primer5和Oligo结合设计引物步骤及心得
primer5和oligo使用技巧概况
一、Primer Premier 5.0 的使用技巧简介1. 功能“Premier”的主要功能分四大块,其中有三种功能比较常用,即引物设计、限制性内切酶位点分析和DNA 基元(motif查找。
“Premier”还具有同源性分析功能,但并非其特长,在此略过。
此外,该软件还有一些特殊功能,其中最重要的是设计简并引物,另外还有序列“朗读”、DNA 与蛋白序列的互换、语音提示键盘输入等等。
有时需要根据一段氨基酸序列反推到DNA 来设计引物,由于大多数氨基酸(20 种常见结构氨基酸中的18 种的遗传密码不只一种,因此,由氨基酸序列反推DNA 序列时,会遇到部分碱基的不确定性。
这样设计并合成的引物实际上是多个序列的混和物,它们的序列组成大部分相同,但在某些位点有所变化,称之为简并引物。
遗传密码规则因物种或细胞亚结构的不同而异,比如在线粒体内的遗传密码与细胞核是不一样的。
“Premier”可以针对模板DNA 的来源以相应的遗传密码规则转换DNA 和氨基酸序列。
软件共给出八种生物亚结构的不同遗传密码规则供用户选择,有纤毛虫大核(Ciliate Macronuclear、无脊椎动物线粒体(Invertebrate Mitochon drion、支原体(Mycoplasma、植物线粒体(Plant Mitochondrion、原生动物线粒体(P rotozoan Mitochondrion、一般标准(Standard、脊椎动物线粒体(Vertebrate Mitochondr ion和酵母线粒体(Yeast Mitochondrion。
2. 使用步骤及技巧“Premier”软件启动界面如下:其主要功能在主界面上一目了然(按钮功能如上述。
限制性酶切点分析及基元查找功能比较简单,点击该功能按钮后,选择相应的限制性内切酶或基元(如-10 序列,-35 序列等,按确定即可。
常见的限制性内切酶和基元一般都可以找到。
你还可以编辑或者添加新限制性内切酶或基元。
《2024年利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究》范文
《利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究》篇一一、引言随着分子生物学技术的飞速发展,聚合酶链式反应(PCR)已成为实验室研究中不可或缺的技术之一。
PCR引物设计是PCR实验成功的关键步骤之一,其准确性直接影响到PCR的扩增效率和特异性。
因此,选择合适的引物设计软件对于PCR实验的成功至关重要。
本文将介绍如何利用PrimerPremier5.0软件进行PCR引物设计的研究。
二、PrimerPremier5.0软件简介PrimerPremier5.0是一款功能强大的引物设计软件,具有直观的用户界面和丰富的功能,可帮助研究人员快速设计高质量的PCR引物。
该软件支持多种PCR类型,包括常规PCR、实时荧光定量PCR等,可满足不同实验需求。
三、PCR引物设计流程1. 输入目标序列:打开PrimerPremier5.0软件,输入需要设计引物的目标序列。
目标序列可以是基因片段、cDNA等。
2. 设置引物参数:根据实验需求,设置引物的长度、GC含量、退火温度等参数。
PrimerPremier5.0软件会根据这些参数,自动筛选出符合要求的引物序列。
3. 设计引物:在软件中,通过设置不同的引物组合,生成多个潜在的引物序列。
这些引物序列的特异性和扩增效率可通过软件进行评估和预测。
4. 筛选引物:根据实验需求和引物评估结果,选择最合适的引物序列。
在选择过程中,需要考虑引物的特异性、扩增效率、引物间及引物与模板间的互补性等因素。
5. 验证引物:将设计的引物序列导入PCR实验中,进行验证。
通过PCR实验结果,评估引物的特异性和扩增效率。
四、PrimerPremier5.0软件的优势1. 直观的用户界面:PrimerPremier5.0软件具有直观的用户界面,使得用户可以轻松地完成引物设计过程。
2. 丰富的功能:该软件支持多种PCR类型,可满足不同实验需求。
同时,该软件还具有引物评估和预测功能,可帮助用户选择最合适的引物序列。
primer premier5引物设计步骤
primer premier5引物设计步骤
引物是在PCR反应中用于扩增目标DNA片段的短链寡核苷酸序列。
Primer Premier 5是一款常用的引物设计软件,以下是引物设计的一般步骤:
1. 目标序列准备:将目标DNA序列输入到Primer Premier 5软件中。
确保序列准确无误,并确定要扩增的目标区域。
2. 引物设计参数设置:根据实验需求和PCR反应条件,设置引物设计的相关参数。
包括引物长度、引物的GC含量、引物间的碱基对数目等。
3. 引物设计策略选择:根据需求选择合适的引物设计策略,如末端限制酶切位点、避免引物间的二聚体形成等。
4. 引物设计和评估:软件将自动生成多个候选引物序列,并根据一定的评估标准对其进行评估,包括引物的互补性、引物之间的二聚体形成、GC含量等。
5. 引物的选择和优化:根据评估结果选择一个或多个最合适的引物序列。
根据需要,可以对引物进行进一步优化,如修改引物长度、GC含量、碱基组成等。
6. 引物合成和实验验证:根据设计的引物序列进行引物合成,并进行PCR 实验验证引物的扩增效果和特异性。
引物设计是PCR实验中至关重要的步骤,引物的质量和合适性直接影响PCR 反应的效果。
Primer Premier 5软件提供了便捷的引物设计工具和功能,可以帮助研究人员高效地设计和评估引物序列。
引物设计体会
我最近合成了几十对引物,,在实战中多多少少有些心得,拿出来给大家分享。
我感觉想把引物合成的比较好,除了前引物和后引物的Tm不能相差太大,我们还要重点考虑以下因素:一、GC% GC含量对于PCR反应来说GC含量在40%—60%,一般50%左右比较合适;而对于测序引物和杂交探针来说GC含量至少应为50%。
产物中GC含量最好大于引物中的GC含量。
二、Degeneracy 多义性当设计多义引物时应尽量减少引物多义性,这样会带来更好的特异性,应尽量避免3末端的多义性,因为这里即使一个碱基的错配都能阻止引物延伸。
三、3’ End Stability 3 末端稳定性引物稳定性影响它的错配效率,一条理想的引物应该有一个稳定性较强的5 末端和相对稳定性较弱的3 末端。
如果引物3 稳定性强,有可能在即使5 末端不配对的情况下造成错配,形成非特异性扩增条带(secondary bands)。
而3 末端稳定性低的引物较好的原因是在引物发生错配时,由于3 末端不太稳定引物结合不稳定而难以延伸。
四、GC Clamp GC钳引物与目的位点的有效结合需要有稳定的5 末端。
这一段有较强稳定性的5 末端称为GC钳。
它保证引物与模板的稳定结合。
选择有合适稳定性的引物能在确保不产生非特异性条带的前提下尽量降低退火温度。
五、Secondary Structures 二级结构二级结构是引物设计中必须考虑的一个重要因素。
二级结构能显著影响反应中能与模板正确结合的引物数量,发卡结构的存在能限制引物与目的位点的结合能力,从而降低扩增效率,形成发卡环的引物则不能在PCR扩增中发挥作用。
六、Hairpin 发卡结构发卡结构的形成是由于引物自身的互补碱基分子内配对造成引物折叠形成的二级结构,并由于发卡结构的形成是分子内的反应,仅仅需要三个连续碱基配对就可以形成。
发卡结构的稳定性可以用自由能衡量。
自由能大小取决于碱基配对释放的能量以及折叠DNA形成发卡环所需要的能量,如果自由能值大于0 则该结构不稳定从而不会干扰反应,如果自由能值小于0 则该结构可以干扰反应。
设计引物的实验报告
一、实验目的1. 掌握引物设计的原理和方法。
2. 学习利用生物信息学工具进行引物设计。
3. 了解引物在PCR实验中的应用。
二、实验原理引物是一段单链DNA或RNA,作为PCR反应的起始模板,与模板DNA链互补结合,从而在PCR反应中引导DNA的复制。
引物设计是PCR实验成功的关键因素之一。
三、实验材料1. 生物信息学工具:Primer Premier 5.0、Primer BLAST、OligoCalc等。
2. 实验样品:待扩增的DNA模板。
3. 其他:PCR试剂、DNA序列、引物合成等。
四、实验步骤1. 选择目标基因序列根据实验目的,选择合适的基因序列。
在本实验中,以某基因的cDNA序列为模板。
2. 利用生物信息学工具进行引物设计(1)打开Primer Premier 5.0软件,输入基因序列。
(2)设置引物设计参数,如:引物长度、Tm值、GC含量、引物间距离等。
(3)进行引物设计,得到多个引物序列。
(4)利用Primer BLAST和OligoCalc等工具对设计出的引物进行筛选,排除同源序列和二级结构。
3. 引物合成将筛选出的引物序列提交给引物合成公司,合成引物。
4. PCR实验(1)配制PCR反应体系,包括:引物、模板DNA、dNTPs、DNA聚合酶等。
(2)设置PCR反应程序,如:预变性、变性、退火、延伸等。
(3)进行PCR反应,观察扩增结果。
五、实验结果与分析1. 引物设计结果根据实验目的,设计出以下引物:上游引物:5'-ATCGTACGCTAGGCTG-3'下游引物:5'-CGTCTGACGACGTCAGT-3'2. PCR扩增结果通过PCR实验,成功扩增出目标基因片段。
六、实验结论1. 通过生物信息学工具进行引物设计,可提高引物设计的准确性和效率。
2. 合适的引物是PCR实验成功的关键,设计引物时需考虑多种因素。
3. 本实验成功设计并合成引物,为后续的PCR实验奠定了基础。
Primer Premier5简单教程
事先说明:该教程是本人通过网络上各种资料、信息等,加上自身使用之后,总结出来的简单教程,可能有部分文字重复,请原作者见谅!此教程针对于第一次使用Primer Premier5设计引物的童鞋,高手可以不用看了,同时附上图片(图片均为原创),使大家更易学习,若有不对的地方,请指正,谢谢!结尾部分提到的Oligo7软件是另一款强大的引物设计分析软件,在这里暂时不做介绍。
——张小柯引物设计步骤1、搜索目的基因的CDS在NCBI()上搜索到目的基因,找到该基因的mRNA,在CDS选项中,找到编码区所在位置并做记录备用,点击FASTA链接,复制编码序列,保存至文本文件备用。
2、用Primer Premier5设计引物(1)打开Primer Premier5,点击File→New→DNA sequence,出现输入序列窗口,打开之前保存的文本文件,复制编码序列,粘贴至输入框内,选择As Is并点击OK,其他默认即可,点击Primer,进入引物设计窗口(如图1)。
图1引物设计窗口(2)此窗口可以链接到“引物搜索”、“搜索结果”以及“引物编辑”选项,下面显示两条引物的信息概况,包括“Rating”(评分)、“Seq No”(序列编号)、“Length”(引物长度)、“Tm”(DNA 分子的熔点)、“GC%”(GC含量)等项目。
最下面列出了两条引物的二级结构信息,包括,“Hairpin”(发卡)、“Dimer”(二聚体)、“False Priming”(错误引发位置)和“Cross Dimer”(引物间交叉二聚体)。
若按钮显示为红色,表示存在该二级结构,点击该红色按钮,即可看到相应二级结构位置图示。
最理想的引物,应该都不存在这些二级结构,即这几个按钮都显示为“None”为宜。
(3)点击Search按钮,进入引物搜索参数设定窗口(如图2),“Search For”项选择“PCR primers”,“Search Type”项选择“Pairs”,“Search Ranges”项里设定两条引物的搜索区域和PCR产物长度,“Primer Length”项里设定引物长度。
利用软件PrimerPremier5_0进行PCR引物设计的研究
1基金项目2辽宁省科技厅博士启动基金(20021072)=作者简介>任亮(1978-),男,辽宁省葫芦岛市人,在读硕士研究生,主要研究方向为分子生物学。
利用软件Primer Premier 510进行PCR 引物设计的研究任 亮,朱宝芹,张轶博,王海燕,李尘远,苏玉虹,巴彩凤(锦州医学院辽宁省高校分子细胞生物学与新药开发重点实验室,辽宁 锦州 121001)=摘要>目的 运用Pr imer Premier 510软件设计PCR 引物,并且检验所设计引物的P CR 扩增效率和特异性。
方法 运用Primer Pr emier 510软件设计16对猪和犬的PCR 扩增引物,通过PCR 扩增后进行琼脂糖凝胶电泳检测实验结果。
结果 在所设计的16对引物中有8对P CR 扩增特异性好且效率高,成功率50%。
但是,其中早期设计引物12对只有4对成功,后期设计引物4对全部成功。
结论 从引物设计的过程中可以看到一种趋势-后期引物设计的成功率远远高于早期。
这表明我们在引物设计方面正在逐步成熟,特别是运用比较基因组学定位的原理在分离新基因的引物设计方面积累了较多的经验。
=关键词>PCR 引物设计;软件P rimer Premier 510;P CR =中图分类号> Q 524=文献标识码> A=文章编号> 1000-5161(2004)06-0043-04T he Research of Applying Primer Premier 510to Design PCR PrimerREN Liang,ZHU Bao-qin,ZHANG Yi-bo,WANG Hai-yan,LI Chen-yuan,SU Yu-hong,BA Cai-feng(Key Laboratory of Molecular Cell Biolog y and New Drug of Liaoning Province,Jinzhou Medical College,Jinzhou 121001China)=Abstract >Objective With the help of Primer Premier 510to design PCR primer and verifying the efficiency and speciality of PCR about these primers 1Methods Sixteen pairs of primers that w ould be amplified in Genomics of pig and dog w ere designed by Primer Premier 5101The results of PCR w ould be investig ated through agarose g el electrophoresis 1Results Eight pairs of primers in all designed suc -ceeded in the efficiency and speciality of PCR,the ratio of success w as 50percent 1T he tw elve pairs of primers w hat were designed in the forepart of the ex periment were only four to amplify better 1How -ever,the four pairs of primers desig ned in the anaphase all succeeded 1Conclusions There is a trend that can be recognized in the process of designing primer 1Namely,the forepart is far more than the anaphase in the ratio of success to desig n primer 1It is indicated that our technolog y to design primer is further professional 1Moreover,the most important is that the technique route of using the com para -tive g enom ics to isolate new gene is farther comprehended and perfected and placing a direction at next experiment 1=Key words >desig n primer;Primer Prem ier 510;PCR 自从1985年美国PE-Cetus 公司的人类遗传研究室Mullis 等发明了具有划时代意义的聚合酶链反应(polym erase chain reaction;PCR)以来,PCR 已经成为了分子生物学领域最基本也是最重要的技43锦州医学院学报J Jinzhou M ed College 2004Dec1,25(6)术手段之一。
利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究
利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究引言:PCR (Polymerase Chain Reaction) 是一种广泛应用于分子生物学和基因工程领域的技术,通过引物(primers)的选择和设计,能够扩增特定的DNA片段。
PCR引物设计的质量和合理性对PCR扩增的成功与否起着至关重要的作用。
PrimerPremier5.0 是一款被广泛使用的引物设计软件,具有许多功能,可以辅助研究人员选择高质量的引物。
本文旨在研究和探讨利用PrimerPremier5.0软件进行PCR引物设计的方法和优势。
方法:1. 引物设计目标:在PCR实验中,为了获得准确和高效的扩增结果,引物设计时需要考虑以下几个因素:- 引物长度:通常情况下,引物的长度应在18到30个碱基对之间。
- GC含量:GC含量应尽量控制在40%到60%之间,过高或过低都会影响引物的特异性和扩增效率。
- 引物间的互补性:引物之间应避免互补性或三联体结构的形成,以避免非特异性扩增。
- 引物的熔解温度(Tm):引物的Tm值应接近,以确保特异性扩增。
2. PrimerPremier5.0软件的使用:- 安装并启动PrimerPremier5.0软件。
- 导入所需扩增区域的目标序列。
- 在软件中设置引物的参数,如长度、GC含量和Tm值等。
- 执行引物设计程序,软件会根据设置的参数,自动在目标序列中搜索合适的引物。
结果与讨论:通过PrimerPremier5.0软件的使用,可以高效地选择到符合设计要求的引物。
软件会根据设定的参数,自动搜索并筛选出多个候选引物。
1. 引物长度:为了确保引物能够与模板DNA进行特异性结合,通常将引物长度设定在18到30个碱基对之间。
经过软件筛选后,可得到一组长度适当的引物。
2. GC含量:合适的GC含量可以提高引物的稳定性和特异性。
软件会自动根据设定的GC含量范围,筛选出具有适当GC含量的引物。
引物设计的原则汇总中 -有重复的段落
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度可以通过点击Change-Current oligo length来改变。定位后,点击Tm窗口的Upper按钮,确定上游引物
,同样方法定位下游引物位置,点击Lower按钮,确定下游引物。引物确定后,即可以充分利用Analyze菜单
计的引物形成的二聚体是不稳定的,即其Delta G值应该偏低,一般不要使其超过4.5kcal/mol,结合碱基对
不要超过3个。Oligo此项的分析窗口中分别给出了3’端和整个引物的二聚体图示和Delta G值。
④Analyze中第三项为Hairpin Formation,即发夹结构分析。可以选择上游或者下游引物,同样,Delta G值
引物设计的原则汇总中 (有重复的段落) - 日志 - 快乐的小麻雀 - 我的空间 - Powered by UCenter Home
。上下游引物的GC%需要控制在40%~60%,而且上下游引物之间的GC% 不要相差太大。Tm值共有3个 ,分别采用三种方法计算出来,包括nearest neighbor method、%GC method和2(A+T)+4(G+C)method ,最后一种应该是Primer5所采用的方法,Tm 值可以控制在50~70度之间。 第五项为False Priming Sites,即错误引发位点,在Primer5中虽然也有False priming分析,但不如oligo详 细,并且oligo会给我正确引发效率和错误引发效率,一般的原则要使误引发效率在100以下,当然有时候正 确位点的引发效率很高的话,比如达到400~500,错误引发效率超过100幅度若不大的话,也可以接受。 ⑤Analyze中,有参考价值的最后一项是“PCR”,在此窗口中,是基于此对引物的PCR反应Summary,并且 给出了此反应的最佳退火温度,另外,提供了对于此对引物的简短评价。若该引物有不利于PCR反应的二级 结构存在,并且Delta G值偏大的话,Oligo在最后的评价中会注明,若没有注明此项,表明二级结构能值较 小,基本可以接受。 ⑥引物评价完毕后,可以选择File-Print,打印为PDF文件保存,文件中将会包括所有Oligo软件中已经打开 的窗口所包括的信息,多达数页。因此,打印前最好关掉Tm窗口和Delta G窗口,可以保留引物信息窗口、 二级结构分析窗口(若存在可疑的异常的话)和PCR窗口。 4、引物确定后,对于上游和下游引物分别进行Blast分析,一般来说,多少都会找到一些其他基因的同源序 列,此时,可以对上游引物和下游引物的blast结果进行对比分析,只要没有交叉的其他基因的同源序列就可 以。 二、引物设计过程中的心得 1、Primer 5.0搜索引物 ①Primer Length我常设置在18-30bp,短了特异性不好,长了没有必要。当然有特殊要求的除外,如加个酶 切位点什么的。 ②PCR Product size最好是100-500bp之间,小于100bp的PCR产物琼脂糖凝胶电泳出来,条带很模糊,不 好看。至于上限倒也不必要求苛刻。 ③Search parameters还是选Manual吧,Search stringency应选High,GC含量一般是40-60%。其它参数 默认就可以了。 ④搜索出来的引物,按Rating排序,逐个送Oligo软件里评估。当然,搜索出的引物,其扩增产物很短,你可 以不选择它,或是引物3端≥2个A或T,或引物内部连续的G或C太多,或引物3端≥2个G或C,这样的引物应作 为次选,没得选了就选它。对于这样的引物,如果其它各项指标还可以,我喜欢在引物末端去掉一个不满意 的或加上一个碱基,看看引物的评估参数有没有变好点。 2、Oligo 6.0评估引物 ①在analyze里,Duplex Formation不管是上游引物、下游引物还是上下游引物之间,The most stable 3’-Di mer绝对值应小于4.5kcal/mol, The most stable Dimer overall绝对值一般应小于多少kcal/mol跟PCR退火温 度有关,我几次实验感觉在PCR退火温度在65°的时候,The most stable Dimer overall 6.7kcal/mol没有问 题。 ②Hairpin Formation根据黄金法则 ③False priming sites: Primer的priming efficiency应该是错配地方的4倍左右,更多当然更好。 ④在PCR栏,丁香园战友感觉其所显示的optimal annealing temperature数值值得参考。在PCR摸索条件的 时候,退火温度为其数值加减2的范围就可以了。 ⑤Internal stability很重要:我们希望引物的内部稳定性是中间高、两边低的弧形,最起码保证3端不要过于 稳定。 下图引物3端过于稳定,很容易导致不适当扩增。△G参照黄金法则,这其实很好理解:把一滴水放 到大海里,这滴水就会不停的扩散分布,扩散的越厉害越稳定,所以△G绝对值越大结构越稳定。 3、其他 ①两个评价系统不一样,丁香园战友感觉oligo评价引物好点,primer出来的引物,一般按效率排序,再结合 退火温度和引物长度,选择引物到oligo测试。这是初步的选择,其实引物到了oligo里,退火温度也不一样。 ②3端的二聚体应该避免,这个要看退火温度决定,一个50°的退火温度肯定和65°对二聚体的影响不一样了 ,一般来讲尽量控制在-4.5kcal/mol以下(丁香园战友观点,很多东西真得还是需要自己摸索)。 ③丁香园战友感觉3端有A无A影响不大,3端有T是不是一定不行,不见得。软件是评估,法则也不是没有例 外,不是1+1=2那么确定。 ④错配和二聚体谁轻谁重,丁香园战友觉得“到致命的程度”谁都重要,在设计的时候,尽量两个都不得罪。 ⑤GC含量并非不重要,它直接影响引物各端稳定性,3端来两个G或C,稳定性就上去了,粘在模板上很牢。 所以丁香园战友设计引物的时候,会尽量避免这样的情况出现。
primer premier5设计引物的原理
primer premier5设计引物的原理
Primer Premier 软件设计引物的原理主要基于以下原则:
1. 引物长度:以15-30bp为合适,最常用的是18-24bp。
2. 引物GC含量:应在40-60%之间。
3. 引物碱基分布:应遵守随机性,避免连续出现4个以上的单一碱基,尤其在引物的3端不应该出现连续的G/C。
4. 避免自身互补:引物自身不能含有互补序列,否则会形成发夹一样的二级结构,影响PCR作用效果。
5. 避免引物二聚体:两个引物之间不应该有多于4个的互补/同源的碱基。
6. 引物3'端:是G/C。
7. 简并引物的出现:出于遗传密码的煎饼性。
有时需要根据一段氨基酸的保守序列反推到DNA水平设计引物。
由于大多数氨基酸(二十种常见氨基酸中的十八种)的遗传密码不只一种,由氨基酸序列反推DNA序列时,就遇到部分碱基的不确定性。
这种不确定性因物种或者细胞亚结构的不同而异。
Primer可以针对各种不同的遗传密码规律设定不同DNA和氨基酸的相互转换,这取决于被分析的序列出处。
这样设计出来的引物实际上是多种序列的混合物在某些位点有所变化,但大部分还是相同的,称之为简并引物。
遵循这些原则和技巧,可以帮助设计出更有效和可靠的PCR引物。
primer5和oligo使用的基本技巧
最近我也在设计引物,也简单谈一下用primer5和oligo使用的基本技巧一、Primer Premier 5.0 的使用技巧简介1. 功能“Premier”的主要功能分四大块,其中有三种功能比较常用,即引物设计、限制性内切酶位点分析和DNA 基元(motif)查找。
“Premier”还具有同源性分析功能,但并非其特长,在此略过。
此外,该软件还有一些特殊功能,其中最重要的是设计简并引物,另外还有序列“朗读”、DNA 与蛋白序列的互换、语音提示键盘输入等等。
有时需要根据一段氨基酸序列反推到DNA 来设计引物,由于大多数氨基酸(20 种常见结构氨基酸中的18 种)的遗传密码不只一种,因此,由氨基酸序列反推DNA 序列时,会遇到部分碱基的不确定性。
这样设计并合成的引物实际上是多个序列的混和物,它们的序列组成大部分相同,但在某些位点有所变化,称之为简并引物。
遗传密码规则因物种或细胞亚结构的不同而异,比如在线粒体内的遗传密码与细胞核是不一样的。
“Premier”可以针对模板DNA 的来源以相应的遗传密码规则转换DNA 和氨基酸序列。
软件共给出八种生物亚结构的不同遗传密码规则供用户选择,有纤毛虫大核(Ciliate Macronuclear)、无脊椎动物线粒体(Invertebrate Mitochondrion)、支原体(Mycoplasma)、植物线粒体(Plant Mitochondrion)、原生动物线粒体(Protozoan Mitochondrion)、一般标准(Standard)、脊椎动物线粒体(Vertebrate Mitochondrion)和酵母线粒体(Yeast Mitochondrion)。
2. 使用步骤及技巧“Premier”软件启动界面如下:其主要功能在主界面上一目了然(按钮功能如上述)。
限制性酶切点分析及基元查找功能比较简单,点击该功能按钮后,选择相应的限制性内切酶或基元(如-10 序列,-35 序列等),按确定即可。
《2024年PCR引物设计及软件使用技巧》范文
《PCR引物设计及软件使用技巧》篇一一、引言聚合酶链式反应(PCR)是现代生物学研究中常用的一种技术,而引物设计则是PCR反应成功的关键。
本文将详细介绍PCR 引物设计的基本原理、方法和注意事项,同时介绍几款常用的引物设计软件及其使用技巧。
二、PCR引物设计的基本原理和方法1. 引物设计的基本原理PCR引物是一段人工合成的寡核苷酸序列,作为PCR反应的起始点。
引物设计的核心思想是寻找合适的序列,使得引物能够有效地与模板DNA结合,从而在PCR反应中扩增出目标DNA 片段。
2. 引物设计的方法(1)选择合适的模板DNA:根据研究目的选择合适的模板DNA,确保其包含目标DNA片段。
(2)确定引物位置:根据目标DNA片段的序列信息,确定引物的位置。
通常,引物应位于目标DNA片段的两侧,且应避免位于重复序列或复杂区域。
(3)确定引物长度和碱基组成:引物的长度一般在18-25bp 之间,GC含量应适中,且碱基组成应具有随机性,以增加引物的特异性。
(4)避免形成二级结构:引物序列中应避免形成发夹结构、二聚体等二级结构,以免影响PCR反应的进行。
(5)设计内外引物:为了提高PCR反应的特异性和灵敏度,常需要设计内外两对引物。
内引物位于目标DNA片段内部,用于提高扩增的准确性;外引物则用于起始PCR反应。
三、PCR引物设计软件及使用技巧1. Oligo软件Oligo是一款常用的PCR引物设计软件,具有操作简便、功能强大等特点。
使用Oligo进行引物设计时,需注意以下几点:(1)输入目标DNA序列:将目标DNA序列导入Oligo软件中。
(2)设置参数:根据需要设置引物长度、GC含量、退火温度等参数。
(3)寻找引物:软件将自动在目标DNA序列中寻找符合条件的引物。
(4)评估引物:对找到的引物进行评估,包括二级结构预测、特异性分析等。
(5)保存并使用引物:将选定的引物保存并用于PCR反应。
2. Primer Premier 5软件Primer Premier 5是一款功能强大的引物设计软件,具有直观的操作界面和丰富的功能。
利用PrimerPremier5_0进行引物设计
收稿日期:2008-03-19作者简介:翟中会(1974-),男,医学信息学专业,在读计算机应用专业硕士。
利用Primer Prem ier 5.0进行引物设计翟中会A,陈希南A,王 娟B(西安交通大学:A.图书馆,陕西西安 710049;B.医学院信息中心,陕西西安 710061)摘要:目前,PCR 引物设计大都通过计算机软件进行。
本文详细的介绍了怎样利用“Pri m er Pre m ier 5.0”软件进行PCR 引物设计。
关键词:引物;软件;设计中图分类号:G434 文献标识码:A 文章编号:1006-2769(2008)04-0695-04Pr im er D esi gn w ith Pr im er Prem i er 5.0Z HA I Zhong 2hui 1,CHEN Xi 2nan 1,WANG Juan2(1.L ibrary of Xi ’an J iaot ong University,Xi ’an 710049;2.Medical College of Xi ’an J iaot ong University,Xi ’an 710061,China )Abstract:A t p resent,PCR p ri m ers are designed mostly by computer s oft w are .This paper describes in detail how t o use the “Pri m 2er Prem ier 5.0”s oft w are t o design PCR p ri m ers .Key W ords:p ri m er;s oft w are;design 自从1985年Karny Mullis 发明了聚合酶链式反应以来,PCR 技术已成为分子生物学研究中使用最多、最广泛的手段之一,而引物设计是PCR 技术中至关重要的一环。
《2024年利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究》范文
《利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究》篇一一、引言PCR(聚合酶链式反应)是分子生物学和遗传学中常用的一种实验技术,它对于特定基因序列的克隆、分析、鉴定和扩增具有重要意义。
在PCR技术中,引物设计是一个关键的步骤,其成功与否直接影响着PCR反应的效果和准确度。
随着生物信息学的发展,引物设计软件为研究人员提供了更加方便快捷的途径。
本篇文章旨在研究并阐述如何利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计。
二、PrimerPremier5.0简介PrimerPremier5.0是一款专门用于设计PCR引物的软件,具有友好的界面和强大的功能。
它可以针对特定基因序列进行引物设计,同时还可以根据用户的需求进行参数调整,如引物的长度、GC含量、退火温度等。
此外,该软件还具有自动筛选和优化引物的功能,大大提高了引物设计的效率和准确性。
三、利用PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的步骤1. 打开PrimerPremier5.0软件,输入需要设计的基因序列。
2. 根据实验需求设置引物设计的参数,如引物长度、GC含量、退火温度等。
3. 软件将自动分析基因序列,并在可能的位置设计引物。
用户可以根据需要调整引物的位置和参数。
4. 软件将给出所有可能的引物组合,用户可以根据引物的质量、特异性等指标进行筛选。
5. 对筛选出的引物进行优化,如调整引物的长度、GC含量等,以提高PCR反应的效率和准确性。
6. 保存并导出设计的引物序列,用于后续的PCR实验。
四、注意事项1. 在进行引物设计时,应尽量选择特异性较高的区域进行设计,以避免非特异性扩增。
2. 引物的长度和GC含量应适中,以保证PCR反应的效率和准确性。
3. 退火温度是PCR反应中一个重要的参数,应根据引物的具体情况进行调整。
4. 在使用PrimerPremier5.0进行引物设计时,应遵循软件的操作指南,以保证设计的准确性和效率。
引物设计stepbystep
引物设计stepbystep引物设计step by step1、在NCBI上搜索到目的基因,找到该基因的mRNA,在CDS 选项中,找到编码区所在位置,在下面的origin中,Copy该编码序列作为软件查询序列的候选对象。
2、用Primer Premier5搜索引物①打开Primer Premier5,点击File-New-DNA sequence, 出现输入序列窗口,Copy目的序列在输入框内(选择As),此窗口内,序列也可以直接翻译成蛋白。
点击Primer,进入引物窗口。
②此窗口可以链接到“引物搜索”、“引物编辑”以及“搜索结果”选项,点击Search按钮,进入引物搜索框,选择“PCR primers”,“Pairs”,设定搜索区域和引物长度和产物长度。
在Search Parameters里面,可以设定相应参数。
一般若无特殊需要,参数选择默认即可,但产物长度可以适当变化,因为100~200bp的产物电泳跑得较散,所以可以选择 300~500bp.③点击OK,软件即开始自动搜索引物,搜索完成后,会自动跳出结果窗口,搜索结果默认按照评分(Rating)排序,点击其中任一个搜索结果,可以在“引物窗口”中,显示出该引物的综合情况,包括上游引物和下游引物的序列和位置,引物的各种信息等。
④对于引物的序列,可以简单查看一下,避免出现下列情况:3’不要出现连续的3个碱基相连的情况,比如GGG或CCC,否则容易引起错配。
此窗口中需要着重查看的包括:Tm应该在55~70度之间,GC%应该在45%~55%间,上游引物和下游引物的Tm值最好不要相差太多,大概在2度以下较好。
该窗口的最下面列出了两条引物的二级结构信息,包括,发卡,二聚体,引物间交叉二聚体和错误引发位置。
若按钮显示为红色,表示存在该二级结构,点击该红色按钮,即可看到相应二级结构位置图示。
最理想的引物,应该都不存在这些二级结构,即这几个按钮都显示为“None”为好。
《2024年利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究》范文
《利用软件PrimerPremier5.0进行PCR引物设计的研究》篇一一、引言PCR(聚合酶链式反应)是分子生物学和遗传学中常用的一种技术,它广泛应用于基因克隆、突变检测、基因表达研究等多个领域。
而PCR引物设计则是PCR实验中至关重要的一个环节,它直接关系到PCR实验的成败和结果的质量。
近年来,随着计算机技术的快速发展,各种引物设计软件如PrimerPremier5.0等为PCR引物设计提供了便利。
本文将探讨如何利用PrimerPremier5.0软件进行PCR引物设计的研究。
二、PrimerPremier5.0软件简介PrimerPremier5.0是一款常用的PCR引物设计软件,它可以根据用户提供的DNA序列信息,自动寻找并设计出适合的引物。
该软件具有操作简便、功能强大、引物设计质量高等优点,因此在科研领域得到了广泛应用。
三、PCR引物设计流程1. 输入DNA序列信息:首先,需要将待设计的DNA序列信息输入到PrimerPremier5.0软件中。
这可以通过将DNA序列复制到软件中的文本框中或通过导入文件的方式完成。
2. 设置引物参数:在输入DNA序列信息后,需要设置引物的相关参数。
这些参数包括引物长度、退火温度、GC含量等。
用户可以根据实验需求和DNA序列的特点来设置这些参数。
3. 寻找引物位置:在设置好引物参数后,PrimerPremier5.0软件将自动在DNA序列中寻找符合条件的引物位置。
这一过程需要耗费一定的时间,具体时间取决于DNA序列的长度和计算机的性能。
4. 设计引物:当软件找到符合条件的引物位置后,将自动生成一系列的引物序列。
用户可以根据需要选择其中一组或多组引序列进行PCR实验。
5. 评估引物质量:在完成引物设计后,PrimerPremier5.0软件还将对所设计的引物进行质量评估。
这包括评估引物的特异性、退火温度的合理性等方面。
用户可以根据评估结果来选择最佳的引物进行PCR实验。
primer5和Oligo结合设计引物步骤及心得
primer5和Oligo结合设计引物步骤及心得一、引物设计step by step1、在NCBI上搜索到目的基因,找到该基因的mRNA,在CDS选项中,找到编码区所在位置,在下面的origin中,Copy该编码序列作为软件查询序列的候选对象。
2、用Primer Premier5搜索引物①打开Primer Premier5,点击File-New-DNA sequence, 出现输入序列窗口,Copy目的序列在输入框内(选择As),此窗口内,序列也可以直接翻译成蛋白。
点击Primer,进入引物窗口。
②此窗口可以链接到“引物搜索”、“引物编辑”以及“搜索结果”选项,点击Search按钮,进入引物搜索框,选择“PCR primers”,“Pairs”,设定搜索区域和引物长度和产物长度。
在Search Parameters里面,可以设定相应参数。
一般若无特殊需要,参数选择默认即可,但产物长度可以适当变化,因为100~200bp的产物电泳跑得较散,所以可以选择300~500bp.③点击OK,软件即开始自动搜索引物,搜索完成后,会自动跳出结果窗口,搜索结果默认按照评分(Rating)排序,点击其中任一个搜索结果,可以在“引物窗口”中,显示出该引物的综合情况,包括上游引物和下游引物的序列和位置,引物的各种信息等。
④对于引物的序列,可以简单查看一下,避免出现下列情况:3’不要出现连续的3个碱基相连的情况,比如GGG或CCC,否则容易引起错配。
此窗口中需要着重查看的包括:Tm应该在55~70度之间,GC%应该在45%~55%间,上游引物和下游引物的Tm值最好不要相差太多,大概在2度以下较好。
该窗口的最下面列出了两条引物的二级结构信息,包括,发卡,二聚体,引物间交叉二聚体和错误引发位置。
若按钮显示为红色,表示存在该二级结构,点击该红色按钮,即可看到相应二级结构位置图示。
最理想的引物,应该都不存在这些二级结构,即这几个按钮都显示为“None”为好。
引物设计讲解PrimerPremier5.0
Edit Primer 引物编辑窗口可以用来设计用于定点突变的引物或分析一条已有引物序列。
在windows系统或Power Mac的Command-X Command-C 及Command-V系统中您可以使用CTRL-X CTRL-C和CTRL-V快捷键来实施剪切拷贝和粘贴删除当前引物序列,并从剪贴板上粘贴是分析一条已有引物的好方法。
进行粘贴时Paste 粘贴窗口会激活用以将引物序列转化为反向互补或反向互补形式您也可以手工键入引物序列一旦引物被编辑发生变化Analyze 按钮就可以使用点击Analyze 按钮即可分析编辑后的引物。
Automatic Search 自动搜索引物长度引物的长度控制着引物的特异性和在PCR反应中的退火温度.对越多数实验适宜引物长度为18到24个碱基,等于或少于15碱基的短引物有时用于简单的基因作图或特殊的文库构建library protocol ,28到35碱基的长引物对于从一系列高度相关的分子中扩增序列和特殊样本的克隆能起到重要作用。
长PCR引物能给扩增带来更好的特异性,长引物也允许您通过降低退火温度来能提高反应的灵敏度,不过长引物通常更易于形成包括发卡结构二聚体自身互补等二级结构。
理论上在合适的融链温度范围内最短的引物能在特异性和高效性间获得较好的平衡。
为设计一条高效引物有几个参数必须考虑PRIMER PREMIER搜索所考虑的参数依次如下Tm 融链温度:PRIMER PREMIER根据相邻二碱基对作用理论nearest neighbor theory 来计算融链温度。
PCR反应的合适Tm范围为56到63°C。
GC% GC含量:对于PCR反应来说GC含量在50%左右比较合适而对于测序引物和杂交探针来说GC含量至少应为50%。
Degeneracy 多义性:当设计多义引物时应尽量减少引物多义性这样会带来更好的特异性应尽量避免3末端的多义性因为这里即使一个碱基的错配都能阻止引物延伸。
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一、引物设计step by step1、在NCBI上搜索到目的基因,找到该基因的mRNA,在CDS选项中,找到编码区所在位置,在下面的origin中,Copy该编码序列作为软件查询序列的候选对象。
2、用Primer Premier5搜索引物①打开Primer Premier5,点击File-New-DNA sequence, 出现输入序列窗口,Copy目的序列在输入框内(选择As),此窗口内,序列也可以直接翻译成蛋白。
点击Primer,进入引物窗口。
②此窗口可以链接到“引物搜索”、“引物编辑”以及“搜索结果”选项,点击Searc h按钮,进入引物搜索框,选择“PCR primers”,“Pairs”,设定搜索区域和引物长度和产物长度。
在Search Parameters里面,可以设定相应参数。
一般若无特殊需要,参数选择默认即可,但产物长度可以适当变化,因为100~200bp的产物电泳跑得较散,所以可以选择300~500bp.③点击OK,软件即开始自动搜索引物,搜索完成后,会自动跳出结果窗口,搜索结果默认按照评分(Rating)排序,点击其中任一个搜索结果,可以在“引物窗口”中,显示出该引物的综合情况,包括上游引物和下游引物的序列和位置,引物的各种信息等。
④对于引物的序列,可以简单查看一下,避免出现下列情况:3’不要出现连续的3个碱基相连的情况,比如GGG或CCC,否则容易引起错配。
此窗口中需要着重查看的包括:T m应该在55~70度之间,GC%应该在45%~55%间,上游引物和下游引物的T m值最好不要相差太多,大概在2度以下较好。
该窗口的最下面列出了两条引物的二级结构信息,包括,发卡,二聚体,引物间交叉二聚体和错误引发位置。
若按钮显示为红色,表示存在该二级结构,点击该红色按钮,即可看到相应二级结构位置图示。
最理想的引物,应该都不存在这些二级结构,即这几个按钮都显示为“None”为好。
但有时很难找到各个条件都满足的引物,所以要求可以适当放宽,比如引物存在错配的话,可以就具体情况考察该错配的效率如何,是否会明显影响产物。
对于引物具体详细的评价需要借助于Oligo来完成,Oligo自身虽然带有引物搜索功能,但其搜索出的引物质量感觉不如Primer5.⑤在Primer5窗口中,若觉得某一对引物合适,可以在搜索结果窗口中,点击该引物,然后在菜单栏,选择File-Print-Current pair,使用PDF虚拟打印机,即可转换为Pdf文档,里面有该引物的详细信息。
3、用Oligo验证评估引物①在Oligo软件界面,File菜单下,选择Open,定位到目的cDNA序列(在p rimer中,该序列已经被保存为Seq文件),会跳出来两个窗口,分别为Internal Stability(Delta G)窗口和Tm窗口。
在Tm窗口中,点击最左下角的按钮,会出来引物定位对话框,输入候选的上游引物序列位置(Primer5已经给出)即可,而引物长度可以通过点击Change-Current oligo length来改变。
定位后,点击Tm 窗口的Upper按钮,确定上游引物,同样方法定位下游引物位置(primer下游引物的位置减去下游引物长度再加上1来确定下游引物位置),点击Lower按钮,确定下游引物。
引物确定后,即可以充分利用Analyze菜单中各种强大的引物分析功能了。
②Analyze中,第一项为Key info,点击Selected primers,会给出两条引物的概括性信息,其中包括引物的T m值,此值Oligo是采用nearest neighbor meth od计算,会比Primer5中引物的Tm值略高,此窗口中还给出引物的Delta G和3’端的Delta G.3’端的Delta G过高,会在错配位点形成双链结构并引起DNA聚合反应,因此此项绝对值应该小一些,最好不要超过9。
③Analyze中第二项为Duplex Formation,即二聚体形成分析,可以选择上游引物或下游引物,分析上游引物间二聚体形成情况和下游引物间的二聚体情况,还可以选择Upper/Lower ,即上下游引物之间的二聚体形成情况。
引物二聚体是影响PCR反应异常的重要因素,因此应该避免设计的引物存在二聚体,至少也要使设计的引物形成的二聚体是不稳定的,即其Delta G值应该偏低,一般不要使其超过4. 5kcal/mol,结合碱基对不要超过3个。
Oligo此项的分析窗口中分别给出了3’端和整个引物的二聚体图示和Delta G值。
④Analyze中第三项为Hairpin Formation,即发夹结构分析。
可以选择上游或者下游引物,同样,Delta G值不要超过4.5kcal/mol,碱基对不要超过3个。
Analyze中第四项为Composition and T m,会给出上游引物、下游引物和产物的各个碱基的组成比例和Tm值。
上下游引物的GC%需要控制在40%~60%,而且上下游引物之间的GC%不要相差太大。
Tm值共有3个,分别采用三种方法计算出来,包括nearest neighbor method、%GC method和2(A+T)+4(G+C)me thod,最后一种应该是Primer5所采用的方法,T m值可以控制在50~70度之间。
第五项为False Priming Sites,即错误引发位点,在Primer5中虽然也有Fal se priming分析,但不如oligo详细,并且oligo会给我正确引发效率和错误引发效率,一般的原则要使误引发效率在100以下,当然有时候正确位点的引发效率很高的话,比如达到400~500,错误引发效率超过100幅度若不大的话,也可以接受。
⑤Analyze中,有参考价值的最后一项是“PCR”,在此窗口中,是基于此对引物的PCR反应Summary,并且给出了此反应的最佳退火温度,另外,提供了对于此对引物的简短评价。
若该引物有不利于PCR反应的二级结构存在,并且DeltaG值偏大的话,Oligo在最后的评价中会注明,若没有注明此项,表明二级结构能值较小,基本可以接受。
⑥引物评价完毕后,可以选择File-Print,打印为PDF文件保存,文件中将会包括所有Oligo软件中已经打开的窗口所包括的信息,多达数页。
因此,打印前最好关掉Tm窗口和Delta G窗口,可以保留引物信息窗口、二级结构分析窗口(若存在可疑的异常的话)和PCR窗口。
4、引物确定后,对于上游和下游引物分别进行Blast分析,一般来说,多少都会找到一些其他基因的同源序列,此时,可以对上游引物和下游引物的blast结果进行对比分析,只要没有交叉的其他基因的同源序列就可以。
二、引物设计过程中的心得1、Primer 5.0搜索引物①Primer Length我常设置在18-30bp,短了特异性不好,长了没有必要。
当然有特殊要求的除外,如加个酶切位点什么的。
②PCR Product size最好是100-500bp之间,小于100bp的PCR产物琼脂糖凝胶电泳出来,条带很模糊,不好看。
至于上限倒也不必要求苛刻。
③Search parameters还是选Manual吧,Search stringency应选High,GC 含量一般是40-60%。
其它参数默认就可以了。
④搜索出来的引物,按Rating排序,逐个送Oligo软件里评估。
当然,搜索出的引物,其扩增产物很短,你可以不选择它,或是引物3端≥2个A或T,或引物内部连续的G或C太多,或引物3端≥2个G或C,这样的引物应作为次选,没得选了就选它。
对于这样的引物,如果其它各项指标还可以,我喜欢在引物末端去掉一个不满意的或加上一个碱基,看看引物的评估参数有没有变好点。
2、Oligo 6.0评估引物①在analyze里,Duplex Formation不管是上游引物、下游引物还是上下游引物之间,The most stable 3’-Dimer绝对值应小于4.5kcal/mol, The most stable Dimer overall绝对值一般应小于多少kcal/mol跟PCR退火温度有关,我几次实验感觉在PCR退火温度在65°的时候,The most stable Dimer overall 6.7kcal/mol 没有问题。
②Hairpin Formation根据黄金法则③False priming sites: Primer的priming efficiency应该是错配地方的4倍左右,更多当然更好。
④在PCR栏,丁香园战友感觉其所显示的optimal annealing temperature数值值得参考。
在PCR摸索条件的时候,退火温度为其数值加减2的范围就可以了。
⑤Internal stability很重要:我们希望引物的内部稳定性是中间高、两边低的弧形,最起码保证3端不要过于稳定。
下图引物3端过于稳定,很容易导致不适当扩增。
△G参照黄金法则,这其实很好理解:把一滴水放到大海里,这滴水就会不停的扩散分布,扩散的越厉害越稳定,所以△G绝对值越大结构越稳定。
3、其他①两个评价系统不一样,丁香园战友感觉oligo评价引物好点,primer出来的引物,一般按效率排序,再结合退火温度和引物长度,选择引物到oligo测试。
这是初步的选择,其实引物到了oligo里,退火温度也不一样。
②3端的二聚体应该避免,这个要看退火温度决定,一个50°的退火温度肯定和65°对二聚体的影响不一样了,一般来讲尽量控制在-4.5kcal/mol以下(丁香园战友观点,很多东西真得还是需要自己摸索)。
③丁香园战友感觉3端有A无A影响不大,3端有T是不是一定不行,不见得。
软件是评估,法则也不是没有例外,不是1+1=2那么确定。
④错配和二聚体谁轻谁重,丁香园战友觉得“到致命的程度”谁都重要,在设计的时候,尽量两个都不得罪。
⑤GC含量并非不重要,它直接影响引物各端稳定性,3端来两个G或C,稳定性就上去了,粘在模板上很牢。
所以丁香园战友设计引物的时候,会尽量避免这样的情况出现。