微生物采样方案

微生物水样采集操作方法

微生物水样采集是为了研究水体中的微生物群落和微生物活性而进行的，下面是一些常用的微生物水样采集操作方法：

1. 工具准备：准备好干净的采样瓶、好氧钳、无菌手套、无菌穿刺器等。

2. 现场采集：选择采集点位，避免靠近底栖生物、污染源等干扰因素。在采集前要先用无菌水冲洗采集瓶，掌握好采集方法和时间。

3. 采集水样：将采集瓶收集到需要采集的水体位置，慢慢将瓶口放入水体中，然后打开瓶盖，在快速采集完成后，立即封闭瓶口以防止空气进入。

4. 保存水样：将采集的水样放入冷藏箱中，如无法立即处理，则需在4条件下保存。避免水样温度升高导致微生物活性改变。

5. 无菌操作：在采集过程中要佩戴无菌手套，尽量避免手直接接触水样。

6. 消毒工具：在采集前需要将工具进行高温高压灭菌或使用酒精或漂白粉进行消毒。

7. 采样时间：根据所需研究内容决定采样时间，但一般来说，上午采样时微生物的活性较高。

8. 注意事项：避免对水体的污染，注意安全。

以上是一些常见的微生物水样采集操作方法，具体方法会因研究目的、水体类型而有所区别。在进行操作前，最好根据实际需要进行相应的培训和学习。

微生物取样方法

微生物取样方法 It was last revised on January 2, 2021

微生物取样方法

举例一：

一、空气采样及检验方法

1培养基：普通营养琼脂平板，按中条配制

2采样（空气沉降法）

布点：面积小于30平方米的车间，设一对角线，在线上取3点，即中心一点，两端在距墙1米处各取一点；面积大于30平方米的车间，设东、西、南、北、中5个点，其中东、西、南、北点均距墙1米。

采样高度：与地面垂直高度80-150厘米。

采样方法；用直径为9厘米的普通营养琼脂平板在采样点上暴露20分钟盖上送检培养。

3培养：于37℃培养24小时。

4检测频率：每周

空气质量标准：

生车间、熟车间、成品车间：低于100个

半成品库、成品库：低于10个

二、设备的采样与检验方法

根据生产过程所要求的重点卫生部位，实验室对其进行涂抹采样，进行细菌总数检验。

1采样方法

涂抹法（适用于表面平坦的设备和工器具产品接触面）

取经过灭菌的铝片框（框内面积为50平方厘米）放在需检查的部位上，用无菌棉球蘸上无菌生理盐水擦拭铝片中间方框部分，擦完后立即将棉球投入盛有10毫升无菌生理盐水的试管中，此液每毫升代表5平方厘米。

贴纸法（适用于表面不平坦的设备和工器具接处面）

将无菌规格纸（5×5厘米，纸质要薄而软）用无菌生理盐水泡湿后，于需测部分分别贴上两张，两张纸面积共50平方厘米，然后取下放入盛有10毫升无菌生理盐水的试管中，此液每毫升代表5平方厘米。

2检验方法

细菌总数的检验

将上述样液充分振摇，根据卫生情况，相应地做10倍递增稀释，选择其中2-3个合适的稀释度作平皿倾注培养，培养基用普通营养琼脂，每个稀释度作2个平皿，每个平皿注入1毫升样液，于37℃培养24小时后计菌落数。

微生物检查操作方法

微生物检查操作方法主要包括以下几个步骤：

1. 样品采集：根据检测的需要，选择适当的方法采集样品。常见的采样方法包括直接涂抹、刷拭、扩散采样等。

2. 样品处理：将采集得到的样品进行处理，以获得代表性的微生物菌落。处理方法包括稀释、离心、过滤等。

3. 培养方法：根据检测需求，选择适宜的培养基和培养条件进行培养。常用的培养基有营养琼脂、血琼脂、麦康凯琼脂等。

4. 培养操作：将处理后的样品转移到培养基上，通过涂布、滴种、稀释等方法进行培养。培养过程中需严格控制温度、湿度和氧气供应等条件。

5. 菌落观察：培养一定时间后，观察培养基上是否有菌落的生长，根据菌落形态、颜色、大小等特征初步判断微生物的类型。

6. 菌落鉴定：通过进一步的实验方法，如形态学特征、生理生化反应、分子生物学方法等，对菌落进行鉴定，确定微生物的种类。

7. 数据处理：将检测结果记录和整理，根据标准进行判断和评价，生成相应的

检测报告。

需要注意的是，在操作过程中要严格遵守无菌操作规范，避免外界污染，保证检测结果的准确性和可靠性。另外，不同类型的微生物检查方法可能有所差异，具体操作步骤还需根据检测要求和检测方法进行调整。

微生物取样方法

举例一：

一、空气采样及检验方法

1培养基：普通营养琼脂平板，按GB4789.28中3.7条配制

2采样（空气沉降法）

2.1布点：面积小于30平方米的车间，设一对角线，在线上取3点，即中心一点，两端在距墙1米处各取一点；面积大于30平方米的车间，设东、西、南、北、中5个点，其中东、西、南、北点均距墙1米。

2.2采样高度：与地面垂直高度80-150厘米。

2.3采样方法；用直径为9厘米的普通营养琼脂平板在采样点上暴露20分钟盖上送检培养。

3培养：于37℃培养24小时。

4检测频率：每周

空气质量标准：

生车间、熟车间、成品车间：低于100个

半成品库、成品库：低于10个

二、设备的采样与检验方法

根据生产过程所要求的重点卫生部位，实验室对其进行涂抹采样，进行细菌总数检验。

1采样方法

1.1涂抹法（适用于表面平坦的设备和工器具产品接触面）

取经过灭菌的铝片框（框内面积为50平方厘米）放在需检查的部位上，用无菌棉球蘸上无菌生理盐水擦拭铝片中间方框部分，擦完后立即将棉球投入盛有10毫升无菌生理盐水的试管中，此液每毫升代表5平方厘米。

1.2贴纸法（适用于表面不平坦的设备和工器具接处面）

将无菌规格纸（5×5厘米，纸质要薄而软）用无菌生理盐水泡湿后，于需测部分分别贴上两张，两张纸面积共50平方厘米，然后取下放入盛有10毫升无菌生理盐水的试管中，此液每毫升代表5平方厘米。

2检验方法

2.1细菌总数的检验

将上述样液充分振摇，根据卫生情况，相应地做10倍递增稀释，选择其中2-3个合适的稀释度作平皿倾注培养，培养基用普通营养琼脂，每个稀释度作2个平皿，每个平皿注入1毫升样液，于37℃培养24小时后计菌落数。

微生物样品的取样方法及取样要求

样品取样的要求

1）在取样之前应确认货、证是否相符。2）取样过程中应避免与水等环境的不良因素影响，防止样品被污染。3）取样用具（如注射器、采血管、试管、探子、铲子、匙、取样器、剪子、样品袋等）必须是经过灭菌的。4）对采集的样品一般要求随机取样。若怀疑最有可能受病原体污染或者带有病原体的样品，可以进行选择取样。5）根据样品种类（如盒装、袋装、瓶装和罐装），应取完整密封的样品。如果样品很大，则需用无菌取样器取样；若样品是粉末，应边取边混合；若样品是液体的，通过振摇即可混匀；若样品是冷冻的，应保持冷冻状态（可放在冰内、冰箱的冷盒内或低温冰箱内保存），而非冷冻动物产品须保持在0℃~5℃中保存。6）取样前或取样后应在盛装样品的容器或样品袋上立即贴上标签，每件样品必须标记清除（包括品名、来源、数量、取样地点、取样人及取样日期）。7）获取有关取样产品的信息：如样品名称、批量大小、包装类型、包装容器体积、生产线、产品编号或控制号、批量号、标签内容、包装破损状况、产品存放地点或建筑物的基本情况等。8）当客户对所规定的取样程序有偏离、添加或删节的要求时，应详细记录这些要求和相关的取样资料，并记入包含检测结果的所有文件中，同时告知相关人员。9）当取样作为检测一部分时，实验室应有程序记录与取样有关的资料和操作。这些纪录应包括所用的取样程序、取样人的识别、环境条件（如果相关）、必要时有抽样地点的图示或其他等效方法，如果合适，还应包括取样程序所依据的统计方法。

食品微生物学的取样点

食品微生物的取样计划中常包括以下取样点：原料、生产线（半成品、环境）、成品、库存样品、零售商店、或批发市场、进口或出口口岸。原料的取样包括食品生产所用的原始材料、添加剂、辅助材料及生产用水等。生产线样品是指食品生产过程中不同加工环节所取的样品，包括半成品、加工台面、与被加工食品接触的仪器面以及操作器具等。对生产线样品的采集能够确定细菌污染的来源，可用于食品加工企业对产品加工过程卫生状况的了解和控制，同时能够用于特定产品生产环节关键控制点的确定和HACCP的验证工作。另外还可以配合生产加工，在生产前后或生产过程中对环境样品（如地面、墙壁、天花板以及空气等）取样进行检验，以检测加工环境的卫生状况。库存样品的取样检验可以测定产品在保质期内微生物的变化情况，同时也可以间接对产品的保质期是否合理进行验证。零售商店或批发市场的样品的检测结果，能够反映产品在流通过程中微生物的变化情况，能够对改进产品的加工工艺起到反馈作用。进口或出口样品通常是按照进出口商所签订的合同进行取样和检测的。但要特别注意的事，进出口食品的微生物指标除满足进出口合同或信用证条款的要求外，还必须符合进口国的相关法律规定，如世界上很多国家禁止含有致病菌的食品进口。不同样品的取样方法（1）包装食品①直接食用的小包装食品：尽可能取原包装，直到检验前不要开封，以防污染。②桶装或大容器包装的液体食品：取样前应摇动或用灭菌棒搅拌液体，尽量使其达到均质；取样时应将取样用具浸入液体内略加漂洗，然后再取所需量的样品，装入灭菌容器的量不应超过其容量的四分之三，以便于检验前将样品摇匀；取完样品后，应用消毒的温度计插入液体内测量食品的温度，并作记录。尽可能不用水银温度计测量，以防温度计破碎后水银污染食品；如为非冷藏易腐食品，应迅速将所取样品冷却至0℃~4℃。③桶装或大容器包装的

菌落总数测定取样方案

1. 引言

菌落总数测定是一种常用的微生物测定方法，用于评估样品中的微生物菌落总数。本文档旨在介绍菌落总数测定的取样方案，包括取样器材、取样位置、取样方法等内容。

2. 取样器材

为了确保取样的准确性和可靠性，以下是常用的取样器材：

•无菌塑料勺

•无菌橡胶手套

•无菌塑料袋

•无菌培养基

•无菌培养皿

•无菌蒸馏水

注意：在进行取样前，所有器材需要进行有效的灭菌处理，以避免污染取样样品。

3. 取样位置

为了得到对样品整体微生物菌落数的评估，取样位置的选择非常重要。根据具体情况，在进行菌落总数测定时，可以选择以下几个位置进行取样：

3.1 产品表面

如果需要评估产品表面的微生物菌落总数，应在产品表面随机选择几个位置进行取样。取样位置应包括整个表面的不同部位，以确保样品的代表性。

3.2 生产环境

如果需要评估生产环境中的微生物菌落总数，可以在生产车间、设备表面等位置进行取样。确保在不同时间点和不同位置进行取样，以获取全面的评估结果。

4. 取样方法

取样方法直接影响到菌落总数测定结果的准确性。以下是常用的取样方法：

4.1 产品表面取样方法

1.先戴上无菌橡胶手套，避免手部细菌的污染。

2.使用无菌塑料勺，在产品表面随机选择取样位置。

3.将勺子平放在所选位置上，轻轻刮取一定量的样品，并放入无菌塑料

袋中。

4.将取样后的塑料袋密封，并标明取样位置和日期。

4.2 生产环境取样方法

1.先戴上无菌橡胶手套，避免手部细菌的污染。

2.使用无菌培养皿或无菌塑料勺，在生产环境选择取样位置。

3.将培养皿或勺子接触到所选位置，并轻轻拭取一定量的样品。

微生物限量采样方案

采样方案分为二级与三级方案,二级采样方案设有ｎ、c、m值,三级采样方案设有ｎ、c、ｍ与M值。

ｎ:同一批次产品应采集的样品件数

c:最大可允许超出m值的样品数

m:微生物指标可接受水平的限量值

M:微生物指标的最高安全限量值

例:ｎ=5,c=2,m=100ｃfu/g,M＝1０00cｆu/ｇ,即从一批产品中采集５个样品,若５个样品的检测结果均小于或等于m值(≤１00ｃｆｕ/ｇ),则这种情况就是允许的,若≤２个样品的结果(Ｘ)位于m值与M值之间(１０0cfｕ/ｇ≤X≤1０００cfu/g),则这种情况也就是允许的;若有3个及以上样品的检验结果位于m与M之间,则这种情况就是不允许的;若有任一样品的检验结果大于M(>1000cfｕ/g),则这种情况也就是不允许的。

0/25g a,标准限量,就就是每２5g样品不得检出。a通常为５次。

挥发性盐基氮:代表动物蛋白受微生物的作用程度,就是动物蛋白新鲜度的代表。

MPN:基于泊松分布的一种间接计数方法,mosｔ pｒobａble number

GB 77１8,直接向消费者提供的预包装食品标签,标示应包括食品名称、配料表、净含量与规格。生产者与经销商的名称、地址与联系方式、生产日期与保质期、贮存条件、食品生产许可证编号、产品标准代号及其她需要标识的内容。

ADI:每日允许摄入量 aｃｃeptable daｉlｙ iｎtaｋｅ。

净含量字体高度≥４mm。

下列预包装食品豁免强制标示营养标签

1、生鲜食品如包装的生肉、生鱼、生蔬菜与水果、禽蛋等

2、乙醇含量≥0.５％的饮料酒类

微生物标本的采集方法.

☂ Ⅰ类环境：洁净手术室Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、 Ⅳ级：
Ⅰ级手术区≤0.2cfu/30min. ￠90皿周边区 ≤0.4cfu/30min. ￠90皿（100级）6号手术间 Ⅱ级手术区≤0.75cfu/30min. ￠90皿周边区 ≤1.5cfu/30min. ￠90皿 Ⅲ级手术区≤2cfu/30min. ￠90皿周边区 ≤4cfu/30min. ￠90皿（10000级）5号手术间 Ⅳ级≤6cfu/30min. ￠90皿

4、Ⅲ、 Ⅳ类环境、监测标准：儿科病房、母婴同室、妇产科检查室、人流室、治疗室、换药室、消毒供应中心、血液透析中心(室)、急诊室、化验室、各类普通病房、感染疾病科门诊及其病房，空气中的细菌菌落总数≤4CFU／(5min· 直径9cm平皿)
G B50333-2013《医院洁净手术部建筑技术规范》3.0.2-2
1、监测时间：每季度一次
2、Ⅰ类环境、监测标准：洁净手术部(室)和其他洁净场所，空气中的细菌菌落总数要求应遵循G B50333-2013《医院洁净手术部建筑技术规范》3.0.2-2

3、Ⅱ类环境监、测标准：非洁净手术部(室)、产房、重症监护病房，空气中的细菌菌落总数≤4CFU／(15min· 直径9cm平皿)
如因怀疑CRBSI移除皮下埋置式静脉输液港，港内容物及导管尖端作定量培养。
☂血培养常见错误

微生物采样方案和限量要求

一、引言

微生物是一类极小的生物体，包括细菌、真菌、病毒等。微生物的采样是研究微生物学、环境科学、医学等领域的重要基础工作。为了保证采样结果的准确性和可比性，需要制定合适的微生物采样方案，并对采样限量进行要求。

二、微生物采样方案

1. 采样目的：明确采样目的，如研究微生物多样性、环境污染程度等。

2. 采样地点：选择代表性和典型性的采样点，确保采样结果具有代表性。

3. 采样工具：根据采样目的和环境特点，选择合适的采样工具，如采样棉签、培养皿等。

4. 采样方法：根据采样目的和样品类型，选择合适的采样方法，如刷拭法、吸附法、过滤法等。

5. 采样时间：根据微生物的生活特性，选择合适的采样时间，如白天、夜晚、季节等。

6. 采样频率：根据采样目的和研究需要，确定合适的采样频率，如每天、每周、每月等。

三、限量要求

微生物采样过程中，为了保证采样结果的准确性和可比性，需要对采样限量进行要求。限量要求主要包括以下几个方面：

1. 采样体积：根据采样目的和分析方法的要求，确定采样体积，如100 ml、500 ml等。

2. 采样面积：根据采样目的和样品类型，确定采样面积，如10 cm²、100 cm²等。

3. 采样时间：根据微生物的生活特性和采样目的，确定采样时间，如15分钟、30分钟等。

4. 采样剂量：根据样品类型和分析方法的要求，确定采样剂量，如10 mg、50 mg等。

5. 采样次数：根据采样目的和研究需求，确定采样次数，如3次、5次等。

四、采样方案与限量要求的重要性

合理的微生物采样方案和限量要求对于保证采样结果的准确性和可比性至关重要。只有在明确的采样方案指导下，采样人员才能准确选择采样点、采样工具和采样方法，从而获得具有代表性的样品。同时，严格的限量要求可以避免采样过程中的人为误差，确保采样结果的准确性和可靠性。

微生物标本的正确采集

微生物检验标本的正确采集及注意事项

临床微生物标本的采集应在抗生素应用前或停药一周后进行，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应用前采集。各种标本采集后应立即送检；无菌部位的标本采集应严格无菌操作。

一、血液及骨髓标本的采集

【标本送检指征】

病人出现以下临床表现，或同时具备以下几种临床表现时应采集血培养。

1 发热（≥38℃）或低温（≤36℃）

2 寒战

3 白细胞增多（＞10×109/L，特别有“核左移”时）

4 粒细胞减少（成熟的多形核白细胞＜1×109/L）

5 血小板减少

6 皮肤、粘膜出血

7 昏迷、休克

8 多器官衰竭

9 血压降低

10 呼吸加快

几种特殊情况：

1 可疑新生儿败血症时，除发热或低温外，很少培养出细菌，应增加尿液和脑脊液培养。

2 老年菌血症病人可能不发热或不低温，如伴有身体不适、肌痛或中风，可能是感染性心内膜炎，也应采取血培养。

骨髓培养与血液培养的送检指征是基本一致的，临床常规血液感染有指征时以抽取血培养为主。但当骨髓炎时或长期使用抗菌药物患者，抽取骨髓培养阳性率会远高于血培养。

【标本采集的容器】

各种血培养仪配套血培养瓶(分为中和抗生素成人需氧瓶、中和抗生素成人厌氧瓶、儿童瓶)

【标本的采集方法】

防止皮肤寄生菌或环境微生物引起的污染是血培养的关键问题，采血前严格执行消毒程序是十分重要的。

1 皮肤消毒程序：

严格按以下三步法进行：

(1) 75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s 以上。

(2) 用一根碘酊或聚维酮碘（碘伏）棉签消毒皮肤，1～2％碘酊作用30s 或聚维酮碘作用60s，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上。

微生物检测标准

微生物取样方法、微生物检测标准

举例一：

一、空气采样及检验方法

1培养基：普通营养琼脂平板，按GB4789.28中3.7条配制

2采样（空气沉降法）2.1布点：面积小于30平方米的车间，设一对角线，在线上取3点，即中心一点，两端在距墙1米处各取一点；面积大于30平方米的车间，设东、西、南、北、中5个点，其中东、西、南、北点均距墙1米。

2.2采样高度：与地面垂直高度80-150厘米。2.3采样方法；用直径为9厘米的普通营养琼脂平板在采样点上暴露20分钟盖上送检培养。

3培养：于37°C培养24小时。

4检测频率：每周空气质量标准：生车间、熟车间、成品车间：低于100个半成品库、成品库：低于10个二、设备的采样与检验方法根据生产过程所要求的重点卫生部位，实验室对其进行涂抹采样，进行细菌总数检验。

1采样方法

1.1涂抹法（适用于表面平坦的设备和工器具产品接触面）取经过灭菌的铝片框（框内面积为50平方厘米）放在需检查的部位上，用无菌棉球蘸上无菌生理盐水擦拭铝片中间方框部分，擦完后立即将棉球投入盛有10毫升无菌生理盐水的试管中，此液每毫升代表5平方厘米。

1.2贴纸法（适用于表面不平坦的设备和工器具接处面）

将无菌规格纸（5X5厘米，纸质要薄而软）用无菌生理盐水泡湿后，于需测部分分别贴上两张，两张纸面积共50平方厘米，然后取下放入盛有10毫升无菌生理盐水的试管中，此液每毫升代表5平方厘米。

2检验方法

2.1细菌总数的检验将上述样液充分振摇，根据卫生情况，相应地做10倍递增稀释，选择其中2-3个合适的稀释度作平皿倾注培养，培养基用普通营养琼脂，每个稀释度作2个平皿，每个平皿注入1毫升样液，于37C培养24小时后计菌落数。

微生物取样方法

举例一：

一、??????空气采样及检验方法

1培养基：普通营养琼脂平板，按GB4789.28中3.7条配制

2采样（空气沉降法）

2.1布点：面积小于30平方米的车间，设一对角线，在线上取3点，即中心一点，两端在距墙1米处各取一点；面积大于30平方米的车间，设东、西、南、北、中5个点，其中东、西、南、北点均距墙1米。

2.2

2.3

3

4

1

1.1

1.2

5

2

2.1细菌总数的检验

将上述样液充分振摇，根据卫生情况，相应地做10倍递增稀释，选择其中2-3个合适的稀释度作平皿倾注培养，培养基用普通营养琼脂，每个稀释度作2个平皿，每个平皿注入1毫升样液，于37℃培养24小时后计菌落数。

结果计算

表面细菌总数（cfu/cm2）=平皿上菌落的平均数×样液稀释倍数/30×2

2.2致病菌的检验

沙门氏菌，参照GB4789.4进行

金黄色葡球菌，参照GB7918.5进行

4.检验合格标准：细菌总数10－100个∕cm2，

5.关键点：细菌总数≤10个∕cm2

一般区域：细菌总数≤100个∕cm2

三、人员手表面细菌污染情况的检验

1.??????采样方法：用一支蘸有无菌生理盐水的棉拭子涂擦被检对象手的全部，反复两次，涂擦的时候棉拭子要相应地转动，擦完后，将手接触部分剪去，将棉拭子放入装有10毫升无菌生理盐水的试管内送检培养。

2.??????检验方法：同工器具表面细菌总数检验方法。

3.??????结果计算：每只手表面的细菌总数（cfu/只手）=平皿上菌落的平均数×样液稀释倍数

1

2

W/V）土温80

翻3

等于1

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微生物取样方法大全

微⽣物取样⽅法⼤全

随着⾼通量技术的发展，我们对微⽣物的认识逐步深⼊，微⽣物在临床以及科研上的应⽤越来越多，⽽微⽣物采样的正确与否直接关系到微⽣物数据的准确性。

因此，微⽣物的采样⽅法就显得格外重要。

⾸先，我们需要在取样的过程中，注意以下⼏个⽅⾯：

(1) 所有实验⽤到的取样⽤具必须是经过灭菌的（如样品袋、取样器、采⾎管、试管、铲⼦、匙、⼑类⼯具等）。

(2) 收集样品信息，取样前或取样后应在盛装样品的容器或样品袋上⽴即贴上标签，每件样品必须标记清楚（例如品名、来源、数量、取样地点、取样⼈及取样⽇期等）。

(3) 请尽量将样本分装 3-5 份备份；建议每组取 6 个及以上重复较为合适，⾄少 3 个重复。

(4) ⽤到⾕⽲取样管的实验样品，可以常温运输；如果不⽤取样管，则必须低温-80℃保存，保存期间切忌反复冻融；低温寄送时请将样品置于泡沫箱中，⽤⼲冰寄送。

然⽽样品种类繁多，不同的样品取样有不同的⽅案，下⾯详细介绍每类样品对应的取样⽅案。

环境微⽣物

普通⼟壤

(1) 去除表⾯浮⼟、凋落物等，根据⼟壤情况，选择是否过2mm筛⽹，每个样品从3个及以上采样点采集并混合⽽成，建议将样本分装 3-5 份备份；

注：采样时需注意每个采样点的取⼟深度及采样量应均匀⼀致，⼟样上层与下层的⽐例要相同。

(2) 保存于⽆菌离⼼管中，置于泡沫箱（冰袋或⼲冰）中，0°C以下运回实验室；

(3) 如果条件不允许⽴即提DNA，可将样品置于-80°C冰箱中保存，并通过⼲冰寄送⾄公司后提取样品总 DNA。

根际⼟壤

根际，是指受植物根系活动影响，在物理、化学和⽣物学性质上不同于⼟体的那部分微域环境。部分研究是针对⼟壤微⽣物与植物之间的相互关系，因此需要对根际⼟进⾏取样。

微生物取样方法

举例一：

一、空气采样及检验方法

1培养基：普通营养琼脂平板，按GB4789.28中3.7条配制

2采样（空气沉降法）

2.1布点：面积小于30平方米的车间，设一对角线，在线上取3点，即中心一点，两端在距

墙1米处各取一点；面积大于30平方米的车间，设东、西、南、北、中5个点，其中东、西、

南、北点均距墙1米。

2.2采样高度：与地面垂直高度80-150厘米。

2.3采样方法；用直径为9厘米的普通营养琼脂平板在采样点上暴露20分钟盖上送检培养。

3培养：于37℃培养24小时。

4检测频率：每周

空气质量标准：

生车间、熟车间、成品车间：低于100个

半成品库、成品库：低于10个

二、设备的采样与检验方法

根据生产过程所要求的重点卫生部位，实验室对其进行涂抹采样，进行细菌总数检验。

1采样方法

1.1涂抹法（适用于表面平坦的设备和工器具产品接触面）

取经过灭菌的铝片框（框内面积为50平方厘米）放在需检查的部位上，用无菌棉球蘸上无菌

生理盐水擦拭铝片中间方框部分，擦完后立即将棉球投入盛有10毫升无菌生理盐水的试管

中，此液每毫升代表5平方厘米。

1.2贴纸法（适用于表面不平坦的设备和工器具接处面）

将无菌规格纸（5×5厘米，纸质要薄而软）用无菌生理盐水泡湿后，于需测部分分别贴上两

张，两张纸面积共50平方厘米，然后取下放入盛有10毫升无菌生理盐水的试管中，此液每

毫升代表5平方厘米。

2检验方法

2.1细菌总数的检验

将上述样液充分振摇，根据卫生情况，相应地做10倍递增稀释，选择其中2-3个合适的稀释

度作平皿倾注培养，培养基用普通营养琼脂，每个稀释度作2个平皿，每个平皿注入1毫升

微生物采样方案范文

一、引言

二、采样位置选择

1.土壤样品：土壤样品通常在不同地点采集，并根据土壤剖面深度进

行分层采样。选择代表性的土壤样品可以更全面地了解土壤中的微生物群

落组成和功能。

3.气溶胶样品：气溶胶样品采集可以反映空气中微生物群落的多样性。可以在室外采样点或者室内空气中进行采集，选择不同的孔径滤膜可以筛

选不同大小范围的微生物。

4.动物体表样品：动物体表样品采集可以了解动物体表微生物多样性。可以选择不同物种、不同部位进行采样，如皮肤、肠道等。

三、采样时间选择

1.定时采样：每天、每周或每月在同一时间点进行采样，以了解微生

物群落的日节律或季节性变化。

2.事件采样：根据特殊事件的发生，如降雨、大气污染事件等，选择

相应的时间点进行采样，以了解特定事件对微生物群落的影响。

3.持续采样：在一定时间段内每隔一定的时间间隔进行采样，以了解

微生物群落的持续变化。

四、采样设备选择

选择合适的采样设备对样品的采集和保存至关重要。根据采样对象和

研究目的的不同，可以选择以下常用的采样设备：

1.土壤样品采集：常用的设备包括土壤钻孔器、土壤钻探器、土壤钻取器等。采集时应避免污染，可以使用消毒过的器具，并注意保持采样设备与空气接触的时间不宜过长，以减少氧化还原的影响。

2.水样品采集：水样品采集设备可以根据采样位置选择不同的器具，如水勺、水样瓶、自动采样器等。为了减少微生物在采样过程中的变化，应尽量避免接触空气和暴露在阳光下。

3.气溶胶样品采集：常用的采样设备有空气采样器、个人样品采集器等。选择不同的设备可以根据所需采集的微生物大小范围进行筛选。

微生物取样方法

举例一：

一、空气采样及检验方法

1培养基：普通营养琼脂平板，按GB4789.28中3.7条配制

2采样（空气沉降法）

2.1布点：面积小于30平方米的车间，设一对角线，在线上取3点，即中心一点，两端在距墙1米处各取一点；面积大于30平方米的车间，设东、西、南、北、中5个点，其中东、西、南、北点均距墙1米。

2.2采样高度：与地面垂直高度80-150厘米。

2.3采样方法；用直径为9厘米的普通营养琼脂平板在采样点上暴露20分钟盖上送检培养。3培养：于37℃培养24小时。

4检测频率：每周

空气质量标准：

生车间、熟车间、成品车间：低于100个

半成品库、成品库：低于10个

二、设备的采样与检验方法

根据生产过程所要求的重点卫生部位，实验室对其进行涂抹采样，进行细菌总数检验。

1采样方法

1.1涂抹法（适用于表面平坦的设备和工器具产品接触面）

取经过灭菌的铝片框（框内面积为50平方厘米）放在需检查的部位上，用无菌棉球蘸上无菌生理盐水擦拭铝片中间方框部分，擦完后立即将棉球投入盛有10毫升无菌生理盐水的试管中，此液每毫升代表5平方厘米。

1.2贴纸法（适用于表面不平坦的设备和工器具接处面）

将无菌规格纸（5×5厘米，纸质要薄而软）用无菌生理盐水泡湿后，于需测部分分别贴上两张，两张纸面积共50平方厘米，然后取下放入盛有10毫升无菌生理盐水的试管中，此液每毫升代表5平方厘米。

2检验方法

2.1细菌总数的检验

将上述样液充分振摇，根据卫生情况，相应地做10倍递增稀释，选择其中2-3个合适的稀释度作平皿倾注培养，培养基用普通营养琼脂，每个稀释度作2个平皿，每个平皿注入1毫升样液，于37℃培养24小时后计菌落数。