小鼠肺癌原位瘤接种方法
小鼠皮下荷瘤标准操作规程
小鼠皮下荷瘤标准操作规程小鼠皮下荷瘤（或称移植瘤）实验是一种常用的动物实验方法，用于研究肿瘤生长、药物疗效等方面。
为了保证实验操作的准确性和动物福利的最大化，下面是一份小鼠皮下荷瘤标准操作规程。
一、实验动物1. 鼠种选择：建议使用常用的实验动物品系（如BALB/c、C57BL/6等）。
2. 年龄选择：选择6-8周龄的小鼠，确保其免疫系统和器官发育成熟。
3. 处理：在实验之前，将小鼠隔离一段时间，以适应新环境，并遵循动物实验伦理和相关法规进行处理。
二、荷瘤动物的准备1. 荷瘤细胞株的选择：根据实验目的选择合适的肿瘤细胞株。
细胞株应来源于可靠且经验证的来源，如细胞库、研究机构合作实验。
2. 细胞培养：在符合无菌条件下，将细胞培养在合适的培养基中，保持其活性和稳定性。
3. 细胞计数：使用细胞计数仪准确计算细胞数目，并调整细胞浓度。
4. 细胞检测：定期检测细胞的纯度、鉴定和验证细胞的肿瘤特性。
5. 注射剂量：根据实验需求和细胞特性，确定荷瘤细胞的注射剂量。
三、手术准备1. 操作间的准备：在符合无菌条件下进行手术，准备好所需的实验器具和仪器。
2. 麻醉与镇痛：使用适合的麻醉方法对小鼠进行麻醉，并在手术中给予镇痛以减轻小鼠的疼痛。
3. 无菌操作：实施手术之前，用适当的方法消毒手术台和手术器械。
四、手术操作1. 注射位置选择：选择合适的部位进行皮下注射（如腹部、背部），确保容易观察和测量肿瘤的生长。
2. 手术操作流程：(1) 麻醉小鼠并进行镇痛。
(2) 将小鼠定位到手术台上，以固定小鼠的身体。
(3) 使用酒精棉球消毒注射部位。
(4) 使用规格合适的针头将预定剂量的荷瘤细胞注入小鼠的皮下组织中。
(5) 注意注射的角度和深度，避免插入过深或过浅。
(6) 注射完毕后轻轻拍打注射部位以防止荷瘤细胞漏出。
(7) 小鼠苏醒后放回适宜的养护环境。
五、术后护理1. 观察：术后密切观察小鼠的行为和健康状况，特别是对于术后48小时内的小鼠，要加强监测，以及记录并报告任何异常情况。
肝胆胰脾裸鼠皮下成瘤及原位瘤动物实验方案
裸鼠皮下成瘤及原位瘤动物实验方案分组:正常细胞组、EGFR1转染无关siRNA组、EGFR1转染目的基因（每组6只）。
细胞准备及注射裸鼠方法：到动物室准备实验。
取出未作处理的小鼠和处理后小鼠用鼠笼，顺序摆放在超净台中。
选体形较大的小鼠称重，以3μl/g剂量，腹腔注射10％水合氯醛麻醉小鼠。
约5分钟，小鼠开始进入安静状态，将其仰卧固定。
切忌麻醉剂过量使用。
(1)铺白布于鼠板上，仰卧位固定小鼠四爪，碘伏棉球消毒腹侧面上至颈部、下至腹股沟、后至腋后线。
消毒两次。
铺手术巾于小鼠上，在其左侧剪口（4*4cm），暴露其左侧腹部, 用碘伏消毒一次。
在左侧肋弓下缘1cm处向下剪开2cm皮肤，暴露腹壁肌肉，镊子牵拉腹壁肌肉，避开腹腔内脾脏，剪开腹壁肌肉，暴露内脏。
用棉签蘸PBS，拨出脾脏下极，切忌牵拉，以免损伤脾脏和胰腺。
(2)找到脾脏同时，用25微升Matrigel混合于细胞管中，打悬细胞沉淀，使细胞分散均匀成单细胞悬液。
用BD针吸净EP管中的单细胞悬液，稍退针芯，打出气泡，在脾脏下极内侧（凹面）进针向脾门方向约2mm开始注射细胞，注射完毕停留约30秒钟，缓慢退出针，以防细胞渗出。
同时用蘸PBS的棉球压迫周围出血点止血。
(3)用注射器吸取庆大霉素注射液（用生理盐水250：1稀释）约400微升，注入腹腔，棉球蘸干皮缘渗出的抗生素。
开始缝合腹壁肌肉（连续缝合4针）。
再次用注射器吸取庆大霉素注射液约400微升冲洗缝合口，棉球蘸干。
缝合皮肤（间断缝合4针）。
碘伏棉球消毒缝合口。
撤除固定，使小鼠处于自然体位，放于鼠笼中。
(4)所有细胞注射完毕，剪耳标记，记录剪耳标记及分组情况。
Day5-7：注意小鼠的状态，及时发现小鼠是否有因手术刺激、胰腺损伤、感染等死亡的情况。
Day42：颈椎离断，处死小鼠，解剖尸体，观察脾脏肿瘤生长状况，肝脏、肺脏及其他器官是否有转移瘤形成。
所有可疑组织均做好标记，拍照，若有表面结节，计数后，冻于液氮中。
小鼠肿瘤模型
小鼠肿瘤模型肿瘤模型我们一般常用的就是小鼠模型和人肿瘤裸小鼠移植瘤模型。
其中用得最多的是皮下模型，另外还有腹水（或者尾静脉注射）以及原位模型，其他的模型很少用，就不提他们了。
小鼠模型分三大类：第一类是以S180、EAC、H22等为代表的，他们的宿主小鼠多选用KM，可产生腹水，也可在皮下成瘤。
多以腹水传代，实验时抽取腹水，经过一定稀释后皮下接种构建模型，接踵后第二天开始给药，给药7到10天，接种10天后结束试验，剥取肿瘤称瘤重。
1. 关于构建瘤种可以用体外细胞株培养后，用PBS悬浮至1~3×106/0.1ml/mouse，i.p接种即可，最好用6号左右的针头，就是常用的2ml一次性注射的针头。
2. 关于腹水传代观察到第一代的种鼠肚子较大后（一般约8~9天左右），可以传代，传代时取1 ml注射器，用2ml注射器的针头，种鼠腹部消毒后直接将针头插入抽取腹水即可，注意不要把针头插得很深，尽量浅一点，还可以把老鼠拎起来，利用重力，让腹水集中在某处便于抽取，一般抽个0.5ml就可以了，不用离心，直接用PB S3~6倍稀释后，接种到新的老鼠腹腔，腹水颜色为白色或者略有发黄都是正常的，但是血性腹水说明不好，需要注意调整，第二代以后，尽量6~7天的时候传代，不要等的时间太久，否则腹水容易血性。
三代后可用于试验。
3. 关于接种进行试验这个时候抽取的腹水需要量比较多，一般需要处死种鼠后，小心地用消毒眼科剪刀镊子剥开腹部皮肤，注意不要弄破肌肉，然后，用镊子（最好是哪种前面有倒勾的镊子，学名好像是唇型镊）拎起腹部的肌肉，用剪刀剪开一个小口，然后用玻璃滴管或者去掉针头的注射器吸取腹水。
然后进过一定的稀释后，接种到小鼠的腋下。
关于稀释量，各个实验室的情况都不一样，最好摸索一下，开始的时候可以适当的计数，但是要用台盼兰染色后计活细胞数。
接种部位在小鼠腋下，但是不要深入到腋窝里面，会给以后的操作带来麻烦。
接种时的进针处离接种处远一点，让针头在皮下多走一段，不容易污染。
两种方法建立小鼠原位肝癌模型的比较
两种方法建立小鼠原位肝癌模型的比较摘要】目的比较建立小鼠原位肝癌模型的两种方法的优劣。
方法分别采用肝脏原位注射细胞法和尾静脉高压水流动力学注射法建立小鼠原位肝癌模型，对两组小鼠肝脏的成瘤情况进行比较。
结果两组小鼠均能在短期内成瘤，且成瘤率高。
结论尾静脉高压水流动力学注射法比原位注射细胞法更容易操作，小鼠存活率高，肝脏成瘤更均匀。
【关键词】原位肝癌模型高压水流动力学注射【中图分类号】R73-3 【文献标识码】A 【文章编号】2095-1752（2013）14-0382-02原发性肝细胞肝癌是我国乃至全球范围内的研究热点，而原位肝癌小鼠模型是进行原发性肝细胞肝癌基础研究和临床研究的重要工具。
目前原位肝癌模型主要采用化学诱导法（DEN），但是该方法建立模型成瘤的时间比较长，大概需要6-8个月，导致研究的周期很长。
本文尝试了两种比较快速地建立小鼠原位肝癌模型的方法--肝脏原位注射细胞法和尾静脉高压水流动力学注射法，并对这两种方法建立的小鼠模型进行了比较。
1 实验材料及方法1.1 实验动物与试剂C57BL/6小鼠7-8周，雄性，20只,购自上海斯莱克实验动物有限公司。
Hepa1-6细胞株购自中科院上海细胞库。
DMEM高糖培养基，胎牛血清，购自上海英潍捷基公司。
水合氯醛、碘伏购自国药集团。
注射器，手术器械、缝合线、针领自苏州大学材料供应中心。
1.2 方法1.2.1 细胞悬液制备 Hepa 1-6在37℃、5 % CO2 的细胞培养箱中培养，取对数生长期细胞,0.25%胰蛋白酶消化后,收集于15mL离心管中，用PBS调整细胞悬液浓度至5×107/mL用于原位注射细胞法,每只小鼠注射20uL。
用PBS调整细胞悬液浓度至5×105/mL 用于尾静脉高压水流动力学注射法每只小鼠注射2mL。
1.2.2 小鼠分组 20只7-8周龄的C57BL/6雄性小鼠分为2组，第1组10只进行肝脏原位注射细胞建立模型，第2组10只采用尾静脉高压水流动力学注射的方法建立模型。
肺原位注射模型
肺原位注射模型
细胞准备
取状态良好的肺癌细胞（如A549）胰酶消化收集，用PBS分散细胞悬液，离心后，加入基质胶（高浓度型），配比为50µl细胞悬液+50µl基质胶，其中细胞悬液中的细胞量为3*106个。
裸鼠准备
选取5-8周龄健康裸鼠
操作步骤
1.裸鼠100µl水合氯醛麻醉后右侧卧位固定，右侧胸部皮肤用酒精消毒。
2.确定小鼠肺部位置，位于小鼠左侧肋骨下缘以上约1cm处，有两条纵向较粗的血管，肺部位于这两条血管之间。
3. 用手术剪剪开右侧胸部皮肤，一般可以看见颜色浅于肌肉的随呼吸运动上下起伏的肺叶，如视野不明朗，可以用镊子钝性分离肌肉组织暴露目标视野。
4. 用胰岛素针将准备好的细胞混合液，垂直进针，打入右肺中叶，进针深度在3-5mm，推针速度尽量慢，全部推进去后可以轻轻压住进针处。
5.缝合皮肤，消毒，待小鼠苏醒后放回动物房继续饲养
注意事项
基质胶要注意使用温度，保证在冰上进行，不要让它凝固。
小鼠肺癌模型
小鼠肺癌模型
小鼠肺癌模型
小鼠肺癌模型
将小鼠平放，与左右侧腋下中部以碘伏消毒并备皮，剪开膈肌，沿 两侧肋骨剪开胸腔暴露肺脏、心脏
首先观察肺脏是否存在出血或充血，其次观察是否存在水肿或 气肿，剪开上下俩端气管，将部分肺组织置在离心管中，注入 PBS缓冲液并密封标记，随后存放在冰箱中
取部分肺组织进行常规组织石蜡包埋步骤，最后进行HE 染色
小鼠肺癌模型
4、 病理学报告：形态与原代体外细胞形态相似 ,程 长梭形 ,核幼稚 ,细胞核深染 ,核异型性明显 ,排列
杂乱紧密 ,与邻近肺组织特征完全不同
5、 评估肺癌模型：通过观察肿瘤的生长情况、组织学 检测、免疫组化染色等方法对肺癌小鼠模型进行评估
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谢
谢
小鼠肺癌模型
小鼠肺癌模型
目录
小鼠肺癌模型
1、 实验动物 :无特定病原体(SPF) 级 C57BL/6 小鼠 ,6 ~8 周 ,雌 性 ,体重约 22 g ,共10只。实验 动物使用的 3R原则给予人道主义 关怀
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2、 体内移植肺癌细胞：将 体外培养的肺癌细胞注射到 小鼠体内，形成移植瘤模型
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小鼠肺癌模型
3、 实验方法 细胞复苏 1、 将水浴锅预热至37℃，准备好干净的一次性PE手套，置于含 10%血清、 1%双抗的 DMEM/HIGHGLUCOSE 基础培养基中 2、 将细胞从液氮罐中取出放入PE手套中，迅速没入水浴锅，摇晃冻存管加速溶解，以1 分钟内全部溶解为宜 3、 在超净台中将复苏好的细胞液加入到装有新鲜培养基的离心管内，1200rpm/min 离 心3分钟，离心完毕去掉上清 4、 用适量与细胞对映的完全培养基重悬细胞，接入到无菌容器中(培养瓶或培养皿)， 补充培养基到适宜，放入培养箱培养 5、每天镜下观察细胞生长状态,每 2 天换液处理,约每 3 d 进行消化传代一次。细胞汇 合率达 80%进行传代培养
小鼠 Lewis肺癌原位模型的建立
小鼠 Lewis肺癌原位模型的建立李宁;张晓晔;蒋中秀;刘洋;李雪娇【摘要】目的：利用Matrigel与Lewis制备细胞混悬液注射于小鼠左肺内，建立小鼠Lewis肺癌原位模型，评价其肿瘤生长情况、转移情况，以期建立更稳定、更接近于人肺癌生长情况的小鼠肺癌原位模型。
方法将处于对数生长期的Lewis 肺癌细胞混悬于Matrigel中，接种于C57BL/6近交系小鼠左肺内。
分别于第4、7、10、13、16天各处死5只小鼠，观察其局部成瘤率、肿瘤生长情况、中位生存期及肿瘤转移情况，并对各阶段小鼠行肺部，肝脏，肾脏，脾脏病理切片检查。
结果术后第7天解剖的5只小鼠中，3只小鼠肺上可见小的瘤结节形成，其余2只肺上未见肉眼成瘤，行病理HE染色检查在显微镜下可见2只小鼠肺脏有小的瘤结节形成。
术后第10天以后处死的所有小鼠肺上均有肉眼成瘤，术后第13天，所有小鼠肺原位成瘤并伴有血性胸腔积液、胸腔内转移。
术后第25天，有1只小鼠出现上述转移的同时还出现了心包膜转移及肾脏远处转移。
5只小鼠生存期分别为17 d、20 d、22 d、22 d、25 d，小鼠中位生存期为21.2 d（17～25 d）。
成瘤率100％。
结论利用Matrigel法成功建立小鼠Lewis肺癌原位模型，稳定性好，成瘤率高，并具有远处转移的特性，更接近于人肺癌的发生、发展过程。
%Objective To establish a mouse model of orthotopic Lewis lung carcinoma using Matrigel, to evaluate the tumor growth and metastasis, and to provide a more stable mouse model of orthotopic lung cancer, which is more similar to human lung cancer.Methods Logarithmic phase of cultured Lewis lung cancer cells were suspended in Matrigel, vac-cinated into the left lung of inbred C57BL/6 mice.Five mice were killed on the 4th, 7th, 10th, 13th, and 16th days, re-spectively, and to observe the mediansurvival, tumor formation rate, tumor growth, and metastasis.Pathological changes of the mouse lung, liver, kidney and spleen were examined.Results In 5 mice killed on the 7th postoperative day, small tumor nodules were observed on the lung in three mice and no tumor was visible by gross inspection in the other two mice, but small tumor nodules were observed under the microscope.For all the mice killed on the 10th postoperative day, tumors were visible to the naked eye on the lung of all the five mice.On the 13th day, orthotopic tumor was observed on the lung with bloody pleural effusion and pleural metastasis in all the five mice.On the 25th day, in addition to the pleural metasta-sis, one mouse had pericardial metastasis and renal metastasis.The survival periods of the 5 mice were 17 d, 20 d, 22 d, 22 d, and 25 d, respectively, with a median survival period of 21.2 d (17-25 d), and the tumor formation rate was 100%.Conclusions Mouse models of orthotopic Lewis lung carcinoma is successfully established using injection of tumor cells suspended in Matrigel.This model is more similar to the growth of human lung cancer, with good stability, high tumor formation rate and characteristics of distant metastasis, therefore, is worthy of further application.【期刊名称】《中国实验动物学报》【年(卷),期】2014(000)005【总页数】5页(P79-83)【关键词】小鼠;肺癌;动物模型;Matrigel;Lewis细胞【作者】李宁;张晓晔;蒋中秀;刘洋;李雪娇【作者单位】中国医科大学附属盛京医院，沈阳 110004;中国医科大学附属盛京医院，沈阳 110004;中国医科大学附属盛京医院，沈阳 110004;中国医科大学附属盛京医院，沈阳 110004;中国医科大学附属盛京医院，沈阳 110004【正文语种】中文【中图分类】Q95-33目前，在肺癌的动物实验中，大多使用小鼠皮下种植肺癌细胞系，在皮下形成肺癌肿瘤结节的动物模型，如孙秋艳等[1]用体外培养的Lewis细胞悬液注射于小鼠左侧腋下，形成皮下肿瘤；Xu等[2]应用A549肺癌细胞悬液加入等量的Matrigel 中，注射至裸鼠的皮下组织亦可形成肿瘤模型。
小鼠原位移植瘤模型造模方法
小鼠原位移植瘤模型造模方法
为了更好的模拟肿瘤的生长情况选择发生肿瘤的器官为移植点。
常用的小鼠仍为 NOD-SCID 鼠。
采取开放手术打开暴露相应的发生肿瘤的对应的小鼠器官，将肿瘤组织或肿瘤细胞种植到器官内。
此方式因不易操作，且小鼠手术后死亡率较高，一般不常选用。
小鼠实验分组一般5 只以上为一组，分别设置实验组和对照组。
术前将小鼠于动物房饲养一周适应环境，术前术后称量记录体重。
小鼠移植瘤一般2 w 左右即可形成，可用游标卡尺记录瘤体长短径，每周 3 次记录。
一般待瘤体体积为 1 cmx1 cm 时处死小鼠，收集肿瘤接着在小鼠身上传代处理或进行其他实验验证。
小鼠实验肿瘤动物模型构建关键要细心，尤其是肿瘤细胞选择，肿瘤组织块处理上要仔细认真，这是影响模型成功建立的关键，还有移植手术时更要耐心细致，不要还没有建立就已经失败。
一处瘤内注射疫苗，消除小鼠全身肿瘤
一处瘤内注射疫苗，消除小鼠全身肿瘤“癌症疫苗”可消除肿瘤已经进入临床阶段斯坦福大学医学院(StanfordUniversitySchoolofMedicine)的研究人员进行的一项研究表明，将两种免疫刺激因子直接注射到小鼠体内的实体肿瘤中，可以消除动物体内所有的癌症痕迹，包括远处的、未经治疗癌细胞的转移。
研究发现，这种方法适用于许多不同类型的癌症，包括自发产生的癌症。
研究人员认为，局部应用少量的药物可以作为一种快速且相对廉价的癌症治疗方法，这种疗法不太可能引起全身免疫刺激的副作用。
“当我们一起使用这两种药剂时，我们看到了全身肿瘤的消除，”肿瘤学教授罗纳德·莱维(RonaldLevy)说。
“这种方法绕过了识别肿瘤特异性免疫靶点的需要，不需要对免疫系统进行大规模激活，也不需要对患者的免疫细胞进行定制。
”目前已经批准一种药物用于人体；另一项已在几项无关的临床试验中进行人体试验。
1月开始进行临床试验，以检验治疗对淋巴瘤患者的影响。
莱维是这项研究的资深作者，他将于1月31日发表在《科学转化医学》杂志上。
CpG诱导CD4 T细胞中OX40的表达“惊人的全身效应”Levy是癌症免疫疗法领域的先驱，研究人员试图利用免疫系统来对抗癌症。
在他的实验室里进行的研究导致了利妥昔单抗的发展，利妥昔单抗是第一个被批准用于人类抗癌治疗的单克隆抗体。
一些免疫疗法依赖于刺激全身的免疫系统。
其他的目标是自然出现的检查点，限制免疫细胞的抗癌活性。
还有一些人，比如最近批准用于治疗某些类型的白血病和淋巴瘤的t细胞疗法，要求患者的免疫细胞从身体中移除，并通过基因改造来攻击肿瘤细胞。
这些方法很多都很成功，但它们都有一些缺点——从难以处理的副作用到高成本和冗长的准备或治疗时间。
“所有这些免疫疗法的进步都在改变医疗实践，”Levy说。
“我们的方法是一次性使用非常少量的两种药剂，只在肿瘤内部刺激免疫细胞。
在老鼠身上，我们看到了神奇的、全身的效果，包括在动物身上清除肿瘤。
一种成功率高的小鼠肿瘤细胞系建系方法
一种成功率高的小鼠肿瘤细胞系建系方法
小鼠肿瘤细胞系建系是肿瘤研究的基础，成功率至关重要。
本文介绍了一种成功率高的小鼠肿瘤细胞系建系方法。
将小鼠肿瘤组织切片，然后将其放入细胞培养皿中，添加适量的培养液，并在37℃恒温水浴中培养。
接着，可以使用0.25%的胰蛋白酶去清除培养液中的细胞外残留物，并在37℃恒温水浴中培养，以促进细胞的生长和分化。
可以使用抗体特异性的免疫细胞染色来鉴定细胞，以确保细胞的质量。
本方法可以有效地建立小鼠肿瘤细胞系，具有较高的成功率。
小鼠后肢接种实验报告
一、实验背景肿瘤研究是当今医学领域的重要课题之一。
小鼠作为常用的实验动物，其肿瘤模型的建立对于肿瘤的发生、发展和治疗的研究具有重要意义。
本研究旨在通过后肢接种实验，建立小鼠肿瘤模型，为后续的肿瘤研究提供实验基础。
二、实验目的1. 掌握小鼠后肢接种实验的操作方法；2. 观察肿瘤在小鼠后肢的生长情况；3. 为后续肿瘤研究提供实验样本。
三、实验材料1. 实验动物：昆明小鼠20只，体重20-25g；2. 肿瘤细胞：人肺腺癌细胞系；3. 试剂与仪器：注射器、针头、无菌生理盐水、酒精、棉球、剪刀、手术刀、解剖显微镜等。
四、实验方法1. 肿瘤细胞培养：将人肺腺癌细胞系接种于含10%胎牛血清的DMEM培养基中，置于37℃、5%CO2的培养箱中培养。
2. 接种前准备：将小鼠分为两组，每组10只，编号为A组和B组。
3. 肿瘤细胞接种：a. 将培养至对数生长期的肿瘤细胞用无菌生理盐水洗涤2次，调整细胞浓度为1×10^7个/ml；b. 将A组小鼠后肢皮肤消毒，用注射器吸取1ml肿瘤细胞悬液，注射于小鼠后肢肌肉层；c. 将B组小鼠作为对照，仅进行皮肤消毒，不进行肿瘤细胞接种。
4. 观察与记录：a. 接种后第1周，每天观察小鼠后肢肿瘤的生长情况，记录肿瘤直径；b. 接种后第2周，每2天观察肿瘤生长情况，记录肿瘤直径；c. 接种后第3周，每3天观察肿瘤生长情况，记录肿瘤直径；d. 接种后第4周，每5天观察肿瘤生长情况，记录肿瘤直径。
5. 实验终止：当肿瘤直径达到2cm时，终止实验。
五、实验结果1. A组小鼠后肢肿瘤生长情况：接种后第1周，肿瘤直径为0.5cm；第2周，肿瘤直径为1cm；第3周，肿瘤直径为1.5cm；第4周，肿瘤直径为2cm。
2. B组小鼠后肢无肿瘤生长。
六、实验讨论1. 本实验成功建立了小鼠后肢肿瘤模型，为后续肿瘤研究提供了实验基础。
2. 通过观察肿瘤生长情况，发现肿瘤在小鼠后肢的生长速度较快，有利于后续实验的进行。
小鼠皮下移植瘤实验步骤
皮下移植瘤实验步骤
1、提前2-5个工作日与细胞房人沟通好收细胞时间，收到细胞后，用锡箔纸包裹EP管。
2、将接种所用的细胞、注射器和记录纸等带去动物房，放进传递窗，喷酒精，照紫外线灭菌10min。
3、用1ml注射器吸取适量培养基与细胞轻轻吹打混匀（吸取量视所需接种体积确定）。
4、抓起裸鼠，于裸鼠左侧腋窝处皮下注射，接种对照组细胞，右侧接种实验组细胞，接种体积均为0.1ml。
5、把耳标放入打孔器中，用手抓起固定好裸鼠，用打孔器把耳标固定在裸鼠耳朵上。
6、称重，并登记好相应信息。
7、每三天称量一次裸鼠体重，成瘤后每三天用游标卡尺测量一次肿瘤长径和短径，将相应数值填写在记录纸上。
8、待肿瘤生长至合适大小，用CO2处死小鼠，按照实验结果摆拍裸鼠（如图）
9、用手术剪剪开裸鼠肿瘤周围皮肤，用组织镊小心分离肿瘤附近组织，将剥离出来的肿瘤放在垫了锡箔纸的冰上。
待所有肿瘤都取下后，称重，记录数据，按照实验结果摆拍（如图）
10、选取其中差异大的三组，将肿瘤小心分为两部分，一部分4%PFA固定，一部分放已灭菌离心管冻存。
剩余组织放已灭菌离心管冻存。
（需要冻存的组织放进EP管后要插入冰盒的冰里）
11、将组织带回公司，需要冻存的放进-80°C，并填写《-80°C动物组织存放表》。
小鼠肺癌原位瘤接种方法
小鼠Lewis肺癌，用C57BL／6小鼠。
分组：正常组，模型组，阳性药组，中药组，中西药联用组
方法：采用原位接种法。
操作：
1麻醉：戊巴比妥钠溶液50mg/kg腹腔内注射，将戊巴比妥钠配成10 mg/mL的工作液，按0.05 mL/10 g体重剂量对小鼠进行麻醉。
2接种：小鼠麻醉后，将其仰卧固定在操作台上，对小鼠前胸壁进行酒精消毒，在左腋前线肋弓上约1.5cm处作一约5mm的小切口，分离皮肤及皮下组织暴露至胸壁，将50μL细胞悬液与50μL Matrigel 混匀，在快凝固之前以胰岛素注射针将3LL细胞与Matrigel混悬液共100μL注入小鼠左肺，进针约3mm，注射完后停针5s，拔针后缝合切口。
建议细胞浓度10*6较好，10*6最先成瘤，但具体浓度选择要看你实验的安排及实验的内容，浓度低，成瘤时间稍长。
如果是要接种NCI-H460、A549这些人源的肺癌细胞，建议使用免疫缺陷的BALB/C-nude或者NOD/SCID小鼠，每只老鼠尾静脉注射10*6个细胞（0.1ml）。
肿瘤小鼠造模方法
肿瘤小鼠造模方法
肿瘤小鼠造模是研究肿瘤发生、发展和治疗的重要实验手段之一。
以下是常用的肿瘤小鼠造模方法：
1. 肿瘤细胞移植法：将肿瘤细胞直接注射到小鼠体内，使其形成肿瘤。
这种方法适用于研究肿瘤细胞的生物学特性和药物治疗等方面。
2. 基因工程小鼠法：使用基因工程技术，通过改变小鼠体内的基因表达来诱导肿瘤的发生。
例如，可以通过敲除或过表达某个关键基因来模拟人类肿瘤的发生机制。
3. 化学致癌法：通过给予小鼠致癌物质，如化学药物、化学物质等来引发肿瘤的发生。
这种方法适用于研究致癌物质的致癌机制以及药物预防和治疗的效果。
4. 放射性致癌法：通过给予小鼠辐射来诱发肿瘤的发生。
这种方法适用于研究放射线致癌的机制和辐射防护措施。
以上是常用的肿瘤小鼠造模方法，具体选择哪种方法要根据研究的目的和实验条件来决定。
在进行肿瘤小鼠造模实验时，需要严格遵守伦理规范和动物保护法律法规，并确保实验过程中小鼠的福利和安全。
裸鼠移植瘤 方法建立
裸鼠移植瘤方法建立-CAL-FENGHAI.-(YICAI)-Company One11.细胞准备：用 PBS 清洗细胞两遍，加入胰酶消化，吹打离心，无血清培养基清洗两次，然后用无血清培养基将细胞重悬，进行细胞计数，使得 200μL 悬浮液里面含有 1×107个细胞。
总共需要细胞: 18（只）*200ul*=×107个，将混合好的细胞放于4°C冰盒运至动物房。
2.裸鼠准备：3周龄小鼠饲养一周后，每只于右侧腋腹壁皮下接种MDA-MB-231和MCF-7细胞 1×107/200μ L。
每日观察肿瘤生长情况, 待出瘤后使用游标卡尺测量肿瘤体积, 肿瘤体积=(D×d 2 )/2(D表示肿瘤的长径, d表示肿瘤的短径)。
（注射器型号BD一次性使用无菌胰岛素注射器规格：1ml 25G）当肿瘤体积约为80 mm 3 时(100至150左右)，将裸鼠进行随机分成3 组（肿瘤大小，体重尽量接近），每组3只。
对照组，TO901317组，DADS组。
每天（每天给药会不会太频繁可以查阅相关类似成药的半衰期或综合国外文献的数据）将实验组灌胃TO901317，剂量为25mg/kg/d，将粉末状的 TO901317 溶解到蓖麻油（或芝麻油以及生理盐水）里，每只裸鼠注射含有 TO901317 的蓖麻油 200μL；对照组注射等体积的蓖麻油。
连续注射两周。
（12号灌胃针头，每次用后一定要煮沸消毒）（灌胃进针时针头偏右，一般就不会进肺了）腹腔注射DADS，剂量为50mg/kg (含10%小牛血清的D ME M培养液（最好使用生理盐水）)每次注射200 μL , 隔日注射, 连续7次给药。
每2～3d观察测量1次, 计算肿瘤相对体积(RTV)。
以每组动物移植瘤体积的平均值, 绘制移植瘤生长曲线。
实验结束时在超净工作台上对裸鼠进行拍照，完整剥离肿瘤，用游标卡尺对肿瘤的大小进行测量，用电子天平称量移植瘤重量，用手术剪取出肿瘤，拍照。
肺癌动物肿瘤诱发实验具体步骤及方法
肺癌肿瘤诱发实验具体步骤及方法
1．二乙基亚硝胺（DEN）诱发小鼠肺癌
（1）小白鼠每周皮下注射1%DEN水溶液一次，每次剂量56 mg/kg，DEN总剂量达到868 mg；
（2）观察时间为100天左右时，发癌率可达40%。
（3）DEN总剂量达到1176 mg，观察时间为半年左右时；发癌率可达94%。
2．乌拉坦诱发肺腺癌
（1）小鼠（A系，1～11/2月龄）较大鼠敏感，每次每只腹腔注入10%乌拉坦生理盐水液0.1～0.3 ml，间隔3～5日再注，共注2～3个月，每只小鼠用量约为100 mg；
（2）注后3个月肺腺癌发生率为100%，而且多数为多发性，这种诱发瘤为良性。
3．苯并芘诱发肺腺癌
（1）猴气管内注入3，4-苯并芘（苯并花为3～15 mg与等量之Fe2O3混合液），每周一次，共10次；
（2）6只猴中有2只诱发肺的鳞状上皮癌。
4．硫酸铵气溶胶诱发肺腺癌
（1）用硫酸胺气溶剂给100只大鼠吸入；
（2）13个月后所有大鼠都发生了肺腺癌。
5．甲基胆蒽诱发肺腺癌
（1）用0.2%明胶作悬浮剂将甲基胆蒽混合后给金地鼠气管内注入，每次0.1 ml（含甲基胆蒽5 mg）每周一次，共6次；
（2）53周后有62.5%动物发生了肺癌。
小鼠组织荷瘤步骤
小鼠组织荷瘤步骤
组织荷瘤步骤
1.将新鲜肿瘤组织放到HTK液里，迅速拿到超净台内。
2.将肿瘤组织放入盛满生理盐水的6cm培养皿中，反复冲洗3-4次。
每次均需换新水。
3.将肿瘤组织放入盛满三抗空培的6cm培养皿中，反复冲洗3-4次。
每次均需换新培养基。
4.用镊子将肿瘤组织按在空培中，用剪刀将其剪碎，一般剪成1mm3左右的碎块即可。
5.碎块移入新培养基中清洗最后一次，用镊子夹起碎块塞入穿刺针中，不断抽吸，使其进
入多个碎块。
6.荷瘤鼠用酒精棉球擦拭全身。
将其抓起，暴露侧腹部，在侧腹中部剪毛，用剪刀在其剪
毛处将皮肤剪一1mm长小口。
7.将穿刺针由小口进入皮下，向前肢或后肢端试探前行，针尖进入上肢或下肢根部停止。
将组织块注入，旋转针头拔出。
8.用棉签紧贴皮肤顺注入方向推揉，使组织碎块尽量集中于注射处。
9.用消毒棉球擦干注射处，放下老鼠，让其自由活动。
肺原位注射模型
肺原位注射模型
细胞准备
取状态良好的肺癌细胞（如A549）胰酶消化收集，用PBS分散细胞悬液，离心后，加入基质胶（高浓度型），配比为50µl细胞悬液+50µl基质胶，其中细胞悬液中的细胞量为3*106个。
裸鼠准备
选取5-8周龄健康裸鼠
操作步骤
1.裸鼠100µl水合氯醛麻醉后右侧卧位固定，右侧胸部皮肤用酒精消毒。
2.确定小鼠肺部位置，位于小鼠左侧肋骨下缘以上约1cm处，有两条纵向较粗的血管，肺部位于这两条血管之间。
3. 用手术剪剪开右侧胸部皮肤，一般可以看见颜色浅于肌肉的随呼吸运动上下起伏的肺叶，如视野不明朗，可以用镊子钝性分离肌肉组织暴露目标视野。
4. 用胰岛素针将准备好的细胞混合液，垂直进针，打入右肺中叶，进针深度在3-5mm，推针速度尽量慢，全部推进去后可以轻轻压住进针处。
5.缝合皮肤，消毒，待小鼠苏醒后放回动物房继续饲养
注意事项
基质胶要注意使用温度，保证在冰上进行，不要让它凝固。
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小鼠Lewis肺癌，用C57BL／6小鼠。
分组：正常组，模型组，阳性药组，中药组，中西药联用组
方法：采用原位接种法。
操作：
1麻醉：戊巴比妥钠溶液50mg/kg腹腔内注射，将戊巴比妥钠配成10 mg/mL的工作液，按0.05 mL/10 g体重剂量对小鼠进行麻醉。
2接种：小鼠麻醉后，将其仰卧固定在操作台上，对小鼠前胸壁进行酒精消毒，在左腋前线肋弓上约1.5cm处作一约5mm的小切口，分离皮肤及皮下组织暴露至胸壁，将50μL细胞悬液与50μL Matrigel 混匀，在快凝固之前以胰岛素注射针将3LL细胞与Matrigel混悬液共100μL注入小鼠左肺，进针约3mm，注射完后停针5s，拔针后缝合切口。
建议细胞浓度10*6较好，10*6最先成瘤，但具体浓度选择要看你实验的安排及实验的内容，浓度低，成瘤时间稍长。
如果是要接种NCI-H460、A549这些人源的肺癌细胞，建议使用免疫缺陷的BALB/C-nude或者NOD/SCID小鼠，每只老鼠尾静脉注射10*6个细胞（0.1ml）。