浮游动物生物量的测定方法资料重点
浮游动物鉴定方法
浮游动物鉴定方法浮游动物鉴定方法浮游动物是一类生活在水中的微小生物，广泛存在于淡水和海水中。
它们扮演着重要的生态角色，不仅是海洋食物链中的关键环节，还是水质评估和生物监测的重要指标。
因此，准确鉴定浮游动物的种类和数量对于环境保护和生态研究非常重要。
在浮游动物鉴定中，通常会使用显微镜观察样本，以确定它们的形态特征、结构和颜色等。
以下是一些常用的浮游动物鉴定方法：1. 样本采集：在水体中采集浮游动物样本时，应选择透明的容器，避免样本被污染或破坏。
最好在采样后尽快进行观察，以确保浮游动物的活性和形态特征的完整性。
2. 样本制备：取一小部分浮游动物样本，加入适量的水，使其浓度适中。
然后，将样本放置在载玻片上，覆盖一个薄玻片，并用透明胶带固定，以便在显微镜下观察。
3. 显微镜观察：将载玻片放入显微镜下，使用适当的倍率进行观察。
通常，10倍或40倍的放大倍率足够观察浮游动物的结构和特征。
4. 形态鉴定：通过观察浮游动物的形态特征，如大小、形状、颜色、鳃、触角等，来确定它们的种类。
此外，还可以观察其运动方式和行为模式等特征。
5. 参考资料和专家咨询：在鉴定过程中，可以参考相关的浮游动物分类书籍、图鉴和在线数据库，以了解更多关于特定种类的信息。
此外，也可以咨询专家或参加相关的培训课程，提高鉴定水平。
需要注意的是，浮游动物的鉴定是一个复杂而繁琐的过程，并且需要一定的经验和专业知识。
因此，在进行浮游动物鉴定之前，建议获得相关的培训和指导，以确保鉴定结果的准确性和可靠性。
总的来说，浮游动物的鉴定方法主要包括样本采集、样本制备、显微镜观察、形态鉴定和参考资料等步骤。
通过这些方法，我们可以更好地了解浮游动物的多样性和分布，为环境保护和生态研究提供重要的依据。
浮游生物量计算方法(一)
浮游生物量计算方法(一)浮游生物量计算方法介绍浮游生物量的计算是海洋生态学研究中的重要内容。
本文将详细介绍几种常用的浮游生物量计算方法。
1. 水体容器法使用水体容器法是一种常见的浮游生物量计算方法。
具体步骤如下：•准备一个透明的水体容器，并在其正面侧面绘制垂直刻度。
•在特定的采样站点选取合适大小的水样，将水样倒入容器中并记录容器中的水样深度。
•静置一段时间后，观察容器中浮游生物的分布情况，并记录观察到的每一层次的浮游生物混浊度。
•根据所观察到的浮游生物混浊度与水样深度的关系，计算出每一层次的浮游生物量。
•对所有层次的浮游生物量进行累加，得到总的浮游生物量。
2. 水样过滤法水样过滤法是另一种常用的浮游生物量计算方法，其具体步骤如下：•使用一套过滤装置，将水样通过细孔滤膜过滤。
•将过滤后的滤膜置于显微镜下进行观察，统计滤膜上出现的浮游生物数量。
•根据滤膜的面积与滤膜上浮游生物的数量，计算出单位面积上浮游生物的数量。
•根据采样水体的体积和单位面积上浮游生物的数量，计算出浮游生物的总量。
3. 水样稀释法水样稀释法是一种适用于浮游生物密度较高的情况下的计算方法。
具体步骤如下：•从采样站点分别选取两个水样容器，一个用于稀释，一个用于观察。
•将采集到的水样分别倒入两个容器中，注意在稀释容器中加入适量的去离子水。
•在观察容器中，观察并记录浮游生物的数量。
•根据稀释容器中的水样稀释倍数，计算出采样水样中浮游生物的数量。
4. 光学方法光学方法是利用光学仪器对浮游生物进行直接或间接测定的一种计算方法。
常用的光学方法如下：•浮游生物分类计数器：通过识别浮游生物形态特征，实现自动化的浮游生物计数。
该方法可以直接获取浮游生物的数量和分类信息。
•激光散射仪：利用浮游生物对激光的散射特性，通过测量散射光的强度来计算浮游生物的数量。
该方法适用于大量浮游生物密度较高的情况。
•溶解氧饱和度检测仪：通过测量水样中溶解氧的饱和度来间接判断浮游生物的数量。
浮游动物的采样方法
浮游动物生物量的测量方法自赵文《水生生物学》现存量：单位面积或体积中所存在生物体的数量或质量。
现存量若以个体数表示则可称为丰度或（数量）密度，单位为个/L。
若以质量表示则可称为生物量，单位为mg/L。
采集方法：一采水器采水后沉淀分离（适用原生动物、轮虫等小型浮游动物）；二用网过滤（适用于枝角类、挠足类等甲壳动物）。
仪器：采水器，（25#）浮游生物网，显微镜，计数框（计数原生动物用0.1ml计数框，计数轮虫和甲壳动物用1ml计数框）解剖镜，毛细管，目测微尺一采集1 设站根据浮游动物的分布设站。
2 采水层次由水体的深度决定。
切不可之采一个表层或一个底层水样。
（据夏季调查，东湖B站（水深4m左右），在2m的水层区，甲壳动物的数量约占31%，而入2m一下的水层占69%左右。
同时还发现，在夏季，一般幼体喜欢在表层，成体在深层。
）分层方法：是每隔0.5m或1m,甚至2m取一个水样加以混合，然后取得一部分作为浮游动物定量之用。
许多水库或深水湖泊，水深20m以上，这种水体在夏季及冬季存在温跃层（或称变温层）。
由于在温跃层一下缺乏光照，浮游植物数量极少，依赖植物生存的浮游动物数量也相应减少。
如果从养殖角度而言，只取温水层以上的水层就足够了。
3 采水量浮游动物不但种类组成复杂，而且个体大小相差也极悬殊。
因此要根据它们在水体中的不同密度二采不同的水量。
（目前计数原生动物、轮虫的水样量以1L为宜，枝角类、桡足类则以10~50L较好。
）4 采集时间采样时间要尽量保持一致。
一般在上午8:00~10:00进行为好。
在长江中下游采集，如果采集四次，则春、夏、秋、冬各一次。
如果只采一次，则应在秋季（9、10月）进行为好。
（这是因为9~10月正是鱼类摄食旺季，为鱼类生长的最佳时期，如果此时有较高的现存量，则可认为该水体中有较大的供铒能力。
）浮游动物样品的固定，原生动物和轮虫可用碘液或福尔马林，加量同浮游植物（一般可与浮游植物合用同一样品）。
浮游动物的定量方法
(1)体积法：本方法就是把生物体当作一个近似
几何图形，按求积公式获得生物体积，并假定比重 为1，这就得到体重。
(2)沉淀体积法：本方法很简单，把用网具捞取 的浮游动物样品放在有刻度的滴定管中，经一定时 间沉淀后读出沉淀体积。 (3) 直接称重法：就是要把测重的生物体，用微 量天平直接称其体重。
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二、计算
换算公式 把计数获得的结果用下列公式换算为 单位体积中浮游动物个数： N= Vs n／V Va 式中 N——升水中浮游动物个体数(个／升)； V ——采样体积(升)； Vs——沉淀体积(毫升) Va——计数体积(毫升) n—计数所获得的个体数。
三、生物量的换算
在测出每升水中浮游动物的数量后，再求得各种浮 游动物的个体平均重，生物量就能换算。
浮游动物定量方法
一、计 数
★浮游动物计数的主要仪器是显微镜和计数框。 ★计数时，沉淀样品要充分摇匀，快吸快滴。 ★计数原生动物：用0.1毫升的计数框；用 定量吸管吸0.1ml注入0.1 ml计数框中，盖上盖 玻片计数全片，每个样品计数2片。（用1升水 样沉淀样品）
★计数轮虫：用1毫升的计数框；用定量 吸管吸1ml注入1 ml计数框中，盖上盖玻片 计数全片，每个样品计数2片。（用1升水 样沉淀样品） ★计数甲壳动物：用1毫升的计数框； 用定量吸管吸1ml注入1 ml计数框中，在低 倍镜下全片计数枝角类、桡足类、无节幼 体，。（用10升水样沉淀样品） ★
浮游动物和浮游植物调查方法
个视野有十几个时，数50个视野就够了，如果平
均每个视野有5-6个时，就需数100个视野；如果平 均每个视野不超过1-2个时，要数200个视野以上，
数横条，最少不少于5条具体可自行掌握。 总之不论数视野还是数横条，每片计数到 的溪流植物总数应达到200个（低浓度时）500个（高浓度时）以上。 同一样品的二片计数结果与其均数之差距 如果不大于其均数的10%，这两个相近的值 的均数即可视为计数结果。
在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小时候。再 用乳胶管或橡皮管利用虹吸原理小心地抽出上都
不含藻类的清液。一般约剩下20-40毫升沉淀物转
入30或50毫升的定量瓶中，用上述清液冲洗沉淀
器2-3次，洗液仍倒入定量瓶中使水量恰好达到30
或50毫升。然后贴上标签，标签上要记载采集时 间、地点、采水量、池号和样品号等。
例：计数第一个片为250个，计数第二片为 246个 则两片的均数为（250+246）/2=248 均数与第一片之差：248-250= -2 均数与第二片之差：248-246=2 则：-2/248= -0.0081即 -0.81% 2/248=+0.0081 即 0.81% 因为0.81%<10%，所以上述相近值的均数应 视为计数结果。
七、数量计算： 1、定性 2、定量结果 浮游植物定量：
使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移
动台的显微镜。
经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示容量标准 适合，检查三次均适合，此半数框即可使用。每 次计数时用的盖玻片应用碱水或肥皂水洗净备用。
浮游动植物调查方法
浮游动植物调查方法1.方法与原理1.1采样点水体中浮游生物的分布不是很均匀的，通常因水体形态、深度、水源几出口、风、光照以及其他环境条件而差异，因此必须选择有代表性的地点进行采样。
在一般情况下，湖泊的湖湾和中心部分，沿岸有水草区和无水草区浮游生物的种类和数量都有不同。
当有风引起水流时，浮游生物多聚集在水流冲击的下风向一侧，总量较高。
此外，水源入口处，不同时间各水层的光照和温度条件下浮游生物的种类和数量都会有所不同。
采样点的数目根据水体的具体条件而定。
水体面积大的，条件复杂的，采样点要多些；要有较高人力、时间和经费等条件允许的，采样点也可以多些。
1.2采集采集工具主要有采集网和采水器。
当一般定性采集时，可站在船舱内或甲板上，将采集网系在竹竿或木棍前端，放入水中作∞形循回拖动（网口上端不要露出水面），拖动速度不要超过0.3米/秒。
如若拖动太快，水在网内会发生回流，将使网内的浮游生物冲到网外。
当一般定量采集时，各种类型的采水器均可使用，但一定要能分层采水。
在水深不超过10米的水体采样时，可用自制的采水器。
采水器可以采集到那些易从网孔中漏失的微小浮游生物。
但因采集水量有限，很难采到密度较稀和游动能力强的较大类型种类。
1.3固定和保存采到的样品必须在5分钟以内加以固定。
常用的固定液有福尔马林、刘哥氏液、甘油—福尔马林保存液、Rodhe碘固定液。
福尔马林为含有40%甲醛的药品。
一般按每100毫升水样加入约4毫升福尔马林（含1.6%甲醛），也就是说用4%福尔马林固定。
1.4浓缩化学沉淀法：所才水样用福尔马林加以固定静置1—2昼夜使之沉淀，用宏吸管吸去上面清夜，将下层包括沉淀物的浓液移入小容器中，再静置沉淀。
必要时可反复进行，直到浓缩到10—50毫升为止。
1.5观察与鉴定对所采到的浮游生物种类进行全面的种的鉴定，是一项难度和工作量都很大的工作，常常需要各方面的专家协同进行。
种类鉴定可采用检索表和图鉴相结合的方法。
浮游动物的定量测定
生物量测定（体积法）
把生物体视为一个近似几何图形，按求积公式获 得生物体积，假定密度为1，就可求得体重。 （1）原生动物体积近似计算公式： V = 0.52×a×b2
式中，V —原生动物的体积（μ m3），a —体长（μ m）， b —体宽（μ m）。
（2）轮虫体积近似计算公式： V = 0.125×a3
谢
谢
！
C V1 Ni V2 V3
式中：Ni—每升水中浮游动物的数量，C— 计数所得个体数，V1 —浓缩样品体积（ml）， V2 —计数体积（ml），V3 —采样量体积数 （L）。
注意事项
1．甲壳动物计数时，如果在样品中有过多的般很小，可与枝 角类和桡足类一样全部计数（或稀释后取样计 数），也可在1L沉淀样品中，用与轮虫相同的方 法进行计数。
生物量测定
目前，测定浮游动物生物量主要有体积法、排 水容积法和直接称重法。 用实验测动物体积，再求得其生物量。这种方 法是准确而科学的，因浮游动物因季节不同和地域 的差别，则体积也不尽相同。 但条件不具备时，可依据资料求得：即将每种 浮游动物定量计数的个体数量与该种的平均湿重相 乘即可得其生物量。再将各类动物的生物量相加， 即为浮游动物总生物量。
式中， V —轮虫的体积（μ m3），a —体长（μ m）。
显微镜测微技术（体长测定）
微生物的大小通常用测微计来测量，测微计分别 有接目镜测微尺和镜台测微尺两部分。接目镜测微尺 是一块圆形玻片，在中央有一带刻度的尺，等份成50 或100小格，而每一格的大小是相对的，在同一接目 镜下，它是随不同放大率的物镜而改变其相对比例； 镜台测微尺为一块载玻片，上面胶有一圆形玻片，其 中央部分有精确的刻度尺，刻度尺的长度是已知的， 长度为1mm等份为100小格，每小格间的距离为 0.01mm，即10微米。因为镜台测微尺是放置在载物 台上，所以它每格的长度就是测量时的实际长度。 在使用时，必须先用镜台测微尺来校正目镜测微 尺，以求出在某一放大率下，目镜测微尺每小格所代 表的实际长度，然后将镜台测微尺换上标本，在相同 放大率下测出标本上微生物占目镜测微尺几格，就可 算出微生物的大小。
浮游动植物调查方法
浮游动植物调查方法1.方法与原理1.1采样点水体中浮游生物的分布不是很均匀的，通常因水体形态、深度、水源几出口、风、光照以及其他环境条件而差异，因此必须选择有代表性的地点进行采样。
在一般情况下，湖泊的湖湾和中心部分，沿岸有水草区和无水草区浮游生物的种类和数量都有不同。
当有风引起水流时，浮游生物多聚集在水流冲击的下风向一侧，总量较高。
此外，水源入口处，不同时间各水层的光照和温度条件下浮游生物的种类和数量都会有所不同。
采样点的数目根据水体的具体条件而定。
水体面积大的，条件复杂的，采样点要多些；要有较高人力、时间和经费等条件允许的，采样点也可以多些。
1.2采集采集工具主要有采集网和采水器。
当一般定性采集时，可站在船舱内或甲板上，将采集网系在竹竿或木棍前端，放入水中作∞形循回拖动（网口上端不要露出水面），拖动速度不要超过0.3米/秒。
如若拖动太快，水在网内会发生回流，将使网内的浮游生物冲到网外。
当一般定量采集时，各种类型的采水器均可使用，但一定要能分层采水。
在水深不超过10米的水体采样时，可用自制的采水器。
采水器可以采集到那些易从网孔中漏失的微小浮游生物。
但因采集水量有限，很难采到密度较稀和游动能力强的较大类型种类。
1.3固定和保存采到的样品必须在5分钟以内加以固定。
常用的固定液有福尔马林、刘哥氏液、甘油—福尔马林保存液、Rodhe碘固定液。
福尔马林为含有40%甲醛的药品。
一般按每100毫升水样加入约4毫升福尔马林（含1.6%甲醛），也就是说用4%福尔马林固定。
1.4浓缩化学沉淀法：所才水样用福尔马林加以固定静置1—2昼夜使之沉淀，用宏吸管吸去上面清夜，将下层包括沉淀物的浓液移入小容器中，再静置沉淀。
必要时可反复进行，直到浓缩到10—50毫升为止。
1.5观察与鉴定对所采到的浮游生物种类进行全面的种的鉴定，是一项难度和工作量都很大的工作，常常需要各方面的专家协同进行。
种类鉴定可采用检索表和图鉴相结合的方法。
浮游生物调查方法
浮游生物调查方法一、调查目的：浮游生物种类和数量与环境关系。
二、调查的主要内容：●定性调查●定量调查三、调查工具1、采水器2、浮游生物网3、透明度盘4、标本瓶5、固定液●鲁哥氏液●甲醛3%-5%6、其他：四、采样点选择五、样品采集：1、定性样品采集2、定量样品采集：浮游植物，浮游动物。
六、样品处理：1、定性样品处理2、定量样品处理●浮游植物样品●浮游动物样品浮游植物样品●所采水样摇匀后倒入沉淀器中静置，使浮游植物完全沉淀。
●沉淀是一种圆柱形分液漏斗（图2）。
如无沉淀器也可用甘杯、烧杯或在原水样瓶中静置沉淀。
●沉淀器应置于平稳处，避免摇动。
水样倾入二小时后应将沉淀器轻轻旋转一会，以减少藻类附着在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小时候。
再用乳胶管或橡皮管利用虹吸原理小心地抽出上都不含藻类的清液。
一般约剩下20-40毫升沉淀物转入30或50毫升的定量瓶中，用上述清液冲洗沉淀器2-3次，洗液仍倒入定量瓶中使水量恰好达到30或50毫升。
然后贴上标签，标签上要记载采集时间、地点、采水量、池号和样品号等。
●虹吸动作要十分仔细、小心。
开始时虹吸管一端放在沉淀器内约三分之二处，另一端套接在已经用手挤压出空气的橡皮球上，然后轻轻松手并移开橡皮球使清液流出，为了避免漂浮水面的一些微小藻类进入虹吸管而被吸走，管吕应始终低于水面。
虹吸管内清液的活动不宜过快，可用手指轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时，应使清淮一滴一滴地流下。
吸出的清液要用一洁净的器皿装盛，以便在浓缩过程在出故障时，可重新倒入沉淀器中浓缩，不必新采水。
七、数量计算：1、定性2、定量结果浮游植物定量：●使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移动台的显微镜。
●经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片，如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示容量标准适合，检查三次均适合，此半数框即可使用。
浮游生物的测定常识
(2)4%的福尔马林
福尔马林 + 甘油 + 水
4mL
10mL 86mL
适宜固定枝角类和桡足类
100mL水样 + 4～5mL福尔马林
(3)70%酒精 适宜固定枝角类和桡足类
浓缩方法: （1）沉淀法：沉淀24～48小时 （2）过滤法：用筛绢或滤器过滤 （3）离心法：用离心机离心
三、浮游生物的测定
(一)浮游生物的定性测定
后体部
于后体部 于后体部
第一触 长达身体的末 角 端，23-25节
适中，617节
短，5-9节
卵囊
1个，在身体 中间
2个，在身 1个，在身
体两侧
体中间
生活方 式
浮游生活
浮游生活 底栖生活
汤匙华哲水蚤
毛饰拟剑水蚤 单节水生猛水蚤
（二）浮游生物的定量测定
1. 计数框及其使用 (1) 塞奇威克一拉夫脱计数框（简称S-R计数框）： 长：50mm，宽20mm，深1mm
1mL
(2) 网格计数框
深0.25mm
2. 显微镜的校准 目测微尺
测微尺 台测微尺
目尺长度 (mm )
两重合线之间台尺格数 两重合线之间目尺格数
3. 计数方法 (1) 长条计数法
C 1000
浮游生物数/ mL=
L W D S
式中C-- 计数的浮游生物数；
L-- 一个长条的长度，也就是计数框的长度（mm）；
浮游生物的测定常识
浮游生物的测定常识
一、采样
（一）采样工具
型号
网孔大小 （mm)
网孔 数
采集目的
1.浮游生物网 25
(1) 定性网
(2) 定量网
定性定量和生物量的监测技术(浮游、底栖、着生)
定性定量和生物量的监测技术（浮游、底栖、着生）(1)水样的沉淀浓缩将己固定的水样，放入1 000 ml沉淀器（沉淀器可用1 000 ml广口瓶或分液漏斗）中静置24 h，使其充分沉淀。
然后缓慢吸出上层清液，将剩下的20 ml左右的沉淀物转入30 ml定量瓶中，再用吸出的清液冲洗沉淀器3次，每次的冲洗液仍转入定量瓶中，并使终于容量为30 ml。
假如标本需长时光保存，应加入2～3 ml。
(2）定性调查将新奇或固定的水样，置于显微镜下举行属种鉴定。
对于优势种应当鉴定到种，普通种类可鉴定到属。
鉴定结束后，应将鉴定的种类列有名录。
假如鉴定到种属有困难，可按蓝藻、裸藻、绿藻、金藻、黄藻、硅藻、甲藻、原生动物、轮虫、枝角类和桡足类等大类举行鉴定。
(3）定量调查视野法计数：将定量瓶中的样品充分摇匀，采纳合适体积的计数框举行总数计数或分类计数。
每个样品计数2片，取其平均值；同一样品的两次计数之差超过±15％，需举行第3片计数，取两个近似的平均数作为计数结果（见表9.3)。
藻类、原生动物计数取0.1 ml，在l0x40～10x60倍显微镜下用0.1 ml的计数框举行藻类计数，计数50～300个视野，原生生物全片计数。
轮虫取1 ml，在10x10～10x20倍显微镜下用1 ml计数框举行全片计数。
甲壳动物取5 ml或8 ml，在10x10～10x20倍显微镜下用5 ml或8 ml计数框举行全片计数。
每升水中浮游植物的个体数，按下列公式计算：式中：N—1L水中浮游生物的个体数； Cs—计数框面积，mm2 ; Fs—每个视野的面积，mm2 ; Fn—计数过的视野数； V—1L水样经沉淀浓缩后的体积，ml; U—计数框的体积，ml; Pn—每片计数出的浮游生物个体数。
单位体积浮游动物的数量，按下列公式计算：式中：N—1L水样中浮游动物的数量，个／L; V—采样的体积，L; Vs—样品浓缩后的体积，ml; Va—计数样品体积，ml; n—计数所获得的个体数，个。
浮游生物的测定实验报告
浮游生物的测定实验报告一、采样(一)采样工具1．浮游生物网浮游生物网有两种类型，即定性网和定量网。
2、采水器(1)瓶式采水器(2)水生81型有机玻璃采水器:3、透明度盘(二）采样层次（深度)1、一般常规生物监测，在江河中，由于水不断流动，上下层混合较快，可不分层采样，在水面下0。
5m左右采样即可;2、在湖泊、水库中，若水深不超过2m，一般可仅在表层（0。
5m深处）取样，如果透明度很小，可在下层加取一样，并与表层样混合制成混合样;3、水深5m以内的可在水面下0。
5m，1m，2m，3m，4m处采样，混合均匀，从中取定量水样。
(三)采样方法及采样量1、定性样的采集用浮游生物定性网在选定的采样点于水面和0。
5m深处以每秒20，30cm的速度作“oo”形循回缓慢拖动，时间为5，10分钟（视生物多寡而定)。
2．定量样的采集采集定量样可用采水器和定量网，常用的是采水器。
采水器，一般来说，浮游生物密度低采水量就要多。
对于藻类，一般采水1，2升;对原生动物、轮虫及未成熟的微小甲壳动物，采水1，5升;成熟的甲壳动物则要10，50升。
定量网,可选择适当型号的网，放入距水底0。
5米处，然后垂直上拖，以0。
5米、秒的均匀速度拖取，所采水样的体积可按下列公式推算出来。
水样体积=πr2H,式中r为网口半径，H为拖取的深度。
(四）采样频率一般常规生物监测，每年采样应不少于两次，一般在春秋两季进行，若要了解浮游生物周年的变化，则一年四季都要采样，特殊需要，则根据具体情况增加采样次数。
采样要尽量在晴朗无风的天气进行。
二、样品的固定、浓缩和保存三、浮游生物的测定(一）定性测定(二）定量测定定量测定主要是计数所采集的定量样品中浮游生物的数量，也可进行容量（体积）或重量的测定，这里只介绍计数方法。
1、计数框及其使用计数框的容量有0。
1mL、1mL、5mL和8mL四种。
常用的计数框有两种:(1）塞奇威克一拉夫脱计数框（简称S-R计数框）:该计数框长50mm，宽20mm，深lmm，总面积为1000mm2，总体积为lmL。
浮游动物和浮游植物调查方法
虹吸动作要十分仔细、小心。开始时虹吸管一端 放在沉淀器内约三分之二处，另一端套接在已经 用手挤压出空气的橡皮球上，然后轻轻松手并移 开橡皮球使清液流出，为了避免漂浮水面的一些 微小藻类进入虹吸管而被吸走，管吕应始终低于 水面。虹吸管内清液的活动不宜过快，可用手指 轻捏管壁以控制流量，当吸到原水样的3/5以上时， 应使清淮一滴一滴地流下。吸出的清液要用一洁 净的器皿装盛，以便在浓缩过程在出故障时，可 重新倒入沉淀器中浓缩，不必新采水。
沉淀器应置于平稳处，避免摇动。水样倾入二小
时后应将沉淀器轻轻旋转一会，以减少藻类附着
在器壁的可能性，然后静置沉淀24-48小时候。再 用乳胶管或橡皮管利用虹吸原理小心地抽出上都
不含藻类的清液。一般约剩下20-40毫升沉淀物转
入30或50毫升的定量瓶中，用上述清液冲洗沉淀
器2-3次，洗液仍倒入定量瓶中使水量恰好达到30
七、数量计算： 1、定性 2、定量结果 浮游植物定量：
Hale Waihona Puke 使用的工具有：带有0.1毫升刻度的小吸管，容量 为0.1毫升的计数框（面积20ⅹ20毫米2）和具有移
动台的显微镜。
经0.1毫升吸管吸水0.1毫升于方框内，盖上盖玻片， 如果框内无气泡亦无水液溢出，即表示容量标准 适合，检查三次均适合，此半数框即可使用。每 次计数时用的盖玻片应用碱水或肥皂水洗净备用。
用前可浸入70%的酒精中，用时取出，用细绢拭
净，计数框用前以薄绸布拭净，用毕以水弄湿后
轻拭或用水冲净。
首先将计算瓶用左右平移的方式摇动100-200次，
摇均匀后立即用0.1毫升吸管从中吸取0.1毫升置入
浮游生物量计算方法
浮游生物量计算方法浮游生物量是指水体中的浮游生物数量，通常用来评估水体的生态系统状况和水质变化。
浮游生物量计算方法是指通过测量和计算水体中浮游生物的数量和生物量来评估水体的浮游生物丰度和群落结构。
本文将介绍几种常用的浮游生物量计算方法。
一、显微镜计数法显微镜计数法是最常用的测量浮游生物数量的方法之一。
通过在显微镜下观察水样中的浮游生物，使用显微镜的目镜和物镜进行计数，然后根据计数结果和单位体积水样的体积计算出浮游生物的数量。
这种方法适用于水样中浮游生物数量较少的情况，但需要高度的专业知识和技巧。
二、集落计数法集落计数法是一种相对简单和快速的测量浮游生物数量的方法。
通过将水样在培养基上进行培养，浮游生物会在培养基上形成集落，通过计算集落的数量和大小来估算浮游生物的数量。
这种方法适用于水样中浮游生物数量较多的情况，但需要一定的培养时间和实验室设备。
三、生物量计算法生物量计算法是通过测量浮游生物的体长或体积，结合浮游生物的丰度，来计算浮游生物的生物量。
常用的方法有体长-体积关系法和生物量学模型法。
体长-体积关系法是通过建立浮游生物的体长和体积之间的关系，根据浮游生物的体长测量结果来计算浮游生物的体积，进而计算浮游生物的生物量。
生物量学模型法是通过建立浮游生物的体长、宽度和高度等参数与生物量之间的关系，根据浮游生物的形态测量结果来计算浮游生物的生物量。
这些方法需要对浮游生物的形态特征进行准确的测量和分析，适用于研究浮游生物的生物量变化和群落结构的长期监测。
四、分子生物学方法分子生物学方法是近年来发展起来的一种浮游生物量计算方法。
通过提取水样中的DNA或RNA，并使用分子生物学技术进行测序和定量分析，可以快速、准确地鉴定和计数水样中的浮游生物。
这种方法具有高度的灵敏性和特异性，可以检测到较低浓度的浮游生物，并且可以同时鉴定和计数多种不同种类的浮游生物。
浮游生物量计算方法有显微镜计数法、集落计数法、生物量计算法和分子生物学方法等。
浮游生物个体大小
2、Na2S2O3标准溶液（0.01mol/L） 2.5gNa2S2O3· 10H2O固体溶于经煮沸冷却的纯水中， 并稀释至1L。 3、淀粉溶液（1%）：1g可溶性淀粉，先用少量纯水 调成糊状，倾倒入沸水中煮沸并稀释有MnSO4· 2O 4H 480g。 5、KI-NaOH溶液：1L溶液中溶有KI150 g和NaOH 固体500 g，NaOH在溶解过程中放出大量热量， 可把烧杯置于冷水浴中。
6、H2SO4溶液（1:1）。在不断搅拌下，把浓 H2SO4缓慢倒入等体积的纯水中，混合最好在冷 水浴中进行。 7、KI溶液（10%）
（二）测定步骤
1、 Na2S2O3标准溶液的标定： 取K2Cr2O3标准溶液20.00ml于250ml碘量 瓶中，加入KI溶液5ml和H2SO4溶液2ml， 盖上瓶口混匀并在暗处放置5min，加纯水 50ml，以Na2S2O3标准溶液滴至淡黄，加 入淀粉溶液1ml，继续滴至溶液呈无色为止， 读取滴定管读数V（双样滴定取平均值）， 依下式计算Na2S2O3标准溶液的准确浓度： C=（0.01000×20.00）/V （mol/L）
注意：生产力较高的水体氧气过饱和在白瓶 中产生大的气泡，该气泡主要是氧气，不要 放掉。
2、测定溶解氧
（一）试剂及其配制
1、K2Cr2O3标准溶液（C1/6K2cr2o7=0.0100mol/L） ， 称取K2Cr2O7固体（AR，于130℃烘3h）0.4904g,溶 解后在1000ml容量瓶中定容。
（四）结果与换算
①各挂瓶水层生产量的计算： • 单位：毫克∕升．日 • 毛产量＝白瓶溶氧量－黑瓶溶氧量 • 呼吸量＝初始氧量－黑瓶溶氧量 • 净生产量＝白瓶溶氧量－初始氧量 ＝毛产量－呼吸量 ②水柱日生产量的计算： 单位：毫克∕ｍ２．日
浮游动物的测定
水质常规项目实验之三
浮游动物的调查
一、实验试剂及工具
甲醛溶液40%（V/V）
采水器5000mL、浮游生物网13号（孔径0.112mm纱绢制成）、水样瓶（矿泉水瓶子）、样品瓶（带有100mL或150mL刻度的玻璃试剂瓶）、离心机、洗耳球、移液枪（20～200uL）、计数框0.05mL、盖玻片
二、实验步骤
1、采样：选择5个特定的区域作为采样点，关闭13号浮游
生物网的网口，5000mL采水器采水5次（用浮游生物网
过滤），第6次采水用于冲洗过滤网使浮游动物全部收集
到水样瓶中。
2、固定：在水样中加入10mL甲醛
3、沉淀：用3000转/分钟离心机5分钟离心
4、稀释：将离心后的上层清液弃去，沉淀物移入样品瓶中，
稀释到100mL
5、观察计数：用移液枪移取50uL样品，移入计数框，盖上
盖玻片，在显微镜4倍～40倍下进行观察并计数n
6、计算：每升水中浮游动物的数量
密度=（n×100）/（0.05×30）只/L
三、实验结果
1号（铁桥老王家）
233只/L
2号（南溪沟张磊）
550只/L
3号（老雷家）
917只/L
4号（清泉主航道）
733只/L
5号（翠屏岛码头沉淀稀释150mL）
375只/L
四、结果讨论
1、浮游动物含量介于233～917只/L，其中老雷家附近水域
含量最高，铁桥下水域含量最低。
同一二班所测结果相
差不大。
2、各类浮游动物大体平均含量为：（只/L）
显然累枝虫最多。
变形虫最少。
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(4)采集时间
采样的时间要尽量保持一致。一般在上午8：00一10：00进行为 好。至于采集的次数由研究的目的及人力决定。在长江中下游地 区，如果一年采集4次，则春、夏、秋、冬各一次；如果一年只采 一次，而且调查的目的主要是为了了解水体中的供饵能力，则应 在秋季(9 10月)进行为好。这是因为9—10月份正是鱼类摄食旺季， 为鱼类生长的最佳时期，如果此时有较高的现存量，则可认为该 水体中有较大的供饵能力，尚可继续增产。
即在筒形分液漏斗中沉淀48小时后，吸取上层清液，把沉淀浓缩 样品放入试剂瓶中，最后定量为30或50毫升。一般原生动物和轮 虫的计数可与浮游植物的计数合用一个样品。 (2)过滤法 甲壳动物一般个体较大，在水体中的密度也较 低， 通常用过滤法浓缩水样。在此，有两点值得注意：首先必须用25 号浮游生物闷作过滤网；其次，应当有过滤网和定性网之分。避 免用捞定性样品的网当作过滤网。在不得已的情况下，定要先采 定量样品，后采定性标本。如果再次过滤样品时，一定要反复洗 尽后方可应用。同时切记，用25号网过滤的水样，不能 当作计数 原生动物或轮虫的定量样品之用。在野外采集时，必须遵循先采 定量样品，后捞定性标本的原则。
无节幼体的计数问题
无节幼体是桡足类的幼体，据初步统计它们的数量占整个桡足 类总数的40-90％，平均为75％。无节幼体一般很小，与轮虫 相差无几，甚至有的还小于轮虫和原生动物。在样品中如果挠 足类数量不多，可和枝角类、桡足类一样全部计数；如果桡足 类数量很多，全部过数花时太多，那么可把过滤样品稀释到若 干体积后，并充分摇匀，再取其中部分计数，计数苦干片取其 平均值。然后再换算成单位体积中个体数。无节幼体亦可在l升 沉淀样品中，用轮虫相同的计数方法进行计数。
如果研究目的是要了解水体中各区域浮游动物现 存量的分布，以便对渔业生产进行合理布局， 则另当别论。
(2)采水层次
由水体的深度决定。切不可只采一个表层或一个底层水 样。
据夏季调查，东湖B站(水深4米左右)，在2米的水层区， 甲壳动物的数量约占31％，而2米以下的水层占69％左 右。
同时还发现，在夏季，一般幼体喜欢在表层，成体则在深 层。尽管这种分布格局因时田地而变，但浮游动物存在 垂直分布却是一个普遍现象。
三、计 数
进行浮游动物计数的主要仪器是显微镜和计数 框，计数原生动 物用0.1毫升计数框；计数 轮虫和甲壳动物用l毫升计数框。
(1)原生动物、轮虫的计数
计数时，沉淀样品要充分摇匀，然后用定量吸管吸 0.1ml注入0.1 ml计数框中，在10×20的放大倍数下 计数原生动物；吸取1毫升注入1毫升计数框内，在 10×10的放大倍数下，计数轮虫。一般计数两片，取 其平均值(参阅浮游植物章节)。 (2)甲壳动物的计数 甲壳动物指枝角类、桡足类。按上述方法取10-50升 水样，用25号浮游生物网过滤，把过滤物放入标本瓶 中，并洗三次，所得的过滤物亦放入上述瓶中。在计 数时，根据样品中甲壳动物的多少分若干次全部过数。 如果在样品中有过多的藻类，则可加伊红(Eosin-Y)染 色。
一、采 集
采集水体中的浮游动物有两种方法：
一为用采水器采水后沉淀分离：适用于原生动物、 轮虫等小型浮游动物。
二为用网过滤：可用于枝角类、桡足类等甲壳动 物。
(1)设站
根据研究目的而定。 如果研究目的仅限于了解水体中浮游动物的丰 度而为合理放养提供依据，那么可根据水体的 形态划分不同的区域，然后根据不同区域所占 的份额，按比例取混合水样。
许多水库或深水湖泊，水深20米以上，这种水 体在夏季及冬季存在温跃层(或称变温层)。
由于在温跃层以下缺乏光照，浮游植物数量极少， 赖以植物生存的浮游动物数量也相应减少。如 果从养殖业角度而言，只取温跃层以上的水层 就足够了。
(3)采水量
浮游动物不但种类组成复杂，而且个体大小相 差也极悬殊。
大的浮游动物，如透明薄皮蚤Leptodora kindti) 可达10毫米以上，肉眼可见；
换算公式 把计数获得的结果用下列公式换算为单位体积中浮游动物个数：
N= Vsn/VVa
式中 N——升水中浮游动物个体数(个／升)；
V—采样体积(升)；
由此可见，如果只取表层水样就不能正确地测 算浮游动物的现存量。但是如果每隔0.5米或2 米取一个水样，则计数工作量又相当大。
一个折衷的办法是每隔0.5米或1米，甚至2米取 等量水样加以混合，然后取出一部分作为浮游 动物定量之用。
如东湖水深4．2米，则在0、1、2、3、4米五 个水层各取10升水样加以混合，用25号浮游生 物网过滤后供该站甲壳动物定量之用；依上法 各取1升水样均匀混合和取其I升沉淀作为原生 动物、轮虫定量样品。
浮游动物生物量的测定方法
概念
定义：现存量(Standing cropห้องสมุดไป่ตู้)是指单位面积或体积中 所存在生物体的数量或重量。
表示方法： 现存量若以个体数表示则可称为丰度(abundance)或
（数量）密度（Density），单位为ind./L； 若以重量表示则可称为生物量（Biomass，单位为
mg/L。
小的如原生动物，只有20一30微米，只能在足 够倍数的显微镜下方能观察清楚。
它们在水体中的数量也极不同。
原生动物从几百个到几万个，一般为几干个； 轮虫从几十个到上万个，一般为几百个； 甲壳动物从几个到几百个，一般为几十个。
因此要根据它们在水体中的不同密度而采不同 的水量。
目前，最常用的采水量，计数原生动物、轮虫 的水样以l升为宜，
浮游动物样品的固定，原生动物和轮虫可用碘液或福尔马林，加 量同浮游植物（一般可与浮游植物合用同一样品。枝角类和桡足 类一般用5%福尔马林固定。原生动物、轮虫的种类坚定需活体观 察，为方便起见，可加适当的麻醉剂，如普鲁卡因、乌来糖(尿烷)， 也可用苏打水等。
二、沉淀和滤缩
把水样中的浮游动物浓缩一般采用沉淀和滤缩的方法。 (1)沉淀法 操作方法与浮游植物定量样品的沉淀和浓缩方法相同。