红掌不同品种产生愈伤组织的差异
红掌组织培养与快速繁殖
[1] 曹孜义,等. 实用植物组织培养技术教程[M]. 兰州: 甘肃科学技术出版社, 1996. 46-48. [2] 李志芳,等. 花烛的组织培养与快速繁殖[J]. 植物生理学通讯, 1997,33(3): 197.
26
13
0.4d
22
5
5
0.1d
注：1）标有不同英文字母者为差异达 0.05 显著水平。以下各表同。
生长素和细胞分裂素对红掌幼叶组织的诱导和分化的影响也比较明显。从表 2、表 3 可 以看出，生长素 IAA、NAA、2,4-D 及细胞分裂素 6-BA、KT 和 2-ip 对愈伤组织诱导和芽分 化的影响都有明显差异。
2002,31(3):66-68. Ｓｕｂｔｒｏｐｉｃａｌ Ｐｌａｎｔ Ｓｃｉｅｎｃｅ
红 掌 组 织 培 养 与 快 速 繁 殖
蔡维藩
（汕头经济特区龙达建设总公司，广东 汕头 515041）
摘 要：红掌叶片在新代培养基上的分化能力与品种和叶片部位有关。组织培养试验表明，最 佳诱导培养基为改良 Nitsch (NH4NO3 200mg/L) + 6-BA 1.0mg/L + 2,4-D 0.1mg/L；芽增殖培养基 Nitsch (NH4NO3 720mg/L) + 6-BA 0.5mg/L；生根培养基为 Nitsch (NH4NO3 720mg/L)。 关键词：红掌；组织培养；快速繁殖
32.1a
6-BA 0.5
20
34.1a
KT 0.5
18
9.1b
2-ip 0.5
20
2.6b
2.4 生根与移栽 在新代培养中和愈伤组织次代培养中，有时产生芽体形成小苗，同时基部形成根。在光
红掌不同外植体愈伤组织诱导与不定芽分化的研究
１ 材料 与方法
． 兼宜的世界名贵花卉 。 红掌常规繁殖以分株为主 ， 速 １１ 材料 试验所用红掌品种为亚利桑娜 （ ａ ｄａａ ｕ Ａ ｒｅｎ ｍ ｎ 度很慢 ， 偶尔也用扦插 的方法， 但繁殖率极低 ， 而种 Ａ ｉ ｎ” ， ｚ 该中心 由荷 子繁殖有较大变异 。 近年来 ， 红掌在全球的销售额仅 “ ｒ ｏａ）采 自陕西省苗木繁育 中心 ，
Ａｂ ｔａ ｔ Ｔａ ｉｇ ｓｅ ｓｇ ｎ ｅ ｖ ｓａ ｄ ｐ ｔｏｅａ ｘ ｌｎ ｓ ｈ ｉｓ ｅ ｃ ｌｕ ｅｔ ｃ ｎｑ ｅ ｏ ｔ ｕ ｍ ｓｒ ｃ ： ｋｎ ｔｍ ｅ ｍｅ ｔｌａ ｅ ｎ ｅ ｉｌ ｓ ｅ ｐａ ｔ ，ｔ ｅｔｓ ｕ ｕ ｔ ｒ ｅ ｈ ｉ ｕ ｆＡｎｈ Ｈｕ
次于兰花 ， 列居第 ２ ， 位 而国内市场仅有少量种苗供 兰引进 。 应且货紧价扬［ ７ １ ］ 前 国外繁殖主要是以组织培 １２ 方 法 ￣ 。目 ． ． ． 养 为 主 ， 内的 种 苗也 主要 是 来 自国 外 的组 培 １２ １ 消毒与接种 国 苗［ 。ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ１ 虽然从 １７ 年 ，ｉ ｉ 教授就开始了组织培 川］ ９４ Ｐｅ ｋ ｒ
．
郭军战， 费昭雪， 成密红
（ 西北农林科技大学 林学院， 陕西 杨陵 ７２０ ） １１０
摘 要： 以红掌 ３ 个不同部位的材料 （ 叶片、 叶柄、 茎段） 为接种外植体 ， 对红掌的 离 体培养技术进行 了初步的研究。 结果表 明， 不同部位对愈伤组织诱导差异显著 ， 其中叶柄诱导率最高， 达到 ８． ， ６７ 为最佳取材部位 。诱导愈伤组织培养基以 ＭＳ 一Ａ ． ｇ・ ＋２４ Ｏ２ ＋６ ２０ Ｂ ｍ Ｌ ，一 ． Ｄ ｍｇ・ 为最好 ｝ Ｌ ＭＳ Ａ２０ ｇ・ ＋Ｎ Ｏ２ ｇ・ 对不定芽分化效果 良 ＋Ｂ ． ｍ Ｌ ＡＡ ．５ ｍ Ｌ 好。
红掌不同品种对愈伤组织诱导和植株再生的影响
明显 。以 ‘ Ｋａ ｔ ｙ’品种 （ 凯旋 ） 刚展 开 新叶 为外 植 体培 养 ６ ０ ｄ后调 查愈伤 组织形 成情况 见表 １ （ 比较方 法采用 邓肯 氏统计法 ） 。 表 １ 不同培 养基对 叶 片愈 伤组织诱 导的影响 （ Ｋ ａ ｔ ｙ品种 ）
序号
培养基
体数 形
成
１ 材料 与方法
１ ． １ 试材 从温 室内盆栽红 掌上分 类剪取 刚展开的新 叶、未展开
的新叶 、未展开新 叶叶柄 ，用 自来水 冲洗 ，然 后浸入 ７ ５ ％ 酒精 中消毒 ３ ０ Ｓ ， 再浸入 ０ ． ５ ％次氯酸钠溶液中 （ 加少许土
温－ ２ ０ ） １ ０～ １ ５ ｍｉ ｎ ，然后用 无菌水 冲洗 ３次 ，无 菌滤纸 吸干后 ，切取 ０ ． ５ ｃ ｍ ×０ ． ５ ｃ ｍ 叶片见方 ，１ ． ０ ｃ ｍ 叶柄 在
（ Ｋ ａ ｔ ｙ品种 ）
序号 培养基 愈伤组织诱 芽分化率
导率
（ ％）
培养 基ｐ Ｈ值 ５ ． ８ ， 琼脂 ６ ． ５ Ｅ ／ Ｌ， 于 １ ２ １℃ 、１ ． １
ＫＰ ａ压 力 下 杀 菌 ２ ０ ｍｉ ｎ 。
２ 结果与讨论
２ ． １ 不同培 养基对 叶片愈伤 组织诱导 的影响
ＣＨＩ ＮＥ Ｓ Ｅ Ｈ ＯＲＴ Ｉ ＣＵ Ｌ Ｔ ＵＲ Ｅ ＡＢ Ｓ Ｔ Ｒ ＡＣ Ｔ Ｓ
红掌不 同品种对愈伤 组织诱 导和植株再 生的影响
于遒 功 ，李 梅 ，盛 利 ，吴稚 斐
（ 青岛市农 业科 学研 究院 ，山东 青 岛 ２ ６ ６ １ ０ ０ ）
摘 要 ：红掌不 同品种在相 同培 养 条件下 ，无论外植体是哪种 种类 ，其在培 养基上的 出愈率和 分化生根 能力均存
(完整word版)红掌组培
二、任务分析在红掌原产地热带雨林，红掌可用种子繁殖，但进入开花时间长。
分株繁殖是红掌以前繁殖的主要方式.红掌植株基部长出吸芽，产生根系后可分株,每年可分3～4株,繁殖系数较低，很难满足规模化生产所需的种苗.现在红掌种苗生产主要通过组织培养进行种苗的快速繁殖，也就是红掌的克隆技术。
这样可以在比较短的时间内生产整齐一致的优质种苗，供应生产的需要。
通过组织培养技术生产红掌种苗主要有再生体系的建立、增殖培养、壮苗生根、移栽和温室育苗等技术环节。
三、相关知识红掌（Anthurium andraeanum）植物界、被子植物门、单子叶植物纲、天南星科（Araceae)，花烛属（Anthurium Schott），多年生常绿草本植物,别名花烛、安祖花、火鹤花、红鹅掌、鹅掌红、红苞芋、幸运花等，原产中美洲，特别适合室内观赏,兼作鲜切花，为当前国际流行的名贵花卉。
在全球热带花卉贸易中，红掌销量居第二位，欧洲、美国、日本是红掌主要消费市场，栽培自动化程度很高，栽培面积不断扩大，我国红掌商业化生产，尤其是工厂化组培快繁，还处于起步阶段.（一)形态特征与生物学习性红掌为宿根草本，株高30~70cm，叶自短茎中抽生，革质，长心脏形，全绿,叶柄坚硬细长，长30～40厘米，宽约10厘米.花顶生，长约50厘米，佛焰苞心脏形，长10～20厘米，宽8～10厘米,表面波皱,佛焰苞具有明亮蜡质光泽，肉穗花序圆柱形,直立、长约6厘米，黄色,初看好像人造假花,花姿奇特美妍，切花寿命长达30天以上,为插花高级花材。
同类品种繁多,花色有红、桃红、朱红、白、红底绿纹、绿、橙等色，花期持久,全年均能开花。
喜空气湿度高而又排水通畅的环境，喜阴、喜温热.在白天温度不高于28℃，夜间不低于20℃的环境中可终年开花结果，高于35℃将产生日灼，低于14℃则生长受影响，低于0℃的持续低温将冻死植株。
适宜生长昼温为26~32℃,夜温为21～32℃。
光强以16000～20000Lx为宜，空气相对湿度（RH)以70%～80%为佳。
荷兰切花红掌‘爱维特粉’组培技术研究
荷兰切花红掌‘爱维特粉’组培技术研究黄晶（南京鹂岛现代农业发展有限公司，江苏南京210000）摘要：以荷兰切花品种‘爱维特粉’红掌为材料，研究不同的培养基对‘爱维特粉’红掌的愈伤组织诱导、不定芽诱导及诱导生根的影响。
结果表明，叶柄是最适宜切花品种‘爱维特粉’红掌诱导产生愈伤组织的外植体，而适宜的愈伤组织诱导培养基为1/2MS +0.5mg/L 噻苯隆（TDZ ）+30g/L 蔗糖；不定芽诱导培养基为MS+0.5mg/L 吡效隆（CPPU ）+25g/L 蔗糖，生根培养基为1/2MS+0.2mg/L IBA+30g/L 蔗糖。
关键词：切花红掌；愈伤组织诱导；不定芽诱导；生根振荡消毒30s ，再用无菌水冲洗掉外植体上酒精，反复3次以上，接着用0.1%次氯酸溶液浸泡，振荡消毒5min ，注意不要损伤叶片，最后用无菌水冲洗掉外植体上消毒液，反复5次以上[4]。
1.2.2诱导愈伤组织。
将消毒完全后的带叶柄的叶片和气生根用无菌纸擦干水分，先将叶片去除边缘和破损的部分，选取靠近叶脉处的叶片，切成1cm 2的小块，将叶柄和气生根去除两端，选取中间部位，切成1cm 的小段，分别接种在4种诱导愈伤组织培养基上[4]：①1/2MS+0.05mg/L TDZ ；②1/2MS+0.1mg/L TDZ ；③1/2MS+0.5mg/L TDZ ；④1/2MS+1.0mg/L TDZ 。
共4组处理，叶片处理的标记为A 1~A 4，叶柄处理的记为B 1~B 4，气生根处理的标记为C 1~C 4。
每个培养瓶里接种5个样本，每组接种10瓶，先暗处理30d ，温度23℃，然后再光照培养30d ，温度23℃，14h/d 光照，光照强度1000~2000Lux ，重复3次。
60d 后统计愈伤组织诱导情况时，计算愈伤组织诱导率[5]。
污染率（%）=污染个数/接种个数×100；褐化率（%）=褐化个数/接种个数×100；诱导率（%）=诱导出愈伤组织个数/接种个数×1001.2.3不定芽诱导。
红掌快繁技术优化研究
【 关键词】 红掌 ； 品种 ； 离体培养 ； 快繁
红掌 ｎ ｔ ｈ ｕ ｒ ｉ ｕ ｍ ｍｄ ｒ 珊一 ｍ Ｌ ｉ ｎ ｄ １ ． ） 别名大叶花烛 、 安祖花等 。为
Ａ１ ２： ＭＳ ＋ ６ 一ＢＡ２ ｍｇ ／ Ｌ ＋ＮＡＡ０． ２ ｍｇ ／ Ｌ Ａ１ ３： ＭＳ ＋ ６ 一 ＢＡ２ ｍｇ ／ Ｌ ＋ＮＡＡ０ ． ０ ５ ｍｇ ／ Ｌ Ａ１ ４： ＭＳ ＋ ６ 一 ＢＡ２ ｍｇ ／ Ｌ ＋ＮＡＡ０ ． １ ｍｇ ／ Ｌ Ａ１ ５： ＭＳ ＋ ６ 一 ＢＡ２ ｍｇ ／ Ｌ ＋ＮＡＡ０． １ ５ ｍｇ ／ Ｌ Ａ１ ６： ＭＳ ＋ ６ 一 ＢＡ２ ｍｇ ／ Ｌ ＋ＮＡＡ０ ． ２ ｍｇ ／ Ｌ
１ ． ２ 试 验 方 法
１ ． ２ ． １ 外植体材料的选取 选取 ３ 个 品种红掌 的展开二周 的叶片及叶柄作为供试材料 。 １ ． ２ ． ２ 外植体表面消毒 取上述品种健壮植株 （ 高２ ． ５ ａ ｍ左 右 ） 的叶片及 叶柄 ． 作 为组织 培 养材料 。 将培养材料消毒后置于消毒瓶 中备用 。 培养基在 １ ． ２ ｋ ｇ ／ ｃ ｍ ￣ 压 力下 １ ２ １ ℃灭菌 １ ８ ｍ ｉ ｎ ．接种 时先 在无 菌纸上将叶片切为带 主叶脉 大 小为 １ ． ５ ｃ ｍｘ ｌ ｃ ｍ长方块 ， 茎、 叶柄 切为 ｌ ｃ ｍ左右 的小段 ． 叶面朝上 接 种在灭过菌的培养基上 １ ． ２ ＿ ３ 培养条件 在试验 中， 如无 特殊说 明 ， 培养条件均 为温度 ２ ５ ± ２ ℃， ｐ Ｈ值 ５ ． ８ ， 光照强度 １ ０ ０ Ｏ ｌ ｘ ， 每 日１ ４ ｈ光照 ． １ ０ ｈ黑 暗。 １ ． ２ ． ４ 初代培养 １ ） 激素种类 及浓度配比对 愈伤组 织诱 导的影 响 在 筛选出的基本培养基上 ． 选择 ６ 一 Ｂ Ａ和 Ｎ Ａ Ａ两种对 红掌 的愈 伤组织诱 导效果显著的植物生长调 节物质 ，进行激素组合筛选 。６ ０ ｄ 后 统计 愈伤组 织诱导率
切花红掌不同品种组培快繁试验
Ｖｏ １ ． ３ ６ Ｎ Ｏ １
农 业 科 学 研 究
２ ０ １ ５年 ３ 月
Ｍａ ｒ ．２０１ ５
Ｊ ｏ ｕ ｒ ｎ ｌ ａ ｏ ｆ Ａ ｇ ｒ ｉ ｃ ｕ ｌ ｔ ｕ ｒ ａ ｌ Ｓ ｃ ｉ ｅ ｎ ｃ ｅ ｓ
文章 编 号 ： １ ６ ７ ３ — ０ ７ ４ ７ （ ２ ０ １ ５ ） ０ １ — ０ ０ ６ １ — ０ ４
于其他处 理 ， 两者相 比 ， Ａ ７诱 导 率 更 高 ， 但 Ａ ７中
表 １ 正 交试 验 Ｌ （ ３ ）
供试材 料选 自宁夏周景 世荣进 出 口有 限公 司
红掌 园区 ， 选 取 长 势健 康 、 无 病 虫 害 的 红 掌 幼 嫩 叶
片， 在 组 培 室 进 行组 培快 繁 试 验 ．
掌组培快 繁各 个阶段生长 的培养基 ，总结 和摸索
出一 套 完 整 的切 花 红 掌 组 培 技 术 ．
１ 材料与方 法
１ ． １ 试 验 材 料
红掌愈伤组织 的诱导情况 ，计算诱导率 （ 表２ ， 以 叶缘 出现 黄 绿 色 愈 伤组 织 为参 考 ） ．
结果表 明（ 表２ ） ， Ａ ７和 Ａ ８的愈 伤 诱 导 显 著 高
观 的草本花 卉『 ２ １ ． 因红掌花期 长， 市场上 需求量 大 ，
价格较高 ， 作 为 高 档 花 卉 的应 用前 景 良好 ，常规繁殖 方法 ｆ 如
不断 轻 摇 使 其 浸 泡 充 分 ， 消 毒 后 用 无 菌水 漂 洗
每瓶 接 入 ２个 叶片 ， 每个 处 理 ５瓶 ， ３次 重 复 ．
激 素 配 比采 用 ３因 素 ３水 平 处 理 ， ３因 素 为 ６ － Ｂ Ａ， Ｎ Ａ Ａ， Ｔ Ｄ Ｚ； ３水 平 指 每 个 激 素 ３个 质 量 浓 基础培养基 为 Ｉ ／ ２ ＭＳ ． ６ ０ ｄ后 ，统 计 暗 培 养 下
7个红掌品种产生愈伤组织的影响因素
由表 ３ 知 ， 所 有 红 掌 品 种 叶 柄 愈 伤 诱 导 率 要 高 于 叶 可 片 。 叶 柄 在 接 入 ７ ｄ 能 明显 观 察 到 膨 大 现 象 ，２ 能 观 察 后 ７ｄ 到 愈 伤 组 织 出现 ；叶 片 膨 大 现 象 不 明 显 ，除 了 在 叶 脉 处 能 观 察 到部 分 膨 大 现 象 ， 叶 片 的 其 他 部 位 几 乎 不 产 生 膨 大 现
生 ，这 可 能 是 因 为 黑 暗 和 强 光 都 对 促 进 红 掌 愈 伤 组 织 形 成
的内源激 素有抑制作用 ，具体作用机制还需进一步研究 。 综 上所述 ，在 规模化红 掌生产 中 ，不同 的红 掌品种应
具 体 研 究 其 不 同外 植 体 的 特 点 和 不 同 的 培 养 方 式 ，探 索 最 适 生 长 条 件 ， 才可 能 大 批 量生 产 优 质红 掌 小 苗 ，取 得 最 大
第 一 作 者 简 介 ：张 军 （９ｏ ） １８一 ，男 ，研究实习员；主要从事植
物 组 培 快 繁 相 关研 究 。
通 讯 作 者 ：秦廷豪 ，高级工程 师。Ｅｒ ｌ ：ｈｉ９＠ｉａｅｍ －ａ１ｔｑｎ９ｓｎ．ｏ ｅ
项 目来 源 ：资助课题 《 红掌组织培养 快速繁殖 技术》 为２０年 四 ０９
川省省 级公益 性科研 单位 基本 科研 费专 项 资金项 目（０ ９ ｊ ｋ ｙ ２０ｃｂｙ—
ｗ ｚ ｃ ｙ ０ ） 由 四 』ｉ 财 政 厅 资 助 。 ｆｘ ｚｙ ３ ， Ｉ 省
２ ３ 光 照 条 件 对 愈 伤 诱 导 的影 响 ．
将 接 种 好 的 诱 导 培 养 基 分 别 放 置 于 黑 暗 、 散 射 光 和 光 照 条 件 下 进 行 愈 伤 诱 导 ，６ 后 进 行 数 据 统 计 （ 表 ４ 。 ０ｄ 见 ）
红掌叶不同部位愈伤组织的诱导及植株再生
诱 导 、增殖 和生根 培养 基均 附 加 ２ ５ 食 用 白 ． 糖 、 ０ ７ 琼 脂 ， ｐ ． 。 光 照 强 度 １０ ～ ． Ｈ６ ０ ８０
２ ０ ｘ ０ ０ｌ ，光 照 时 间 １ ／ ，培 养 温 度 ２ － ２ ℃ 。 ６ｈ ｄ ３ ５
２ 结 果 与分 析
２ １ 叶 的不同部 位 对红 掌 愈 伤 组织 诱 导及 分 化 的 ．
影 响
１ 材 料 与 方 法
１ １ 试 验 材 料 ．
外 植 体 接 种 于 改 良 ＭＳ （ ＭＳ 培 养 基 中 的
ＫＮＯ。 、ＮＨ ＮＯ 、ＫＨ２ Ｏ 。 Ｐ 分 别 改 为 ９ ０ｍｇ Ｉ ５ ／ 、
Ｍ ａ ．２ ０７ ｒ ０
红 掌 叶不 同部位 愈 伤 组 织 的诱 导 及 植株 再 生
关 丽 霞 ，谢 永 刚 ，彭世 勇 ，张 晶 ，李 洪 忠
（ 宁农 业 职 业 技 术 学 院 ，辽 宁 营 口 １５ ０ ） 辽 １０ ９
摘 要 ：本文采用红掌叶的叶柄 、叶柄 与叶片连接处 、带主脉叶片及不带主脉叶片作为外植体 ，对 红掌叶不同
（ ｔｕａＡｒｚ ｎ ） 为接种 材料 ，系统地 研究 了红 Ａｎｈ ｒ ｉｏ ａ 掌 幼 叶不同部 位对愈 伤组织 诱导 与分 化的影 响 ，以 及 植株再 生途径 ，以期为红 掌组 培苗工 厂生 产提供 理 论依据 和技 术支撑 。
１ ２ ２ 愈 伤组 织 的诱 导及 分 化 经灭 菌 的外 植 体 ．． 分别 接 种 于 不 同诱 导 培 养 基 （ １ 表 、表 ２ 、表 ３ ） 上 ，初期 置于无 菌纸壳 箱 内黑 暗培 养 ，产 生愈 伤组
Ｎ ０２ ＡＡ ． ；最 佳 生根 培养 基 为 １ ２改 良 ＭＳ Ｉ Ａ０ ３ ／ ＋ Ｂ ． ＋ＮＡＡ ． 。 ０ ２
红掌愈伤组织诱导和芽的分化
红掌愈伤组织诱导和芽的分化
兰芹英1 李启任2 何惠英1 张艳军1 解星云3
(1 中国科学院西双版纳热带植物园 , 勐腊 666303 ; 2 云南大学生物技术系 , 昆明 650091 ; 3 云南省茶叶科学研究所 , 勐海 666201)
摘 要 : 对影响红掌愈伤组织诱导及芽分化的几个因素进行了研究 。同一成熟度的外植体 , 其叶柄愈 伤组织诱导率 、芽分化率 、分化时间均明显优于叶片 。不同放置方式和光照时间对叶片愈伤组织的诱导亦 有影响 , 叶背向下放置 , 光照时间 24 h/ d 和 10 h/ d 愈伤组织诱导率较高 , 分别为 100 %、97 %。光照时间 对叶柄愈伤组织诱导无显著影响 , 但光照 24 h/ d 和 10 h/ d 较无光照处理的明显促进芽的分化 。叶柄培养以 N6 , KC 和 1/ 2 MS 培养基为佳 。叶片培养则以 P , N6 和 1/ 2 MS 为好 。以未展叶叶柄为外植体 , 从接种到丛 芽分化共 49 d , 较已有报道提前 11～31 d。
49. 92 50 79. 49 96 35. 29 55
56. 72 0 94. 92 96 0 35
++ ++ +++ +
Petiole 1/ 2 MS 92
45. 65 71. 74
++
KC
97. 5
89. 7 89. 74
N6
100
100
100
P
100
72
76
B5
75. 56
红掌的叶片形态与变异
红掌的叶片形态与变异红掌（Scientific Name: Anthurium andreanum）是一种热带植物，又称为马蹄莲。
它以其鲜艳的花朵和特殊的叶片形态而著称于世。
本文将探讨红掌叶片的形态特征以及可能的变异情况。
一、红掌叶片的基本形态红掌的叶片呈箭头形状，通常具有长椭圆形或卵形的叶片，尖端突出，朝向主干的方向。
叶片表面光滑，成鲜艳的绿色，有时带有银白色斑点或条纹。
叶片的边缘呈波浪状或锯齿状，增加了其观赏性。
整个叶片呈现出一种饱满而有弹性的感觉。
二、红掌叶片形态的变异红掌的叶片形态可以因生长环境、遗传因素或其他影响而出现一定程度的变异。
下面列举几种可能的变异情况：1. 叶片颜色的变异红掌叶片的颜色通常为绿色，但有时会出现红色、粉红色、紫色和黄色等不同的色彩变异。
这种颜色变异使得红掌具有更多的观赏价值，并成为室内装饰或切花的理想选择。
2. 叶子形状的变异红掌的叶子形状常见的为箭头形状，但也有可能出现一些变异，例如叶尖的弯曲、扭曲或分叉等。
这种变异使得红掌更具有独特性和艺术性，为园艺爱好者提供了更多的选择。
3. 叶片大小的变异红掌的叶片大小也可能因遗传因素或生长环境的不同而产生变异。
一些红掌的叶片可能比一般的大，从而显得更为饱满和壮观。
而另一些红掌的叶片可能比一般的小，更加精致玲珑。
不同大小的叶片使得红掌展现出更多的个性。
4. 叶缘的变异红掌的叶缘通常呈锯齿状或波浪状，但也有可能出现光滑的叶缘或大幅度的波动叶缘。
这种叶缘的变异使得红掌的叶片更加丰富多样，为观赏者带来视觉上的享受。
5. 叶片质地的变异红掌的叶片通常具有柔软而有弹性的质地，但也有可能出现比较粗糙或厚实的变异情况。
这种叶片质地的变异为人们提供了更多种类的红掌选择，丰富了红掌的观赏效果。
总结：红掌的叶片形态及其变异提供了丰富多样的选择，使得其成为室内和室外装饰植物的理想之选。
红掌的独特之处不仅仅在于其艳丽的花朵，还包括其叶片形态所展现出的特色。
红掌不同品种产生愈伤组织的差异
－７－红掌不同品种产生愈伤组织的差异肖三元，梁国平，杨 焱，黄凤翔，管 艳（云南省热带作物科学研究所，云南 景洪 ６６６１００）摘要：对１０个红掌品种２种外植体、４种愈伤组织诱导培养基的组培试验结果：Ｈ３、Ｈ４、Ｈ１０、Ｈ６、Ｈ１等５个品种愈伤组织的平均直径（叶片外植体依次为５．０～３．８ｍｍ，叶柄外植体依次为６．６～４．９ｍｍ）明显大于Ｈ５、Ｈ２、Ｈ９、Ｈ８、Ｈ７等５个品种（叶片外植体均为１．０ｍｍ，叶柄外植体依次为１．２～２．０ｍｍ）；叶柄外植体愈伤组织平均直径明显大于叶片外植体；参试培养基Ｂ、Ｄ产生愈伤组织的直径大于培养基Ａ、Ｃ；愈伤组织大的５个品种经增殖、继代培养成完整植株，而愈伤组织小的５个品种愈伤组织在增殖培养中逐渐褐变，全部死亡。
关键词：红掌；品种；组织培养；愈伤组织中图分类号：Ｓ６８２．１４０．３７ 文献标识码：Ａ 文章编号：１６７２－４５０Ｘ（２００５）０２－０００７－０３收稿日期：２００５－０３－１０红掌（Ａｎｔｈｕｒｉｕｍ ａｎｄｒａｅａｎｕｍ）是天南星科花烛属多年生附生常绿草本植物，原产于南美洲热带雨林，现今已成为观赏园艺中流行的名贵花卉。
红掌品种繁多，不同品种的耐寒性、耐热性，花葶坚硬度及产量均有所不同［１］。
植物组织培养中，不同种类植物、同种植物不同品种、同一植物不同器官和不同部位，对诱导条件的反应是有所不同的［２］。
２０世纪９０年代后，一些农业科研机构和高等院校对红掌组织培养的研究报道很多［３］。
我们收集了１０个不同的红掌品种进行组织培养试验，观察到在愈伤组织诱导及继代增殖培养过程中，愈伤组织的大小、颜色、质地及生长状况存在着较大差异。
现将试验结果报道于下，以供同行者参考。
１ 材料和方法１．１ 材料供试材料为云南省热带作物科学研究所红掌种质圃内选择的１０个品种（表１）。
取株高１５～２０ｃｍ植株上刚展开的幼嫩叶片、叶柄为外植体，经常规灭菌后，将带主脉的叶片切成约０．５ｃｍ２的小块，将叶柄的上段部分切成约０．５ｃｍ的小段，接种培养。
红掌花茎的愈伤组织论文
攀枝花学院本科毕业设计（论文）红掌花茎愈伤组织培养研究学生姓名：曹长军学生学号：200710902003院（系）：生物与化学工程学院年级专业：2007级生物工程指导教师：谢海讲师二〇一一年五月摘要 (3)ABSTRACT (4)1绪论 (5)1.1课题背景 (5)1.2 植物组织培养的简介 (6)1.3 植物组织培养的应用现状 (7)1.3.1 在植物育种上的应用 (8)1.3.2 在植物脱毒和快速繁殖的应用 (9)1.3.3 在植物有用产物上的应用 (10)1.3.4在植物种质资源保存和交换上的应用 (10)1.3.5在遗传、生理、生化和病理研究上的应用 (10)1.4研究历史 (10)1.5 红掌组织培养的研究现状 (11)1.6我国红掌组织培养存在的问题 (14)1.7 红掌组培研究展望 (14)2 实验方案与过程 (16)2.1 实验药品与仪器 (16)2.1.1 实验药品 (16)2.1.2实验仪器 (16)2.2研究的内容 (16)2.3红掌组织培养过程 (16)2.3.1 外植体的选择与处理 (16)2.3.2 愈伤组织的诱导 (17)2.3.3增殖和生长 (17)2.3.4瓶苗移栽 (17)2.4 MS培养基的应用 (17)2.4.1 培养基简介 (18)MS培养基配方表 (18)2.4.2配制培养基的注意事项 (19)2.5 正交实验培养过程 (20)2.5.1诱导培养基正交试验 (20)2.5.2正交试验表设计 (20)2.6 小结 (21)3 结果与分析 (22)3.1 培养实验结果 (22)3.2 愈伤组织培养结果分析 (24)3.3 不同灭菌方法对外植体污染的影响分析 (24)4 综合讨论 (26)文献综述 (27)致谢 (29)附录实验照片集 (30)摘要近年来，对红掌组织培养及快速繁殖技术方面的研究颇多，以期为红掌组织培养与快速繁殖技术的进一步推广、红掌试管苗的工厂化生产和规模化种植提供科学的理论依据。
10个红掌品种叶片不同部位SPAD值比较分析
10个红掌品种叶片不同部位SPAD值比较分析张毅智【期刊名称】《《园艺与种苗》》【年(卷),期】2019(000)010【总页数】3页(P10-12)【关键词】红掌; SPAD; 测定位置【作者】张毅智【作者单位】福建省林业科技试验中心福建漳州 363600【正文语种】中文【中图分类】S682.3红掌（Anthurium andraeanum），天南星科花烛属植物，原产南美洲的热带花卉[1-2]。
其佛焰苞形态独特，颜色多样，常年开花极具观赏价值[3-4]。
我国红掌产业规模化生产始于20世纪90年代[5]，历经近30年的发展，规模不断扩大，全国总产量达4000万盆，已成为全世界红掌消费量最大的国家[6]。
叶绿素是植物光合作用主要色素，在光能吸收、传递和转化过程中发挥重要作用，其含量是反映植物生长健康状况的重要指标[7-8]，而叶绿素的主要组成物质为氮元素，植物体叶绿素含量与氮元素含量密切相关，通过对植物体叶绿素含量测定来评价氮素含量，进而指导氮肥使用，具有普遍适用性[9]。
该文通过植物营养测定仪对10个红掌品种在营养生长期叶片不同位置的SPAD值进行测定，探讨不同红掌品种间叶绿素相对含量的差异，以及探讨植物营养测定仪在红掌叶片上适宜测定位置，以期为红掌氮素营养的快速诊断与监测提供理论依据。
1 材料与方法1.1 试验材料与仪器供试红掌品种为福建省林业科技试验中心保存的红掌种质资源，分别为粉冠军、马都拉、甜冠军、红唇、红班比诺、特伦萨、红宝贝、维多、大娇、小娇。
供试品种均为在相同环境条件的温室大棚中种植的健康盆栽，处于营养生长期阶段，植株高度为16～20 cm。
试验仪器为植物营养测定仪TYS-3N。
1.2 试验方法选择测定顶部完全展开的健康叶片30片，分别测定叶片的叶基部、叶中部、叶尖部的SPAD值，为减少测定误差，测量时避开叶主脉，同一叶片3个位置的测量平均值作为该叶片的SPAD值。
参照鱼欢、陈琴的方法[10-11]，利用综合SPAD 值的代表系数和变异系数来确定红掌叶片的SPAD水平。
红掌组织培养技术研究进展
红掌组织培养技术研究进展摘要红掌是一种珍贵的观叶和观花兼具的植物，既可用于切花，又可以盆栽，已成为全球销售量仅次于热带兰的第二大商品花卉。
目前红掌主要通过组织培养技术大量繁殖。
对红掌组织培养的研究进展进行了综述，包括从外植体取材、愈伤组织诱导、不定芽分化和增殖、生根培养、炼苗移栽等方面内容，并提出了红掌组织培养存在的问题和今后研究的方向。
关键词红掌；外植体；愈伤组织；不定芽；生根；炼苗移栽红掌（Anthurium andraeanum）又名花烛、安祖花、火鹤花，天南星科花烛属多年生附生常绿草本植物，原产于南美洲的热带雨林中。
红掌的佛焰苞颜色多样，叶片赋有天鹅绒的光泽，是少有的观花和观叶兼备的植物，主要用于切花，也可以盆栽。
目前，红掌已成为销售量仅次于热带兰的第二大热带花卉商品，在国际商品花开市场中占有十分重要的地位。
自从1974年Pierik et al[1]首次通过愈伤组织诱导不定芽的形成进行快速繁殖红掌以后，经过人们不断的改进和优化，红掌的组织培养技术已经广泛地运用于生产。
到目前为止，国内外红掌组织培养的研究报道有很多，取得了一定的进展。
该文综述了红掌组织培养技术的研究进展，主要对红掌的组培过程、存在的问题以及今后研究的方向加以总结，以为红掌产业化生产和育种提供技术参考。
1 外植体取材1.1 外植体的类型目前，国内外报道红掌组织培养采用的外植体有叶片[2]、叶柄[3]、茎尖[4]、侧芽[5]、根[6]、苞片[7]和花序轴[8]，其中叶片和叶柄是主要的外植体。
1.2 外植体取材的部位、大小和生理年龄外植体的部位、大小和生理年龄不同，诱导愈伤组织的效果也不同。
叶片基部靠近叶柄处、带叶脉的叶片、叶脉集中的部位[9-11]容易诱导愈伤组织。
从愈伤组织诱导率来看，叶片基部>叶片中部>叶尖[12]，不含叶缘叶片>含叶缘叶片[13]，叶片大小以1 cm×1 cm为宜。
红掌新抽出的叶片展叶2～3周，愈伤组织诱导率最高，诱导所需的时间也最短[14-15]；初展开叶片诱导愈伤组织能力最强，其余依次为未展开叶片，刚转绿成熟叶片和深绿色老叶片[16]。
红掌叶片愈伤组织的诱导与植株再生
50
3
BA 0. 5 + IBA 0. 8
60
7
BA 0. 5 + IBA 1. 2
60
8
注 :基本培养基为 MS.
诱导率/ % 0 72. 5 83. 3 70. 0 20. 0 25. 0 37. 5 6. 0 11. 7 13. 3
从表 1 可看出 ,单独使用细胞分裂素 BA 不能诱导红掌叶片产生愈伤组织 ,只有同时使用 生长素和细胞分裂素才能使叶片产生愈伤组织. 在所试验的 3 种生长素中 ,2 ,42D 与 BA 配合 的效果较好 ,诱导率最高的可达 83. 3 % ;NAA 次之 ,诱导率为 20 %～37. 5 % ; IBA 的效果最差 ,
诱导率最高的只有 13. 3 %. 由此可见 ,诱导叶片产生愈伤组织的较佳激素组合是 BA 0. 5 mg/ L
+ 2 ,42D 0. 8 mg/ L. 2. 2 影响愈伤组织分化的因素 2. 2. 1 基本培养基的影响 为了寻找一种适合红掌愈伤组织分化不定芽的基本培养基 ,笔者 选择了 MS 和 N6 分别作为基本培养基 ,采用激素组合 BA 2. 5 mg/ L + 2 ,42D 0. 1 mg/ L 来筛选. 每种基本培养基接种 10 瓶 ,每瓶接种 5 块愈伤组织 ,75 d 后调查不定芽的分化情况 ,见表 2.
从表 3 可以看出 ,不同细胞分裂素对愈伤组织分化的效果不同 ,BA 、ZT 的效果较好 , KT 较 差. BA 处理的愈伤组织平均每块分化 5. 6 个芽 ,而且分化的芽质量较好 (图 3 、图 4) ,ZT 处理平 均每块分化 5. 5 个芽 , KT 处理只分化 3. 3 个芽. 方差分析结果表明 :BA 与 ZT 对红掌叶片愈伤 组织分化不定芽的影响差异不显著 ;BA 与 KT 的差异极显著 ; ZT 与 KT 的差异也达极显著水 准. 所以诱导红掌叶片愈伤组织产生不定芽的较佳激素组合为 BA 2. 5 mg/ L + 2 ,42D 0. 1 mg/ L
红掌品种选择及栽培技术
详细描述
组培繁殖是一种现代化的繁殖技术，利用组 织培养技术在实验室中进行。选择健康的红 掌组织，如茎尖、叶片等，将其接种在培养 基上，经过一定时间的培养，即可形成新的 掌植株。该方法的优点是繁殖速度快，成 活率高，适合大规模繁殖。同时，组培繁殖
还可以用于品种改良和珍稀品种的保护。
04
红掌病虫害防治
常见病害及防治
炭疽病
由真菌引起，危害叶片和茎部，造成褐色病斑。防治方法 包括使用抗病品种，清除病叶和病茎，加强通风，定期喷 洒杀菌剂。
叶枯病
由细菌引起，危害叶片，造成黄褐色病斑和枯叶。防治方 法包括保持适宜湿度，避免过度浇水，定期喷洒杀菌剂。
根腐病
由真菌引起，危害根部，造成根系腐烂。防治方法包括保 持土壤排水良好，避免过度浇水，定期喷洒杀菌剂。
技术研发
未来红掌产业将不断进行技术研发和创新，提高品种质量和栽培技术，以满足消费者对高品质红掌的需求。
产业链完善
红掌产业将不断完善产业链，包括种苗生产、栽培技术推广、销售渠道拓展等方面，实现产业可持续发 展。
THANKS。
红掌品种选择及栽培技术
汇报人： 2023-11-30
contents
目录
• 红掌品种选择 • 红掌栽培技术 • 红掌繁殖技术 • 红掌病虫害防治 • 红掌应用及前景
01
红掌品种选择
按生长习性分类
直立型
植株高大，花大叶大，花梗直 立，根系较发达，生长速度较
慢。
半直立型
植株中等高度，花梗弯曲，根 系较发达，生长速度适中。
05
红掌应用及前景
室内盆栽应用
01
02
03
装饰价值
红掌具有丰富的颜色和独 特的形状，是室内盆栽的 理想选择，能够为家居环 境增添一抹亮丽的色彩。
红掌细菌性疫病在叶片上症状特点
红掌细菌性疫病在叶片上症状特点
初期在叶尖、叶缘出现水渍状小斑，病斑逐渐扩大，多呈棕色，病健交界处呈黄色，随着病害的进一步发展，病斑愈合成不规则形坏死大斑，褐色，具黄色边缘。
图1初期在叶尖、叶缘出现水渍状小斑（叶片背面）
图2 病斑褐色具黄色边缘（叶片正面）
图3 病斑褐色具黄色边缘（叶片正面）
有水渍状小斑
图5 最后叶片变黄枯死
柑橘溃疡病症状特点
叶片受害，初于叶背出现黄色针头大小的油渍状斑点，逐渐扩大，同
时叶片正、背两面均隆起，成为近圆形米黄色的病斑。
后病部表皮破
裂，呈海绵状，木栓化，表面粗糙，边缘灰褐色隆起，中央灰白色，
病部中心稍凹陷，周围有黄色的晕环。
初于叶片出现黄色针头大小的油渍状斑点，
逐渐扩大，叶片正、背两面均隆起，成为近圆形米黄色的病斑，外围黄色
叶片背面隆起症状
中央灰白色，病部中心稍凹陷，周围有黄色的晕环。
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－７－红掌不同品种产生愈伤组织的差异肖三元，梁国平，杨 焱，黄凤翔，管 艳（云南省热带作物科学研究所，云南 景洪 ６６６１００）摘要：对１０个红掌品种２种外植体、４种愈伤组织诱导培养基的组培试验结果：Ｈ３、Ｈ４、Ｈ１０、Ｈ６、Ｈ１等５个品种愈伤组织的平均直径（叶片外植体依次为５．０～３．８ｍｍ，叶柄外植体依次为６．６～４．９ｍｍ）明显大于Ｈ５、Ｈ２、Ｈ９、Ｈ８、Ｈ７等５个品种（叶片外植体均为１．０ｍｍ，叶柄外植体依次为１．２～２．０ｍｍ）；叶柄外植体愈伤组织平均直径明显大于叶片外植体；参试培养基Ｂ、Ｄ产生愈伤组织的直径大于培养基Ａ、Ｃ；愈伤组织大的５个品种经增殖、继代培养成完整植株，而愈伤组织小的５个品种愈伤组织在增殖培养中逐渐褐变，全部死亡。
关键词：红掌；品种；组织培养；愈伤组织中图分类号：Ｓ６８２．１４０．３７ 文献标识码：Ａ 文章编号：１６７２－４５０Ｘ（２００５）０２－０００７－０３收稿日期：２００５－０３－１０红掌（Ａｎｔｈｕｒｉｕｍ ａｎｄｒａｅａｎｕｍ）是天南星科花烛属多年生附生常绿草本植物，原产于南美洲热带雨林，现今已成为观赏园艺中流行的名贵花卉。
红掌品种繁多，不同品种的耐寒性、耐热性，花葶坚硬度及产量均有所不同［１］。
植物组织培养中，不同种类植物、同种植物不同品种、同一植物不同器官和不同部位，对诱导条件的反应是有所不同的［２］。
２０世纪９０年代后，一些农业科研机构和高等院校对红掌组织培养的研究报道很多［３］。
我们收集了１０个不同的红掌品种进行组织培养试验，观察到在愈伤组织诱导及继代增殖培养过程中，愈伤组织的大小、颜色、质地及生长状况存在着较大差异。
现将试验结果报道于下，以供同行者参考。
１ 材料和方法１．１ 材料供试材料为云南省热带作物科学研究所红掌种质圃内选择的１０个品种（表１）。
取株高１５～２０ｃｍ植株上刚展开的幼嫩叶片、叶柄为外植体，经常规灭菌后，将带主脉的叶片切成约０．５ｃｍ２的小块，将叶柄的上段部分切成约０．５ｃｍ的小段，接种培养。
１．２ 方法１．２．１ 愈伤组织诱导培养采用４种培养基：Ａ，１／３ＭＳ；Ｂ，１／２ＭＳ（ＮＨ４ＮＯ３为ＭＳ中１／４）；Ｃ，１／２ＭＳ（ＫＮＯ３为ＭＳ中１／４）；Ｄ，１／４ＭＳ为基本培养基，附加６－ＢＡ １．０ｍｇ・Ｌ－１、２，４－Ｄ ０．２ｍｇ・Ｌ－１。
培养４５～５０ｄ后观察产愈率和愈伤组织大小。
１．２．２ 继代增殖及完整植株的培养将诱导出的愈伤组织接种于改良的ＭＳ＋６－ＢＡ ０．５～２．５ｍｇ・Ｌ－１＋ＮＡＡ ０．５ｍｇ・Ｌ－１培养基中，培养４５ｄ为１个周期［４］。
１．２．３ 培养条件愈伤组织诱导培养基附加食用白沙糖４０ｇ・Ｌ－１；继代增殖及完整植株的形成培养基附加食用白沙糖３０ｇ・Ｌ－１，ｐＨ５．８，琼脂粉５ｇ・Ｌ－１。
光照１０ｈ・ｄ－１，培养温度为（２６±１）℃。
１．３ 瓶苗移栽瓶苗移栽到粗河沙∶珍珠岩（２∶１）或甘蔗渣∶泥炭土∶珍珠岩（６∶３∶１）的混合基质中，遮光率表１ 红掌不同品种佛焰苞、花序的颜色特征 品种代号 佛焰苞颜色 肉穗花序颜色 Ｈ１ 鲜红 白色花序，尖端黄色 Ｈ１０ 鲜红 白色花序，尖端绿色 Ｈ５ 绯红 白色花序，尖端绿色 Ｈ８ 绯红 紫红花序，尖端深紫色 Ｈ９ 绯红 粉红花序，尖端紫红色 Ｈ６ 桔红 白色花序，尖端黄色 Ｈ７ 洋红 白色花序，尖端黄色 Ｈ３ 绿 紫红花序，尖端紫色 Ｈ２ 绿白 白色花序，尖端黄绿色 Ｈ４ 粉红 紫色花序，尖端深紫色 －８－为８０％，保持较高的空气湿度，每天喷雾１～２次。
２ 结果与分析２．１ 愈伤组织的诱导１０个不同品种的红掌叶柄、叶片外植体接种在Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ ４种不同无机盐的培养基中，Ｈ１、Ｈ３、Ｈ４、Ｈ６、Ｈ１０等５个品种培养７ｄ后材料逐渐转为绿色，１５ｄ后在材料切口处逐渐膨大，颜色变浅，培养２５ｄ左右逐渐出现块状或颗粒瘤状组织；其它５个品种培养３０～４０ｄ后才出现细小颗粒状组织。
培养４５～５０ｄ后，不同品种、不同外植体产生的愈伤组织表现出明显差异（表２～４）：Ｈ３、Ｈ４、Ｈ１０、Ｈ６、Ｈ５等５个品种的两种外植体均表现出愈伤组织较大（叶片愈伤组织平均直径３．８～５．０ｍｍ、叶柄愈伤组织平均直径５．１～６．６ｍｍ），而且５个品种愈伤组织平均大小排序在两种外植体上是一致的，所产生的愈伤组织具有生长快、质地松脆的特点；其它５个品种愈伤组织较小（两种愈伤组织平均直径依次是１．０ｍｍ和１．２～２．０ｍｍ），均生长较慢、质地坚硬；两种外植体以叶柄产生的愈伤组织明显较大；从产愈率和愈伤组织平均大小看，培养基Ｂ、Ｄ优于Ａ、Ｃ。
２．２ 增殖、继代及完整植株的形成两种外植体在愈伤组织诱导培养基中培养４５～５０ｄ后，转接于改良培养基ＭＳ＋６－ＢＡ ０．５～２．５ｍｇ・Ｌ－１＋ＮＡＡ ０．５ｍｇ・Ｌ－１增殖培养３０ｄ左右，转接时愈伤组织直径在３ｍｍ以上的Ｈ３、Ｈ４、Ｈ１０、Ｈ６、Ｈ１等５个品种的愈伤组织不断增殖，并出现瘤状突起物，形成不定芽数个，苗５～１０株。
培养４５ｄ后观察，其中这５个品种增殖倍数的大小排序与愈伤组织诱导培养的大小排序基本一致（表５）。
将增殖的愈伤组织分切成１．０～１．５ｃｍ３的块状，再次继代培养４５ｄ，愈伤组织继续增殖，不定芽也不断增多，原有的苗逐渐形成有根、茎、叶的完整植株。
另外５个品种的愈伤组织质地坚硬、直径＜２．５ｍｍ，转接增殖培养基培养３０ｄ后，逐渐褐变死亡。
２．３ 试管苗的移栽将５个品种继代增殖瓶苗高３ｃｍ以上的完整植株从基部切下，用自来水冲洗后即移栽于苗床或育苗盘中，无需练苗，移栽后浇足定根水，以后每日喷雾１～２次。
移栽基质采用粗河沙∶珍珠岩（２表２ 红掌不同品种的叶片外植体诱导愈伤组织培养的表现 培养基 项 目 Ｈ３ Ｈ４ Ｈ１０ Ｈ６ Ｈ１ Ｈ５ Ｈ２ Ｈ９ Ｈ８ Ｈ７ 总平均 Ａ 接种数（片） ４３ ４８ ６９ ５６ ２６ ５１ ３５ ２４ ６０ ６０ 产愈数（片） ３８ ４２ ５９ ５３ ２６ ５１ ３５ ２１ ２０ ２９ 产愈率（％） ８８．４ ８７．５ ８５．５ ９４．６ １００ １００ １００ ８７．５ ３３．３ ４８．３ ８２．５ 愈伤组织平均直径（ｍｍ） ４．０ ４．０ ３．０ ２．５ ３．０ １．０ １．０ １．０ １．０ １．０ ２．２ Ｂ 接种数（片） １７ １５ ３５ ４３ １６ ２２ １７ ２８ － ４３ 产愈数（片） １６ １３ ３３ ４０ １６ １８ １７ ２８ － ３７ 产愈率（％） ９４．１ ８６．７ ９４．３ ９３．０ １００ ８１．８ １００ １００ － ８６．１ ９２．９ 愈伤组织平均直径（ｍｍ） ５．０ ５．０ ５．０ ４．０ ４．０ １．０ １．０ １．０ － １．０ ３．０ Ｃ 接种数（片） － １１ ２０ １１ １０ １１ １１ ２３ － １３ 产愈数（片） － １１ ２０ １１ ７ １０ １１ １５ － １０ 产愈率（％） － １００ １００ １００ ７０．０ ９０．９ １００ ６５．２ － ７６．９ ８７．９ 愈伤组织平均直径（ｍｍ） － ４．０ ４．５ ４．５ ３．０ １．０ １．０ １．０ － １．０ ２．５ Ｄ 接种数（片） ９ ８ １８ ８ ８ － １３ － １８ １９ 产愈数（片） ６ ８ １８ ６ ８ － １１ － ６ １１ 产愈率（％） ６６．６ １００ １００ ７５．０ １００ － ８４．６ － ３３．３ ５７．９ ７７．２ 愈伤组织平均直径（ｍｍ） ６．０ ５．０ ５．５ ５．０ ５．０ － １．０ － １．０ １．０ ３．７ 产愈率（％） ８３．０ ９３．６ ９５．０ ９０．７ ９２．５ ９０．９ ９６．２ ８４．２ ３３．３ ６７．３ 总平均 愈伤组织直径（ｍｍ） ５．０ ４．５ ４．５ ４．０ ３．８ １．０ １．０ １．０ １．０ １．０ 表４ 红掌不同品种愈伤组织的生长特点 品种 Ｈ３ Ｈ４ Ｈ１０ Ｈ６ Ｈ１ Ｈ５ Ｈ２ Ｈ９ Ｈ８ Ｈ７ 颜色 淡绿色 淡黄色 黄绿色 淡黄色 淡黄色 黄绿色 黄褐色 褐绿色 淡黄色 褐绿色 质地 松脆 松脆 松脆 松脆 松脆 坚硬 坚硬 坚硬 坚硬 坚硬 生长 快 快 较快 较快 较快 较慢 较慢 慢 慢 慢 表５ ５个品种在增殖培养中增殖倍数和不定芽颜色 品种 Ｈ３ Ｈ４ Ｈ１０ Ｈ６ Ｈ１ 增殖倍数 ３～４ ３～４ ２～３ ２～２．５ ２～２．５ 芽的颜色 淡绿色 粉红色 淡红色 淡红色 淡红色 表３ 红掌不同品种的叶柄外植体诱导愈伤组织培养的表现 培养基 项 目 Ｈ３ Ｈ４ Ｈ１０ Ｈ６ Ｈ１ Ｈ５ Ｈ２ Ｈ９ Ｈ８ Ｈ７ 总平均 Ａ 接种数（段） ３８ ３２ ４４ ２５ ４７ ３５ ４２ ４８ ６５ ５６ 产愈数（段） ３５ ３２ ３３ ２０ ３９ ２２ ４０ ３４ ３８ ４５ 产愈率（％） ９２．１ １００ ７５．０ ８０．０ ８３．０ ６２．９ ９５．２ ７０．８ ５８．５ ８０．４ ７９．８ 愈伤组织平均直径（ｍｍ） ６．５ ５．５ ４．０ ４．０ ４．５ ２．０ １．５ １．５ １．５ １．５ ３．２ Ｂ 接种数（段） ５８ ６１ ３９ １６ ４０ ４１ ４４ ５０ ２８ １６ 产愈数（段） ５８ ６０ ３６ １６ ２４ ３１ ３９ ２９ ２５ １３ 产愈率（％） １００ ９８．６ ９２．３ １００ ６０．０ ７５．６ ８８．６ ５８．０ ８９．３ ８１．２ ８４．４ 愈伤组织平均直径（ｍｍ） ６．５ ６．５ ６．０ ５．０ ５．０ ２．５ １．５ １．５ １．６ １．０ ３．７ Ｃ 接种数（段） ８６ ６０ ３８ ６５ ４９ ４６ ３４ ４８ ５４ ３４ 产愈数（段） ８１ ４４ ３１ ５３ １６ ２６ １２ １８ ２３ ２９ 产愈率（％） ９４．２ ７３．３ ８１．６ ８１．５ ３２．６ ５６．５ ３５．３ ３７．５ ４２．６ ８６．３ ６２．１ 愈伤组织平均直径（ｍｍ） ６．７ ５．５ ６．０ ５．５ ４．０ ２．０ １．５ １．０ １．０ １．０ ３．４ Ｄ 接种数（段） ７２ ６８ ６７ ６２ ５６ ６８ ５６ ７８ ５９ ７４ 产愈数（段） ７１ ６７ ６４ ６２ ４８ ５８ ５１ ６７ ４１ ６６ 产愈率（％） ９８．６ ９８．５ ９５．５ １００ ８５．７ ８５．３ ９０．１ ８５．９ ６９．５ ９８．２ ９０．７ 愈伤组织平均直径（ｍｍ） ６．７ ６．７ ６．５ ６．０ ６．０ １．５ ２．０ １．５ １．０ １．５ ３．９ 产愈率（％） ９６．２ ９２．６ ８６．１ ９０．４ ６５．３ ７０．１ ７７．３ ６３．１ ６５．０ ８６．５ 总平均 愈伤组织直径（ｍｍ） ６．６ ６．１ ５．６ ５．１ ４．９ ２．０ １．６ １．４ １．３ １．２ ∶１）或甘蔗渣∶泥炭土∶珍珠岩（６∶３∶１）。