植物生理学实验
植物生理学实验测试
植物生理学实验测试植物生理学是研究植物生长和发育等生理过程的科学学科,通过实验测试可以揭示植物对外界环境因素的响应和适应机制。
本文将介绍几种常见的植物生理学实验测试方法,包括植物生长实验、叶绿素测定实验和逆境胁迫实验等。
一、植物生长实验植物生长实验是研究植物对不同环境条件下的生长反应的一种常见方法。
可以通过改变光照、温度、水分等环境因素来观察植物生长的变化。
在实验中,选取相同种子并进行处理,如将一组种子暴露在高温环境下,另一组放置在低温环境中,然后记录植物的生长情况,并进行数据统计和分析。
通过这种实验方法可以了解植物对温度的适应性以及不同温度对植物生长的影响。
二、叶绿素测定实验叶绿素是植物中起着关键作用的色素,其含量可以反映植物光合作用的强弱。
叶绿素测定实验可以通过测量植物叶片中叶绿素的含量来评估光合作用的效率。
实验中,首先需要采集新鲜叶片样品,并将其研磨得到绿色叶汁,然后通过光度计等仪器测定叶绿素的吸光度值,并根据标准曲线计算叶绿素的含量。
通过叶绿素测定实验可以评估植物对不同环境因素(如光照强度、养分浓度)的响应和适应能力。
三、逆境胁迫实验逆境胁迫实验是模拟植物在环境恶劣条件下的生理反应,如盐胁迫、干旱胁迫、冷热胁迫等。
通过逆境胁迫实验,可以研究植物在逆境条件下的生理适应和耐受机制。
实验中,可以使用不同浓度的盐水浇灌植物或让植物在干旱条件下生长,然后观察植物的生长情况、生理指标的变化,并与正常生长的植物进行比较分析。
逆境胁迫实验可以揭示植物对逆境的敏感性和胁迫响应机制,为育种和改良耐逆植物品种提供理论依据。
总结:植物生理学实验测试是研究植物生理过程的重要手段,通过不同的实验方法可以揭示植物对环境因素的响应和适应机制。
植物生长实验、叶绿素测定实验和逆境胁迫实验是常见的植物生理学实验方法,分别用于研究植物生长、光合作用和逆境胁迫的情况。
通过这些实验测试的结果,可以进一步了解植物的适应性和耐受能力,为培育适应不同环境的优良植物品种提供理论基础。
现代植物生理学实验指南
现代植物生理学实验指南植物生理学是一门重要的生物学科,研究植物在生长、发育、代谢和适应环境等方面的生理过程。
为了深入理解植物生理学,我们需要进行各种实验研究,这里为大家提供一份现代植物生理学实验指南,帮助大家系统了解植物生理学实验的基本方法和技巧。
实验一:光合作用实验光合作用是植物体内最重要的生理过程之一,我们可以通过测量植物的氧气释放量和二氧化碳吸收量来评估光合作用效率。
实验步骤如下:1. 将一片绿叶片放入水中,并用环状金属片夹住叶片。
2. 将装有水的容器倒置在金属片上,并使叶片完全浸入水中。
3. 在光亮条件下放置数小时,测量水中溶氧量的变化,记录并计算光合速率。
4. 重复操作若干次,得出稳定的结果。
实验二:水分利用实验水是植物生命的重要组成部分,其缺乏或过多都会对植物生长产生影响。
我们可以通过测量植物根系吸水能力和细胞渗透压来评估植物对水分的利用效率。
实验步骤如下:1. 准备两盆一模一样的植物,其中一盆为对照组,另一盆加盐水。
2. 分别测量两盆植物的根系吸水量和细胞渗透压,记录数据。
3. 将两盆植物进行比较,得出对盐水处理的植物的适应能力。
实验三:激素生理实验植物激素在影响植物生长、发育和适应环境方面发挥了重要作用,我们可以通过测量植物生长的速率和荷尔蒙水平来评估激素的作用。
实验步骤如下:1. 选择一些与生长相关的植物,如小麦或豌豆等。
2. 分别在一组处理中加入不同浓度的激素,另一组作为对照组。
3. 坚持一段时间,测量植物的生长速率和荷尔蒙水平,比较两组的差异。
以上是三个常见的植物生理学实验,希望这份实验指南能对学习植物生理学的同学们有所帮助。
在实验过程中,需要注意实验条件的一致性和数据的准确性,以确保实验的正确性和可靠性。
植物生理学的重要实验技术
植物生理学的重要实验技术植物生理学是研究植物内部各种生理过程的科学,通过实验技术的应用,可以深入研究植物的生理特性和调控机制。
本文将介绍几种重要的植物生理学实验技术,包括光合作用测定、光周期实验、蒸腾作用研究和植物生长素的测定。
一、光合作用测定光合作用是植物通过光能将二氧化碳和水转化为有机物质和氧气的过程。
光合作用的测定可以通过净光合速率的测定来进行。
测定方法可以使用荧光法或者气体交流法。
荧光法是通过测定叶片上的荧光信号的强度来计算净光合速率,而气体交流法是通过测定进出叶气体的浓度变化来计算净光合速率。
这些方法需要使用一些仪器设备,如荧光测定仪或气体交流测定系统。
二、光周期实验光周期是植物在一定时间内接受光照和黑暗的周期性变化。
光周期实验主要用于研究植物的花期控制、休眠期控制等生理过程。
常用的方法是通过控制植物所接受的光照时间和黑暗时间的比例来模拟不同的光周期条件。
可以使用光周期系列灯来实现对光周期的控制。
在实验过程中,可以观察植株的生长状况、花期的调控以及激素含量的变化等指标。
三、蒸腾作用研究蒸腾作用是植物体内水分的散失过程,是植物体内水分运输和植物生长发育的关键过程之一。
蒸腾作用研究常用的技术是测定植物叶片表面的水蒸气压,并结合气孔开闭情况来研究蒸腾作用的影响因素。
测定水蒸气压时通常使用水分压差传感器或者电子秤等设备,观察气孔开闭可以通过显微镜或者扫描电子显微镜等工具进行。
四、植物生长素的测定植物生长素是一类植物内源激素,调控着植物体内的生长和发育过程。
研究植物生长素的测定可以使用生物测定法、免疫测定法和色谱法等。
生物测定法使用生物体来测定生长素的活性,如使用阿片酸促进小麦胚芽的生长来测定生长素含量。
免疫测定法则是利用抗体和抗原之间的特异性结合来测定生长素含量。
色谱法是利用气相色谱或者液相色谱来分离和测定植物生长素的含量,通常需要先对样品进行提取和纯化。
结论植物生理学的实验技术是理解植物各种生理过程和调控机制的关键。
植物生理学实验
实验一植物细胞渗透势的测定(质壁分离法)一、原理将植物组织放入一系列不同浓度的蔗糖溶液中,经过一段时间后,植物细胞与蔗糖溶液之间将达到平衡状态。
如果在某一溶液中细胞脱水达到平衡时刚好处于临界质壁分离状态,则细胞的压力势ψp将下降为零,此时细胞液的渗透势ψπ等于外液的渗透势ψπ′,即ψπ=ψπ′。
此溶液称为该组织的等渗溶液,其浓度称为该组织的等渗浓度,即可计算出细胞液的渗透势。
实际上临界质壁分离状态镜下很难看到,一般以初始质壁分离作为判断等渗浓度的标准。
(细胞水势=渗+压+衬,其中渗=外渗=-iCRT)(注:内外浓度差不一定质壁分离,因为外高内低才会分离)二、器材、试剂与材料1、器材:显微镜,小培养皿(60mm),载盖玻片,温度计,试剂瓶,吸水纸等。
2、试剂:1mol/L蔗糖溶液,蔗糖系列标准溶液。
3、材料:洋葱。
三、操作步骤1、取干燥、洁净培养皿9套,顺序编号,顺序加入蔗糖系列标准溶液,呈一薄层,盖好皿盖。
(为什么?)2、用镊子撕取材料内表皮(0.5cm见方即可),吸去表面水分,迅速浸入上述培养皿中,每皿4—5片。
3、经20~30min(为什么等这么长时间?因为达渗透平衡)记录室温,同时从高浓度开始依次取出材料放于载片上,滴一滴同浓度的蔗糖溶液,盖上盖片,显微镜下观察。
若所有细胞都发生质壁分离现象,则取相邻低浓度的材料观察,并记录质壁分离的相对程度。
若有50%左右细胞发生初始质壁分离(即原生质体刚从细胞壁的角隅处分离),则该浓度就是等渗浓度。
若两个相邻浓度的材料中,一个未发生质壁分离,另一个发生质壁分离数超过50%,则两浓度平均值即为等渗浓度。
4、由所得的等渗浓度和室温计算细胞液的渗透势:ψπ=ψπ′=-iCRT(MPa),其中:ψπ——细胞的渗透势,MPa;ψπ′——供试溶液的渗透势,MPa;C——供试溶液的浓度,moL/L;R——气体常数,0.008314·L·MPa/(moL·K);T——绝对温度,(273十t℃)K;i——等渗系数,蔗糖为1。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告摘要:本实验旨在通过一系列实验来研究植物的生理特性及其对外界环境的响应。
我们使用了单子叶植物蔗糖苦苣菜(Saccharum officinarum L.)作为研究对象,并分别对其光合作用、光反应及水分运输进行了分析。
通过实验结果,我们得出了一些重要结论,对于深入了解植物生理学及其应用具有重要的意义。
引言:植物生理学是研究植物如何在内外环境的调节下进行生长和发育的科学。
通过对植物的生理特性进行研究,我们可以更好地了解植物生活的基本规律。
因此,本实验旨在通过一系列实验来深入研究植物的生理学特性。
材料与方法:1. 实验材料:蔗糖苦苣菜植株、草状质量秤、光谱辐射计、叶绿素荧光仪、离心机等。
2. 实验步骤:- 实验一:光合作用a. 将蔗糖苦苣菜植株放置在恒温暗房内恢复一段时间。
b. 将光谱辐射计放在适当位置,记录光照强度和光质。
c. 将一片健康的叶片置于夹层式草状质量秤上,记录叶片重量。
d. 将叶片暴露在光源下,测量一定时间内的叶片重量。
e. 重复实验步骤c和d,以获得多组数据并进行统计分析。
- 实验二:光反应a. 将蔗糖苦苣菜叶片置于叶绿素荧光仪上,等待测量稳定。
b. 记录初始叶绿素荧光(F_o)值。
c. 迅速打开强光源,记录最大叶绿素荧光(F_m)值。
d. 计算有效光能利用率(Yield)和光化学淬灭(qP)等参数。
- 实验三:水分运输a. 随机选取两片蔗糖苦苣菜叶片,将其离枝并切割横截面。
b. 快速将一片叶片放置在自来水中,随即用另一片叶片封住叶脉。
c. 将样品放置在离心机上,启动离心机以模拟植物体内水分运输。
d. 一段时间后,观察叶片的水分状态,并记录数据。
结果与讨论:1. 实验一的结果显示,蔗糖苦苣菜的光合作用明显受到光照强度和光质的影响。
光照强度越高,光合速率越快。
同时,特定波长范围的光对光合作用的促进作用更为明显。
2. 实验二的结果表明,蔗糖苦苣菜的光反应能力非常高,有效光能利用率和光化学淬灭都表现出良好的性能。
本科课件-植物生理学实验(完整)
放蓝色液流时,不可震动小瓶。
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根系活力的测定(TTC法)
植物生理生化教研室 曾汉来 2012.03.12
一、实验目的 • 理解植物根系活力的内涵 • 掌握TTC法测根系活力的原理与方法
提供合成所需能量; 合成氨基酸和植物激素 (ABA、CTK、GA等)
H2O 无机盐
硫酸,其他 操作相同。
加入1mol/L硫酸2ml
取出根吸 干水分
与3~4ml乙酸乙酯在研钵 内磨碎
查标准曲线, TTC还原量(mg)
空白试验作参比测 红色提取液移入试管且 485nm下吸光度 用乙酸乙酯定容到10ml
五、实验结果
TTC还原能力 (mg/g(根鲜重)/h)
=
四氮唑还原量(mg) [根重(g)×时间(h)]
(5)手持测糖仪4 分别测定蔗糖原液浓度(C )
四、结果计算 自由水的含量(%)=
植物组织中束缚水的含量(%) = 组织总含水量 - 组织中自由水含量
5
注意事项: 1. 清洗植物组织后应注意用
吸水纸擦干其表面的游离水分。 2. 植物组织与外部溶液之间
达到充分平衡。
6
实验01-2 植物组织水势的测定 (小液流法)
根的生长情况和活力水平直接影响地上部的生长 测定根系活力,为植物生长状况、营养供应研究提供依据。
二、验原理
氯化三苯基四氮唑(TTC)的标准氧化电位为80mV的氧化还 原物质,获得H的能力强。溶于水为无色溶液,还原后即生成 红色而不溶于水的三苯基甲腙 (TTF)。
—
生成的TTF比较稳定,不会被空气中的氧自动氧化,可用 分光光度法定量测定。
实验01-1 植物组织中自由水和束缚水 含量的测定
植物生理实验题
植物生理实验题
植物生理实验题通常涉及对植物生长、发育和生理过程的实际操作和观察。
以下是一些可能的植物生理实验题目,供你参考:
光合作用实验:
设计一个实验,验证光合作用与光照强度之间的关系。
你可以考虑改变光照强度,测量植物的光合速率。
呼吸作用实验:
利用呼吸作用实验,研究温度对植物呼吸速率的影响。
你可以使用不同温度条件下的植物组织,比较它们的氧气摄取或二氧化碳释放。
水分运输实验:
通过设计一个实验,探究植物中水分的运输。
可以使用色素标记法,观察染色液在植物中的运输过程。
激素影响实验:
设计一个实验,研究植物生长激素对植物生长和发育的影响。
可以选择一种激素,如赤霉素、生长素等,通过添加或去除激素,观察植物的生理变化。
光周期实验:
通过改变光照的时间来研究植物的生物钟。
设计一个实验,调整日夜的长短,观察植物的开花、休眠等周期性生理过程。
渗透压实验:
利用渗透压实验,研究植物细胞在不同浓度溶液中的膨压和质壁关系。
可以使用不同浓度的蔗糖溶液,观察植物细胞的反应。
叶片光合效率实验:
通过测量不同叶片的光合效率,探究叶片的结构和功能之间的关系。
可以使用光合仪或测光仪进行实验。
温度对发芽的影响实验:
设计一个实验,研究不同温度条件下植物种子的发芽速率和发芽率。
观察温度对种子生理活性的影响。
这些实验题目可以涵盖植物生理学的多个方面,要求学生在实验设计、数据收集和分析方面有一定的能力。
希望这些题目能够激发你对植物生理学实验的兴趣。
植物生理学实验
一植物组织中ETH(乙烯)释放量的测定测定原理:ACC是乙烯合成的直接前体,为了更好地了解乙烯对植物的调节作用,有必要测定植物中ACC的含量,在冷却的Hg+存在下,NaClO专一地使ACC转化成乙烯。
ACC:1-氨基环丙烷-1-羧酸测定中气相色谱仪用的是氢火焰检测器FID。
色谱仪包括固定相和流动相。
由于固定相和流动相对各种物质的吸附或溶解能力不同,因此各物质的分配系数不一样。
当待测样(含ETH混合气体)加入固定相以后,不断通以流动相(通常为氮气、氢气)待测物不断再分配,最后按照分配系数大小顺序依次被分离,并进入检测系统被检测,检测信号的大小,反映出物质含量的多少,在记录仪上呈现色谱图。
判断气相色谱仪氢火焰检测器是否点燃的3种方法?如何判断检测器已工作?1、将不锈钢镊子接触到检测器的喷扣处,若镊子上有水珠证明氢气已被点燃;2、根据记录笔的位置来判断;3、微电流放大器的“引燃开关”切换“引燃”时,检测器如发出扑声火焰已被点燃。
结果分析:经冷冻的苹果ETH释放速率低于常温的乙烯释放速率。
经低温处理ACC合成酶的形成受到损伤和影响,从而降低乙烯的合成与释放。
3大温度3大气流量:基线成一直线表明稳定了柱温80度进样器温度120度检测器温度140度N2 流量35微升每分钟400 H2 流量45 微升每分钟55千帕空气流量350 微升每分钟40 千帕二植物组织中脂肪氧化酶活力测定原理根据基质浓度一定,反应体系中溶解氧浓度的变化与酶活力大小呈线性相关原理进行测定。
LOX氧化多元不饱和脂肪酸生成具有共轭双键的过氧化物时消耗氧气,溶液中氧浓度的减少速率与酶活力大小成正比,用氧电极可精确的测定酶活力。
结果:经过干旱处理的小麦组织中LOX活力低(受干旱条件的诱导LOX基因的表达)注意事项:1测定时,维持温度恒定,氧电极对温度变化非常敏感;2 反应杯中不应有气泡,否则会造成信号不稳3 进行试验时要保持磁转子的转动,以平衡氧气浓度4 电极使用一段时间后,在阳极上形成一层氧化膜,使电极的灵敏度下降,需要用清洁剂清洁阳极。
植物生理学实验
植物生理学实验实验一植物组织中可溶性糖与淀粉的测定植物体内的碳素营养状况以及农产品的品质性状,常以可溶性糖和淀粉的含量作为重要指标,本实验学习几种定量测定可溶性糖和淀粉的方法。
一、苯酚法测定可溶性糖【原理】植物体内的可溶性糖主要是指能溶于水及乙醇的单糖和寡聚糖。
苯酚法测定可溶性糖的原理是:糖在浓硫酸作用下,脱水生成的糠醛或羟甲基糠醛能与苯酚缩合成一种橙红色化合物,在10~100Mg范围内其颜色深浅与糖的含量成正比,且在485nM波长下有最大吸收峰,故可用比色法在此波长下测定。
苯酚法可用于甲基化的糖、戊糖和多聚糖的测定,方法简单,灵敏度高,实验时基本不受蛋白质存在的影响,并且产生的颜色稳定时间在160Min以上。
【仪器与用具】分光光度计;电炉;铝锅;20Ml刻度试管;刻度吸管5Ml 1支,1Ml 2支;记号笔;吸水纸适量。
【试剂】90%苯酚溶液:称取90g苯酚(AR),加蒸馏水10Ml溶解,在室温下可保存数月;9%苯酚溶液:取3Ml 90%苯酚溶液,加蒸馏水至30Ml,现配现用;浓硫酸(比重1 84);1%蔗糖标准液:将分析纯蔗糖在80℃下烘至恒重,精确称取1 000g。
加少量水溶解,移入100Ml容量瓶中,加入0 5Ml浓硫酸,用蒸馏水定容至刻度;100μg/L蔗糖标准液:精确吸取1%蔗糖标准液1Ml加入100Ml容量瓶中,加水定容。
【方法】1.标准曲线的制作取20Ml刻度试管11支,从0~10分别编号,按表1-1加入溶液和水,然后按顺序向试管内加入1Ml 9%苯酚溶液,摇匀,再从管液正面以5~20s时间加入5Ml浓硫酸,摇匀。
比色液总体积为8Ml,在恒温下放置30Min,显色。
然后以空白为对照,在485nM 波长下比色测定,以糖含量为横坐标,光密度为纵坐标,绘制标准曲线,求出标准直线方程。
表1-1各试管加入溶液和水的量管号01~23~45~67~89~10100ug/L蔗糖液(ml)00.20.40.60.81.0水(ml)2.01.81.61.41.21.0蔗糖量(μg)0204060801002 可溶性糖的提取取新鲜植物叶片,擦净表面污物,剪碎混匀,称取0 10~0 30g,共3份,分别放入3支刻度试管中,加入5~10Ml蒸馏水,塑料薄膜封口,于沸水中提取30Min(提取2次),提取液过滤入25Ml容量瓶中,反复冲洗试管及残渣,定容至刻度。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告
植物是我们周围不可或缺的重要生物,它们通过各种生理过程实现
生长、发育和适应环境。
为了更深入地了解植物的生理特点,我们进
行了一系列植物生理学实验。
以下是我们的实验报告:
实验一:光合作用速率与光照强度的关系
在这个实验中,我们收集了不同光照强度下植物的光合作用速率数据。
结果显示,随着光照强度的增加,植物的光合作用速率呈现出增
加的趋势。
这表明光照强度对植物光合作用的影响十分显著,光合作
用速率与光照强度呈正相关关系。
实验二:水分蒸腾速率与相对湿度的关系
在这个实验中,我们测量了不同相对湿度下植物的水分蒸腾速率。
结果显示,随着相对湿度的增加,植物的水分蒸腾速率逐渐降低。
这
表明植物的水分蒸腾速率受相对湿度的影响,相对湿度与水分蒸腾速
率呈负相关关系。
实验三:温度对植物呼吸速率的影响
在这个实验中,我们调节了不同温度下植物的呼吸速率。
结果显示,随着温度的升高,植物的呼吸速率也随之增加。
这表明植物的呼吸速
率受温度影响,呼吸速率与温度呈正相关关系。
通过以上实验,我们对植物的光合作用、水分蒸腾和呼吸等生理过
程有了更深入的了解。
这些实验为我们研究植物的生长发育及环境适
应性提供了重要的参考依据。
希望我们的实验结果能对今后的植物生理学研究有所启发和帮助。
《植物生理学实验》
植物生理学实验引言植物生理学实验是研究植物生长和发育过程中的生理过程的一种科学方法。
通过对植物进行不同条件下的实验观察和分析,可以了解植物对外界环境的适应能力、生长调控机制等重要信息。
本文将介绍几个常见的植物生理学实验,包括光合作用实验、呼吸作用实验和植物生长调控实验。
实验一:光合作用实验实验目的研究光合作用在植物生理过程中的影响。
实验材料和仪器•适用于实验的植物样本•光照箱•光合作用测定仪器(如光合速率测定仪)实验步骤1.准备植物样本,并将其放置于光照箱中。
2.分别设置不同光照强度(如低光、中光、高光)的条件,并记录光照强度。
3.使用光合速率测定仪器,测定每个条件下的光合速率。
4.分析结果并得出结论。
实验结果和讨论根据实验结果,可以得出光照强度对光合作用速率的影响。
光照强度越高,光合作用速率越快,因为光合作用需要光能作为能量来源。
这个实验表明了光合作用对植物生长和发育的重要性,同时也可以用于评估植物对不同光照条件下的适应能力。
实验二:呼吸作用实验实验目的研究植物呼吸作用的过程和机制。
实验材料和仪器•成活的植物样本•呼吸速率测定仪器实验步骤1.准备植物样本并放置于呼吸速率测定仪器中。
2.记录植物在不同条件下的呼吸速率,如不同温度、不同光照等。
3.分析结果并得出结论。
实验结果和讨论通过呼吸速率的测定,可以了解到不同条件下植物呼吸的强度和速率。
温度对植物呼吸速率的影响比较显著,一般情况下,随着温度的升高,植物呼吸速率也会提高。
这个实验可以帮助我们理解植物的能量代谢过程,为植物生长和发育的调控机制提供重要信息。
实验三:植物生长调控实验实验目的研究不同条件对植物生长和发育的调控作用。
实验材料和仪器•可控环境设备(如生长箱)•不同生长因子的处理液(如植物激素)实验步骤1.准备植物样本,并将其种植在生长箱中。
2.设置不同生长条件,如温度、湿度、光照等,并记录相关参数。
3.分别加入不同处理液,如植物激素,观察植物生长和发育的变化。
植物生理学实验
营养胁迫条件下生物量积累的减少可能与 植物对营养元素的吸收和利用受限有关, 这会影响植物的生长和发育进程。
实验结论
实验结论1
光照条件对植物叶绿素含量 具有显著影响,适当增加光 照强度可以提高植物的光合 作用效率。
实验结论2
水分胁迫条件下,植物会通 过降低蒸腾速率来维持水分 平衡,因此在干旱地区种植 作物时应注意合理灌溉。
改进方向
优化实验设计,缩短实验周期;采用更加智能的环境调控系统,提高实
验效率;改进生理指标的测定方法,减少对植物组织的破坏,提高实验
的准确性。
05
CHAPTER
参考文献
参考文献
APA格式
主要用于社会科学和人文学科的参考文献引 用。
MLA格式
主要用于文学作品的参考文献引用。
Chicago格式
主要用于历史和传记作品的参考文献引用。
数据整理
对实验数据进行整理、分类和 归档,以便后续分析和处理。
结果分析
根据实验数据,进行统计分析 ,得出实验结论,并撰写实验
报告。
数据记录
准确记录
在实验过程中,应准确记录每个步骤 的操作和结果,包括使用的试剂、仪 器型号和规格、实验条件等。
及时记录
实验过程中应随时记录数据,避免遗 漏或错记,确保数据的真实性和完整 性。
水分、二氧化碳浓度等多种因素的影响。
输标02入题
植物适应性:植物通过调整自身生理生化过程,适应 不同的环境条件,如温度、光照、水分、土壤类型等。
01
03
植物激素的作用:植物激素如生长素、赤霉素、细胞 分裂素等对植物的生长发育具有调控作用,影响植物
的形态建成和生理生化过程。
04
植物生理学实验汇总
一植物组织中ETH(乙烯)释放量的测定测定原理:ACC是乙烯合成的直接前体,为了更好地了解乙烯对植物的调节作用,有必要测定植物中ACC的含量,在冷却的Hg+存在下,NaClO专一地使ACC转化成乙烯。
ACC:1-氨基环丙烷-1-羧酸测定中气相色谱仪用的是氢火焰检测器FID。
色谱仪包括固定相和流动相。
由于固定相和流动相对各种物质的吸附或溶解能力不同,因此各物质的分配系数不一样。
当待测样(含ETH混合气体)加入固定相以后,不断通以流动相(通常为氮气、氢气)待测物不断再分配,最后按照分配系数大小顺序依次被分离,并进入检测系统被检测,检测信号的大小,反映出物质含量的多少,在记录仪上呈现色谱图。
判断气相色谱仪氢火焰检测器是否点燃的3种方法?如何判断检测器已工作?1、将不锈钢镊子接触到检测器的喷扣处,若镊子上有水珠证明氢气已被点燃;2、根据记录笔的位置来判断;3、微电流放大器的“引燃开关”切换“引燃”时,检测器如发出扑声火焰已被点燃。
结果分析:经冷冻的苹果ETH释放速率低于常温的乙烯释放速率。
经低温处理ACC合成酶的形成受到损伤和影响,从而降低乙烯的合成与释放。
3大温度3大气流量:基线成一直线表明稳定了柱温80度进样器温度120度检测器温度140度N2 流量35微升每分钟400 H2 流量45 微升每分钟55千帕空气流量350 微升每分钟40 千帕二植物组织中脂肪氧化酶活力测定原理根据基质浓度一定,反应体系中溶解氧浓度的变化与酶活力大小呈线性相关原理进行测定。
LOX氧化多元不饱和脂肪酸生成具有共轭双键的过氧化物时消耗氧气,溶液中氧浓度的减少速率与酶活力大小成正比,用氧电极可精确的测定酶活力。
结果:经过干旱处理的小麦组织中LOX活力低(受干旱条件的诱导LOX基因的表达)注意事项:1测定时,维持温度恒定,氧电极对温度变化非常敏感;2 反应杯中不应有气泡,否则会造成信号不稳3 进行试验时要保持磁转子的转动,以平衡氧气浓度4 电极使用一段时间后,在阳极上形成一层氧化膜,使电极的灵敏度下降,需要用清洁剂清洁阳极。
[农学]植物生理学实验
[实验目的]:观察植物组织在不同浓度溶液中细胞质壁分离的产生过程及其用于测定植物组织渗透势的方法。
[实验原理]:当植物组织细胞内的汁液与其周围某种溶液处于渗透平衡状态,植物细胞内的压力势为零时,细胞汁液的渗透势就等于该溶液的渗透势,这种渗透势相等的溶液称为等渗溶液。
该溶液的浓度称为等渗浓度。
当用一系列梯度浓度溶液观察细胞质壁分离时,细胞的等渗浓度将界于刚刚引起初始质壁分离的浓度和尚不能引起质壁分离的浓度之间的溶液浓度。
代入公式即可计算出其渗透势。
[器材与试剂]:实验仪器:显微镜,载玻片及盖玻片,镊子,刀片;实验试剂:100ml 浓度为1mol/L 蔗糖溶液:用蒸馏水配成0.10、0.15、0.20、0.25、0.30、0.35、0.40、0.45、0.50mol/L 的蔗糖溶液各50mL ;实验材料:洋葱鳞茎 [实验步骤]:1.取带有色素的洋葱鳞茎,迅速投入各种浓度的蔗糖溶液中,使其完全浸入,约5—10min 。
2.从0.50mol/L 开始依次取出表皮薄片放在滴有同样溶液的载玻片上,盖上盖玻片,于低倍显微镜下观察,并记录质壁分离的相对程度。
3.在实验中确定一个引起半数以上细胞原生质刚刚从细胞壁的角隅上分离的浓度,和不引起质壁分离的最高浓度。
4.在找到上述浓度极限时,用新的溶液和新鲜的叶片重复进行几次,直到有把握确定为止。
在此条件下,细胞的渗透势与两个极限溶液浓度之平均值的渗透势相等。
将结果记录于表中。
测出引起质壁分离刚开始的蔗糖溶液最低浓度和不能引起质壁分离的最高浓度平均值之后,可按下列各式计算在常压下该组织细胞质液的渗透势。
-Φs=RTiC1式中:-Φs 为细胞渗透势;R 为气体常数=0.083×105L ·Pa/mol ·K ;T 为热力学温度,单位K ;i 为解离常数,蔗糖为1;C 1为等渗溶液的质量摩尔浓度,单位是mol/kg ;则-Φs==0.083×105×(273+t)×1×C由于实验用的蔗糖溶液浓度单位为mol/L ,因此需要按下式对其浓度进行修正。
植物生理学实验
植物⽣理学实验⼀.植物组织⽔势的测定(⼩液流法)【器材与试剂】1.实验仪器试管,移液管,长弯针头,直径0.5cm打孔器,镊⼦。
2.实验试剂 1.00mol/L蔗糖溶液(342.3g/L),10%甲烯蓝(⽤⽔配制)。
3.实验材料菠菜叶⽚【实验步骤】1.⽤1mol/L蔗糖母液配制⼀系列不同浓度的蔗糖溶液(0.2,0.3,0.4,0.5,0.8mol/L)各10mL,注⼊5⽀编号号的试管中,各管都加上塞⼦,按标号顺序在试管架上排成⼀列,作为对照组。
将原液稀释10倍配10mL吸原液 2 mL 3 mL 4 mL 5 mL 8 mL加⽔ 8 mL 7 mL 6 mL 5 mL 2 mL2.另取5⽀试管或青霉素⼩瓶,对应于对照组各管编号,作为试验组。
然后从对照组的各管中分别取4mL溶液移⼊相同编号的试验组试管或青霉素⼩瓶中,并都加上塞⼦。
3.菠菜洗净,⽤打孔器在叶⽚中部靠近主脉附近打取页原⽚,随机取样,向试验组的每⼀试管或青霉素⼩瓶中放⼊相等数⽬(10⽚)的叶圆⽚,加塞,放置30min,每⼗分钟摇动⼀次,每次30秒钟。
4.⽤点样针头蘸⼀下10%甲烯蓝溶液(如有条件的话,⽤微量移液器吸取1µL)加⼊每⼀试管或青霉素⼩瓶中,。
震荡,此时溶液呈蓝⾊。
5.⽤5⽀⾃制长弯针头,从试验组的各管中⼀次吸取着⾊的液体少许,吸取溶液量应相等,赶⾛溶液中⽓泡,如针头有液珠必须擦⼲,然后伸⼊对照组同样浓度溶液的中部,缓慢从针头尖端横向放出⼀滴蓝⾊溶液,轻轻取出滴管。
6.观察蓝⾊液滴的移动⽅向,如果蓝⾊液滴向上移动,说明⽐重⼩,原组织细胞失⽔,溶液从叶⽚细胞中吸出⽔分⽽被冲淡,密度⽐原来⼩了外液失⽔变浓,⽐重⼤;如果液滴向下移动,则说明叶⽚细胞从溶液中吸了⽔,溶液密度变⼤,外液失⽔变稀,⽐重⼩;如果液滴不动,则说明叶⽚与溶液的⽔分交换平衡,即叶⽚的⽔势与此种浓度的溶液的渗透式相等。
7.记录液温。
⾊滴不动的相应温度。
8.书写实验报告。
植物生理学实验
3.剪取样品
• 叶柄处理完毕后即可剪取样品,并开始记录时间, 进行光合作用的测定。
• 按编号次序剪下叶片对称的一半,并按顺序夹在 湿润的纱布中,放入培养皿中,用黑色不透光的 塑料袋包好带回室内存于暗处。4h后,再按原 来的顺序依次剪下叶片的另一半,按顺序夹在湿 润的纱布中带回。
4.称干重
• 取6个称量瓶分别标上绿叶光照1、2、3, 绿叶黑暗1、2、3,将各同号叶片照光与暗 中的两半叶叠在一起,用打孔器打取叶圆 片,分别放入相应编号的称量瓶中(光下 和暗中的叶圆片分开)。
1.材料:红色葡萄和青色葡萄; 2.仪器:(1) 721型分光光度计;(2) 打孔器;
(3) 剪子;(4) 10ml刻度试管;(5) 刀片。 3.药品:(1)1%盐酸;(2)5%乙醇溶液。
[方法]
1.样品的提取与测定 2.花青素含量结果计算
1.样品的提取与测定
用直径为0.9cm打孔器(准确测量计算面积), 在葡萄各个不同部位打4圆片,深度以破皮为适, 用刀片取下果肉,否则会延长花青素提取时间。
5.结果计算
光合速率(mgDW·m-2 h-1)= (W2-W1)/(A×t) • W2:照光半叶的叶圆片干重(mg); • W1:暗中半叶的叶圆片干重(mg); • A:叶圆片面积(m2); • t:照光时间(h)。
[实验记录]
1.实验材料: • 植物名称: • 试验处理: • 植物的生长状况: • 取样部位及数量: 2.实验时间: 年 月 日 3.实验数据记录:
取出后待于室温平衡后用来测定外渗电导率。 剩余的15枚绿叶也分为3 组,即3 次重复,
保存在铺有湿纱布的瓷盘中,置于室温下,作 为对照。
4.外渗电导率测定:
(1)样品浸泡:取6个20ml试管,编号。 将处理和对照每个重复的5片叶叠放在一起 用0.5cm直径的洗净打孔器,打取20个小圆 片 (即打4下) ,分别放入不同的试管中。
植物生理学实验
实验1 植物组织渗透势的测定(质壁分离法)原理当植物组织细胞内的汁液与其周围的某种溶液处于渗透平衡状态,植物细胞内的压力势为零时,细胞汁液的渗透势就等于该溶液的渗透势。
该溶液的浓度称为等渗浓度。
当用一系列梯度浓度溶液观察细胞质壁分离现象时,细胞的等渗浓度将介于刚刚引起初始质壁分离的浓度和尚不能引起质壁分离的浓度之间的深液浓度。
代入公式即可计算出春渗透势。
仪器药品显微镜载玻片及盖玻片镊子刀片配成0.5—0.1mol/L梯度浓度的蔗糖溶液各50ml。
称34.23g蔗糖用蒸馏水配成100ml,其浓度为1m0le/L(母液)。
再配制成下列各种浓度:0.50mol/L:吸母液25ml+水25ml0.45mol/L:吸母液22.5ml+水27.5ml0.40mol/L:吸母液20.0ml+水30.0ml0.35mol/L:吸母液17.5ml+水32.5ml0.30mol/L:吸母液15.0ml+水35.0ml0.25mol/L:吸母液12.5ml+水37.5ml0.20mol/L:吸母液10.0ml+水40.0ml0.15mol/L:吸母液7.5ml+水42.5ml0.10mol/L:吸母液5.0ml+水45.0ml操作步骤将带有色素的植物组织(叶片),一般选用有色素的洋葱鳞片的外表皮、紫鸭跖草、苔藓、红甘蓝或黑藻、丝状藻等水生植物,也可用蚕豆、玉米、小麦等作物叶的表皮。
撕取下表皮,迅速分别投入各种浓度的蔗糖溶液中,使其完全浸入,5—10分钟后,从0.5mol/L开始依次取出表皮薄片放在滴有同样溶液的载玻片上,盖上盖玻片,于低倍显微镜下观察,如果所有细胞都产生质壁分离的现象,则取低浓度溶液中的制片作同样观察,并记录质壁分离的相对程度。
实验中必须确定一个引起半数以上细胞原生质刚刚从细胞壁的角隅上分离的浓度,和不引起质壁分离的最高浓度。
在找到上述浓度极限时,用新的溶液和新鲜的叶片重复进行几次,直至有把握确定为止。
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植物生理学实验内容提要本书是华东师范大学植物生理教研组主编的《植物生理学实验指导》的第二版,改为张志良主编。
修订后的第二版删去一些简单的验证性内容,新增加“基本实验技术”部分。
全书包括水分生理、矿质营养、光合作用、呼吸作用、物质代谢、植物激素、生长发育、植物与环境和基本实验技术9部分,共91个实验。
内容涉及溶液培养、组织培养、吸收光谱分析、免疫测定、氧电极法、测压法、红外线CO2分析、凝胶柱层析、凝胶电泳以及酶的分离和纯化等技术,系作者们多年在教学和科研中经验的总结。
各实验以原理、仪器药品、操作步骤、实验作业、参考文献顺序叙述。
书后有缓冲溶液、酸碱指示剂、培养基成分、筛目孔径及实验室常用的物理化学参数等附表17个,插图43幅。
本书可作为高等院校和中等专业学校教材,也可供有关专业师生和科研人员参考。
第一版前言1978年12月在北京植物生理学教材审稿会议上,我组受到会兄弟院校代表的委托,着手进行植物生理学实验指导的主编工作。
许多兄弟院校给我们寄来了资料,北京大学、山东大学、南京大学、中山大学、云南大学、杭州大学、北京师大、东北师大、华南师院、北京师院、西南师院、辽宁师院、上海师院等积极承担了编写任务。
在大家的共同努力下,于1979年9月完成初稿,分寄全国各高等师范院校、综合性大学以及部分农林院校和科研单位广泛征求意见。
此后于1980年1月在教育部委托我校举办的全国高师植物生理实验技术短训班上,由38个参加单位讨论草拟了实验编写大纲。
本实验指导就是以这个编写大纲和高等师范院校植物生理学教学大纲(草案)中规定的实验内容为主要依据编写的。
同时考虑到实验教材的适应性应比较广泛,类型应比较齐全,以满足不同的教学要求;既要有基本实验,也要有一定数量要求较高的和综合性的实验。
因此,从初稿中选出有关的内容,经过修改,并补充了一些新的内容,共有实验95个,其中在目录内标有*号者,定为必做内容,标有○号者,可在同一性质的内容中任选一个,为明了起见,将安排列成附表11,供大家参考。
其余的内容可根据各校的具体条件选用。
初稿中有些兄弟院校撰写的内容十分新颖,但由于教学时数和教学内容的限制,在这本实验指导中未能列入,这是十分遗憾的事。
本实验指导供高等师范院校使用,也可供综合性大学及其他有关高等院校教学参考。
参加编写工作的同志有:张志良、沈曾佑、沈宗英、赵继芬、王隆华、胡天喜,以及前面提到的参加初稿编写的单位。
全书由张志良同志负责修改校正,在编写过程中颜季琼教授多次参加讨论并热情指导。
由于我们水平有限,实际经验不多,书中错误及不妥之处,热忱地希望同志们批评指正。
编者1980年7月于华东师大第二版前言《植物生理学实验指导》一书自1980年出版以来,作为高等院校的试用教材,为许多兄弟院校所采用,每年印行1万册。
近年来植物生理学和其他学科一样有了很大的发展,教学实验的内容也更为丰富,新技术和新方法也得到了应用,因此,原“指导”已不能完全适应新的形势,有必要进行全面修改。
这次修改工作,广泛征求了意见,收到了许多宝贵的建议,使我们更加明确了修改的方向。
有些兄弟院校还给我们寄来了稿件,使修改后的“指导”增添了不少新的内容。
对大家的关心,我们表示十分感谢。
由于各高等院校的类型和性质以及设备条件、教学时数等的不同,对植物生理学实验内容的繁简要求也就不同;有的学校已将植物生理学实验作为一门课,自成体系,不再从属于课堂教学,这就大大地加重了它的分量;学生的课外小组和毕业论文实践,也需要合适的指导书。
变化中的这些新情况,都是这次修改中考虑的一些方面。
在内容上删去了一些简单的、验证性的、效果不够理想的实验;有些实验内容虽简单,但能说明问题,目前许多学校还选做的,这次仍保留,但改为示范,不必占用学生的实验时间;新增加的基本实验技术部分,是为了专业植物生理学大实验和学生进行毕业论文或科学研究时参考用。
修订后的“指导”涉及植物生理学各章的内容,既有目前实验室常用的方法,又有较新的现代科学技术。
将原有的水分生理、矿质营养、光合作用、呼吸作用、物质代谢、植物激素、生长发育和植物与环境8部分95次实验进行了调整和删减,增添了组织培养、免疫测定等内容。
新增加的基本实验技术部分,则单独列出6个实验。
全书分9部分,共91个实验,在各部分实验的划分和归属上,一定还有不少问题。
如钙调素(calmodulin)是一种Ca—结合蛋白,Ca2+的浓度影响它的活性,从而调控一些酶的活性,但由目前的教学实际考虑,还是将它归入矿质营养中。
在修改过程中得到颜季琼教授和沈曾佑副教授的热情指导,教研组其他同志的关怀。
特别是张利华同志,为核实验证实验内容的可行性,以及缮写书稿和绘图等花费了许多精力和时间,在此一并致谢。
最后,我们诚恳地希望采用本书作教材的学校教师和同学们,能及时提出存在的问题和批评意见,便于以后再补充修改。
张志良于华东师范大学生物学系1987年11月一、水分生理实验1 植物组织含水量的测定原理植物组织的水量是植物生理状态的一个指标。
如水果、蔬菜含水量的多少对其品质有影响,种子含水状况对安全贮藏更有重要意义。
利用水遇热蒸发水蒸汽的原理,可用加热烘干法来测定植物组织中的含水量。
植物组织含水量的表示方法,常以鲜重或干重%表示,有时也以相对含水量%(或称饱和含水量%)表示,后者更能表明它的生理意义。
仪器分析天平干燥器烘箱(或红外灯)称量瓶坩埚钳吸水纸操作步骤1.自然含水量(1)称量瓶的恒重:将洗净的两个称量瓶编号,放在105恒温烘箱中,烘2小时左右,用坩锅钳取出入干燥器中冷却至室温后,在分析天平上称重,再于烘箱中烘2小时,同样于干燥器中准却称重,如此重复2次(2次称重的误差不得超过0.002g),求得平均值为W1,将称量瓶放入干燥器中待用。
(2)将待测植物材料(如叶子等)从植株上取下后迅速剪成小块,装入已知重量的称量瓶中盖好,在分析天平上准确称取重量量,得瓶与鲜样品总量为W2,然后于105℃烘箱中干燥4梍6小时(注意要开称量瓶盖子)。
取出称量瓶,待其温度降至60梍70℃后用坩锅钳将称量盖子盖上,放在干燥器中冷却至室温,再用分析天平称重,然后再放到烘箱中烘2小时,在干燥器中冷却至室温,再称重,这样重复几次,直至恒重为止。
称得重量是瓶与干样品总重量为W3(注:亦可用红外灯照射代替恒温烘箱,使水分蒸发)。
烘时注意防止植物材料焦化。
如系幼嫩组织可先用100梍105℃杀死组织后,再在80℃下烘至恒重。
(3)记录及计算样品鲜重W f=W2-W1样品干重W d=W3-W12.相对含水量法(或称饱和含水量法)此法是以植物组织的和含水量为基础来表示组织的含水状况,因为作为计算基础的组织饱和含水量有较好的重复性,而组织的鲜重、干重不太稳定(鲜重常随时间及处理条件而有变化,生长旺盛的幼叶子,常随时间而会显著增加,所以要进行时期含水量的对比就不恰当)。
一般采用相对含水量表示组织的水分状况,比用自然含水量表示为好。
(1)同1,先求得组织鲜重W f,然后将样品浸入蒸馏水中数小时,使组织吸水达饱和状态(浸水时间因材料而定)。
取出用吸水纸吸去表面的水分,立即放于已知重量的称量瓶中称重,再浸入蒸馏水中一段时间后取出吸干外面水分,再称重,直至与上次重量相等为止。
此即为植物组织在吸水饱和时的重量,称饱和鲜重W t。
再如1法样品烘干,求得组织干重W d。
W t-W d即为饱和含水量(2)计算相对含水量%(组织含水量占饱和含水量的%)实验作业测定同一植物在不同生态环境下的相对含水量%。
参考文献A.И.耶尔马科夫等著,吴相钰译:1956。
植物生物化学研究法,科学出版社,31─32页。
(华东师范大学沈宗英)实验2 植物组织水分饱和亏的测定原理根据生理意义可将植物组织内的水分状况用自然含水量、饱和含水量和临界含水量三种不同方式表示。
1.自然含水量:植物在自然生长状态下组织中的水分含量,称为自然含水量,或简单地称为植物的含水量。
2.饱和含水量:即植物组织吸收水分达饱和状态时的含水量。
3.临界含水量:当植物体内的水分减少到临近发生伤害的最低含水量水平,低于这一水平时即引起植物伤害,组织中这一最低含水量即称为临界含水量。
利用上述三种含水量的数值即可以计算出更能表明植物体内水分状况的另两种表示方法,即自然饱和亏和临界饱和亏。
自然饱和亏是指植物组织的自然含水量与饱得含水量两值之差。
常以差值占饱和含水量的百分数表示之,差值越大,表示植物体内水分亏缺越严重。
临界饱和亏,是指植物的饱和含水量与临界含水量两值之差,常以该差值占饱和含水量的百分数表示之。
此值越大,表示植物抗脱水能力越强。
仪器分析天平烘箱(或红外灯)干燥器称量纸坩埚钳吸水纸操作步骤1.测定自然饱和亏按相对含水量法(参阅实验1)求得植物组织的自然鲜重(W f)、干重(W d)及饱和鲜重(W t),即可按下式求出自然饱和亏。
根据植物组织中相对含水量及自然饱和亏的定义,可知:自然饱和亏(%)=1-相对含水量%注:相对含水量%求法见实验1,所以求得相对含水量%后,即可知其自然饱和亏(%)。
2.测定临界饱和亏将植物叶片约10片悬于室内,使其逐渐干燥5梍6小时,每隔1小时取下两片叶称量,再浸入水中,观察其能否恢复膨胀状态,直至取下的叶片称重后,浸入水中局部不能再恢复膨胀状态(即出现伤害)时为止。
此时即可将这些剩下的叶片取来称其鲜重后,于100梍105℃烘箱中烘干,称得干重,此时鲜重与干重之差,即为该叶片组织的临界含水重量(W c)。
根据定义即可按下式求出临界饱和亏。
瓶中称根据所测得的植物组织水分的自然饱和亏及临界饱和亏,就可求出当时植物的需水程度。
实验作业1.比较不同植物在同一水分环境条件下(包括土壤湿度及空气湿度)在水分饱和亏及需水程度有什么差异。
2.比较同一植物在不同水分环境条件下的水分饱和亏及需水程度有什么差异。
参考文献山东农学院等编:1980。
植物生理实验指导,山东科学技术出版社,115─120页。
实验3 植物组织中自由水和束缚水含量的测定原理植物组织中的水分是由被胶粒所因着的束缚水及不被胶粒所固着的自由水两部分所组成。
束缚水不蒸发和结冰,不能作为溶剂,也不被浴质夺取,所以当植物组织被浸入较浓的糖溶液中脱水,一定时间后仍未被夺取的水分作为束缚水,而被夺取的水分作为自由水。
自由水的量可根据所加糖液浓度的降低量来计算。
再由植物组织的总含水量减去自由水量,即可求得束缚水量。
植物体内自由水和束缚水含量及其比值常与植物的生长及抗性有密切关系。
自由水较多时,代谢活动常较强,生长速度也较快,但抗性往往降低;而束缚水含量多时,则情况相反。
所以自由水与束缚水含量是植物抗性生理的一个指标。
仪器药品阿贝氏折射仪分析天平烘箱超级恒温水浴直径5mm钻孔器干燥器滤纸称量瓶65─70%(W/V)蔗糖溶液吸滤管、移液管操作步骤1.取称量瓶2个,洗净、烘干、称重后备用。