转基因小鼠的方法概述

合集下载

转基因小鼠的饲养

转基因小鼠的饲养

转基因小鼠的饲养用于建系和种系保存的转基因小鼠一般饲养于SPF级环境中。

饲养室内的温度保持在22-28℃,相对湿度维持在40%-60%,饲养盒内温度一般比外界环境高1~2℃,湿度高5~10%。

昼夜明暗交替时间为12/12;噪音<60dB, ;氨浓度不超过20ppm,换气次数应达到10~20次/小时;饲养室内每天经紫外灯照射两小时杀菌,定期用消毒水进行清洁消毒。

饲料:采用60Coγ射线灭菌的无菌全价营养颗粒料,并可定时喂少量葵花籽。

成年转基因鼠采食量一般为3~7克/天,转基因幼鼠一般为1~3克/天,应每周添料3~4次,在鼠笼的料斗内应经常有足够量的新鲜干燥饲料,在转基因小鼠大群饲养中,每周应固定两天添加饲料,其它时间可根据情况随时注意添加。

饮用水:为纯净水装瓶后高压灭菌,每周换水2~3次,成年鼠饮水量一般为4~7ml/天,要保证饮水的连续不断,应常检查瓶塞,防止瓶塞漏水造成动物溺死或饮水管堵塞使小鼠脱水死亡。

垫料:使用经高压灭菌的混合木屑或者玉米芯;鼠笼采用M5型小鼠饲养笼,高压灭菌。

鼠笼和垫料每周更换两次。

各种操作均在超净工作台内按照无菌操作进行。

日常登记和观察:每天登记各环境数据和小鼠状况,密切观察小鼠饮食、活动及全身情况,若有发现异常状况时需登记检查原因。

外观判断小鼠健康的标准是:①食欲旺盛;②眼睛有神,反应敏捷;③体毛光滑,肌肉丰满,活动有力;④身无伤痕,尾不弯曲,天然孔腔无分泌物,无畸形;⑤粪便黑色呈麦粒状。

即将产崽或刚产崽的的转基因鼠尽量不去打扰,以免刺激到母鼠,可提前加足水和饲料;产崽前可在笼盒内添加一定量的棉絮供其筑窝用。

对于即将运用于实验的转基因小鼠,如无特殊体质缺陷(如营养缺陷型,免疫缺陷型等),可适用普通小鼠的饲养标准。

转基因小鼠制备方法

转基因小鼠制备方法

转基因小鼠制备方法一、引言转基因小鼠是指通过基因工程技术将外源基因导入小鼠基因组中,使其表达或缺乏特定基因,从而研究基因功能、疾病模型等方面的动物模型。

转基因小鼠制备方法是实现转基因小鼠研究的重要步骤之一,本文将详细介绍转基因小鼠制备的一般步骤和常用技术。

二、转基因小鼠制备的一般步骤1. 选择目标基因和载体转基因小鼠制备的第一步是选择目标基因和适当的载体。

目标基因可以是外源基因、特定基因的突变体或基因敲除。

载体通常是带有选择标记(如抗生素抗性基因)和目标基因的质粒。

2. DNA构建在DNA构建过程中,首先需要将目标基因和选择标记基因插入到载体的适当位点上。

这可以通过限制性内切酶切割和连接、PCR扩增等方法实现。

构建完成后,需要进行酶切鉴定和测序确认。

3. 体外培养胚胎干细胞(ES细胞)转基因小鼠制备中常用的方法是利用ES细胞技术。

首先,从小鼠胚胎中获得内源性干细胞(ES细胞),并进行体外培养。

然后,将构建好的转基因载体导入ES细胞中,通过抗生素筛选获得带有目标基因的转基因ES细胞克隆。

4. 转基因小鼠制备转基因ES细胞的制备完成后,可以进行转基因小鼠的制备。

这一步骤通常有两种方法:内源性重组和外源性重组。

内源性重组是将转基因ES细胞注射到小鼠早期胚胎中,使其整合到小鼠的生殖细胞中,从而获得转基因小鼠。

外源性重组是将转基因ES细胞直接注射到小鼠的细胞团中,形成转基因胚胎,再将转基因胚胎移植到雌性小鼠子宫中,使其发育成为转基因小鼠。

5. 转基因小鼠鉴定转基因小鼠制备完成后,需要对其进行鉴定。

通常采用PCR、Southern blotting、Western blotting等分子生物学方法,检测转基因小鼠是否成功表达目标基因。

三、常用技术1. CRISPR/Cas9技术CRISPR/Cas9是一种新兴的基因编辑技术,可以实现高效、精确地对基因组进行编辑。

通过CRISPR/Cas9技术,可以直接在小鼠胚胎中进行基因编辑,从而制备转基因小鼠。

培养转基因小鼠的原理

培养转基因小鼠的原理

培养转基因小鼠的原理转基因小鼠是通过基因工程技术将外源基因导入小鼠体内,使其获得新的遗传特性。

培养转基因小鼠的原理主要包括以下几个步骤:选择目标基因、构建转基因载体、基因转导与定位、筛选转基因小鼠、鉴定转基因小鼠。

首先,在培养转基因小鼠之前要选择目标基因。

目标基因可以是与某种疾病相关的基因、某个特定细胞或组织中的基因、或是其他科学研究中感兴趣的基因。

根据不同的目标基因,可以确定不同的转基因策略。

然后,需要构建转基因载体。

转基因载体是将目标基因插入小鼠的基因组中的工具。

通常使用的载体是质粒或病毒。

在构建转基因载体时,将目标基因与适当的启动子、选择标记基因(如荧光蛋白基因)等组合在一起,形成一个完整的转基因载体。

接下来,进行基因转导与定位。

将构建好的转基因载体导入目标细胞或小鼠胚胎干细胞中。

有多种方法可以实现基因导入,如电穿孔、基因枪、病毒载体介导等。

在导入转基因载体后,通过细胞培养或小鼠胚胎植入等手段,让细胞或胚胎继续生长发育。

然后,需要筛选转基因小鼠。

通常会在小鼠体内引入一个选择标记基因,例如使小鼠表达荧光蛋白。

这样,在鼠标中选定了荧光基因以后,通过观察鼠标的组织片能够很方便的看到转基因的细胞和组织。

同时,通过PCR等技术方法进行基因型鉴定,以确保转基因小鼠具备目标基因的插入。

最后,对转基因小鼠进行进一步鉴定。

通过深入的分子生物学研究技术,如Northern blot、Western blot、RT-PCR等,可以确定转基因小鼠的目标基因是否表达、表达水平以及转基因是否稳定遗传到后代等方面的问题。

此外,还可以通过观察转基因小鼠的生理特征和行为特征,进一步验证转基因小鼠的特性是否符合预期。

在以上步骤中,科学家们需要仔细设计实验、合理选择策略,并利用丰富的分子生物学技术手段进行实验操作和数据分析,以确保培养出的转基因小鼠能够稳定并准确地表达目标基因。

转基因小鼠的培养不仅是基础科学研究的重要手段,还能够在医学研究、药物研发等领域中发挥重要作用。

转基因小鼠制备实验方法

转基因小鼠制备实验方法

转基因小鼠制备实验方法1.计划设计:首先确定研究目的和研究对象基因的功能。

根据目的,选择适合的转基因策略。

2.构建转基因载体:根据研究对象基因的序列,设计合成含目标基因的转基因载体。

一般可选择质粒、病毒载体或者合成RNA/DNA方式构建转基因载体。

3.构建胚胎干细胞(ES)或受精卵DNA库:通过开展反转录聚合酶链反应(RT-PCR)方式,从小鼠胚胎组织中制备出RNA,然后利用逆转录酶将RNA转化成cDNA;之后,利用特定引物扩增目标基因的cDNA片段,将其克隆到适当的表达载体中,最终构建ES细胞库或者受精卵DNA库。

4.转染、筛选和克隆:将所构建的转基因载体导入到ES细胞或者受精卵中,使其整合到其基因组中。

然后,采用药物筛选、DNA分子标记、PCR和Southern blot等方法对转染后的细胞进行筛选和鉴定,获得含有目标基因的ES细胞克隆或者转基因小鼠胚胎。

5.基因敲除或添加:6.培养和培育:将获得的转基因ES细胞或者受精卵注入到养殖母鼠子宫中进行妊娠,然后等待幼鼠出生。

根据需要,可将转基因小鼠进行进一步培养、繁殖和鉴定。

为了进行转基因小鼠的后代繁殖,需要对转基因小鼠进行基因型鉴定和表型分析。

7.基因鉴定和表型分析:通过PCR、Southern blot、Western blot、RT-PCR或者其他的基因鉴定技术,对转基因小鼠的基因型进行鉴定。

同时,可以通过行为学、生理学和病理学等方法对转基因小鼠进行表型分析。

8.数据分析与结果解读:对表型数据进行统计分析,绘制图表或者进行统计学分析。

根据实验设计和方法,对实验结果进行解读,并得出相关结论。

总结起来,转基因小鼠制备是一个复杂而严谨的实验过程。

通过设计转基因载体、构建DNA库、转染和克隆、培养和培育小鼠以及基因鉴定和表型分析,可以成功制备目标基因转基因小鼠,并用于研究其功能、调控机制以及在疾病中的作用。

转基因小鼠的方法概述

转基因小鼠的方法概述

转基因小鼠的应用及其制备法学院:动物科技学院专业班级:学生姓名:学号:指导老师:时间:2015年12月17日老师,这篇文章是在图书馆《分子生物技术——重组DNA的原理与应用》书上整理下来的,没有参考文献,但是,这一万多字都是自己亲手打下来的,图也是自己用软件画的,其中的原理也都弄懂,愿老师见谅。

转基因小鼠的应用及其制备法(西北农林科技大学动物科技学院,凌712100)摘要随着后基因组时代的到来,转基因动物已成为新兴的最有效的实验模型。

从上世纪80年代以来,上百个不同的基因已经转入各种品系的小鼠中。

这有助于理解基因调控,肿瘤发展,免疫特异性,发育分子遗传学以及人们感兴趣的其他生物学过程。

转基因小鼠也已在探索利用家畜进行人类治疗药物工业化生产的可能性,以及建立各种人类遗传病的转基因生物医学模型中起到重要作用。

现就制备转基因小鼠的实验法及应用前景作简单介绍。

关键词医学模型;试验法;应用前景Methods and Applications of Transgenic Mice(Northwest A&F University,Colledge of Animal Science and Technoledge,Yangling,Shaanxi,712100,China )Abstact:Following arrival of the post-genomics era,transgenic animals have become the most effective novel experimental model.Since the 1980’s.Hundreds of different genes have been transferred to the various strains of mice.This helps to understand the gene regulation,tumor development,immune specificity,developmental molecular genetics and other biological processes which people are interested in.Transgenic mice have also been exploring the possibility of using domestic animals for the industrial production of drugs for human treatment,and they also play an important role in establishment of a variety of genetically modified biomedical model of human genetic diseases. The article here is an overview of experimental methods and the application prospect of transgenic mice.Key words:biomedical model; experimental methods; application prospect1990年人类基因组计划正式启动,经过13年的努力,人类基因组序列图绘制成功及人类基因组计划的所有目标全部实现。

制备转基因小鼠的原理

制备转基因小鼠的原理

制备转基因小鼠的原理
制备转基因小鼠的原理是通过基因工程技术将外源基因导入小鼠的基因组中。

具体步骤如下:
1. 选择目标基因:根据研究需求选择要导入小鼠基因组的外源基因。

这个外源基因可以来自其他物种,也可以是已存在于小鼠中但表达量较低的基因。

2. 构建质粒:将选择的目标基因与载体DNA(如质粒)连接。

质粒通常含有特定的启动子、终止子和选择性标记基因(如抗生素抗性基因),以便检测和筛选成功导入外源基因的小鼠。

3. 体外培养:将构建好的质粒导入细胞培养物中,利用细胞的自身复制和修复机制,使质粒与小鼠细胞的染色体发生重组,将外源基因导入到小鼠的基因组内。

4. 选择性筛选:为了筛选成功导入外源基因的细胞,可以添加抗生素等选择性标记物质,只有带有外源基因的细胞能够存活下来。

5. 胚胎干细胞注射:将筛选出的带有外源基因的细胞注射到小鼠的早期胚胎中。

这些细胞会参与胚胎发育,在小鼠的成体组织中形成细胞系,继续表达外源基因。

6. 交配和繁殖:将带有外源基因的小鼠进行交配和繁殖,使外源基因在小鼠种群中得以传递和稳定遗传。

通过以上步骤,外源基因成功导入小鼠基因组,并表达在小鼠的细胞和组织中,从而达到制备转基因小鼠的目的。

转基因小鼠制备实验方法

转基因小鼠制备实验方法

转基因小鼠制备实验方法1、选取7~8周龄雌性小鼠,阴道口封闭,作为供体,下午3:00左右,每只小鼠腹腔注射PMSG(10 IU)。

2、 47~48小时后,每只小鼠腹腔注射HCG(0.8 IU),并与正常公鼠合笼;另取数只适龄母鼠(2月龄以上)作为受体,阴道口潮红,与结扎公鼠合笼。

3、第二天上午9:00前观察供体、受体,有精栓者拿出备用。

受体笼拿出作好隔离措施。

4、10:30左右,断颈处死供体,手术取出整个输卵管,放入透明质酸酶~0.3mg/M2液中。

显微镜下,用镊子撕开输卵管壶腹部,受精卵随同颗粒细胞即一同流出。

5、仔细观察放在透明质酸酶M2液中的受精卵,当受精卵周围的颗粒细胞脱离时,将受精卵吸出,放入M2液中洗涤,最后放在M16液中放入5% CO2,37C0培养箱培养。

6、在显微镜下观察,挑选细胞饱满,透明带清晰,雄原核清晰可见的受精卵待用。

7、安装持卵针和注射针,使其末端平行于载物台,在凹玻片的中央滴入一滴M2液,覆盖石蜡油,移入待注射的受精卵。

DNA在注射针中的气泡应在先前全部弹走。

8、在高倍镜下,将注射针轻触持卵管,使DNA缓慢流出并控制其流量;反复吹吸受精卵,使其处于最佳位置,将注射针刺入受精卵的雄原核,直至看到原核膨大即退出。

将注射过的和未注射过的受精卵上下分开放置,不致于混搅,注射完毕后,放入5% CO2,37C0培养箱培养。

9、将受体麻醉,注射计量为1%戊巴比妥钠0.01ml/g,腹腔注射。

手术取出卵巢连接输卵管,用脂肪镊固定,在显微镜下找到输卵管开口。

吸取注射后经培养成活的受精卵,吸取方法是先吸一段较长的M2,吸一个气泡,然后吸取受精卵,尽量紧密排列,再吸一段液体,吸一个气泡,再吸一段液体,共四段液体三个气泡。

除较长的那段液体,其余的液体大致1cm 左右,气泡0.2cm左右。

将移植管口插入输卵管口,轻轻将移植管内的液体吹入,看到输卵管壶腹部膨大并清晰地看到三个气泡,即移植成功。

转基因小鼠构建实验方法

转基因小鼠构建实验方法

转基因小鼠构建实验方法
实验方法原理:遗传的基本物质是DNA,基因是位于染色体上有遗传效应的DNA片段,对于储存在生物全套染色体中的全部遗传信息,可称其为基因组。

不同种类、不同个体的生物基因组成是不同的,对动物个体来说,非自身的基因成分属于外源基因,如果把外源基因整合或导入动物染色体基因中,这个外源基因就被称为转基因(transgene)(即转移来的基因),这种动物就是转基因动物。

实验材料:小鼠
试剂、试剂盒:HCG、PMSG、透明质酸酶、戊巴比妥钠
仪器、耗材:显微镜、镊子、持卵针、注射针。

转基因小鼠制备实验方法

转基因小鼠制备实验方法

转基因小鼠制备实验方法(protocol)1、选取7~8周龄雌性小鼠,阴道口封闭,作为供体,下午3:00左右,每只小鼠腹腔注射PMSG(10 IU)。

2、 47~48小时后,每只小鼠腹腔注射HCG(0.8 IU),并与正常公鼠合笼;另取数只适龄母鼠(2月龄以上)作为受体,阴道口潮红,与结扎公鼠合笼。

3、第二天上午9:00前观察供体、受体,有精栓者拿出备用。

受体笼拿出作好隔离措施。

4、10:30左右,断颈处死供体,手术取出整个输卵管,放入透明质酸酶~0.3mg/M2液中。

显微镜下,用镊子撕开输卵管壶腹部,受精卵随同颗粒细胞即一同流出。

5、仔细观察放在透明质酸酶M2液中的受精卵,当受精卵周围的颗粒细胞脱离时,将受精卵吸出,放入M2液中洗涤,最后放在M16液中放入5% CO2,37C0培养箱培养。

6、在显微镜下观察,挑选细胞饱满,透明带清晰,雄原核清晰可见的受精卵待用。

7、安装持卵针和注射针,使其末端平行于载物台,在凹玻片的中央滴入一滴M2液,覆盖石蜡油,移入待注射的受精卵。

DNA在注射针中的气泡应在先前全部弹走。

8、在高倍镜下,将注射针轻触持卵管,使DNA缓慢流出并控制其流量;反复吹吸受精卵,使其处于最佳位臵,将注射针刺入受精卵的雄原核,直至看到原核膨大即退出。

将注射过的和未注射过的受精卵上下分开放臵,不致于混搅,注射完毕后,放入5% CO2,37C0培养箱培养。

9、将受体麻醉,注射计量为1%戊巴比妥钠0.01ml/g,腹腔注射。

手术取出卵巢连接输卵管,用脂肪镊固定,在显微镜下找到输卵管开口。

吸取注射后经培养成活的受精卵,吸取方法是先吸一段较长的M2,吸一个气泡,然后吸取受精卵,尽量紧密排列,再吸一段液体,吸一个气泡,再吸一段液体,共四段液体三个气泡。

除较长的那段液体,其余的液体大致1cm左右,气泡0.2cm左右。

将移植管口插入输卵管口,轻轻将移植管内的液体吹入,看到输卵管壶腹部膨大并清晰地看到三个气泡,即移植成功。

转基因小鼠原理

转基因小鼠原理

转基因小鼠原理
转基因小鼠是通过将外源基因导入小鼠的基因组中,使其具备某种特定的基因表达或功能。

下面将介绍转基因小鼠的原理。

转基因小鼠的制备主要包括以下步骤:
1. 外源基因的选择:根据研究的需要,选择具有特定表达或功能的外源基因。

这些基因可以来自于同一物种的其他个体,也可以来自于不同物种。

外源基因通常与标记基因(如荧光蛋白)连在一起,以便在小鼠体内进行检测或追踪。

2. 载体构建:将外源基因插入到合适的载体中。

这个载体通常是一个环状DNA,能够在细菌中进行复制。

载体还包括选择
性标记基因,用于筛选带有外源基因的细菌。

3. 载体的导入:将构建好的载体导入到干细胞中。

这一步通常通过细菌转化或化学方法实现。

被导入的载体被融合到小鼠的染色体中,成为其基因组的一部分。

4. 选代与筛选:经过导入外源基因的干细胞进一步进行培养和筛选,确保外源基因被稳定地遗传给后代。

5. 建立转基因小鼠系:通过转基因小鼠的选择性繁殖,建立稳定的转基因小鼠系。

这些小鼠在其体细胞中都带有外源基因。

通过以上步骤,转基因小鼠就能够被制备出来。

这些小鼠可以被用于研究基因与某种生理或疾病相关的功能和表达。

转基因
小鼠的制备对于科学研究、药物开发和疾病治疗等领域具有重要意义。

ai-tdtomato小鼠cre原理_概述及解释说明

ai-tdtomato小鼠cre原理_概述及解释说明

ai-tdtomato小鼠cre原理概述及解释说明1. 引言1.1 概述AI-TDTomato小鼠是一种转基因小鼠模型,利用Cre/loxP系统实现特定基因的表达和编辑。

该小鼠模型在神经科学、遗传学等研究领域广泛应用,为理解生物体内复杂的信号传导网络提供了有力工具。

本文将对AI-TDTomato小鼠Cre原理进行概述和详细解释,包括Cre/loxP系统的简介、AI-TDTomato小鼠的概述以及Cre/loxP系统在该小鼠中的应用。

此外,还将详细解释Cre蛋白的功能和作用机制、Cre基因的起源和特点以及Cre 重组酶的活性调控方式及其对基因组编辑的影响。

最后,将对AI-TDTomato小鼠Cre原理进行详细解析,包括转基因技术背景和原理、AI-TDTomato小鼠构建方法与策略以及TdTOMATO荧光报告剪刀效应和其在研究中的应用例子。

1.2 文章结构本文分为以下几个部分:引言部分即当前部分描述文章主题和内容;接下来第二部分将对AI-TDTomato小鼠Cre原理进行概述,包括Cre/loxP系统简介、AI-TDTomato小鼠的概述以及Cre/loxP系统在该小鼠中的应用;第三部分将对Cre原理进行解释,包括Cre蛋白的功能和作用机制、Cre基因的起源和特点以及Cre重组酶的活性调控方式及其对基因组编辑的影响;第四部分将详细解析AI-TDTomato小鼠Cre原理,包括转基因技术背景和原理、AI-TDTomato小鼠构建方法与策略以及TdTOMATO荧光报告剪刀效应和其在研究中的应用例子;最后第五部分是结论部分,总结研究意义并展望实际应用前景与挑战。

1.3 目的本文旨在全面介绍AI-TDTomato小鼠Cre原理,深入解释其相关概念和关键步骤。

通过本文阐述与说明,读者将能够了解到AI-TDTomato小鼠Cre原理的核心内容、技术特点以及在科学研究中所能发挥的作用。

同时,本文还将对相关技术背景和发展前景进行讨论,为读者提供一个全面的视角和思考框架。

[小鼠的饲养方法]转基因小鼠的饲养

[小鼠的饲养方法]转基因小鼠的饲养

[小鼠的饲养方法]转基因小鼠的饲养小鼠的饲养管理非常繁琐,要求饲养人员具有高度的责任心,随时检查小鼠状况,出现问题立即加以纠正。

下面是精心为你的小鼠的饲养方法,一起来看看。

1. 饲喂小鼠胃容量小,随时采食,是多餐习性的动物。

成年鼠采食量一般为3~7克/天,幼鼠一般为1~3克/天。

应每周添料3~4次,在鼠笼的料斗内应经常有足够量的新鲜干燥饲料,在小鼠大群饲养中,每周应固定两天添加饲料,其它时间可根据情况随时注意添加。

根据小鼠不同阶段的生长发育特点,应有不同的给饲标准。

由于种鼠群和生产鼠群交配繁殖频繁,尤其生产种母鼠的负担重,能量消耗大,因此除供给足够的块料外,还要定时饲喂少量葵花籽、麦芽和拌有鸡蛋的软料。

葵花籽供应量为0.5~1克/天/只成年鼠。

而麦牙和软料由于微生物条件较难控制,目前趋于淘汰不用,而致力于颗粒料的全价营养,即用维生素合剂代替。

2. 给水用饮水瓶给水,每周换水2~3次,成年鼠饮水量一般为4~7ml/天,要保证饮水的连续不断,应常检查瓶塞,防止瓶塞漏水造成动物溺死或饮水管堵塞使小鼠脱水死亡。

小鼠在吸水过程中,口内食物颗粒和唾液可倒流入水瓶。

为避免微生物污染水瓶,换水时应清洗水瓶和吸水管。

严禁未经消毒的水瓶继续使用。

3. 清洁卫生和消毒每周应至少更换两次垫料。

换垫料时将饲养盒一起移去,在专门的房间倒垫料,可以防止室内的灰尘和污染。

一级以上动物的垫料在使用前应经高压消毒灭菌。

要保持饲养室内外整洁,门窗、墙壁、地面等无尘土。

坚持每月小消毒和每季度大消毒一次的制度。

即每月用0.1 %新洁尔灭喷雾空气消毒一次,室外用3%来苏尔消毒,每季度用过氧乙酸(0.2%)喷雾消毒鼠舍一次。

笼具、食具至少每月 __消毒一次,鼠舍内其它用具也应随用随消毒。

可高压消毒或用0.2 %过氧乙酸浸泡。

应有周转用房,在饲养室使用一年时,将小鼠全部移入,原饲养室 __整修消毒。

4. 动物健康的外观检查这是检查动物健康状况的一项常规工作。

转基因小鼠的方法概述

转基因小鼠的方法概述

转基因小鼠的应用及其制备方法学院:动物科技学院专业班级:学生姓名:学号:指导老师:时间:2015年12月17日老师,这篇文章是在图书馆《分子生物技术——重组DNA的原理与应用》书上整理下来的,没有参考文献,但是,这一万多字都是自己亲手打下来的,图也是自己用软件画的,其中的原理也都弄懂,愿老师见谅。

转基因小鼠的应用及其制备方法(西北农林科技大学动物科技学院,陕西杨凌 712100)摘要随着后基因组时代的到来,转基因动物已成为新兴的最有效的实验模型。

从上世纪80年代以来,上百个不同的基因已经转入各种品系的小鼠中。

这有助于理解基因调控,肿瘤发展,免疫特异性,发育分子遗传学以及人们感兴趣的其他生物学过程。

转基因小鼠也已在探索利用家畜进行人类治疗药物工业化生产的可能性,以及建立各种人类遗传病的转基因生物医学模型中起到重要作用。

现就制备转基因小鼠的实验方法及应用前景作简单介绍。

关键词医学模型;试验方法;应用前景Methods and Applications of Transgenic Mice(Northwest A&F University,Colledge of Animal Science and Technoledge,Yangling,Shaanxi,712100,China )Abstact:Following arrival of the post-genomics era,transgenic animals have become the most effective novel experimental the 1980’ of di fferent genes have been transferred to the various strains of helps to understand the gene regulation,tumor development,immune specificity,developmental molecular genetics and other biological processes which people are interested mice have also been exploring the possibility of using domestic animals for the industrial production of drugs for human treatment,and they also play an important role in establishment of a variety of genetically modified biomedical model of human genetic diseases. The article here is an overview of experimental methods and the application prospect of transgenic mice.Key words:biomedical model; experimental methods; application prospect1990年人类基因组计划正式启动,经过13年的努力,人类基因组序列图绘制成功及人类基因组计划的所有目标全部实现。

转基因小鼠的制备

转基因小鼠的制备

转基因小鼠的制备显微注射法这一方法的实验程序如下:⑴准备假孕母鼠(养母):将可育雌鼠与输精管结扎后绝育的雄鼠交配,剌激雌鼠发生一系列妊娠变化而得到假孕母鼠作为受精卵转基因后的养母;⑵受精卵的准备:可育雌鼠注射孕马血清与绒毛膜促性腺激素(hcg)促使超排卵。

处理后与可育雄鼠交配。

次日从输卵管收集受精卵备用;⑶基因导入:用显微注射装置将目的基因溶液导入受精卵雄性原核;⑷胚胎移植:将已转入基因的受精卵自背部植入假孕母鼠的输卵管,使胚胎在养母体发育成熟;⑸对幼鼠的鉴定:①幼鼠发生断乳后自尾部提取DNA,与目的基因探针作分子杂交,鉴定外源基因是否整合,有整合的鼠称为首建鼠(founder);②建立鼠系,将带有外源基因的小鼠与未经转基因的小鼠交配、传代后,后代有50%机率带有整合的基因供实验用。

也可将合适的组织进行细胞培养建立细胞系;③自小鼠脏提取rna,与目的基因探针做分子杂交,比鉴定外源基因的表达和表达的组织特异性。

表达产物可以测定活性的,也可直接自血液或组织测定活性蛋白质,常用的方法如酶联免疫吸附试验(elisa)或放射免疫测定(ria)等。

亦可取胚胎进行分析。

显微注射法简化的实验过程如图23-2所示。

我国已有少数实验室(如中国医学科学院基础医学研究所)应用此法进行载脂蛋白tgm研究。

基因打靶与基因剔除技术ES细胞是从哺乳动物早期胚胎发育产生的胚团(inner cell mass)中分离出来的。

它本身是二倍体,能在体外培养,具有高度的全能性,可以形成包括生殖细胞在的所有组织,并且在不同的培养条件下表现出不同的功能状态。

这种细胞有两个特点,一是它本身可以分裂、增殖,形成细胞集落;另一特点是经过发育可以形成正常的动物后代。

因此,借用ES细胞系可将人们企望的某种不完整的、无功能基因直接引入到ES细胞中,通过细胞增殖、筛选可得到丧失了某种基因功能的动物后代。

正是由于ES细胞的研究成功与广泛应用,才使得基因打靶与基因剔除技术在转基因动物中的应用成为可能而且近来取得长足发展。

RNAi转基因小鼠构建技术原理

RNAi转基因小鼠构建技术原理

RNAi转基因小鼠构建技术原理
制作转基因小鼠最常用的一种方法是DNA原核显微注射。

DNA 原核显微注射是指将外源DNA通过显微注射的方法注射到受精卵的原核内,注射DNA整合到小鼠受精卵的基因组中,并稳定遗传给后代。

使用PiggyBac系统DNA显微注射,制备的转基因鼠基因表达阳性率为常规质粒DNA显微注射的2倍以上!
RNAi转基因小鼠
通常采用U6/H1驱动shRNA表达,设计靶序列构建shRNA载体,利用原核显微注射的方法将shRNA载体注射到受精卵中。

在基因表达的过程中,通过shRNAi的干扰作用,达到对目的基因表达的沉默抑制,实现基因功能的研究。

转基因小鼠构建技术分类

转基因小鼠构建技术分类

转基因小鼠构建技术分类
目前主流的转基因小鼠构建技术主要包括以下几类:
1 显微注射法
将改建后的目的基因(或基因组片段)用显微注射法注入供体小鼠的受精卵(或着床前胚胎细胞),然后将此受精卵(或着床前胚胎细胞)再植入受体动物的输卵管(或子宫)中,使其发育成携带有外源基因的转基因动物。

2 胚胎干细胞介导法
胚胎干细胞介导法是转基因动物培育的主要途径之一。

通过将外源基因导入胚胎干细胞,然后将转基因的胚胎干细胞注射入受体动物胚胎后,可参与宿主的胚胎构成,形成嵌合体,直至达到种系嵌合。

3 逆转录病毒感染法
主要是利用反转录病毒的长末端重复序列(LTR)区域具有转录启动子活性的特点,将外源基因连接到LTR下游进行基因重组后,再包装成为高滴度病毒颗粒,去直接感染受精卵或显微注入囊胚腔中,携带外源基因的反转录病毒DNA可以整合到宿主染色体上。

4 精子载体导入法
精子载体法是以精子作为外源基因的载体,在受精过程中将外源基因导入动物胚胎,从而使外源基因进入子代的基因组中。

HPV16转基因小鼠模型介绍

HPV16转基因小鼠模型介绍

HPV16转基因小鼠模型介绍
基因敲除小鼠是什么?是否就是我们平日所说的实验室用的小白鼠?其实小鼠有很多种,小白鼠只是其中一种,通常普通的小白鼠多被药厂用作临床试验,而基因敲除的小鼠,则用于更尖端的生物医学研究。

基因敲除小鼠技术原理:是先在小鼠的胚胎干细胞上通过基因重组的办法进行基因修饰——就是将胚胎干细胞中的靶向基因改掉,然后将“修饰”后的胚胎干细胞植入小鼠的早期胚胎,生成嵌合体小鼠。

这种嵌合体小鼠长大后,体内同时存在被“修饰”过的基因和未被“修饰”的基因。

下面是,HPV16转基因小鼠介绍
HPV16转基因小鼠是一种宫颈癌小鼠模型。

该品系将HPV16基因过表达到小鼠体内,然后通过雌激素诱导自发形成原位宫颈癌。

可用于研究宫颈癌的发生、发展及转移,及宫颈癌相关药物的筛选。

  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

转基因小鼠的应用及其制备方法学院:动物科技学院专业班级:学生姓名:学号:指导老师:时间:2015年12月17日老师,这篇文章是在图书馆《分子生物技术——重组DNA的原理与应用》书上整理下来的,没有参考文献,但是,这一万多字都是自己亲手打下来的,图也是自己用软件画的,其中的原理也都弄懂,愿老师见谅。

转基因小鼠的应用及其制备方法(西北农林科技大学动物科技学院,陕西杨凌 712100)摘要随着后基因组时代的到来,转基因动物已成为新兴的最有效的实验模型。

从上世纪80年代以来,上百个不同的基因已经转入各种品系的小鼠中。

这有助于理解基因调控,肿瘤发展,免疫特异性,发育分子遗传学以及人们感兴趣的其他生物学过程。

转基因小鼠也已在探索利用家畜进行人类治疗药物工业化生产的可能性,以及建立各种人类遗传病的转基因生物医学模型中起到重要作用。

现就制备转基因小鼠的实验方法及应用前景作简单介绍。

关键词医学模型;试验方法;应用前景Methods and Applications of Transgenic Mice(Northwest A&F University,Colledge of Animal Science and Technoledge,Yangling,Shaanxi,712100,China )Abstact:Following arrival of the post-genomics era,transgenic animals have become the most effective novel experimental the 1980’ of different genes have been transferred to the various strains of helps to understand the gene regulation,tumor development,immune specificity,developmental molecular genetics and other biological processes which people are interested mice have also been exploring the possibility of using domestic animals for the industrial production of drugs for human treatment,and they also play an important role in establishment of a variety of genetically modified biomedical model of human genetic diseases. The article here is an overview of experimental methods and the application prospect of transgenic mice.Key words:biomedical model; experimental methods; application prospect1990年人类基因组计划正式启动,经过13年的努力,人类基因组序列图绘制成功及人类基因组计划的所有目标全部实现。

人们迎来一个崭新的时代——后基因组时代,即在基因组静态的碱基序列逐步清楚之后而最基因组进行动态的生物学功能研究。

转基因动物在后基因组时代已成为生命科学研究中新作者简介:本科,动物科学专业。

;Tel:*通讯作者: E-mail:兴的最有效的动物实验模型。

小鼠是最早建立的转基因动物模型,利用转基因小鼠进行生物学或生物医学研究是当前生命科学发展的主要内容之一。

转基因小鼠是一个思维体系,所研究的问题都是在活体中进行的,类似于人体内的各种背景因素仍然存在,通过这套体系所得出的研究结论具有很高的真实性。

因此,其成为生命科学领域中的研究利器。

一、方法学1.逆转录病毒转染法1974年,Jaenisch等试图用病毒感染早期胚胎的方式将SV40 DNA肿瘤病毒基因导入小鼠体内,但是这样的基因并没有参与整个发育过程,传代的机会也很小。

1976年,Jaenisch又通过反转录病毒感染小鼠的胚胎。

在各种基因转移法中,利用逆转录病毒转染法(图1-1)能够有效地将基因整合在受体细胞基因组上。

但缺点是只能导入小片段基因(8kb左右)。

由于受到大小的限制,转移的基因可能缺少表达调控序列。

这话总方法还有一个缺陷,虽然这些载体设计为复制缺陷型,但由于产生大量载体DNA所必须的逆转录病毒品系(辅助病毒,helper virus)的基因组,可能和转移的而基因一起整合到同一个细胞核上。

尽管有特殊的预防措施,转基因生物仍有可能产生辅助病毒。

但是,在应用转基因生物合成商业产品或直接作为食品过程中,必须绝对保证没有逆转录病毒的污染。

转基因已有其他可行的方法,因此很少用逆转录病毒转染法来产生具有商业用途的转基因动物。

2.DNA显微注射法由于逆转录病毒转染法存在的缺点,近来DNA显微注射法是一种建立转基因小鼠的更好的方法。

1980年底,Gordon等[4]首次通过显微注射将纯化的外源基因转入到小鼠的受精卵原核,为建立转基因小鼠奠定了基础。

1982年,美国学者Palmiter等将大鼠生长激素基因导入小鼠受精卵,培育的21只子代小鼠中有7只含融合基因,其中6只加速生长,即“超级小鼠”诞生了。

这种方法的过程由以下步骤组成[图2-1]①对供体母鼠进行超数排卵处理,增加用于显微注射的受精卵数。

其方法是先给母鼠注射怀孕母鼠的血清,大约48 h后,在注射人绒毛膜促性腺激素。

经过处理的小数能产下35枚左右的卵,而正常情况下只有5~10枚。

②与雄鼠交配后杀死这一超数排卵的母鼠,冲洗并收集输卵管中的受精卵。

③通常立即进行受精卵显微注射。

注射的外源基因一般是线性结构且不含有原核生物载体的DNA 序列。

哺乳动物中,精子进入卵细胞后,精子细胞核(雄原核,male pronucleus)与卵细胞核独立存在。

在卵细胞核经过减数分裂成为雌原核后(female pronucleus),才会发生核融合(karyogamy)。

雄原核一般比雌原核大,使用街铺显微镜就能确定位置。

在显微注射中受精卵可以进行显微操作、定位及固定。

将接种后的20~40个受精卵利用显微外科的方法植入受体母鼠体内,这种母鼠与切除输精管的雄鼠交配后进入假孕状态。

对于小鼠来说,交配是已知能使子宫为植入受精卵做好准备的唯一方法。

移植3星期后,养母便繁殖出从接种受精卵发育而来的幼鼠。

为了鉴定转基因动物,从小鼠的尾巴提取的DNA进行Southern杂交或者PCR,可以确定转基因的存在。

转基因小鼠之间交配以确定转基因是否存在首建鼠(founder)的生殖细胞中,随后,进一步杂交培育出纯合转基因品系。

这种方法虽然简单,但需要许多实验步骤。

即使是一个操作熟练的工作人员,最多只能使5%的移植受精卵发育成转基因动物[图2-2]。

在这个过程中,没有一个步骤的效率可达100%,因此必须使用大量的受精卵进行显微注射。

以小鼠为例,注射后大约有66%的受精卵能够存活,25%的移植卵能够发育成小鼠,而其中约有25%的小鼠是转基因个体。

因此从1000个受精卵中,只能产生30~50个转基因小鼠。

另外,这种方式注射的DNA随机整合到基因组中,并且常在同一位点以多拷贝的形式存在,所以并不是所有的转基因小鼠都具有预期的特性。

某些个体中,由于整合位点的缘故可能使转基因不表达;另一些个体中,拷贝数过多可能导致过量表达,因而扰乱了动物正常的生理功能。

尽管这种方法效率那很低,但DNA显微注射法还是建立有功能的转基因小鼠品系的常规方法。

图1-1 利用逆转录病毒载体建立图2-1 利用显微注射的方法构转基因小鼠品系转基因小鼠品系3.工程化胚胎干细胞从发育的小鼠胚胎中获得的胚胎期(blastocyst stage)细胞,能够在细胞培养基中繁殖,并在导入另一个胚泡时,保持分化成其他各种类型细胞(包括生殖系细胞)的能力,这类细胞称为全能性胚胎干细胞(ES)。

培养的ES细胞易于进行遗传工程改造而不改变其全能性。

利用这个系统,有功能的转基因可以整合在ES细胞的基因组中某个非必须基因的特定位点。

然后,选择和培养这些基因工程细胞,并用来产生转基因动物[图3-1]。

采用这种方法,就可以避免DNA显微注射法和逆转录病毒转染法中随机整合的缺点。

利用染色体特意位置整合的DNA载体转染培养的ES细胞时一些细胞中的DNA整合发生在非靶位点(错误位点),另一些细胞中整合发生在靶位点(正确位点),而大多数ES细胞中根本没有发生整合。

采用一种正负选择方法,来富集正确整合的ES细胞。

其策略是采用正选择获得正确整合的细胞,而负选择剔除错误整合的细胞。

靶位点必须位于基因组的非必需基因中,这样才能在外院DNA整合后,对细胞发育和功能没有影响。

另外,转基因还必须整合在基因组中正常转录的部位。

研究人员一直在寻找这种位点。

正负选择方法中应用的DNA载体通常包括:①与靶位点的两个位置同源的两个DNA序列区(HB1和HB2);②转入的基因(transgene)赋予受体新的功能;③化合物G-418的抗性基因(Neor);④来自I 型、Ⅱ型单纯疱疹病毒(HSV-tk1和HSV-tk2)编码胸苷激酶(thymidine kinase)的两个不同基因(tk1和tk2)[图3-2(a)].这一序列的组合是这一方法中的关键元素。

在于靶位点同源的两个DNA序列间是转基因的G-418抗性基因(Neor gene),两个同源区外是HSV-tk1和HSV-tk2基因。

如果整合发生在错误位点(不在HB1和HB2上),HSV-tk基因很可能与其他序列整合[图3-2(a)]。

相反,如果整合是通过靶位点双交换的基因重组,HSV-tk基因将被剔除,只有转基因和Neor基因整合在基因组上[图3-2(b)]。

转染的细胞在G-418存在情况下生长时,缺少Neor基因的细胞将被杀死。

因此,只有整合了目的DNA的细胞才能存活,这是正选择。

同时加入更昔洛韦[9-(1,3,-二羟基-2-丙氧甲基)-鸟嘌呤]和G-418时,由于胸苷激酶能将更昔洛韦转变为杀死细胞的毒素,所以表达胸苷激酶的细胞就会死亡,这是负选择。

双重选择下存活的就是正确整合的细胞。

虽然并不是很简单,但这种正负选择方法能从ES 细胞群体中富集在染色体特定位点整合转基因的细胞。

更为直接判断ES细胞是否在染色体靶位点携带转基因的方法是采用PCR鉴定。

这种情况下,DNA 载体含有两段与靶位点同源的DNA区段,分别位于转基因和一段克隆的细菌基因(或人工合成的特有基因,在小鼠基因组中不存在)的两侧[图3-3]。

相关文档
最新文档