叶绿体表达载体--如何构建载体
一种植物质体表达载体的构建方法及应用与流程技术
一种植物质体表达载体的构建方法及应用与流程技术构建植物质体表达载体是一种将外源基因导入植物细胞并在植物细胞内进行表达的方法。
以下是一种常见的植物质体表达载体的构建方法及其应用与流程技术:
1.选择载体:选择适合植物质体表达的载体,通常是质粒
(plasmid)或病毒载体。
质粒载体通常由选择标记基因、启动子、终止子和目标基因构成。
2.克隆目标基因:将目标基因(外源基因)插入载体的多克
隆位点中。
这可以通过限制性内切酶切割质粒载体和目标基因的DNA,然后利用DNA连接酶将两者连接起来。
3.构建表达载体:将含有目标基因的质粒进行转化,例如通
过化学方法或电穿孔等手段将质粒导入植物细胞,形成表达载体。
4.选择转化植物细胞:通过对转化植物细胞进行筛选,例如
添加抗性选择剂或利用标记基因表达进行筛选,以筛选出含有目标基因的转基因植物细胞。
5.确认目标基因表达:通过PCR、RNA分析或蛋白质分析等
技术,检测和确认目标基因在转基因植物细胞内的表达情况。
6.稳定转基因植物的培养:将成功表达目标基因的转基因植
物细胞进行培养,以获得稳定转基因植物种子或植株。
7.功能性验证与应用:对获得的稳定转基因植物进行功能性
验证,例如检测表达的蛋白质具有特定的生物活性或应用
于农艺改良、抗病虫害等方面。
8.申请相关许可:如果打算将转基因植物及其产品用于商业
化目的,需要申请相关的许可和审批文件,以确保遵守法
规和伦理规范。
需要注意的是,植物质体表达载体的构建方法与特定目标基因、植物物种和研究目的有关。
植物表达载体构建
植物基因工程常用的报告基因
指其编码产物能够被快速地测定、常用 来判断外源基因是否已经成功地导入寄 主细胞(器官或组织)并检测其表达活 性的一类特殊用途的基因。
作为报告基因的条件
在转化的寄主细胞中应不存在相应的内 源等位基因的活性,
其表达产物不仅不会损害寄主细胞,而 且还应具有快速、灵敏、定量和可重复 的检测特性。
检测方法
用于GUS基因检测的常用底物有三种: X-Gluc 5-溴-4-氯-3-I吲哚-B-D-葡萄糖苷酸酯 X-MUG 4-甲基伞形酮酰-B-D-葡萄糖苷酸酯 PNPG 对硝基苯B-D-葡萄糖醛酸苷 组织化学染色定位法 荧光法测定GUS活性 分光光度法测定GUS活性
组织化学染色定位法
该方法是将底物进入被测的植物组织。 将被检材料浸泡在含有底物的缓冲叶中保温,
cells).
Left, Down regulation of CaMV35S promoter in the syncytium of Heterodera schachtii monitored by expression of GFP (top). By comparison an unifected root shows regular GFP expression (bottom). Right, Image analysis of the mean red component of
植物表达载体构建
张玉刚 zyg4458@
载体 vector
克隆载体
载
体
原核表达载体
表达载体 真核表达载体
植物表达载体
质粒图谱及质粒构建
启动子 外源基因 终止子 启动子 报告基因 终止子
目的片段
(标记基因) 选择标记
一步法构建莱茵衣藻叶绿体表达载体
现代农业研究Modern Agriculture Research第27卷莱茵衣藻是一种生活在淡水里的单细胞真核绿藻,其叶绿体表达的外源蛋白具有安全性好、培养周期短、遗传稳定、容易扩大培养,并且成本低廉等优点[1,2,3]。
近些年来,多种具有应用前景的蛋白在莱茵衣藻叶绿体中成功表达[4]。
而一般构建衣藻叶绿体表达载体需要通过两步克隆来完成:首先将外源基因插入克隆载体的衣藻来源的5’和3’非翻译区(UTR )多克隆位点间,再将5’UTR-外源基因-3’UTR 的表达盒酶切下,通过同源重组构建至表达载体[5,6]。
为了简化衣藻叶绿体表达载体的构建步骤,本研究构建了一种T 载体pBTNK,通过一步TA 克隆可将待表达的外源基因插入衣藻来源5’和3’UTR 之间,蓝白斑筛选获得阳性转化子后,重组质粒可直接用于转化植物,因此可简化衣藻叶绿体中表达载体构建流程。
1材料和方法1.1材料1.1.1藻株、菌株和质粒莱茵衣藻Chlamydomonas reinhardtii 137c (mt)、质粒pCX16、pCX13、p228由华中农业大学陈杏洲博士惠赠;大肠杆菌DH10β,质粒pShuttle、pFAST-EGFP、pT-BASIC 由湖北大学蒋思婧博士惠赠。
1.1.2酶、主要试剂和设备BfuI 购自Thermo Scien-tific,LA Taq 酶、SolutionI 连接酶、T 4DNA 聚合酶、质粒抽提试剂盒、MiniBEST Agarose Gel DNA Extraction Kit Ver.4.0、其他限制性内切酶,购自Takara 公司,X-gal、dNTP、硫酸卡那霉素(kana )、氨苄青霉素购自北京九州同业生物科技公司,壮观霉素购自sigma 公司,PCR 引物(表1)由上海捷瑞生物工程有限公司合成,Biolistic PDS-1000/He 基因枪购于Bio-Rad。
1.2方法1.2.1DNA 克隆质粒提取参照OMEGA bio-tek 试剂盒说明书进行,DNA 片段克隆、重组质粒鉴定等分子克隆操作参照Sambrook 提供的方法进行[7]。
玉米叶绿体表达载体的构建及AsRED基因原核表达
C E io , i H NGX a 一 MA Q n g一 , I a ,W N e l ,F N J n L U Y n A G Lie A u ,C E G B i u —i H N e- i f
( n u P o i il e a o tr o C o i o y A h i g c l r nv r t ,H fi 3 0 6, n u , hn ) A h i r n a K yL b r o f rpB o g , n u A r ut a U ies y ee 2 0 3 A h i C ia v c a y l i u l i
第 l 9卷第 2期 21 00年 4月
V0 . 9 No 2 11 .
ACTA LAS ER BI OL0GY S NI I CA
Ap" 2 0 t 09 .
d i1 . 9 9 ji n 1 0 -1 6 2 1 . 2 0 9 o:0 3 6 /.s . 0 77 4 . 0 0 0 . 1 s
a l e sn h h o o l s g n mi mp i d u i g t e c lr p a t e o c DNA o ie a h e lt . T e r s l n x r s in v co BAI T i f fmaz s t e tmp ae h e ut te p e so e tr p a R ARE D
因。
关键 词 : 叶绿体基因组;表达载体构建; sE AR D基因;定点整合;玉米
中 图分类 号 :5 30 ¥1 .1 文献标 识 码 : A 文 章编 号 :0774 (00 0 - 4 - 10 -16 2 1 )2 20 6 0 0
The Co t uc i n o a z l r pl s pr s i n c o nd ns r to fM i e Ch o o a t Ex e so Ve t r a Pr ka y tc Ex e s o fAs o r o i pr s i n o RED e G ne
载体构建介绍
5.常见问题
选择标记类型和选择 1、选择性标记类型 药物抗性(如Kan,Amp等) 营养依赖性标记(如SC-Leu 等) 2、如何选择 根据所选载体上所带的标记
5.常见问题
Gateway系统引物设计-需要对读码框
这是因为中间载体和终载体上某些编码氨基酸或者抗性 基因同目的片段共用一个起始密码子。
载体构建
戎浩 2015.12
C
ONTENTS
目录
1 2 3 4
载体简介 载体构建
注意事项 常见问题
1.载体简介
目的基因的克隆与鉴定
ห้องสมุดไป่ตู้
生理检测 纯化
载体构建
大肠转化,质粒 提取与鉴定
移栽
分子检测
继代繁殖 农杆菌的转化与活化
外植体制备
筛选
浸
染
共培养
1.1载体
载体(vector) ,能将外源DNA或基因片段携带入 宿主细胞内的一个具有自我复制能力的DNA分子。
退火温度不合适,设置梯度,选择最适退火温度
2、条带不单一
引物不特异,适当增长引物序列长度;
适当提高退火温度
5.常见问题
载体酶切的问题 1、酶切质粒浓度和纯度要好 2、酶切温度和时间
如果两个酶的最适温度不同,建议单酶切,回收后在
用另一个酶切,时间最好过夜切。 3、没有切开 可能是酶失活,建议酶切时增加阳性对照,确定酶是 否好用
5.常见问题
克隆基因的酶切位点及引物问题 1、单酶切 单酶切后进行连接,质粒自连、目的片段自连、目的
片段之间连接、目的片段和载体各种错误连接、目的片段
反向连接等等,尽量不选单酶切 2、保护碱基数目的问题。 在设计PCR引物时,引入酶切位点后,常常要加入保 护碱基,这会使得酶切效率大大提高。
雨生红球藻β-胡萝卜素酮化酶基因克隆、分析及叶绿体表达载体构建
( 中国科 学 院海洋 研 究所 , 山东 青 岛 267 :2 1 6 0 1 .中国科学 院研 究 生 院。北 京 10 3 :3 009 .青 岛科 技 大学 化工 学 院, 山东 青 岛 2 64 60 21
摘
要 :一 B胡萝 素酮化 酶 ( K )是 雨生 红球 藻虾 青素 合成 途径 中 的关键 酶 。 据 G n ak 中所 收录 的雨 生红 球藻 BK 的 c A BT 根 eBn T DN
维普资讯
第 2 6卷
第 1期
海
洋
通
报
Vl . 6, No 1 0 2 1 .
20 年 0 07 2月
J OURNAL ARI E S E OF M N CI NCEBUL TI LE . 素酮化 酶基 因克 隆、分析 及 叶绿体表达载体构建
1 材料与方法
1 雨生红球藻 . 1
实验 所 用 材 料 由中 国科 学 院海 洋 研 究所 刘 建 国研 究 员馈 赠 ,采 用 MC 培 养基 [ ,2  ̄ 1 2J M 1 0 t . . ¨ mo m-s
的光照强度,于 2 0℃,以 1 1 的光/ 2 h: 2 h 暗周期进行静止培养 。用 10Ia1 -s 0 o. 2 的高光照对细胞处 m m . 理 3 d后 ,离心收集细胞进行 R A 提取。 N 1 菌株 、克隆载体、工具酶 . 2 大肠杆菌菌株 T P1 O 0为本 实验室保存 : N 提取试剂盒 R es l t n Kt Q A E 公司产 R A N ay a i i为 I G N P n Mi
品: 反转录 酶 MML NaeH。和 p lecit K 克 隆载体 均 为美 国 Po g V R s Busr pS rmea公 司产 品 ;质 粒 p K p S ac
一种植物质体表达载体的构建方法及应用与流程技术
一种植物质体表达载体的构建方法及应用与流程技术植物质体表达载体是一种用于将外源基因转化至植物质体中进行表达的工具,具有许多应用于农业、医药和工业领域的潜力。
本文将介绍一种常用的植物质体表达载体构建方法以及其在相关领域的应用和流程技术。
植物质体是细胞中的一种特殊器官,其中包含了丰富的DNA、RNA 和蛋白质。
通过将外源基因导入质体中进行表达,可以使植物细胞产生特定的蛋白质,从而实现对目标基因功能的研究和生产特定蛋白质的目的。
一种常用的植物质体表达载体构建方法是利用嵌合质粒。
嵌合质粒是由质体和细菌染色体DNA片段组合而成的具有双重起源和选择标记的质粒。
该方法的具体步骤如下:步骤一:选择合适的细菌质粒作为载体。
常用的载体包括Agrobacterium、E. coli等。
首先根据需要选择合适的细菌质粒,该质粒需要能够稳定复制并在植物中高效表达外源基因。
步骤二:选择合适的启动子和终止子。
启动子是控制基因转录起始的区域,终止子是控制转录终止的区域。
通过选择适合的启动子和终止子,可以调控外源基因在植物细胞中的表达水平。
步骤三:克隆外源基因。
将目标基因克隆到载体上,通常使用限制酶切和DNA连接技术。
可以选择不同的限制酶来线性化质粒和选择目标基因以适应不同的表达需求。
步骤四:转化植物细胞。
通过植物转基因技术将构建好的载体导入植物细胞中。
常用的方法包括农杆菌介导的转化和基因枪法。
步骤五:筛选转化成功的植物。
使用适当的选择标记基因,如抗生素抗性基因,来标记成功转化的植物细胞。
通过诱导植物细胞分化和培养,最终得到转化植株。
植物质体表达载体在农业、医药和工业领域有广泛的应用。
在农业领域,该技术可以用于改良作物,使其具备抗病虫害、耐逆性、提高产量等特点。
在医药领域,植物质体表达载体可以用于生产重要的药物和疫苗,如疫苗蛋白、抗体等。
在工业领域,该技术可以用于生产生物材料和生物燃料等高附加值产品。
总结起来,植物质体表达载体构建方法主要包括选择合适的载体、启动子和终止子,克隆外源基因,转化植物细胞,筛选转化成功的植物等步骤。
几种新型植物基因表达载体的构建方法
几种新型植物基因表达载体的构建方法摘要:利用基因工程技术手段研究基因功能过程中,构建基因表达载体处于转基因植物的主导地位,采用合适的构建方法会使实验效果事半功倍。
植物基因表达载体的构建方法除了传统构建法、Gateway 技术、三段T-DNA 法、一步克隆法等,还有近年来出现的几种新型的载体构建方法:基于竞争性连接原理快速构建小片段基因表达载体;Micro RNA 前体PCR 置换法适用于构建小分子RNA 表达载体;重组融合PCR 法特别适用于插入片段中含有较多限制性酶切位点的载体构建;利用In-Fusion 试剂盒可以将任何目的片段插入一个线性化载体的某个区域;构建多片段复杂载体可采用不依赖序列和连接的克隆方法(Sequence and ligation-independent cloning, SLIC) 法;Gibson 等温拼接法。
本文将在总结分析前人工作的基础上,分析这6种新方法的特点,期望通过这几种新的方法给植物基因工程表达载体的构建提供新的思路。
关键词: Micro RNA 前体PCR 置换法,In-Fusion 试剂盒法,重组融合PCR 法,Gibson 等温拼接法,Golden Gate 拼接法基因克隆、载体构建是植物功能基因组研究中的常规步骤[ 1 ]。
而载体构建是基因工程和分子生物学研究中常用的基础技术。
随着植物基因工程技术的发展,适合于不同研究目的各种载体系统应运而生,其中在转基因植物中最常用的是质粒载体。
传统的载体构建方法在进行构建多片段拼接的复杂载体时,需要精心选择酶切位点[ 2 ],有时还需要构建多个中间载体,操作比较麻烦,费时费力,因此寻找简单、高效、快捷的载体构建方法具有重要的现实意义。
从1969 年Arber 等发现了限制性内切酶,载体的构建方法逐步发展,从传统构建方法到三段T-DNA、Gateway 等技术延伸出了许多新的载体构建方法。
本文结合自己的实验工作选择介绍了近年来其中几种新型的具有代表性的植物表达载体构建的方法,对其应用的方向、优缺点作出了评估,期望给植物基因工程表达载体的构建提供新的思路。
第九章 植物遗传转化载体
第九章 植物遗传转化载体
一、植物遗传转化载体的种类和特点 二、农杆菌质粒载体系统的结构、功能和构建 三、植物病毒载体 四、叶绿体转化载体 五、常用的选择标记和无选择标记基因转化系统
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第一节、植物遗传转化载体的种类和特点
作为遗传转化载体必须具备的特点:
1、能作为媒介将外源基因导入植物细胞中去(核基因组或细胞内) 2、它能提供被寄主细胞的复制和转录系统识别的DNA序列,以保证导入外源 基因能够在受体植物细胞内正常的复制和表达。
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植物遗传转化载体的种类
1、质粒载体:Ti质粒载体---共整合载体系统 ---双元载体系统(构建方式不同) Ri质粒载体 2、病毒载体系统:单链RNA病毒载体系统 单链DNA病毒载体系统 双链DNA病毒载体系统
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叶绿体表达载体--如何构建载体
如何构建载体1 启动子的选用和改造外源基因表达量不足往往是得不到理想的转基因植物的重要原因。
由于启动子在决定基因表达方面起关键作用,因此,选择合适的植物启动子和改进其活性是增强外源基因表达首先要考虑的问题。
目前在植物表达载体中广泛应用的启动子是组成型启动子,例如,绝大多数双子叶转基因植物均使用CaMV35S启动子,单子叶转基因植物主要使用来自玉米的Ubiquitin启动子和来自水稻的Actinl启动子。
在这些组成型表达启动子的控制下,外源基因在转基因植物的所有部位和所有的发育阶段都会表达。
然而,外源基因在受体植物内持续、高效的表达不但造成浪费,往往还会引起植物的形态发生改变,影响植物的生长发育。
为了使外源基因在植物体内有效发挥作用,同时又可减少对植物的不利影响,目前人们对特异表达启动子的研究和应用越来越重视。
已发现的特异性启动子主要包括器官特异性启动子和诱导特异性启动子。
例如,种子特异性启动子、果实特异性启动子、叶肉细胞特异性启动子、根特异性启动子、损伤诱导特异性启动子、化学诱导特异性启动子、光诱导特异性启动子、热激诱导特异性启动子等。
这些特异性启动子的克隆和应用为在植物中特异性地表达外源基因奠定了基础。
例如,瑞士CIBA-GEIGY公司使用PR-IA启动子控制转基因烟草中Bt毒蛋白基因的表达,由于该启动子可受水杨酸及其衍生物诱导,通过喷酒廉价、无公害的化学物质,诱导抗虫基因在虫害重发生季节表达,显然是一个十分有效的途径。
在植物转基因研究中,使用天然的启动子往往不能取得令人满意的结果,尤其是在进行特异表达和诱导表达时,表达水平大多不够理想。
对现有启动子进行改造,构建复合式启动子将是十分重要的途径。
例如,Ni等人将章鱼碱合成酶基因启动子的转录激活区与甘露碱合成酶基因启动子构成了复合启动子,GUS表达结果表示:改造后的启动子活性比35S启动子明显提高。
吴瑞等人将操作诱导型的PI-II基因启动子与水稻Actinl基因内含子1进行组合,新型启动子的表达活性提高了近10倍(专利)。
表达载体转化的方法
目前外源基因导入叶绿体基因组的方法主要有基因枪转化法、PEG介导转化法、显微注射及激光注射法、转运肤介导的叶绿体间接转化法、电击法等。
(1)基因枪转化法基因枪法是20世纪80年代后期发明的,它是将外源DNA(通常是带有目的基因的质粒载体)如附在金属颗粒(如钨、金等)表面,然后通过高压动力装置将金属颗粒轰击到受体细胞中的特定部位。
基因枪法是目前己被验证的叶绿体基因组转化转化效率最高、采用最多的方法。
大多数己经成功的叶绿体基因组转化都是用这种方法实现的。
它可以通过人为控制,将外源DNA导入到细胞核及细胞器(如叶绿体体、线粒体等部位)中。
基因枪法不受物种和基因型的限制,转化后的组织可以迅速再生成植株,并且这一方法适合于不同种类的植物,其缺点是成本较高,操作复杂,不易普及到所有实验室。
(2)PEG介导转化法PEG介导转化法是在PEG存在的情况下将去壁的受体细胞原生质体暴露在纯化过的外源DNA中,由于PEG的存在,原生质体会先缩水,然后细胞膜结构会发生重构,在细胞膜结构到达不可逆破坏之前除去PEG,细胞膜结构又会回复到原先的自然稳定状态。
在此过程中,外源DNA有机会进入胞内及质体内,从而实现外源基因的转化。
Golds等用PEG介导转化法成功地实现了烟草的原生质体转化,为质体转化提供了一条新的途径。
该方法虽然成本较低,但原生质体的制备和再生比较困难,使得转化植株的再生频率较低,从而限制了这一方法的普遍应用。
到目前为止,只有PEG法在烟草质体转化中获得成功的报道。
(3)显微注射及激光注射法显微注射及激光注射法就是利用能量很高、直径很小的激光微束引起细胞膜可逆性穿孔,从而使处于细胞周围的外源DNA随之进入细胞的转基因方法。
早在1987年,webe等就利用微束激光照射油菜细胞,将用荧光素标记的外源DNA 导入叶绿体,观察到荧光显示,并且发现这一处理对叶绿体的光合能力和细胞的分裂能力影响较小。
由于激光微束穿刺技术操作简便,转化频率高,从而引起了许多科学家的重视,由此带动了此项技术在原生质体遗传转化中的应用与发展。
植物表达载体构建
(三)中间表达载体的构建:
中间载体从功能上看可分为两大类:克隆 载体和表达载体。
克隆载体的主要功能是复制和扩增基因; 表达载体是适于在受体细胞中表达外源基 因的载体。
中间表达载体含有植物特异启动子,因而 能在植物中表达外源基因。
(三)中间表达载体的构建
1.启动子及其它调控序列:
转录的调控对真核生物基因表达起着关键的作用。大多 数真核生物在转录起始点的 5’ 端上游区第 30 至 25bp 处具有 TATA盒,在70至 80bp处还有 CAAT盒;3’ 端具有AATAA序 列。Ti质粒的Nos、Ocs、Tmr等基因都具有与真核生物启动 子类似的 TATA 盒和 CAAT 盒,均能在植物细胞中表达,且 无组织特异性。因此,它们成为早期构建嵌合基因的启动子, 其中以Nos启动子(pNos)最常用。后来发现,由CaMV35s 启动子、外源结构基因和Nos 3’端的非编码区域组成的嵌合 基因,能在植物细胞中高效表达。 CaMV35s 启动子既无组 织特异性,又不受发育时期的影响,是一个较理想的植物基 因工程启动子。 现在已发现很多诱导启动子和特异表达的启动子,被用 于各种不同的转化目的。
2.常用的中间载体及其构建: (1)广谱中间载体: 所谓广谱中间载体是由大肠杆菌广谱质粒克隆 T-DNA片段后 构建而成的。常用的广谱质粒是 RK2 衍生的载体 pRK290 。 由它构建的中间载体既能在大肠杆菌中复制,又能在农杆菌 中复制。
广谱中间载体的构建过程见下图。 ①将选定的T-DNA片段克隆到大肠杆菌质粒上; ②将外源基因连同细菌选择标记(如抗生素抗性)一起插入 到T-DNA片段的限制性切点中; ③将产生的 T-DNA“ 工程”片段亚克隆或共整合到广谱质粒 pRK290。 由于 pRK290 具有在广寄主范围中复制和接合转移的起点, 因而在辅助质粒如 pRK2013 反式动员作用下, pRK290 即可 从大肠杆菌转入根癌农杆菌中。
菊苣叶绿体同源片段的克隆及多顺反子定点整合表达载体的构建
2 B in goBo enl yR sa hCne,ei cdm f g cl r adF r t c ne ,e i 109 , . ei A r-i eho g eer et B in A ae yo A r u ue n oe r Si csBin jg t o c r jg i t sy e j g 007 C i ;.hr ae ta S i csR sac st eX nLbn h r ae t a C .Ld , i n 707 ,h a h a3 P am cu cl c n e eer I tu , i iagP a cu cl o ,t.X 105 C i ) n i e h n it a m i a n
Байду номын сангаас
te crep n igsq e c s ntetb c oc lrpat e o . h s一 s2 t V1 Sr N reigrgo Ge B n h ors o dn e u n e h o a c hoo ls g n me T er 7r l 一 n -6 D A t gt ein( n a k i p p r a n
摘 要 : 用 叶绿体 基 因组进 化 中高度 保 守 的特点 , 烟草 叶绿 体基 因组 全 序列 设计 合成 引 物 , 菊苣 叶绿 体 基因组 中 利 根据 从
扩增 包 括 r 7pl一n - SrN p . s t V1 A基 因在 内的一 段序 列 ( eBn 登 录号 为 G 197 )并 以此 作 为定点 整 合 外 源基 因 的 同 sr 2r 6 D G n ak Q 948 ,
Absr c : i c ho o ls e o s wee h g l o s r aie n e ou in, CR rmes we e d sg e a i g o t a t S n e c lr pa tg n me r ih y c n ev t i v lto P v p i r r e in d b sn n
植物表达载体构建
2.常用的中间载体及其构建: (1)广谱中间载体: 所谓广谱中间载体是由大肠杆菌广谱质粒克隆 T-DNA片段后 构建而成的。常用的广谱质粒是 RK2 衍生的载体 pRK290 。 由它构建的中间载体既能在大肠杆菌中复制,又能在农杆菌 中复制。
广谱中间载体的构建过程见下图。 ①将选定的T-DNA片段克隆到大肠杆菌质粒上; ②将外源基因连同细菌选择标记(如抗生素抗性)一起插入 到T-DNA片段的限制性切点中; ③将产生的 T-DNA“ 工程”片段亚克隆或共整合到广谱质粒 pRK290。 由于 pRK290 具有在广寄主范围中复制和接合转移的起点, 因而在辅助质粒如 pRK2013 反式动员作用下, pRK290 即可 从大肠杆菌转入根癌农杆菌中。
( 1 )共整合系统中间载体:含有与 Ti 质粒 T-DNA 区同源的 序列,此外含有pBR的序列,在其被引入农杆菌后即可高频 地与Ti质粒的T-DNA的同源序列进行重组;具有一个或多个 细菌选择标记,这将有利于筛选共整合质粒;具有 bom位点 (接合转移位点),在有诱导质粒存在的情况下,bom位点 的存在可使中间载体在不同细菌细胞内进行转移;含有植物 阳性选择标记,例如可赋予转化植物细胞卡那霉素抗性的新 霉素磷酸转移酶(neomycin phosphoransferase,Npt-II)基 因,以利于转化植物细胞的筛选;含有单一的限制性内切酶 切点,以利于外源基因的插入;无 Ti 质粒的边界序列 ( 见下 图 )。 ( 2 )双元载体系统中间载体:其与共整合载体的不同之处 是:无同源序列;具有LB和RB;无ColE复制点。
(四)植物基因转化载体系统的构建:
上述构建的中间表达载体仍然不能直接作为植物外 源基因转化的载体,因为中间表达载体仍是一种细菌 的质粒,不能把外源基因转化到植物细胞。因此,必 须进一步把中间载体引入到上述已改造的受体 Ti 质粒 中,并构建成能侵染植物细胞的基因转化载体,才能 应用于植物基因的转化。它是由两种以上质粒构成的 复合型载体,故称之为载体系统。
玉米叶绿体表达载体构建及绿色荧光蛋白基因瞬时表达检测
patgn m b P R fr st—p cf nert n. e o dy te y at p 1 ast ls e o e y C o i s eic itgai S cn l, h e s e i o Ts c set e(尸 一 s—p b — r , h s lT sA t ) p o— e p iohii—ei a t e eB rcse e R sA r— a- pb Байду номын сангаасr n p hn tr n rss n n a ast ( pb poB r sAe )a d N t/ c t g t R cse ecn i igo kn m cn rss n ast o s t f a a y i—ei a t t sn t
Absr c : s n o e e n y n te ao es n h ss Maz ho o ls x rsin v co ab rn h e s t a t l e c d sa k y e z me i rh ls y t ei . ie c lrpa te p e so e t rh r oig t ey a t s i o sr ce n t i p p r F rt te h moo o sfa me t1 S/t ltn l s c n tu td i hs a e . isl h o lg u r g n 6 y, m -rA/2 S wa mp iid fo maz h oo 3 sa l e rm iec lr — f
关 键 词 : 米 ; 绿 体 表 达 载体 ; 时 表 达 ; F 玉 叶 瞬 G P荧光 中 图 分 类 号 : 76 Q 8 文 献 标 识 码 : A 文章 编 号 :0 0— 0 l 20 )4— 0 2— 5 10 7 9 ( 0 8 0 0 7 0
几种植物转基因表达载体的构建方法
Approaches of Constructing Expressional Vectors Utilized in
Plant Genetic Transformation
LIN Chun -jing1 ,WEI Zheng -yi1 , CAI Qin -an1 , HOU Jing -yao1 , 2 , XING Shao -chen1 *
(1 .Biotechnology Research Center, Jilin Academy of Agricultural S ciences , Changchun 130033 , China; 2 .Institute of Genent ics and Cytology, Northeast Normal University , Changchun 130024 , China)
2008 年 18(5) 生 物 技 术 85
随着植物基因 工程 技术 的发展 , 适 合于 不同 研究 目 的各 种载体系统应运而 生 , 其 中在 转基 因植物 中最 常用的 是 质粒
载体 。 在为某种特定的 植物 构建 表达载 体时 , 为 了使 外 源基 因高效 、安全表达 , 或 由于特 定的 要求 , 需要 构建 新载 体 或改 造已有载体 , 而选 择 一种 合适 的 载体 构 建方 法 , 从 而 达到 方 便 、快捷的目的就 显得 十分 重要 。 鉴 于目前 还没 有关 于 对载 体构建技术方面的总结 , 在收集 整理前人工 作的基 础上 , 本文 选择介绍了其中几 种具有 代表 性的策 略 , 对其 适用的 情 况作 了阐述 , 进而指出它们的应用潜 力和主要应 用领域 , 期望 对实 际操作起到借鉴作用 。
第三章植物基因工程载体及其构建ppt文档
筛选标记基因 插入失活法
互补筛选法
Ø lacZ编码β-半乳糖苷酶,乳糖及其衍生物可诱导其表达
(乳糖既是诱导物, 也是底物);
Ø IPTG:乳糖衍生物,可作为lac操纵子的诱导物,但不能 作为反应底物;
Ø X-gal:可作 lac操纵子的底物,不能作为诱导物。还可 作为生色剂,被β-半乳糖苷酶分解后产生兰色物质,使 菌落呈现兰色。
Ø lac Z ΔM15 :缺失β-半乳糖苷酶第11-41个aa; Ø lac Z’ :只编码N端140个aa;
lac Z ΔM15 + lac Z’ =功能互 在lac Z’补编码区上游插入一小片段DNA (如51bp的MCS),
不影响β-半乳糖苷酶的功能互补。但在该小片段DNA中再插 入一个片段,将导致产生无互补能力的β-半乳糖苷酶片段;
4、质粒的不相容性 同种的或亲缘关系相近的两种质粒,含有相似复制子结构, 不能同时稳定地保持在一个细胞内的现象,称为质粒不相 容性。不相容性的质粒组成不相容性群。
在第二个质粒导入后,在不涉及DNA限制系统时,不相容的质 粒一般为利用同一复制系统,质粒分配到子细胞时会发生竞 争,随机挑选,最终放大。
Ø lac Z ΔM15 放在F质粒上,随宿主传代; Ø lac Z’ 放在载体上,作为筛选标记;
Ø 受体菌有JM系列、TG1和XL1-Blue等。
7、天然质粒载体的局限性
(1)分子量大,拷贝数低 第一个用于基因克隆的天然质粒pSC101,分子长 9.1 kb。
但只有一个EcoR I切点充当克隆位点,Tetr 作为筛选标志。
3、质粒的自主复制性
质粒能利用寄主细胞的DNA复制系统进行自主复制质粒。 DNA上的复制子结构决定了质粒与寄主的对应关系根据在每个 细胞中的分子数(拷贝数)多寡,质粒可分为两大复制类型:
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如何构建载体1 启动子的选用和改造外源基因表达量不足往往是得不到理想的转基因植物的重要原因。
由于启动子在决定基因表达方面起关键作用,因此,选择合适的植物启动子和改进其活性是增强外源基因表达首先要考虑的问题。
目前在植物表达载体中广泛应用的启动子是组成型启动子,例如,绝大多数双子叶转基因植物均使用CaMV35S启动子,单子叶转基因植物主要使用来自玉米的Ubiquitin启动子和来自水稻的Actinl启动子。
在这些组成型表达启动子的控制下,外源基因在转基因植物的所有部位和所有的发育阶段都会表达。
然而,外源基因在受体植物内持续、高效的表达不但造成浪费,往往还会引起植物的形态发生改变,影响植物的生长发育。
为了使外源基因在植物体内有效发挥作用,同时又可减少对植物的不利影响,目前人们对特异表达启动子的研究和应用越来越重视。
已发现的特异性启动子主要包括器官特异性启动子和诱导特异性启动子。
例如,种子特异性启动子、果实特异性启动子、叶肉细胞特异性启动子、根特异性启动子、损伤诱导特异性启动子、化学诱导特异性启动子、光诱导特异性启动子、热激诱导特异性启动子等。
这些特异性启动子的克隆和应用为在植物中特异性地表达外源基因奠定了基础。
例如,瑞士CIBA-GEIGY公司使用PR-IA启动子控制转基因烟草中Bt毒蛋白基因的表达,由于该启动子可受水杨酸及其衍生物诱导,通过喷酒廉价、无公害的化学物质,诱导抗虫基因在虫害重发生季节表达,显然是一个十分有效的途径。
在植物转基因研究中,使用天然的启动子往往不能取得令人满意的结果,尤其是在进行特异表达和诱导表达时,表达水平大多不够理想。
对现有启动子进行改造,构建复合式启动子将是十分重要的途径。
例如,Ni等人将章鱼碱合成酶基因启动子的转录激活区与甘露碱合成酶基因启动子构成了复合启动子,GUS表达结果表示:改造后的启动子活性比35S启动子明显提高。
吴瑞等人将操作诱导型的PI-II基因启动子与水稻Actinl基因内含子1进行组合,新型启动子的表达活性提高了近10倍(专利)。
在植物基因工程研究中,这些人工组建的启动子发挥了重要作用。
2 增强翻译效率为了增强外源基因的翻译效率,构建载体时一般要对基因进行修饰,主要考虑三方面内容:2.1添加5`-3`-非翻译序列许多实验已经发现,真核基因的5`-3`-非翻译序列(UTR)对基因的正常表达是非常必要的,该区段的缺失常会导致mRNA的稳定性和翻译水平显著下降。
例如,在烟草花叶病毒(TMV)的126kDa蛋白基因翻译起始位点上游,有一个由68bp核苷酸组成的Ω元件,这一元件为核糖体提供了新的结合位点,能使Gus基因的翻译活性提高数十倍。
目前已有许多载体中外源基因的5`-端添加了Ω翻译增强序列。
Ingelbrecht等曾对多种基因的3`-端序列进行过研究,发现章鱼碱合成酶基因的3`-端序列能使NPTII基因的瞬间表达提高20倍以上。
另外,不同基因的3`-端序列增进基因表达的效率有所不同,例如,rbcS3`-端序列对基因表达的促进作用比查尔酮合酶基因的3`-端序列高60倍。
2.2 优化起始密码周边序列虽然起始密码子在生物界是通用的,然而,从不同生物来源的基因各有其特殊的起始密码周边序列。
例如,植物起始密码子周边序列的典型特征是AACCAUGC,动物起始密码子周边序列为CACCAUG,原核生物的则与二者差别较大。
Kozak详细研究过起始密码子ATG周边碱基定点突变后对转录和翻译所造成的影响,并总结出在真核生物中,起始密码子周边序列为ACCATGG时转录和翻译效率最高,特别是-3位的A对翻译效率非常重要。
该序列被后人称为Kozak序列,并被应用于表达载体的构建中。
例如,有一个细菌的几丁质酶基因,原来的起始密码周边序列为UUUAUGG,当被修饰为ACCAUGG,其在烟草中的表达水平提高了8倍。
因此,利用非植物来源的基因构建表达载体时,应根据植物起始密码子周边序列的特征加以修饰改造。
2.3对基因编码区加以改造如果外源基因是来自于原核生物,由于表达机制的差异,这些基因在植物体内往往表达水平很低,例如,来自于苏云金芽孢杆菌的野生型杀虫蛋白基因在植物中的表达量非常低,研究发现这是由于原核基因与植物基因的差异造成了mRNA稳定性下降。
美国Monsanto公司Perlak等人在不改变毒蛋白氨基酸序列的前提下,对杀虫蛋白基因进行了改造,选用植物偏爱的密码子,增加了GC含量,去除原序列下影响mRNA稳定的元件,结果在转基因植株中毒蛋白的表达量增加了30~100倍,获得了明显的抗虫效果。
3 消除位置效应当外源基因被移人受体植物中之后,它在不同的转基因植株中的表达水平往往有很大差异。
这主要是由于外源基因在受体植物的基因组内插入位点不同造成的。
这就是所谓的"位置效应"。
为了消除位置效应,使外源基因都能够整合在植物基因组的转录活跃区,在目前的表达载体构建策略中通常会考虑到核基质结合区以及定点整合技术的应用。
核基质结合区(matrix association region,MAR)是存在于真核细胞染色质中的一段与核基质特异结合的DNA序列。
一般认为,MAR序列位于转录活跃的DNA环状结构哉的边界,其功能是造成一种分割作用,使每个转录单元保持相对的独立性,免受周围染色质的影响。
有关研究表明,将MAR置于目的基因的两侧,构建成包含MAR-gene-MAR结构的植物表达载体,用于遗传转化,能明显提高目的基因的表达水平,降低不同转基因植株之间目的基因表达水平的差异,减少位置效应。
例如,Allen等人研究了异源MAR(来自酵母)和同源MAR (来自烟草)对Gus基因在烟草中表达的影响,发现酵母的MAR能使转基因表达水平平均提高12倍,而烟草本身的MAR能使转基因的表达水平平均提高60倍。
使用来源于鸡溶菌酶基因的MAR也可起到同样作用。
另一可行的途径是采用定点整合技术,这一技术的主要原理是,当转化载体含有与寄主染色体同源的DNA片段时,外源基因可以通过同源重组定点整合于染色体的特定部位。
实际操作时首先要分离染色体转录活性区域的DNA片段,然后构建植物表达载体。
在微生物的遗传操作中,同源重组定点整合已成为一项常规技术,在动物中外源基因的定点整合已获得成功,而在植物中除了叶绿体表达载体可实现定点整合以外,细胞核转化中还很少有成功的报道。
4 构建叶绿体表达载体为了克服细胞核转化中经常出现的外源基因表达效率低,位置效应及由于核基因随花粉扩散而带来的不安全性等问题,近几年出现的一种新兴的遗传转化技术--叶绿体转化,正以它的优越性和发展前景日益为人们所认识并受到重视。
到目前为止,已在烟草、水稻、拟南芥、马铃薯和油菜(侯丙凯等,等发表)5种植物中相继实现了叶绿体转化,使得这一转化技术开始成为植物基因工程中新的生长点。
由于目前多种植物的叶绿体基因组全序列已被测定,这就为外源基因通过同源重组机制定点整合进叶绿体基因组奠定了基础,目前构建的叶绿体表达载体基本上都属于定点整合载体。
构建叶绿体表达载体基本上都属于定点事例载体。
构建叶绿体表达载体时,一般都在外源基因表达盒的两侧各连接一段叶绿体的DNA序列,称为同源重组片段或定位片段(Targeting fragment)。
当载体被导入叶绿体后,通过这两个片段与叶绿体基因组上的相同片段发生同源重组,就可能将外源基因整合到叶绿体基因组的特定位点。
在以作物改良为目的的叶绿体转化中,要求同源重组发生以后,外源基因的插入既不引起叶绿体基因原有序列丢失,又不致于破坏插入点处原有基因的功能。
为满足这一要求,已有的工作都选用了相邻的两个基因作为同源重组片段,例如rbcL/accD,16StrnV/rpsl2rps7,psbA/trnK,rps7/ndhB。
当同源重组发生以后,外源基因定点插入在两个相邻基因的间隔区,保证了原有基因的功能不受影响。
最近,Daniel等利用烟草叶绿体基因trnA和trnI作为同源重组片段,构建了一种通用载体(universal vector)。
由于trnA和trnI的DNA序列在高等植物中是高度保守的,作者认为这种载体可用于多种不同植物的叶绿体转化。
如果这种载体的通用性得到证实,那么这项工作无疑为构建方便而实用的新型叶绿体表达载体提供了一个好的思路。
由于叶绿体基因组的高拷贝性,定点整合进叶绿体基因组的外源基因往往会得到高效率表达,例如McBride等人首次将Bt CryIA(c)毒素基因转入烟草叶绿体,Bt毒素蛋白的表达量高达叶子总蛋白的3%~5%,而通常的核转化技术只能达到0.001%~0.6%。
最近,Kota等将Bt Cry2Aa2蛋白基因转入烟草转入烟草叶绿体,也发现毒蛋白在烟草叶子中的表达量很高,占可溶性蛋白的2%~3%,比细胞核转化高出20~30倍,转基因烟草不仅能抗敏感昆虫,而且能够百分之百地杀死那些产生了高抗性的昆虫。
Staub等最近报道,将人的生长激素基因转入烟草叶绿体,其表达量竟高达叶片总蛋白的7%,比细胞核转化高出300倍。
这些实验充分说明,叶绿体表达载体的构建和转化,是实现外源基因高效表达的重要途径之一。
5 定位信号的应用上述几种载体优化策略主要目的是提高外源基因的转录和翻译效率,然而,高水平表达的外源蛋白能否在植物细胞内稳定存在以及积累量的多少是植物遗传转化中需要考虑的另一重要问题。
近几年的研究发现,如果某些外源基因连接上适当的定位信号序列,使外源蛋白产生后定向运输到细胞内的特定部位,例如:叶绿体、内质网、液泡等,则可明显提高外源蛋白的稳定性和累积量。
这是因为内质网等特定区域为某些外源蛋白提供了一个相对稳定的内环境,有效防止了外源蛋白的降解。
例如,Wong等将拟南芥rbcS亚基的转运肽序列连接于杀虫蛋白基因之前,发现杀虫蛋白能够特异性地积累在转基因烟草的叶绿体内,外源蛋白总的积累量比对照提高了10~20倍。
最近,叶梁、宋艳茹等也将rbcS亚基的转运肽序列连接于PHB 合成相关基因之前,试图使基因表达产物在转基因油菜种子的质体中积累,从而提高外源蛋白含量。
另外,Wandelt等和Schouten等将内质网定位序列(四肽KDEL的编码序列)与外源蛋白基因相连接,发现外源蛋白在转基因植物中的含量有了显著提高。
显然,定位信号对于促进蛋白质积累有积极作用,但同一种定位信号是否适用于所有的蛋白还有待于进一步确定。
6 内含子在增强基因表达方面的应用内含子增强基因表达的作用最初是由Callis等在转基因玉米中发现的,玉米乙醇脱氢酶基因(Adhl)的第一个内含子(intron 1)对外源基因表达有明显增强作用,该基因的其他内含子(例如intron8,intron9)也有一定的增强作用。