血清蛋白质醋酸纤维薄膜电泳实验报告
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
血清蛋白质醋酸纤维薄膜电泳实验报告
实验名称血清蛋白醋酸纤维薄膜电泳及其定量
实验日期实验地点
合作者指导老师
评分教师签名批改日期
一、实验目的
1.1.学习醋酸纤维薄膜电泳的基本原理和操作方法;
1.2.了解电泳技术的一般原理;
1.3.掌握电泳分离血清蛋白质及其定性定量的方法。
二、实验原理
2.1.血清中各种蛋白质的等电点不同,一般都低于pH7.4。
它们在pH8.6的缓冲液中均解离带负电荷,在电场中向正极移动。
由于血清中各种蛋白质分子大小、形状及所带的电荷量不同,在醋酸纤维素薄膜上电泳的速度也不同。
因此可以将它们分离为清蛋白(Albumin)、α1-球蛋白、α2-球蛋白、β-球蛋白、γ-球蛋白5条区带。
2.2.血清中不同蛋白质的等电点、分子量及含量
血清蛋白质等电点分子量占总蛋白的%
清蛋白 4.64 69,000 57~72
α1-球蛋白 5.06 200,000 2~5
α2-球蛋白 5.06 300,000 4~9
β-球蛋白 5.12 90,000~150,000 6.5~12
γ-球蛋白 6.85~7.3 156,000~950,000 12~20
缓冲液pH=8.6,pI<pH。
血清蛋白带负电荷,在电场中向正极移动。
预测血清蛋白电泳区带图
血清蛋白依次分为清蛋白,球蛋白的α1、α2、β、γ五个区带
2.3.①膜条经过氨基黑10B染色后显出清晰色带;②各色带蛋白质含量与染料结合量基本成正比;③可将各色带剪开,分别溶于碱性溶液中;④用分光光度法计算各种蛋白质的百分数。
三、材料与方法:
3.1.实验材料:
3.1.1.实验试剂:①样品:健康人血清(新鲜、无溶血);②巴比妥-巴比妥钠缓冲液(pH8.6,离子强度0.06mol/L);③氨基黑10B染色液;④漂洗液;⑤洗脱液:0.4mol/NaOH溶液。
3.1.2.实验器材:①V-1100分光光度计(×1);②恒温水浴箱(×1);③试管(×6)、试管架(×1);④1000μL加样枪(×1)、加样枪架(×1);⑤醋酸纤维薄膜(2cm*8cm,厚度120μm);⑥培养皿(×5);⑦点样器或载玻片(×1);⑧平头镊子(×2);⑨剪刀(×1);⑩电泳槽(×1);⑪直流稳压电泳仪(×1)
3.2.实验步骤
1.准备与点样:①取2×8cm的膜条;②亚光面距一端1.5cm处取一点样线;③充分浸透在巴比妥缓冲液中;④取出膜条,用滤纸吸去多余的缓冲液;⑤点样器下端粘上
样品标记 薄层血清;⑥垂直点样。
注意:点样线尽量点得细窄而均匀。
2.电泳:①放置膜条(点样面向下,点样端置于阴极);②膜条贴紧滤纸,拉直膜条;③平衡五分钟;④通电(调节电压120v/电流,时间:45~60 min );③关闭电源。
电泳槽解剖图:
3.染色、漂洗:①通电完毕;②取出膜条;③浸于染色液(氨基黑10B )中,5min ;④取出膜条,浸于漂洗液;⑤反复漂洗2次,直至漂净;⑥滤纸吸干薄膜。
8cm m 2cm 点样线 点样区 1.5cm
(粗面) 小组标记
—
+
4.定量(洗脱比色法)(因实验室等原因,未做)
四、结果与讨论:
图一染色后的膜条
4.1.结果分析
本次实验得到的图谱只能够清晰的看出清蛋白和γ-球蛋白的区带,其余无法区别。
原因可能如下:
①醋酸纤维薄膜质量不足
②薄膜过湿,样品扩散迅速,导致样品分离不成区带。
③点样太少,区带显色不明显。
④电泳时间不足。
⑤薄膜在缓冲液中浸泡的时间不足。
⑤取出电泳后的薄膜过程中曾不慎将薄膜掉到地上。
⑥染色时,因为现场混乱,可能导致醋酸纤维薄膜不是一张一张放入染色液的,在染色固定前,薄膜与薄膜之间重叠,造成薄膜上还未固定的血清蛋白彼此粘连。
4.2.课后思考题
1.电泳时,点样端置于电场的正极还是负极?为什么?
答:点样端置于电场的负极。
因为人体血清的蛋白质会因电槽中溶质呈碱性而带负电,要成功分离出各类各类蛋白质,理应将点样端置于电场的负极。
2.电泳后各区带应明显分开,如分离不清或不整齐,试分析其可能存在的原因。
答:①醋酸纤维薄膜质量不足;②薄膜过湿,样品扩散迅速,导致样品分离不成区带;
③点样太少,区带显色不明显;④染色时,醋酸纤维薄膜不是一张一张放入染色液的,在染色固定前,薄膜与薄膜之间重叠,造成薄膜上还未固定的血清蛋白彼此粘连。
⑤电泳时电压,电流或电泳过小或时间不够,造成区带未分离。