。
将天M冊建庄实验台边Sfir左手抓囂大區拥那皮肤囿定头部，井轻轻向下压迫用導先稚备好的io 号舍JM甘头顶蝎（怦尖斛閒朝内人垂氏插人内就并向眼底方向转动以便切开押体丛「血敕便会连缨不斷地溝人采血用此法大约可取？-3 取血宪毕•立刻用脱册郴压迫也环境材料0.9mm x 100mm,背牛人习櫃便用丫经常骨—断.30mm晴、弁去屮阀段=EP 曲虻人0.1% IH-比钠< >150U/mgJ 0J mL-均匀涧湿・50P减下I輻适帀1mL伞血的抗甌效果肛人取血则感须熒I R J衿住骨的质昂.杯号井汕. 邀当劣备.1 Mi ■. ■■ iV ■■■. >■ -K> ■宽敬台曲*輕了F组多步驟同时操作］| ■ cm ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■ ■■ ■琴L9tt»EP&J动物处理功物作亟耍求权不% J 250g给西前禁的2・24h・给药前探前0.5-1-Oh fe0.5-1.0% iV/W）给水实验粥问•补充休液.H前苛煜为:取血质常胃给予等统计4•理社加衙帝樹涪液.实验之后,外用泊炎药涂布眼部2 <1AF保定2压迢颈曽3加的剌入4固定采血5去背止jft 6样加擂匀4.叵定身怎.圧住石肢，放桧手祈，緞轿毛ML沆畅出血.6血样曾轻轻罷匀,防止窠血・濤血.Step 1A建议；L于内枚鼻•涌陆止摟見：B 一定更帶手豪；C开址必倾卑牢83定隹头邙头那乱动.扎位JT黑易棉僞离.且易枕咬伤:D可衣此叶将丸只取如的的乍須剪掉.彷止按总栽£・1 •料大R歿壬牲歐1±.捋钟*3 •右手持“曾从纹内*部，与6L土脱45的.从轻剌入5•取血丸成，之EF瞼去歿部压力.再采去界拔出，按圧吐上.1左手保定Stcpl.W大鼠按压在亂笼上.il&Wfff：藝部t2•紧携頤都，R追頌两侧.使卑突出・匝后铮脉丛充血r»ge 7•押•Stcp2A 可円管试来鼻段碰Cl 球是否巳疑 突出.1'此甘丈乱反此身扎JU ♦窑・保送 爪緊钓司时.不ttKii.便其宣息死亡.Step3A 针头钎面走尙at 班・的入后再转 一定角度便斜面廿着瓯聊&界；B 制入凍度.小区为2・4・大区 釣卜X ・考禺型有也力时即护止牠进. 同时.管逼出约0. 1-0. 5twr ・边迅边就 转；C 不要使用管的尖位伶利期描入. 场穷璇購碎片右叹内，迪成持纹伤芳. 使埒下次反抗增“；D 拿昔的子要保持工净，常血潢的 子損不妥搽狀管的的坊，另龟安疑血・ 可刃鮮水搏洗・Sgp2•禁祖fiS 部.压迪 it两侧・使銀交出.屯一I 后静脉丛It 血Step! WL 內如, 45匸夬代・戎转倒 入，夂转谴出.A -般血减速戊快.证明•«膩了殴匝劝脉. 如舉白兀迄皮慢.证明要调怒皂侦胥的位JL 占液祁克釘爼保中了，没版毛师打漉出来；B岀血过租*知週到出£不杨不用着宦械毛如管可以调兰一下毛细管的扎入付Jf或深戎浅的找止一下&会玄新沉出；C加肴“浹已经冬毛fw$中｛固必须込迫拔除毛细管，再搽工净眼哺.f*JMf4L4t；D筝到出血点将力it 删到大II的身体上大鼠出现英动的惜况檢大的一邯分力是他旳吉吹仗出来约保迄抱的后咬尢法乱蹬就瓮很好的供定大鼠.集后传中指和*第处… •U可以保iL血淹的雁畅5去育止ItStep SA自曙自繪宣的血量6.即冷去3千到1部的圧力.同时.并覆土茎抜出.以防土术6 £併扎出直.B尿乞把1RM罔18的血潢摄干冷，遊丸储块附徇下次2・6"品摇匀S"M・血桿片U经汎勺.---- 障止心・Step 44同龙采血・ ±fr 力.将集血2｛锻出.扶/!止血\ -* II4.断头取血： 采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大 （小）鼠的颈部皮肤，并作动物头 朝下倾的姿势。
大小鼠眼眶取血方法(附图)知识讲解
5去管止血
Step5.取血完成，立即 除去颈部压力，将采血 器拔出，按压止血
Step 5 A 当得到所需的血量后，即 除去加于颈部的压力，同时，将 采血器拔出，以防止术后穿刺孔 出血。 B 尽量把眼睛周围的血渍搽 干净，避免结块影响下次取血。
6样品摇匀 Step6.血样管轻轻混匀， 防止凝血、溶血
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C 如看见血液已经在毛细管中凝固 必须迅速 拔除毛细管，再搽干净眼睛，重新换管扎针；
D 等到出血后 将力道转移到大鼠的身体上 大鼠出现乱动的情况很大的一部分力是他的后 肢使出来的 保证她的后肢无法乱蹬就能很好的 保定大鼠，然后将中指和食指处解除一半的力 道，可以保证血液的顺畅
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大鼠眼眶取血流程
大鼠眼眶取血流程
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2压迫颈部
Step2.紧握颈部，压 迫颈两侧，使眼突出， 眶后静脉丛充血
Step2 A 可用管试探性触碰眼球是否已经 突出； B 此时大鼠反抗挣扎最厉害，保证抓 紧的同时，不能太过，使其窒息死亡。
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大鼠眼眶取血流程
3旋转刺入
Step3.眼内眦部， 45 ℃夹角，旋转刺 入，旋转退出。
Step3 A 针头斜面先向眼球，刺入后再转 一定角度使斜面对着眼眶后界； B 刺入深度，小鼠约2-3mm，大鼠 约4-5mm。当感到有阻力时即停止推 进，同时，管退出约0.1-0.5mm，边 退边旋转； C 不要使用管的尖锐锋利端插入， 易留玻璃碎片在眼内，造成持续伤害， 使得下次反抗增加； D 拿管的手要保持干净，带血渍的 手指不要接触管的两端，易造成凝血， 可用醇水擦洗。
临床技能学动物实验报告
一、实验目的:通过实际操作，掌握大、小鼠的一般操作方法，包括大、小鼠的抓取和固定、性别鉴定、给药、采血。
二、实验动物：昆明小鼠4只（2雌2雄）、大鼠4只（2雌2雄）、灌胃器2个、注射器4个、酒精、棉球、生理盐水、小鼠固定器1个、大鼠固定器1个。
三、实验步骤1、抓取和固定1.1抓取：左手抓小鼠的尾根部1.2固定：左手抓住小鼠的尾根部，让小鼠在粗糙平面上爬行，后拉尾跟部，右手的拇指和食指抓住小鼠两耳及其间的颈部皮肤，小指和无名指将尾巴固定在手掌面。
1.3同样操作将大鼠抓取和固定2、性别鉴定：2.1抓取和固定小鼠2.2观察肛门与生殖器间的距离和二者之间的毛发。
雄性：距离长，毛发密（和其他部位一样）；雌性：距离短，毛发稀疏。
2.3同样鉴别方法，重复鉴别大鼠。
3. 给药3.1 灌胃法3.1.1按正确方法用左手抓取和固定小鼠，使腹部朝上，颈部拉直。
3.1.2固定后，右手持持接灌胃针的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从口角插入口腔内，然后用灌胃针头压其头部，使口腔与食管成一直线，再将灌胃针头沿上腭壁轻轻进入，转动针头刺激动物吞咽，然后沿咽后壁慢慢插入食道。
3.1.3当感觉有落空感时表明灌胃针可能进入胃内，向外抽动注射器活塞，感觉有负压，此时可将药液灌入。
3.1.3用大鼠重复同样操作3.2 注射给药3.2.1皮下注射3.2.1.1用左手拇指和食指轻轻提起动物颈后肩胛间皮肤，3.2.1.2右手持注射器，使针头水平刺入皮下，针头能自由拨动无牵阻，推送药液时注射部位隆起。
拨针时，以手指捏住针刺部位3.2.1.3用大鼠重复同样操作3.2.2腹腔注射3.2.2.1以左手固定小鼠，使腹部向上，3.2.2.2右手持注射器从下腹两侧向头方刺入皮下，针头稍向前，再将注射器沿 45 角斜向穿过腹肌进入腹腔，此时有落空感，回抽无回血或尿液，即可注入药液。
3.2.2.3用大鼠重复同样操作3.2.3尾静脉注射3.2.3.1先将动物固定在暴露尾部的固定器内，3.2.3.2用 75％酒精棉球反复擦拭尾部使血管扩张，3.2.3.3以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，用中指从下面托起鼠，右手持注射器，使针头尽量采取与尾部平行的角度进针，从尾末端处刺入。
大鼠取血方法(总结)
大鼠取血方法1.割(剪)尾采血：当所需血量很少时采用本法。
每鼠一般可采血10余次以上。
小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。
2.鼠尾刺血法：大鼠用血量不多时(仅做白细胞计数或血红蛋白检查)，可采用本法。
先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。
用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm3。
如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。
3.眼眶静脉丛采血：体重20-25g的小鼠每次可采血0.2-0.3ml；体重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。
4.断头取血：采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大(小)鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。
右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。
小鼠可采用约0.8～1.2ml;大鼠约5-10ml。
5.心脏采血：鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。
若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。
小鼠约0.5-0.6ml；大鼠约0.8-1.2ml。
1.浅麻醉大鼠2.四肢展开固定在平板上3.按常规碘酒、酒精消毒后4.用食指感觉心博最动处5.大约在胸骨下缘1/3处、稍偏左0.2-0.5左右的地方垂直进针（1/4号）6.针头抵心脏有明显的搏动感，再稍进针，有空虚感，血液跳跃而上针腔7.从血液的颜色很容易判断在心室还是心房，一般都在心室8.多次同一大鼠的心脏采血，切记初次进针的位置及深度，不要随意更换固定姿势！9.我每次取1ml血液，大约可操作4-5次（200g大鼠）6.颈动静脉采血：先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液。
在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内。
离心取上清后，余下的红细胞加适量生理盐水从尾静脉中回输给大鼠，这样可能对大鼠的血量、体内药物的浓度等影响均小些。
动物的采血实验报告
一、实验目的1. 熟悉动物采血的基本原理和操作步骤。
2. 掌握不同动物采血方法，如尾尖采血、眼眶后静脉丛采血等。
3. 了解采血过程中应注意的问题，确保实验安全。
二、实验材料1. 实验动物：小鼠、大鼠、豚鼠、兔等。
2. 采血工具：注射器、采血针、剪刀、镊子、棉球、酒精、碘酒、消毒液等。
3. 实验器材：手术台、解剖显微镜、烧杯、试管等。
三、实验方法1. 尾尖采血：适用于所需血量较少的实验。
- 将动物固定在手术台上，露出鼠尾。
- 剪去鼠尾毛，用酒精消毒。
- 将鼠尾浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。
- 擦干鼠尾，用剪刀或刀片割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取。
- 采血结束后，伤口消毒并压迫止血。
2. 眼眶后静脉丛采血：适用于中等血量的实验。
- 将动物固定在手术台上，捏紧头部皮肤，使头部固定。
- 轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部静脉血液回流困难，使眼球充分外突。
- 右手持毛细玻璃管，沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入，深度小鼠2-3mm，大鼠4-5mm。
- 当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，血液即流入玻璃管中。
- 得到所需的血量后，拨出玻璃管。
3. 心脏采血：适用于较大血量的实验。
- 取血前应探明心脏搏动最强部位，通常在胸骨左缘的正中。
- 针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血。
- 用锐器在心脏搏动最强部位穿刺，血液即流入注射器中。
4. 耳缘剪口采血：适用于豚鼠等动物。
- 将豚鼠耳消毒后，用锐器（刀或刀片）割破耳缘。
- 在切口边缘涂抹20%柠檬酸钠溶液，阻止血凝。
- 血液可自切口自动流出，进入盛器。
四、实验结果1. 尾尖采血：小鼠每次可取血0.1ml，大鼠每次可取血0.2-0.3ml。
2. 眼眶后静脉丛采血：小鼠每次可取血0.2-0.3ml，大鼠每次可取血0.5-1ml。
3. 心脏采血：豚鼠每次可取血10-20ml。
4. 耳缘剪口采血：豚鼠每次可取血0.5ml左右。
小鼠采血方法实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握小鼠采血的方法和技巧。
2. 了解不同采血方法的特点和适用范围。
3. 提高动物实验操作的规范性和安全性。
二、实验材料1. 实验动物：健康小鼠若干只。
2. 实验器材：解剖显微镜、手术刀、剪刀、镊子、无菌手术器械、无菌棉球、液体火棉胶、注射器、无菌生理盐水、消毒液等。
三、实验方法1. 采血方法：本次实验主要采用剪尾采血和眼眶后静脉丛采血两种方法。
（1）剪尾采血：a. 将小鼠置于实验台上，用左手拇指和食指抓住小鼠颈部皮肤，将其头朝下。
b. 将小鼠尾巴浸泡于50℃热水中数分钟，使尾部血管充盈。
c. 擦干尾部，用剪刀或手术刀剪去尾尖1-2mm。
d. 用注射器吸取无菌生理盐水，注入伤口处，使血液流出。
e. 用无菌棉球压迫伤口处止血，并涂上液体火棉胶。
（2）眼眶后静脉丛采血：a. 将小鼠置于实验台上，用左手拇指和食指抓住小鼠颈部皮肤，将其头朝下。
b. 将麻醉药物滴入采血侧眼球，对小鼠眼部进行局部麻醉。
c. 用左手拇指和食指压迫小鼠颈部两侧，阻碍静脉回流，使眼球充分外突，眼眶后静脉丛充血。
d. 右手持硬质毛细玻璃管，沿眼角刺入眼眶底部，轻轻捻动毛细管，使其刺入眼眶静脉丛，可见血液流出。
e. 采集到所需血量后，用无菌棉球压迫伤口处止血。
2. 血液样本处理：a. 将采集到的血液样本注入无菌试管中。
b. 混匀血液样本，按照实验要求进行分离、检测等后续处理。
四、实验结果与分析1. 剪尾采血：a. 采血量：约0.1-0.2mL。
b. 采血时间：约5-10分钟。
c. 采血成功率：95%。
2. 眼眶后静脉丛采血：a. 采血量：约0.2-0.3mL。
b. 采血时间：约10-15分钟。
c. 采血成功率：90%。
五、实验讨论1. 剪尾采血方法操作简便，适用于少量多次采血，但可能导致小鼠尾部疼痛，影响动物福利。
2. 眼眶后静脉丛采血方法适用于中等量采血，成功率较高，但需要局部麻醉，可能对小鼠造成一定程度的刺激。
动物采血练习实验报告
实验名称：动物采血练习实验班级：XX 班实验小组：XX 组实验日期：2023年X月X日一、实验目的1. 掌握实验动物采血的基本操作技能。
2. 熟悉不同动物采血部位和方法。
3. 熟悉采血过程中可能遇到的问题及应对措施。
二、实验原理动物采血是医学和生物学实验中常见的操作，通过对实验动物进行采血，可以获取血液样本，用于检测血液成分、生化指标、病原体等。
采血方法的选择取决于实验目的、所需血量以及动物种类。
三、实验器材1. 实验动物：大鼠、小鼠、兔、豚鼠等。
2. 采血工具：注射器、采血针、酒精棉球、止血钳、剪刀等。
3. 实验试剂：抗凝剂、生理盐水等。
四、实验方法1. 准备工作：将实验动物固定在实验台上，确保其安全。
2. 采血部位选择：根据实验目的和动物种类选择合适的采血部位，如尾静脉、耳静脉、眼底静脉丛等。
3. 消毒：用酒精棉球对采血部位进行消毒，确保无菌操作。
4. 采血：根据采血部位选择合适的采血工具，如注射器、采血针等，缓慢刺入静脉，采集所需血量。
5. 止血：采血结束后，用酒精棉球对伤口进行消毒，并用止血钳压迫止血。
6. 血液处理：将采集到的血液样本按照实验要求进行处理，如加入抗凝剂、分离血清等。
五、实验结果与分析1. 大鼠采血：在实验中，我们成功从大鼠的尾静脉采集到了所需血液样本。
采血过程中，大鼠表现较为安静，未出现明显应激反应。
2. 小鼠采血：在实验中，我们成功从小鼠的耳静脉采集到了所需血液样本。
采血过程中，小鼠表现较为活跃，但通过适当安抚，其应激反应得到了有效控制。
3. 兔采血：在实验中，我们成功从兔子的耳静脉采集到了所需血液样本。
采血过程中，兔子表现出一定的紧张，但在操作人员的安抚下，其应激反应得到了有效控制。
4. 豚鼠采血：在实验中，我们成功从豚鼠的股动脉采集到了所需血液样本。
采血过程中，豚鼠较为紧张，但在操作人员的安抚下，其应激反应得到了有效控制。
六、实验讨论1. 采血过程中，动物应激反应的控制至关重要。
交流：大鼠-PK-取血操作
2012-5-5
交流提纲
实验环境 实验材料
具体操作
动物处理
大鼠 PK 取血
血样处理
.
取血容量 时间安排
问题讨论
环境 材料
A 通风台面 B 毛细管 C 抗凝EP管 D 计时工具
长时间操作，透气通风 宽敞台面，便于多组多步骤同时操作
0.9mm × 100mm，看个人习惯使用， 经常一管三断，30mm/管，弃去中间段。
C 如看见血液已经在毛细管中凝固 必须迅 速拔除毛细管，再搽干净眼睛，重新换管扎针；
D 等到出血后 将力道转移到大鼠的身体上 大鼠出现乱动的情况很大的一部分力是他的后 肢使出来的 保证她的后肢无法乱蹬就能很好 的保定大鼠，然后将中指和食指处解除一半的 力道，可以保证血液的顺畅
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大鼠眼眶取血流程
5.取血完成，立即除 去颈部压力，将采血 器拔出，按压止血。
1左手保定 2压迫颈部 3旋转刺入 4固定采血 5去管止血 6样品摇匀
2.紧握颈部，压迫颈 两侧，使眼突出，眶 后静脉丛充血
4.固定身体，压住后 肢，放松手指，调整 毛细管，流畅出血。
6血样管轻轻混匀， 防止凝血、溶血。
大鼠眼眶取血流程
1左手保定
约4-5mm。当感到有阻力时即停止推进， 同时，管退出约0.1-0.5mm，边退边旋 转；
C 不要使用管的尖锐锋利端插入， 易留玻璃碎片在眼内，造成持续伤害， 使得下次反抗增加；
D 拿管的手要保持干净，带血渍的 手指不要接触管的两端，易造成凝血， 可用醇水擦洗。
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大鼠眼眶取血流程
4固定采血
你嘲笑我一无所有，不配去爱，我可怜你总 是等待。
你可以轻视我们的年轻，我们会证明这是谁 的时代。
大鼠取血方法及注意事项
大鼠取血方法及注意事项以大鼠取血方法及注意事项为标题，我们将详细介绍大鼠取血的步骤和需要注意的事项。
大鼠取血是实验室常用的操作步骤之一，正确的取血方法能够确保实验结果的准确性和可靠性。
一、大鼠取血的方法1. 麻醉大鼠：在进行大鼠取血前，首先需要麻醉大鼠。
常见的麻醉方式包括：静脉注射麻醉剂、吸入麻醉剂或麻醉气体等。
选择合适的麻醉方式应根据实验的需要和大鼠的品系、年龄等因素来确定。
2. 选择合适的取血部位：大鼠取血可选择的部位有尾静脉、颈静脉、股静脉等。
一般情况下，常用的取血部位是尾静脉，因为该部位较容易操作且出血量较大。
3. 准备取血器材：取血器材包括注射器、针头、血管夹等。
注射器的容量应根据实验需要来选择，一般常用的是1ml或3ml的注射器。
针头的选择应根据大鼠的大小来确定，一般较小的大鼠可选择22G 或23G的针头。
4. 清洁取血部位：在进行大鼠取血前，需要先用70%酒精或碘酒等消毒液清洁取血部位，以避免感染。
5. 插入针头：将针头插入静脉血管中，一般插入角度为30度左右，插入后要确保针尖进入血管腔内。
6. 固定针头：当针头插入到合适的位置后，需要用血管夹固定住针头，以防止针头脱出或移位。
7. 采集血液：打开注射器的活塞，缓慢地抽取所需血液量。
在抽取血液时，要注意避免对大鼠造成过度的伤害或疼痛。
8. 停止出血：当取得足够的血液样本后，可以用消毒棉球轻压在取血部位，帮助止血。
9. 处理取血部位：取血结束后，要及时用消毒液清洗取血部位，以防止感染。
二、大鼠取血的注意事项1. 需要遵守实验伦理规范：在进行大鼠取血前，需要确保已经获得了相关的伦理批准，并遵守实验动物的使用和保护规定。
2. 需要专业技术人员操作：大鼠取血需要经过专业培训和指导后才能进行，确保操作的准确性和安全性。
3. 需要注意大鼠的健康状况：在进行大鼠取血前，需要确保大鼠的健康状况良好，没有明显的疾病或受伤。
4. 需要合理控制取血量：取血量应根据实验的需要来确定，避免过度取血造成大鼠的伤害。
大小鼠眼眶取血方法(附图)
13、He who seize the right moment, is the right man.谁把握机遇，谁就心想事成 。2021/6/282021/6/282021/6/282021/6/286/28/2021
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12、要记住，你不仅是教课的教师， 也是学 生的教 育者， 生活的 导师和 道德的 引路人 。2021/6/282021/6/282021/6/28Monday, June 28, 2021
2压迫颈部
Step2.紧握颈部，压 迫颈两侧，使眼突出， 眶后静脉丛充血
Step2 A 可用管试探性触碰眼球是否已经 突出； B 此时大鼠反抗挣扎最厉害，保证抓 紧的同时，不能太过，使其窒息死亡。
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大鼠眼眶取血流程
3旋转刺入
Step3.眼内眦部， 45 ℃夹角，旋转刺 入，旋转退出。
Step3 A 针头斜面先向眼球，刺入后再转 一定角度使斜面对着眼眶后界； B 刺入深度，小鼠约2-3mm，大鼠 约4-5mm。当感到有阻力时即停止推 进，同时，管退出约0.1-0.5mm，边 退边旋转； C 不要使用管的尖锐锋利端插入， 易留玻璃碎片在眼内，造成持续伤害， 使得下次反抗增加； D 拿管的手要保持干净，带血渍的 手指不要接触管的两端，易造成凝血， 可用醇水擦洗。
小鼠大鼠家兔采血实验报告
小鼠大鼠家兔采血实验报告
采血的目的就是为了制备新鲜血液，我们通常在使用血清等时都要进行小鼠或大鼠或家兔来采血。
但是不同种类的实验动物之间也有一定差别，那么我们该如何选择呢？这里我给大家介绍几个方法：
首先用酒精棉球擦拭小鼠耳缘静脉、尾根部动脉和尾巴上的静脉，观察其出血情况；而且要求酒精棉球能够迅速干燥，否则小鼠因被毛吸附了酒精可能会引起皮肤灼伤甚至死亡，若小鼠已经熟睡还应该观察小鼠眼睛、鼻子周围有没有分泌物流下，如果眼睑发红，并伴随打喷嚏等症状说明可能患了感冒。
其次向实验台中央倾倒无菌培养皿中所需的全血，再让小鼠侧躺，用右手食指触摸小鼠背部脊柱两侧凹陷部位，判断这块区域是颈动脉窦（右侧）还是腹股沟浅淋巴结（左侧）；当然这些标准只适合于做小鼠相关研究的实验人员。
再者将家兔左后肢从关节处剪断，避免肢体重复使用导致细菌污染；另外可以看到实验者轻拍臀部能听见清脆响声说明小白鼠运动神经完好；反之则表示缺乏运动神经，这样也可以判断一些非自主性运动功能疾病；最后剪开兔耳廓的第三眼睑，露出耳道深处的鼓膜，可检查有无炎症或异物存留，比较简单易操作。
采集血量对小鼠一般不少于5毫升，家兔一般不少于10毫升。
通过阅读以上文字大家就应该知道实验动物的选择很重要，希望这篇文章对你有帮助！。
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EDTA 钾抗凝,目前,生化测定采用肝素钠抗凝。
熟练掌握不同采血管的功能和要求,就会杜绝1.3中第二次采血和1.4中第一次采血出现的错误。
1.3中第二次采血由于使用了EDTA 钾抗凝管,血中的Ca 2+、M g 2+被EDTA 钾络合,测出的Ca 2+、M g 2+明显降低。
M g 2+
又是ALT 的必须辅助因子,ALT 的活性受到抑制,所以结果较第一次明显降低。
1.4中第一次采血出现的结果是因为抗凝剂与血的比例高造成。
有文献证明,随着血液和抗凝剂比例的逐步下降,首先表现为TT 检测时间缩短[2]。
笔者曾做过10例30个凝血试验的观察(每例血各与3.2%枸橼酸纳5∶1、7.5∶1、9∶1比例抗凝),发现随着血液与抗凝剂比例的逐步下降(由5∶1※7.5∶1※9∶1),PT 和TT 时间缩短,Fib 值增高。
因此,护士要按要求采集抗凝血,避免由于抗凝剂与血的比例不合格带来的错误结果。
2.3 注意事项 (1)采血要准确,避免溶血,因为溶血可使心肌酶学、TT 、K +、胆红素等项目发生改变或测不出;(2)急诊分析时,一定要用抗凝管采血,因为血样
分离的快才能早出结果,注意血与抗凝剂的比例并混匀;(3)标本要及时送检,避免标本放置时间过长造成血糖、CO 2、Na +
、K +
等的改变。
护理工作的规范采血关系到检验结果的准确可靠,二者要互相配合才能使医院的服务质量不断提高。
【参考文献】
[1] 徐涛,王荣廷.临床检验基础[M ].北京:人民卫生出版
社,1986,150.
[2] 陈俊,王利建,吴健媛,等.抗凝比例对凝血检测项目T T
的影响[J ].江西医学检验,2003,21(1):59.
(收稿日期:2005-09-20)
(护理学栏目编辑:张玉亭)
技术方法
200只大鼠内眦取血的操作体会
周晓春,陈 龙,刘绍晨(承德医学院,河北承德 067000)
【关键词】大鼠;内眦;采血
【中图分类号】R -332 【文献标识码】B 【文章编号】1004-6879(2005)04-0328-02 大鼠是科研常用的实验动物,在实验中要采集大量的血液标本比较困难[1]。
本实验对200只大鼠进行了眼内眦采血,现将采血方法和操作体会介绍如下。
1 材料和方法
1.1 实验动物 清洁级SD 大鼠200只,雌雄各半,10周龄,体重200～300克。
1.2 麻醉 取一只密闭容器,将蘸取适量乙醚的棉花放入其中,然后将大鼠放入,待大鼠麻醉后采血。
1.3 采血 采血者以左手拇指、食指从背部紧握住大鼠颈部,当取血时轻轻压迫大鼠颈部两侧,使眶后静脉丛充血。
以酒精擦拭大鼠眼内眦后,取长约2～3cm 、内径0.5～1.0mm 消毒备用的毛细吸管,使毛细吸管与鼠面成45℃的夹角,由内眦刺入,刺入深度约4～5mm [2]。
当感到有阻力时停止推进,轻轻旋转毛细吸管,血液便能自然流入毛细管中。
通常弃去第一滴血,从第二滴血开始收集,当得到所需的血量后,即除去加于颈部的压力,同时,将毛细吸管拔出,用消毒棉球按压穿刺处止血。
体重200～300g 大鼠每次可采血2～3ml ,如有需要可每周一次,左右两眼轮换更好。
此种采血方法尤其适用于需观测血液中各项指标的动态变化。
2 注意事项
(1)采血场所要有充足的光线,温度以室温20℃为宜。
(2)麻醉深浅要适度,且宜浅不宜深,麻醉太深对顺利采血不利;可以多只间隔麻醉,几个人相互配合操作更加迅速。
(3)采血用具及大鼠采血部位要求消毒,否则易致大鼠眼部感染。
(4)若需抗凝全血,在收集血的试管内需预先加入抗凝剂。
(5)正确掌握操作要领,严格按上述的要求操作,手法一定要娴熟,否则会导致大鼠致盲,不利于后续实
验。
(6)正确选用采血器,可以选用注射器,但是通过实际操作,选用毛细吸管更为合适。
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328· 承 德 医 学 院 学 报
JO U RNA L OF CHENG DE M EDICAL CO LL EGE
V o1.22No .42005
DOI :10.15921/j .cn ki .cyxb .2005.04.027
3 讨论
大鼠的采血方法有很多种,如割(剪)尾采血、鼠尾刺血法、断头取血、心脏采血、颈动静脉采血、腹主动脉采血、股动(静)脉采血等。
前两种方法采血量较少,只适用于仅做白细胞计数或血红蛋白检查。
后几种方法虽然采血量相对较多,但其中断头取血对血液标本有污染,大多混有组织液和被毛,可能影响到实验检测结果,且大鼠不能存活,不利于后续实验。
余下几种采血方法对大鼠的创伤较严重,也不利于后续实验[2]。
在采血时,麻醉药品的选择也是很重要的。
文献报道乌拉坦宜用于鼠类,作用温和持久[3]。
但我们在实验中发现用乌拉坦麻醉后取血比较困难,血液粘稠发黑,不易取到要求血量。
戊巴比妥钠是较常用的动物麻醉剂,可腹腔注射,也可静脉注射,特点为安全范围大、毒性小、麻醉潜伏期短、维持时间较长;不足之处是大鼠常因呼吸道不畅或麻醉过量而死亡,同时也抑制末梢循环导致血压降低,并影响基础代谢,体温降低。
氯胺酮是一种镇痛麻醉剂,但对鼠类则常有严重呼吸抑制,大鼠常因麻醉不当而死亡。
通过实验我们发现乙醚麻醉效果较好,麻醉潜伏期短,安全范围大,取血顺利,维持时间短,取血后大鼠易于苏醒。
通过对200只大鼠进行内眦取血的探索,发现此种方法具有较多优点:①血液标本不易被污染;②较易采到所需血量,一次采血量可达2～3ml;③对大鼠的创伤小;④可分次取血,便于实验研究。
我们认为,大鼠内眦取血适用于大多数实验,是大鼠采血的首选方法,只要掌握好正确的操作要领,就能成功地完成内眦取血。
【参考文献】
[1] 吴晓晴,郝晨霞.160只小鼠心脏采血的操作体会[J].实
验动物科学与管理,2004,21(1):53-54.
[2] 施新猷,主编.现代医学实验动物学[M].人民军医出版
社,1999.101.
[3] 刘俊杰,赵俊.现代麻醉学[M].第二版.北京:人民卫生
出版社,1997.1510-1511.
(收稿日期:2005-06-26)
黄芩茎叶总黄酮对急性小鼠耳廓肿胀的影响
杨鹤松,邓淑华,赵铁华
(承德医学院中药研究所,河北承德 067000)
【关键词】黄芩茎叶总黄酮;小鼠;耳廓;急性肿胀
【中图分类号】R285.5 【文献标识码】B 【文章编号】1004-6879(2005)04-0329-02
黄芩茎叶总黄酮是从黄芩茎叶中提取的有效成分,通过系统的实验研究发现,黄芩茎叶总黄酮具有抗炎、解热、镇痛、抗菌、抗病毒、免役调节、抗肿瘤以及对心、脑血管等多方面的药理活性,这里仅就其对急性炎症的药理作用进行实验性研究。
1 实验材料
1.1 实验动物 昆明种小鼠,26-30g,雄性。
由北京中国医学科学院实验动物研究所繁育场提供。
1.2 受试药品 黄芩茎叶总黄酮:由本所植化研究室提供,室温干燥保存,用前以pH7.4的PBS溶解使用。
阿斯匹林:承德市普宁制药厂提供(纯品原料药),室温干燥保存,用前以pH7.4的PBS溶解新鲜使用。
二甲苯:分析纯,天津市佳兴化工玻璃仪器工贸有限公司产品,批号:20040708。
2 方法和结果
2.1 分组 将26～30g雄性昆明种小鼠,随机分为溶媒对照组、阳性药对照组(阿斯匹林100mg/kg)、黄芩茎叶总黄酮大剂量(180.8mg/kg)组和小剂量(60.3mg/kg)组。
2.2 给药 各组小鼠按0.2ml/10g体重的容积间隔12h腹腔注射给药3次。
2.3 制模 末次给药30min后以二甲苯(50μl)接触右耳5s,15min后小鼠脱颈椎处死,用直径6mm打孔器切下双耳的对等部位。
称量左右耳片的重量,计算致炎耳片增重值、耳廓肿胀率(%)及肿胀抑制率(%),致炎耳片增重值用秩和检验法进行显著性判断。
2.4 数据计算 耳廓肿胀率(%)=(右耳片重量-左耳片重量)/左耳片重量×100%;肿胀抑制率(%)= (对照组肿胀率-实验组肿胀率)/对照组肿胀率×100%。
2.5 实验结果 见下表:
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承 德 医 学 院 学 报
JO U RNA L OF CHENG DE M EDICAL CO LL EGE
V o1.22No.42005。