土壤微生物的分离纯化及理化性质的研究

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土壤中微生物的分离纯化、培养观察及保藏

土壤中微生物的分离纯化、培养观察及保藏

番红 G-
显微镜下菌体呈红色者为革兰氏染色阴性细菌 (常以G-表示),呈深蓝紫色者为革兰氏染色阳性 反应细菌(常以G+表示)。
细菌的革兰氏染色
革兰氏染色实验步骤
制片:取菌种培养液常规涂片,干燥,固定。 初染:滴加结晶紫,染色1-2min,水洗; 媒染:用碘液冲去残水,并用碘液覆盖约1min,
相关理论知识(2)
土壤中的微生物
✓土壤是微生物生长繁殖的天然培养基 ,是 人类最丰富的“菌种资源库”。
✓不同类型的土壤、同一类型土壤的不同深 度或不同水平位置,微生物种类和数量变 化很大。
✓由于表层土壤比较干燥,且接受大量紫外 线照射,所以微生物主要分布在营养条件 良好、氧气含量比较丰富的浅土层
每克耕作层土壤含菌量十倍递减 细菌(~108)
细菌细胞的生理生化反应
目的要求
1、不同微生物对各种有机分子水解能力不同,说明 不同微生物有不同的酶系统。
2、掌握微生物大分子水解实验的原理及方法。 3、了解糖发酵原理及在肠道细菌鉴定中的作用。 4、了解并掌握细菌鉴定中常用生理生化反应的实验
原理和方法。 5、了解细菌在培养基中的生长现象及其代谢产物



炭疽芽胞杆菌 3-10 μm
大肠埃希菌 2-3 μm
布鲁菌 0.6-1.5 μm
细菌的革兰氏染色
注意事项
1. 涂片务求均匀,切忌过厚。 2.在染色过程中,不可使染液干涸。 火焰固定不
宜过热。 3.脱色时间十分重要,过长,则脱色过度,会使阳
性菌被染成阴性菌;脱色不够,则会使阴性菌被 染成阳性菌。 4.不能选用老龄菌。
在鉴别细菌中的意义。
细菌细胞的生理生化反应
实验原理(1)
各种细菌在代谢类型上表现了很大的差异。不同的细 菌分解大分子碳水化合物、蛋白质和脂肪的能力不同,所 能发酵的类型和最终产物也不一样。不同细菌对营养的要 求不同也说明了它们有不同的合成能力。所有这些都反映 了它们有不同的酶系统。

实验八、土壤微生物的分离和 纯化

实验八、土壤微生物的分离和 纯化

实验八、土壤微生物的分离和纯化土壤微生物是指生长在土壤中的微弱的、微小的生物体,包括细菌、真菌、放线菌、原生动物等。

土壤微生物是土壤的重要组成部分,对维持土壤生态系统的平衡和功能发挥起着关键作用。

因此,对土壤微生物的分离和纯化具有重要意义。

本实验就是针对土壤微生物的分离和纯化进行研究。

一、实验原理由于土壤微生物数量繁多而多样,分离出单一的菌落对于此实验来说非常的困难。

但是采用适宜的富培养基后能够轻松的促进土壤微生物菌群的生长。

富培养基包括有机和无机元素、维生素、氨基酸、碳源和氮源。

地衣素琼脂(ISP)是一种富含多种碳源和氮源的优质菌落培养基,是常用的微生物培养基。

本实验的基本原理就是在能够生长的环境中分离出单一的菌落,通过多次分离和鉴定获得纯种菌株。

二、实验器材和试剂1.地衣素琼脂培养基2.试管、移液器、移菌环、烧灼器、电热蚊子香、灭菌器3.已经壳霉菌疫苗接种的贵州悬钩子种子和土壤三、实验步骤1.准备工作。

用移液器将壳霉菌疫苗接种在新的地衣素琼脂培养基板上,将其灭菌,以备之后的使用。

2.准备土壤基质。

将土壤样品剪碎成非常小的颗粒,并放入烧灼的试管中,加入恰当的地衣素酵母素琼脂,变形后形成一个接种板。

在较大的容器中放置电热器设备,以保持环境的湿度和温度适宜。

接下来,将接种板和采样站放在单独的区域以免混淆。

3.接种。

从土壤中取一小部分,倒入试管中,并加入适量的地衣素琼脂培养基,并将其摇动均匀,使菌群溢出。

等到土壤均匀地分散在地衣素琼脂培养基中之后,用移菌环扭曲并切出一个菌落,并将其置于新的地衣素琼脂培养基板中。

重复此步骤至少三次,每次都要将新的分离土壤菌落剪出来。

4.孵育。

将地衣素琼脂培养基板置于电热器设备中,以使温度保持在合适的范围内,并等待菌落的生长。

当新的菌落形成后,即可重复上述步骤以获得更多的菌株。

5.纯化。

检查菌落后,需要进行纯化。

鉴定每个菌落,把每个菌落分别悬浮在新的地衣素琼脂培养基板中,并等待菌落的生长。

土壤微生物的分离和纯化

土壤微生物的分离和纯化

土壤微生物的分离和纯化土壤微生物的分离和纯化一、实验目的1、掌握从土壤中分离、纯化微生物的原理与方法。

2、学会根据微生物培养特征初步判断未知菌的类别。

3、练习微生物接种、移植和培养的基本技术,掌握无菌操作技术。

二、实验原理土壤是微生物生长和栖息的良好基地。

土壤具有绝大多数微生物生活所需的各种条件,是自然界微生物生长繁殖的良好基地。

因此,土壤是微生物资源的巨大宝库。

牛肉膏蛋白胨培养基是一种应用最广泛和最普通的细菌基础培养基,可用于培养细菌。

链霉素可以抑制细菌和放线菌的生长,对酵母菌和霉菌不起作用。

加入一定量链霉素的培养基可以从混杂的微生物群体中分离出酵母菌和霉菌。

重铬酸钾或苯酚对土壤真菌、细菌有明显的抑制作用,可用于选择分离放线菌。

三、实验器材1、材料:10cm左右深层土壤。

2、培养基:牛肉膏蛋白胨琼脂培养基、马丁氏培养基、高氏Ⅰ号培养基3、其他物品:试管、三角瓶、烧杯、量筒、电子天平、精密pH 试纸、培养皿、高压蒸汽灭菌锅、移液枪、枪头、接种环、酒精灯、链霉素(1万单位/ml) 、10%苯酚、无菌水。

四、实验步骤1、土样采集:取10cm左右深层土壤10g备用。

2、制备土壤稀释液:称取土壤1g,放入有99mL无菌水的三角瓶中,振荡均匀,即为稀释10-2的土壤悬液。

然后进行十倍梯度稀释,依次制备10-3、10-4、10-5、10-6、10-7 稀释度的土壤稀释液。

3、培养基平板制备:按培养基配方各配置牛肉膏蛋白胨琼脂培养基、马丁氏培养基、高氏Ⅰ号培养基各100ml。

灭菌后分别倒3个平板。

(高氏Ⅰ号培养基灭菌前加入10滴10%苯酚;马丁氏培养基倒平板前加入2ml去氧胆酸钠(2%)和0.4ml 1万单位/ml链霉素)4、接种:用无菌吸管吸取0.1ml相应浓度土壤稀释液,以无菌操作技术接种在平板上,涂布均匀。

细菌选用10-4、10-5、10-6 三个稀释度接种于牛肉膏蛋白胨琼脂培养基,放线菌与霉菌选用10-2 、10-3、10-4三个稀释度,分别接种于高氏Ⅰ号培养基、马丁氏培养基。

王--实验二 土壤中微生物的分离与纯化

王--实验二 土壤中微生物的分离与纯化

王--实验二土壤中微生物的分离与纯化
土壤中是存在大量微生物的,包括细菌、真菌、放线菌等,在生态系统中起着重要作用。

微生物的分离与纯化是微生物学研究的重要方法之一,对于了解土壤微生物多样性、功能和应用具有重要意义。

本实验旨在通过土壤样品进行微生物分离和纯化,了解微生物分离技术和分离纯化菌株的方法。

一、实验方法
1.1 实验设备
实验室常用的分离纯化设备有平板计数器、减压灭菌器、烧杯、移液器、离心机等。

其中,平板计数器是精确测定细菌数量的仪器。

实验材料包括培养基、细菌液、土壤样品等。

1.3 分离纯化细菌的步骤
(1)将土壤样品放入离心管内。

(2)在土壤样品中加入生理盐水,摇晃离心管,使土壤样品和生理盐水充分混合。

(3)将混合物在烧杯内振荡。

(4)利用平板计数器精确测定细菌数量。

(5)从混合物中挑出单个菌落,进行菌株分离和纯化。

(6)将菌落移至培养基上,进行培养、观察和记录。

二、实验结果
通过本实验,我们共采集了5个不同土壤样品,进行菌落计数和菌株分离、纯化、培养等处理。

实验结果显示,不同土壤样品中微生物的数量和种类存在差异。

其中,含有腐殖质较多的土壤样品中微生物数量较多,且种类丰富。

2.2 结果分析
土壤微生物数量和种类的差异主要与土壤样品的营养含量及物理化学性质有关。

白灰土、黄土、红壤等含有较高营养含量和较优地理环境的土壤样品中微生物的数量和种类较多,而贫瘠荒芜的土壤样品中微生物数量和种类较少。

此外,氧分压、pH值、盐分等土壤环境因素的差异也会导致土壤中的微生物数量和种类存在差异。

土壤微生物的分离和纯化实验报告

土壤微生物的分离和纯化实验报告

土壤微生物的分离和纯化实验报告
土壤微生物的分离和纯化实验报告
实验目的
本次实验的目的是利用物理、化学和生物性等技术,从原始土壤样品中分离、筛选和纯化微生物株,并对分离出的微生物株进行形态学特征观察和分类鉴定。

实验材料
1. 原始土壤样品
2. 饱和淡盐水
3. 10% (v/v) 的平衡磷酸盐溶液
4. 0.85% (w/v) 的千顷盐溶液
5. 2% (w/v) 的体糖酸钠溶液
6. 氯仿
7. 板藻素
8. 无菌玻璃管
实验步骤
1. 将原始土壤样哮放入摇瓶内,加入淡盐水攪拌均匀,进行粗筛提取。

2. 将1ml混合液放入无菌玻璃管,8次补充磷酸盐溶液悬浮液进行细筛提取。

3. 将细筛提取的悬浮液转移到新的无菌容器中,加入盐溶液攪拌均匀。

4. 加入盐溶液之后,用氯仿消毒,然后加入体糖酸钠溶液留取微生物株悬浮液。

5. 使用板藻素进行单菌株筛选,筛选出单菌株。

6. 将筛选出的单菌株进行形态学特征观察和分类鉴定。

结果
本次实验中,经过物理、化学和生物性等技术操作,成功分离出一株微生物株,并对其进行形态学特征观察和分类鉴定,得出结果:该株微生物属于假单胞菌科,耐盐性,呈菌封形态。

结论
本次实验成功分离纯化出一株微生物株,该株微生物属于假单胞菌科,耐盐性,呈菌封形态。

土壤中微生物的分离与纯化实验报告

土壤中微生物的分离与纯化实验报告

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土壤微生物的分离和纯化实验报告

土壤微生物的分离和纯化实验报告

土壤微生物的分离和纯化实验报告摘要本实验以镍离子作为纯化培养基,利用离子交换介质对细菌进行纯化,以筛选出较为纯化的细菌株。

本实验在4种离子强度(0.05M,0.1M,0.2M,0.3M)条件下,比较发酵性状态(游离镍离子浓度)下,测试样本的细菌含量。

结果表明,在游离镍离子浓度高的条件下,细菌含量会减少,细菌的质量也会更高。

1、引言土壤细菌是土壤中的重要微生物,可以改善土壤的生态环境,增强土壤的抗逆性,从而促进土壤的健康发展。

为了更好地研究土壤微生物的功能,有必要分离和纯化土壤中的细菌,以便进一步的研究。

本实验以镍离子作为纯化培养基,结合离子交换介质,以高纯度细菌取得细菌的纯化株系。

2、实验步骤(1)细菌样本准备:采集土壤样本,进行消毒,在琼脂糖培养基中接种;(2)离子交换介质制备:采用镍离子作为离子交换介质,分别在0.05M,0.1M,0.2M,0.3M离子强度条件下制备离子交换介质;(3)离子交换:将离子介质加入土壤液液分离细菌,离子介质被细菌吸收,细菌的活性被浓缩,可以获得较纯的细菌株,(4)纯化细菌:将细菌纯化物放入培养瓶进行培养,经过重复接种,最终获得纯化细菌株;(5)细菌测定:采用镍离子浓度测定细菌含量,测试样本的细菌含量。

3、实验结果实验结果如表1所示:表 1 细菌含量测定结果游离镍离子浓度(M)t细菌含量0.05t 62.5%0.1t 40.0%0.2t 12.5%0.3t 6.3%4、实验讨论从实验结果可以看出,随着游离镍离子浓度的增加,细菌含量会减少,从而达到较高的纯度。

其原因是离子交换介质中的镍离子与细菌表面的酶活性位点结合,以抑制细菌的活性,使菌体停止生长和繁殖,最终达到纯化株的目的。

5、结论本实验使用镍离子作为纯化培养基,结合离子交换介质,以高纯度细菌取得细菌的纯化株系。

实验结果表明,在游离镍离子浓度高的条件下,细菌含量会减少,细菌的质量也会更高。

微生物大实验 土壤中微生物的分离鉴定

微生物大实验 土壤中微生物的分离鉴定

土壤中微生物的分离与研究一、实验目的1.学习微生物纯系分离、培养方法。

2.掌握划线分离纯化微生物的方法。

3.掌握微生物生理生化反应的研究方法。

4.了解该菌种的生物学特征。

二、实验原理土壤是微生物的良好生境,土壤中有多种类群的微生物,它们对自然界物质的转化和循环起着极为重要的作用,对农业生产和环境保护有着不可忽视的影响。

根际微生物与植物的关系特别密切,不同的土壤和植物对根际微生物产生显著影响,而不同的根际微生物由于其生理活性和代谢产物的不同,也将对土壤肥力和植物营养产生积极或消极的作用。

土壤中微生物的数量因土壤类型、季节、土层深度与层次等不同而异。

一般地说,在土壤表面,由于日光照射及干燥等因素的影响,微生物不易生存,离地表10 cm~30 cm的土层中菌数最多,随土层加深,菌数减少。

土壤中微生物以细菌数量最多,为几百万个/克土至几亿个/克土,有各种生理类群,营养类型多属异养型,鉴别染色多为革兰氏阳性。

放线菌含量为几万个/克土至几百万个/克土,但其生物量不比细菌低,因为菌丝体积较大。

土壤中真菌含量为几千个/克土至几十万个/克土,而其生物量常比细菌的大。

通过土壤微生物的分离与计数及划线纯化,涂布分离长出的单菌落,须经划线纯化,再转斜面培养后保藏备用。

涂布分离细菌的平板,温箱培养1d~2d后,然后挑取各单菌落的部分培养物,在预先制备好的平板上划线纯化。

根据所得纯种菌,依次进行简单染色,革兰氏染色,芽孢染色,确定菌种的形态特征。

然后根据伯杰手册确定菌种的大体范围,有针对性的进行生理生化实验,从而最终确定菌种所在的属。

三、实验材料1.培养基:牛肉膏蛋白胨培养基、PDA培养基、固体油脂培养基、固体淀粉培养基、葡萄糖发酵培养基、乳糖发酵培养基、蛋白胨水培养基、葡萄糖蛋白胨水培养基。

2.染液和试剂:5%孔雀绿水溶液、0.5%番红水溶液、1%结晶紫水溶液、20%硫酸铜水溶液、95%乙醇、卢戈氏碘液、甲基红指示剂、乙醚、吲哚试剂等等。

从土壤中分离纯化微生物实验报告

从土壤中分离纯化微生物实验报告

从土壤中分离纯化微生物实验报告
实验名称:从土壤中分离纯化微生物
实验目的:从土壤中分离纯化微生物,了解微生物的生长与繁殖规律,提高分离技术的实践能力。

实验步骤:
1. 采集土壤样品,从不同深度、不同地点取样,放入消毒过的容器中,避免污染。

2. 准备好细菌培养基,如Luria-Bertani(LB)培养基、营养琼脂培养基等。

3. 取少量土样,加入LB培养基中,振荡混合,放入42℃的恒温培养箱中培养。

4. 24小时后,观察培养基上是否有生长菌落,若有,则取一部分菌落接种到新的LB培养基上再次培养。

5. 重复以上步骤,直至获得单个菌种菌落。

用无菌线圈挑取单一菌落,接种到新的培养基上,进行进一步鉴定。

实验结果:从土壤样品中获得多种不同形态和颜色的微生物。

通过分离和纯化,最终得到单一微生物菌落。

实验结论:从土壤样品中分离纯化微生物能够获得纯净的菌落,为进一步鉴定和研究微生物提供了基础。

同时,这也证明了分离技术在微生物研究中的重要性和必要性。

土壤中微生物的分离

土壤中微生物的分离

微生物学实验报告土壤微生物的分离、培养及鉴定学生学号:学生姓名:专业班级:指导教师:土壤微生物的分离、培养及鉴定摘要:本实验是微生物学综合性实验项目包含了微生物学实验使用的微生物分离和纯化、微生物的选择培养基、培养基的制备、高压蒸汽灭菌、微生物类群的主要培养特征和形态特征、制片染色技术等。

[1]土壤是微生物的良好生境,土壤中有多种类群的微生物,它们对自然界物质的转化和循环起着极为重要的作用,对农业生产和环境保护有着不可忽视的影响。

根际微生物与植物的关系特别密切,不同的土壤和植物对根际微生物产生显著影响,而不同的根际微生物由于其生理活性和代谢产物的不同,也将对土壤肥力和植物营养产生积极或消极的作用。

土壤微生物不仅对土壤的肥力和土壤营养元素的转化起着重要作用,而且对于进入土壤中的农药及其他有机污染物的自净、有毒金属及其化合物在土壤环境中的迁移转化等都起着极为重要的作用。

关键词:土壤微生物,分离鉴定,生理生化,1前言土壤中微生物的数量因土壤类型、季节、土层深度与层次等不同而异。

一般地说,在土壤表面,由于日光照射及干燥等因素的影响,微生物不易生存,离地表10 cm~30 cm 的土层中菌数最多,随土层加深,菌数减少。

土壤是微生物生活的大本营,是寻找和发现有重要应用潜力的微生物的主要菌源。

不同土样中各类微生物数量不同,一般土壤中细菌数量最多,其次为放线菌和霉菌。

一般在较干燥、偏碱性、有机质丰富的土壤中放线菌数量较多。

本实验从土壤中分离细菌、放线菌和霉菌。

为了分离和确保获得某种微生物的单菌落,首先要考虑制备不同稀释度的菌悬液。

各类菌的稀释度因菌源、采集样品的季节、气温条件而异。

其次,应考虑各类微生物的不同特性,避免样品种各类微生物相互干扰。

细菌或放线菌在中性或微碱性环境较多,但细菌比放线菌生长快,分离放线菌时,一般在制备土壤稀释液时添加10%酚或在分离培养基中加相应的抗生素以抑制细菌和霉菌。

培养基是指利用人工方法将适合微生物生长繁殖或积累代谢产物的各种营养物质混合配制而成的营养基质,主要用于微生物的分离、培养、鉴定、菌种保藏等方面。

土壤中微生物的分离与鉴定实验报告

土壤中微生物的分离与鉴定实验报告

Sdu微生物大实验土壤微生物的分离纯化与鉴定【实验目的】1、从各地区土壤中筛选含几丁质酶的真菌及含果胶酶的菌株;2、通过从土壤中分离纯化菌株,掌握培养基的制备与灭菌技术、微生物的筛选、分离纯化方法和无菌操作技术。

3、复习以前学过的各种染色方法,掌握生理生化试验的原理与方法。

4、掌握微生物的鉴定技术、菌种保藏技术。

【实验原理】1、微生物的分离与纯化:从混杂的微生物群体中获得只含有某一种或某一株微生物的过程称为微生物的分离与纯化。

此次实验采取平板分离法,该方法操作简便,普遍用于微生物的分离与纯化,其基本原理主要包括两个方面:a.选择适合于待分离微生物的生长条件或加入某种抑制剂造成只利于待分离微生物生长,而抑制其它微生物生长的环境,从而淘汰大部分不需要的微生物。

b.微生物在固体培养基上生长形成的单个菌落可以是由一个细胞繁殖而成的集合体,因此可通过挑取单菌落而获得一种纯培养。

获得单菌落的方法可通过稀释涂布平板法或平板划线法等技术来完成。

微生物的观察可以用显微镜观察其细胞形态,也可以用肉眼观察其菌落形态。

前者是微生物的显微镜观察技术,后者是微生物的肉眼观察技术。

2、霉菌:霉菌可产生复什分枝的菌丝体,分基内菌丝和气生菌丝,气生菌丝生长到一定阶段分化产生繁殖菌丝,由繁殖菌丝产生孢子。

霉菌菌丝体(尤其是繁殖菌丝)及孢子的形态特征是识别不同种类霉菌的重要依据。

霉菌菌丝和孢子的宽度通常比细菌和放线菌粗得多(约 3-10μm ),常是细菌菌体宽度的几倍至几十倍,因此,用低倍显微镜即可观察。

观察霉菌的形态有多种方法,常用的有直接制片观察法、载玻片培养观察法和玻璃培养观察法三种方法,本实验采用载玻片培养观察法。

3、果胶酶筛选培养基:配制以果胶为唯一碳源的筛选培养基,在该培养基上,只有能分解利用果胶的菌株才能够生长,依此来从土壤中筛选出能够产果胶酶的菌株。

刚果红(Congo Red,简称CR)是一种染料,它可与果胶形成红色复合物,但并不和果胶水解后的产物发生这种显色反应,在含有果胶的培养基中加入刚果红时,刚果红能与培养基中的果胶形成红色复合物。

从土壤中分离纯化微生物

从土壤中分离纯化微生物
说明饭前洗手,饭后刷牙的重要性; 以上用报纸包好倒置350C培养箱里培养48小时观察结果;
培养 实验步骤——从土壤中分离微生物
若成片菌苔大小不到培养皿的一半,其余一半分布均匀,将此一半计数*2;
用稀释涂布平板法或稀释后平板划线分离,纯化;
将牛肉蛋白胨培养基平板倒置于37 C温箱 将牛肉蛋白胨培养基平板倒置于370C温箱中培养24h;
实验步骤——周围环境中微生物的观察
0
中培养24h;统计所长出的菌落数; 然后同样方法,配置成稀释度为10-4,10-5,10-6的土壤溶液;
用稀释涂布平板法或稀释后平板划线分离,纯化;
实验仪器,材料和用具
实验材料:
菌源:土样10g;
培养基:
牛肉膏蛋白胨培养基;
实验仪器:
取液器(5000 ul, 1000ul, 200ul 个一支); 培养箱,摇床
实验仪器,材料和用具
实验试剂:
1N NaOH, 1N HCl, 0.9% 无菌生理盐水;
1N NaOH, 1N HCl, 有较大片菌苔生长时ห้องสมุดไป่ตู้弃用,以无片菌苔生长的平皿计数;
挑菌(不做) 然后同样方法,配置成稀释度为10-4,10-5,10-6的土壤溶液;
选择平均菌落数在30~300间的平板: 选择平均菌落数在30~300间的平板:
取液器(5000 ul, 1000ul, 200ul 个一支);
只有一个符合此范围时,以该平均菌落数乘稀 释倍数即为该样品中微生物总数;
有两个在30~300间时,按两者菌落总数比值决 定:比值小于2,取平均;比值大于2,取较少的菌落 总数;
实验步骤——从土壤中分离微生物
菌落计数
所有菌落数均大于300,取稀释度最高的平 均菌落数乘稀释倍数;

土壤微生物的分离、提取与纯化研究进展

土壤微生物的分离、提取与纯化研究进展

5 引

: 土壤微生物的提取 : ; 5 土壤的分散 最大限度的分散土壤是从土壤中分离提取微生物的关 键( 通常采用物理或化学方法, 或是二者相结合的方法来达 到微生物与土粒分离的目的( 常用的物理分散技术是使用玻 璃珠与 土 壤 悬 液 一 起 振 荡, 或使用韦林氏搅拌器 (1 2 D : 3 7 ) 搅拌分散, 或是使用超声波分散土壤团聚体( 物理机 J G 6 3 F 6 D 械分散常与化学分散法相结合, 通过加入化学分散剂促进微
[ ,] 生物与土粒的分离( 最常用的分散剂为 $ ( " [ 焦磷酸钠 &# , [ ] [* ] ! $ 其它分散剂还有 1 、 生 : 3 C D 2 F 4 \ S D : 4缓冲液 " 7 @盐溶液 、 [ , ] [ ] [ ] [ ] # ! # " & " " % 、 六偏磷酸钠 、胆酸钠 、 纯水 ;也有加入 理盐水 [ , , , ] & ! $ " " " * ) 螯合剂和洗涤剂的 (表! (
[ ] " " 能 尽管测定土壤微生物生物量的熏蒸培养 (B ) 或熏蒸 ( .
提取 法 (B 能对土壤微生物总量进行较为精确的测 W)
[ , ] ! * & A 定 , 但迄今尚不能直接提供土壤微生物群落数量组成
的有关信息( 因此, 应用物理或化学方法从土壤中提取与纯 化具有代表性的微生物, 对于微生物生态学上研究土壤微生 物的群落结构组成, 并通过同位素标记的方法研究 O 、 、 /、 P +等元素在土壤微生物不同群落中的转化动力学具有重要 意义( 同时, 对于细胞生理学和分子生物学等研究领域亦具

土壤微生物的分离和纯化实验报告

土壤微生物的分离和纯化实验报告

土壤微生物的分离和纯化实验报告
土壤微生物是土壤中最为丰富的生物群体之一,它们在土壤中扮演着重要的角色,如分解有机物质、固氮、矿物质转化等。

因此,对土壤微生物的研究具有重要的意义。

本文将介绍土壤微生物的分离和纯化实验。

一、实验目的
1.了解土壤微生物的分离和纯化方法;
2.掌握土壤微生物的培养技术;
3.观察土壤微生物的形态特征。

二、实验步骤
1.取一定量的土壤样品,加入适量的生理盐水中,摇匀后过滤;
2.将过滤液分别接种在不同的培养基上,如营养琼脂、马铃薯葡萄糖琼脂等;
3.将培养皿放置在恒温培养箱中,控制温度、湿度等条件;
4.观察培养皿中的微生物生长情况,挑选单一菌落进行分离和纯化;
5.将单一菌落接种在新的培养基上,重复以上步骤,直至获得纯种菌株。

三、实验结果
经过培养和观察,我们成功地分离出了多种土壤微生物,如放线菌、链霉菌、芽孢杆菌等。

其中,放线菌的形态特征为菌落呈灰白色,表面有细小的颗粒状物质,形似细长的线条;链霉菌的形态特征为菌落呈灰白色,表面有细小的颗粒状物质,形似细长的链条;芽孢杆菌的形态特征为菌落呈白色,表面有光滑的质地,形似细长的杆状物质。

四、实验结论
通过本次实验,我们了解了土壤微生物的分离和纯化方法,掌握了土壤微生物的培养技术,观察了土壤微生物的形态特征。

这些都为我们深入研究土壤微生物的生态学、生理学、遗传学等方面提供了基础。

同时,我们也认识到了土壤微生物在土壤生态系统中的重要作用,应该加强对其研究和保护。

土壤微生物的分离和纯化实验

土壤微生物的分离和纯化实验

实验八土壤微生物的分离和纯化一、目的1.了解从土壤中分离与纯化微生物的基本原理及方法。

2.掌握几种常用的分离的基本操作技术。

二、原理在自然界中,土壤是微生物生活中的最适宜的环境,土壤中存在大量的微生物,但土壤中的微生物是各种不同种类微生物的混合体,因此,为了研究某一微生物的特性,或者要大量地培养和利用某种微生物,必须把它们从这些混杂的微生物群中分离出来。

从而获得某一菌株的纯培养。

这种获得纯培养的方法称之为微生物的分离和纯化三、器材1.牛肉膏蛋白胨琼脂培养基、高氏l号培养基、马铃薯蔗糖琼脂培养基。

2.盛有100毫升无菌水的三角瓶,9毫升无菌水的试管,无菌吸管,无菌玻璃涂抹棒,10%的酚液,25%的乳酸,土样,接种环,标签。

四、方法(一)涂抹平板分离法1.制备土壤稀释液称取土样10克,放入装有玻璃珠和100毫升无菌水的三角瓶中,振摇15—20分钟,使土与水充分混合,将菌分散,静止片刻,用吸管从中吸取1毫升土壤悬液注人盛有9毫升无菌水试管中,吹吸三次,并振摇使之充分混匀,然后再吸取1毫升注入另一支盛有9毫升无菌水的试管中,以此类推制成10-1、10-2、l0-3、10-4、l0-5……的各种稀释度的土壤悬液。

2.倒平板将牛肉膏蛋白胨培养基,高氏1号培养基,马铃薯蔗糖培养基溶化。

待冷至50—60℃时,在高氏l号培养基中加入10%酚2滴,在马铃薯蔗糖培养基中加入25%乳酸2滴,然后分别倒平板,每支培养基倒一皿(用右手持盛培养基的试管,左手拨出棉花塞,试管口在火焰上灭菌,然后左手将培养皿在火焰附近打开少许,迅速注入培养基,加盖后轻轻摇动培养皿使培养基均匀分布,平放在桌面上,待凝后即成平板。

(见图18)。

3.涂抹将上述每种培养基平板标上10-3、10-4、10-5稀释度,然后用无菌吸管分别从10-5、10-4、10-3稀释度的试管中吸取土壤悬液,每一平板注入0.2毫升,再用灭菌玻璃涂抹刮棒在培养基表面轻轻地涂布均匀,静止5分钟。

土壤分离微生物实验报告

土壤分离微生物实验报告

土壤分离微生物实验报告大学土壤微生物分离实验报告从土壤中分离纯化培养微生物并作初步观察鉴定【摘要】利用分离纯化微生物的基本操作技术对土壤中的微生物进行分离与纯化,根据细菌在选择培养基的存活情况,确定该菌种的固氮解磷解钾属性。

【关键词】细菌芽孢杆菌培养基、选择培养基的配制高压蒸汽灭菌前言:在自然条件下,微生物常常在各种生态系统中群居杂聚。

群落是不同种类微物的混和体。

为了生产和科研的需要,人们往往需要从自然界混杂的微生物群体中分离出具有特殊功能的纯种微生物;或重新分离被其他微生物污染或因自发突变而丧失原有优良性状的菌株;或通过诱变及遗传改造后选出优良性状的突变株及重组株。

这种获得单一菌株纯培养的方法称为微生物的分离纯化技术。

分离纯化技术主要由采集样品、富集培养、纯种分离和性能测定等几个基本环节组成。

实验目的:1、学习从土壤中分离、纯化微生物的原理与方法。

2、学习、掌握微生物的鉴定方法。

3、对提取的土样进行微生物选择培养、分离、纯化,根据菌落的存活状况来判断未知菌的属性。

实验原理:菌种来源:选择无机磷农药含量较高的土壤,有机磷农药化工厂旁边的土壤和排污口区的污水.培养基的选取:五组选择培养基,分别以辛硫磷、甲胺磷、敌敌畏、草甘膦及五种有机磷农药混合为微生物生长的唯一氮源磷源。

分离纯化微生物:稀释倒平板法、涂布平板法、稀释摇管法、平板划线分离法。

此次实验采取的是平板分离法,该方法操作简便,普遍用于微生物的分离与纯化,其基本原理主要包括两个方面:(一)选择适合于待分离微生物的生长条件或加入某种抑制剂造成只利于待分离微生物生长,而抑制其它微生物生长的环境,从而淘汰大部分不需要的微生物。

(二)微生物在固体培养基上生长形成的单个菌落可以是由一个细胞繁殖而成的集合体,因此可通过挑取单菌落而获得一种纯培养。

获得单菌落的方法可通过稀释涂布平板法或平板划线法等技术来完成。

微生物的观察可以用显微镜观察其细胞形态,也可以用肉眼观察其菌落形态。

土壤中微生物的分离与纯化

土壤中微生物的分离与纯化

实验五土壤中的四类微生物的分离与纯化(一)实验目的1.明确培养基的配制原理,并通过对微生物培养基的配制,掌握配制培养基的一般方法和步骤2.掌握按照研究需要选取不同的环境以找到自己需要的目标菌株的基本方法,学习分离纯化微生物的基本操作技术。

进一步熟练和掌握微生物无菌操作技术;掌握微生物培养方法以及接种技术。

3.学习并掌握放线菌、霉菌、酵母菌形态结构的方法。

4.加深理解放线菌、霉菌、酵母菌形态结构特征(二)实验原理1.土壤中存在微生物土壤是微生物生活的大本营,在这里生活的微生物无论是数量和种类都是极其多样的,因此,土壤是我们开发利用微生物资源的重要基地,可以从其中分离,纯化到许多有用的菌株。

土壤中含有多种多样的有机和无机营养物,所以被称为微生物生长和繁殖的天然培养基。

土壤的环境条件十分复杂多变,其中的微生物种类也极其丰富,1g干的农田土壤中含有几百万个细菌,数十万真菌孢子和数万个原生动物和藻类。

2.富集培养指从微生物混合群开始,对特定种的数量比例不断增高而引向纯培养的一种培养方法。

在适于目标微生物而不适于其他微生物生长的条件下继续培养,则目标微生物将成为优势种而得到纯培养。

3.微生物对营养物质的需求不同微生物需要各种各样的营养物质,其功能主要有:提供能量,提供合成原料,调节代谢活动进行,提供适宜代谢环境。

虽然微生物对各种营养物质需求不同,但是都离不开碳源,氮源,能源,生长因子,无机盐,水。

除水外,碳源所需的量最大,其次是氮源。

在自养微生物中,能源是日光能或还原态无机物,在异养微生物中,能源就是碳源。

在无机盐中,磷,硫需量稍大,钾,镁次之。

其他元素和生长因子的需要量一般很少。

4.微生物的生长速度不同一个微生物细胞在合适的外界环境条件下,会不断地吸收营养物质,并按其自身的代谢方式不断进行新陈代谢。

如果同化作用的速度超过异化作用,则其原生质的总量就不断增加,于是出现了个体细胞的生长。

在微生物的研究和应用中,只有群体的生长才有意义。

微生物学实验:实验五(二)土壤中微生物的分离纯化及观察

微生物学实验:实验五(二)土壤中微生物的分离纯化及观察

实验器材 ➢ 菌种:大肠杆菌菌悬液 ➢ 培养基:牛肉膏蛋白胨培养基 ➢ 仪器或其他用具:1mL无菌吸管,无菌平皿,盛有
4.5mL无菌水的试管等。 两种计数方法 ➢ 倾注法(本次实验) ➢ 涂布法
操作步骤(全组完成)
1.编号:取无菌平皿9个,分别表明10-4、10-5、10-6(稀 释度)各三套。另取无菌水6支,依次标明10-1、10-2、 10-3、10-4、10-5、 10-6。七支无菌吸管也依次编号。
放菌液时吸管尖不要碰到液面,即每一支吸管只接触一个稀释度。
10-1
10-2 10-3 10-4 10-5 0.5ml 0.5ml 0.5ml
0.5ml
各4.5ml 无菌水
各取稀释样0.1ml涂布
10-2 10-3
10-4
高氏Ⅰ号平板 马丁氏平板 牛肉膏平板
10-5
4、涂布
5、培养 将高氏Ⅰ号平板、马丁氏平板倒
一、稀释涂布平板法(全组完成)
1、编号:取无菌平皿18个。另取无菌水4支,依 次标明10-2、10-3、10-4、10-5。
2、倒平板:分别将三种培养基溶化后,冷却至 55~60℃时,每种培养基各倒6皿,标注培养基 名称。其中,高氏Ⅰ号培养基在倒入前需先添加 10滴10%的苯酚。
3、制备土壤稀释液
么? ➢ 当你的平板上长出的菌落不是均匀分散的而是集中在
一起时,你认为问题出在哪里? ➢ 用倾注法和涂布法计数,其平板上长出的菌落有何不
同?为什么要培养较长时间(48h)后观察结果?
倾注法 涂布法
倒平板
a 皿加法 b手持法
细菌
霉菌
放线菌
实验五
土壤中微生物的分离 纯化与活菌计数
(一)微生物的分离纯化及观察

土壤微生物的分离纯化与鉴定

土壤微生物的分离纯化与鉴定

微生物学实验报告题目:土壤微生物的分离纯化与鉴定姓名:学号:年级班级:组别:同组者:时间:一、目的要求1.通过从土壤中分离纯化细菌,掌握培养基的制备与灭菌技术、微生物的分离纯化方法和无菌操作技术。

2.掌握常用的微生物鉴定方法,复习以前学过的各种染色方法,掌握生理生化试验的原理与方法。

3.掌握微生物的鉴定技术、菌种保藏技术。

二、基本原理1.培养基的配制与灭菌。

培养基是人工配制的适合微生物生长繁殖或积累代谢产物的营养基质,用以培养、分离、鉴定、保存各种微生物或积累代谢产物。

在自然界中,微生物种类繁多,营养类型多样,加之实验和研究的目的不同,所以培养基的种类很多。

但是,不同种类的培养基中,一般应含有水分、碳源、氮源、能源、无机盐、生长因素等。

不同微生物对 pH 要求不一样,霉菌和酵母的培养基的 pH 一般是偏酸性的,而细菌和放线菌的培养基的 pH 一般为中性或微碱性的 ( 嗜碱细菌和嗜酸细菌例外 ) 。

所以配制培养基时,都要根据不同微生物的要求将培养基的 pH 调到合适的范围。

此外,由于配制培养的各类营养物质和容器等含有各种微生物,因此,已配制好的培养基必须立即灭菌,如果来不及灭菌,应暂存冰箱内,以防止其中的微生物生长繁殖而消耗养分和改变培养的酸碱度所带来不利的影响。

2.微生物的分离与纯化。

自然界中各种微生物混杂生活在一起,要研究某种微生物的特性,首先须使该微生物处于纯培养状态。

从混杂的微生物群体中获得只含有某一株微生物的过程称为微生物的分离与纯化。

土壤是微生物生活的大本营,可以从中分离到很多有价值的菌株。

本实验将采用平板划线分离法。

3.分离菌株的鉴定。

微生物的分类鉴定是微生物的重要内容,一般从菌落特征、细菌特点及生理生化、分子生物学等方面进行鉴定。

各种细菌在代谢类型上表现了很大的差异。

不同的细菌分解大分子碳水化合物、蛋白质和脂肪的能力不同,所能发酵的类型和最终产物也不一样。

不同细菌对营养的要求不同也说明了它们有不同的合成能力。

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从土壤中分离和纯化细菌、放线菌(华南师范大学生命科学学院 10生物技术与工程2班第3组)摘要:土壤是微生物生活的大本营,是寻找有重要应用潜力的微生物的主要菌源。

通过采用无菌操作技术,先用稀释法制备土壤的菌悬液,然后结合选择培养基用平板划线法分离出纯菌株,最后用斜面接种的方法对菌株进行保存。

通过观察和描述培养特征对菌株所属类群进行初步鉴定,对放线菌进行镜检,对细菌进行革兰氏染色方法观察,以及进行细菌最适合pH生长的初步研究。

观察到放线菌的孢子结构;得知该细菌为革兰氏阴性菌,且研究得知该细菌最适合生长的pH是7.48。

关键词:土壤;分离;纯化;放线菌;细菌;pHSeparate and purify the bacteria andactinomycetes from the soilLiu GuoXing,Lin Qiongfen, Mo Dan(Biological technology and engineering, College of Biological Science , South ChinaNormal University )Abstract:The soil is the microorganism life supreme headquarters, and is the main fungus source to seek the important application potential microorganism. Through the aseptic technique, uses the dilution method preparation soil the fungus to hang the fluid first, then the union choice culture medium separates the pure strain with the plate streaking law, finally uses the incline vaccination the method to carry on the preservation to the strain. Through the observation and describe training characteristics on the preliminary appraisal belongs strains groups, actinomyces on anti-bma bacteria to gram stain method observation, and the most suitable for the growth of bacteria pH preliminary study. We have observed the actinomycetes’spore structure and known this bacterium is a kind of the Gram-negative bacteria. Besides, through the research we have known that the most suitable pH for the bacterium to grow is 7.48.Key words:soil; separation; purification; actinomycetes; bacteria; pH引言土壤是微生物生活的大本营,不同土壤中各类微生物的数量不同,一般土壤中细菌数量最多,其次是放线菌和霉菌。

其中,大多数细菌的最适宜pH为6.5-7.5,放线菌一般生活在较干燥、偏碱性、有机质丰富的土壤中。

要想从土壤中获得某种微生物的纯培养,可以采用平板划线法进行分离纯化,借助沾有菌悬液的接种环在平板表面多方向连续划线,使混杂的微生物细胞在平板表面分散,经培养得到分散成为由单个微生物细胞繁殖而成的菌落,从而达到纯化目的。

利用选择培养基抑制其他菌的生长而使某种菌充分生长的特点,结合牛肉膏蛋白胨培养基和高氏1号培养基可分别选择出细菌和放线菌。

通过该实验学习从样品中分离不同微生物的方法,掌握梯度稀释法、平板划线法和斜面接种等方面的无菌操作技术,熟悉对微生物观察与研究的方法,如影印法观察放线菌,革兰氏染色法观察细菌,分光光度计计数法研究细菌的理化性质(pH)等。

微生物与人类息息相关,它对人类的假定贡献和无法估量的开发潜力。

为我们展开了广阔的应用前景,所以研究微生物的生命活动有着重要意义,其中pH与微生物的生命活动有密切联系[1]。

为了更好地为人类的生活和健康做出更大的贡献,将进一步探究 p H 对微生物的影响。

为了更好地为人类的生活和健康做出更大的贡献,将进一步探究pH对微生物的影响。

1.材料与方法1.1材料研究材料:土壤(于实验前采集后马上进行稀释,制备菌悬液)1.2方法1.2.1梯度稀释法(稀释)A.称取土样2.00g,在火焰旁加到一个盛有48ml无菌水并装有玻璃珠的100ml锥形瓶中。

振荡20-30min,使样品中的菌体、芽孢或孢子均匀分散。

静止20-30s,标记为编号1。

B.按照一定的梯度进行稀释(该实验采用20倍梯度)①取3个各装有9.5ml无菌水的25ml锥形瓶,分别按照顺序标记好2、3、4.②在无菌操作台上,用微量移液器从1号锥形瓶中移取0.5ml土壤悬液加到2号锥形瓶中,摇匀后,再用微量移液器从2号锥形瓶中移取0.5ml土壤悬液加到3号锥形瓶中,依此类推,分别将土壤悬液稀释20、400、8000倍③然后将4个锥形瓶的悬液分别涂布在已经制备好的牛肉膏蛋白胨平板和高氏1号平板上(分别编号1-4),置于28度培养箱中培养(细菌培养2d,放线菌培养3d)1.2.2 平板划线法(纯化)采用平板划线法的分区划线法。

将平板分四个区域,其中第四区是单菌落的主要分布区域。

先将接种环沾取少量菌在平板第一区划若干平行线,将接种环上多余菌体烧死。

平板转动60-70º后,再以第一区划线的菌体为菌源,由第一区向第二区作第二次的平行划线,依次在第三区和第四区划线。

1.2.3斜面接种技术(保存)取接种环→接种环冷却、取菌→接种→培养1.2.4影印法(观察)在最后划线的培养基用小刀小心地铲一个单菌落,翻过压印在载玻片中央,小心地移开菌落,载玻片中央就留下了菌落印痕。

在火焰下固定,滴一滴石炭酸复红染色液染1分钟,水洗晾干,至于高倍镜或油镜下观察。

1.2.5革兰氏染色法(观察)1.2.5.1制片细菌涂片→固定→结晶紫初染→碘液媒染→乙醇脱色→番红复染→观察1.2.5.2镜检将染色后的载玻片,先用低倍镜找到目的物,在用高倍镜观察,最后滴加一小滴液体石蜡油与涂片处,用油镜进行观察,观察细菌的形状和排列方式,以及记录颜色结果。

1.2.6分光光度计计数法,浊度法(测量)①不同pH的菌液的培养在已经培养好的PH为7的锥形瓶中分别吸取0.5ml的菌液于其他各PH梯度的液体培养基(已标记为pH6、pH6.5、pH7、pH7.5、pH8)中,置于37℃的摇床中培养32h,转速为180r/min。

②测量光密度值(OD)先从摇床中取出观察各菌的生长情况,并分别置于比色杯中测定600nm的OD值。

分别用各个浓度所对应的试管中的空白培养基做对照③记录数据后,以光密度(OD)值为纵坐标,pH值为横坐标,绘制标准曲线。

1.结果与分析2.1平板划线法纯化结果2.1.1放线菌平板第二次划线后基本可以纯化出较高纯度的放线菌单菌落,从图中可以看出,培养基上的放线菌纯度较高,大小形状也较相近,基本没有杂菌的存在。

放线菌的菌落较小,质地不均匀,中间厚边缘薄,表面呈粉末状(覆盖有灰色的孢子),干燥、较厚,不透明,与培养基结合紧密,菌落正反面、中心与边缘颜色不一致,具有泥腥味。

镜检时看到的大多为散落的放线菌孢子,较难看到放线菌的细胞结构。

2.1.2细菌平板图1:放线菌第二次划线(正面) 图2:放线菌第二次划线(反面)第二次划线后基本可以纯化出较高纯度的细菌单菌落,从图中可以看出,单菌落普遍都较小,表面较光滑、湿润、粘稠,质地均匀,透明,正反面颜色一致,菌落与培养基结合不紧密,具有臭味。

2.1.3最终斜面保存图5:分离纯化后最终获得的细菌斜面(左)及放线菌斜面(右)最后将于培养箱28℃恒温培养的斜面取出,进行保存。

如图细菌无杂色,放线菌培养至孢子成熟。

2.2影印法观察放线菌图6:放线菌影印法观察(10×40)视野中主要看到的是孢子结构,基本上看不到完整的气生菌丝结构,孢子形状为圆形,成熟的分生孢子呈现黑色。

2.3革兰氏染色法观察细菌图7:细菌的革兰氏染色(10×40)革兰氏染色后镜检发现该细菌被染成了红色,说明该细菌为革兰氏阴性菌。

革兰氏阴性菌的细胞壁中含有较多的脂类物质,而肽聚糖含量较少,交联度又低,故用脱色剂脱色时,溶解了脂类物质,增加了细胞壁的通透性,使初染后的结晶紫和碘的复合物容易渗出,结晶紫细菌细胞被脱色,经复染后,就染上复染液的颜色,呈红色。

而革兰氏阳性细菌细胞壁中肽聚糖的含量高且交联度高,脂类含量少,经酒精或丙酮脱色时,肽聚糖层的孔径变小,通透性变低,因此细胞仍保留初染时的紫颜色。

2.4分光光度计计数法测量细菌最适宜生长pH2.4.1预实验(波长600nm ):图8:预实验OD 值随pH 变化折线图预实验OD值随pH变化折线图012345 3.02 5.977.068.0411pHOD值平均OD值实验OD值随pH变化折线图123455.976.537.067.488.04pH OD值平均OD值从预实验可以推测该细菌的最适生长pH 介于7与8之间,因此可在pH7、8之间取几个梯度做进一步的实验,寻找该细菌生长的最适pH 。

2.4.2实验(波长600nm):图9:实验OD 值随pH 变化折线图在一定范围内,菌悬液中的细胞浓度与光吸收值(OD)成正比,菌数越多,OD 越大。

因此,借助于分光光度计,在一定波长下测定菌悬液的OD ,就可反应出菌液的浓度。

菌液浓度越大,说明该菌在这个pH 值中生长的越好,则越接近该菌的最适pH 值。

本实验测定细胞培养物在600nm 光吸收,从预实验中得出pH 在7.00左右的时候该菌生长得最好。

再把pH 的梯度范围缩小,同样得到pH 值为7.48(接近7.50)时,OD 值最高,即在该实验中pH 值7.48是细菌的最适pH 值,因此可以知道该细菌的最适pH 值在7.48左右。

3.讨论3.1实验的结论3.1.1土壤是微生物生活的大本营,是寻找有重要应用潜力的微生物的主要菌源,能够分离出细菌,放线菌等常见微生物。

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