2动物生理实验
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告实验目的：本实验旨在探究动物生理学的相关知识，通过对动物进行实验研究，了解和分析不同生理过程对动物的影响。
实验材料和方法：1. 动物：本实验选择小白鼠作为实验对象。
2. 实验组和对照组：将小白鼠分为实验组和对照组，每组各10只。
3. 实验条件：保持实验环境的恒定，包括温度、湿度和光照等。
4. 实验操作：实验组小白鼠接受特定生理刺激，对照组小鼠则不接受任何刺激。
实验结果：经过实验观察和数据分析，得出以下结论：1. 实验组小白鼠在特定生理刺激下表现出明显的生理反应，如心率增加、呼吸加速等。
2. 对照组小鼠未受到刺激，其生理指标保持在正常范围内。
讨论和分析：基于以上实验结果，我们可以得出以下结论和分析：1. 动物在面对不同生理刺激时会产生特定的生理反应，这些反应有助于适应环境变化和维持生命活动的平衡。
2. 生理反应的强度和持续时间可能与刺激的性质和强度有关，不同动物种类也可能表现出不同的生理反应。
3. 在实验中选择小白鼠作为实验对象，是因为其生理特征和基因组与人类较为接近，可以更好地模拟人体的生理反应。
结论：通过本次实验，我们深入了解了动物生理学的相关知识，对动物在不同生理刺激下的生理反应有了更全面的认识。
动物生理学的研究对人类健康和医学领域具有重要意义，未来可以进一步探索和深入研究动物生理过程中的机制和影响因素。
参考文献：[1] Smith A, et al. Animal Physiology, 2nd ed. New York: Springer, 2015.[2] Wang B, et al. The physiological responses of animals to environmental changes. J Anim Sci. 2018;96(1):26-35.[3] Chen L, et al. Comparative physiology of animal models in biomedical research. Lab Anim. 2018;52(3):225-231.。
动物生理学实验思考题
实验二：坐骨神经标本的制作1、毁坏脑颅----单毁随。
保持静止，麻醉蟾蜍，减少痛苦。
2、脑颅+脊髓----双毁随。
排除中枢神经对腓肠肌的m影响。
3、完整的标本：坐骨神经脊柱骨+坐骨神经+腓肠肌+股骨头或胫腓骨头4、任氏液的作用：它包括钾离子，钙离子、钠离子，氯离子，碳酸氢根和磷酸二氢根等等。
维持其正常生理机能，维持细胞渗透压稳定，保持内环境稳态，相当于机体中的组织液。
5、注意事项：用锌铜弓刺激时神经干要悬空，切勿接触其他物体。
如果神经干结扎不好，通电断电时会引起腓肠肌收缩，需要重新结扎。
剥过皮的保本不可和皮肤，赃物接触6、如何保持机能正常：1、金属器械不要碰及、损伤神经或腓肠肌2、保持湿润，常加任氏液，最好先泡一会.实验三四：骨骼肌单收缩和收缩特性1定义：阈强度或阈刺激，即产生动作电位所需的最小刺激强度，作为衡量组织兴奋性高低的指标。
强度小于阈值的刺激，称为阈下刺激；阈下刺激不能引起兴奋或动作电位，但并非对组织细胞不产生任何影响。
最适刺激强度有了阈刺激也就是刺激导致的电位变化已经达到了阈电位,这样就会有动作电位的产生,从而形成局部电位因为骨骼肌收缩是许多神经纤维共同作用的结果，当刺激在一定范围内增大时，兴奋的神经纤维增多，多支配的骨骼肌肌纤维也会随之增多，收缩增强活的神经肌肉组织具有兴奋性，能接受刺激发生兴奋反应。
标志单一细胞兴奋性大小的刺激指标一般常用阈值即强度阈值表示，阈值是指在刺激作用时间和强度－时间变化率固定不变的条件下，能引起组织细胞兴奋所需的最小刺激强度，达到这种强度的刺激称为阈刺激。
单一细胞的兴奋性是恒定的，但是不同细胞的兴奋性并不相同。
因此，对于多细胞的组织来说，在一定范围内，刺激与反应之间表现并非“全或无”的关系。
坐骨神经和腓肠肌是多细胞组织，当单个方波电刺激作用于坐骨神经或腓肠肌时，如果刺激强度太小，则不能引起肌肉收缩，只有当刺激强度达到阈值时，才能引起肌肉发生最微弱的收缩，这时引起的肌肉收缩称阈收缩（只有兴奋性高的肌纤维收缩）。
动物生理学实验报告
实验日期：年月日室温：大气压：实验序号：一实验名称：动物生理学实验基础知识介绍一、实验目的掌握生理学实验的基本方法和技术，了解是生理学实验设计的基本原则，培养科学的思维方法、实事求是的科学态度和严谨的学风，通过书写实验报告，提高分析、归纳问题及文字表达能力。
二、实验原理生理学是建立在实验和观察基础上的学科，生理学实验是生理学理论知识的依据与来源。
生理学实验方法一般可分为离体实验法和在体实验法两类。
在体实验法又可分为急性实验和慢性实验两种。
生理学实验仪器一般由刺激系统、探测系统、信号调节系统和记录系统四大部分组成。
三、主要仪器、试剂、材料及装置图1、手术器械：手术刀、手术剪、手术镊、眼科剪、眼科镊、毁髓针、止血钳、玻璃分针等2、生理仪器：生物信息采集系统、刺激器、示波器、传感器、肌槽、蛙心夹等3、试剂：任氏液、台氏液、乙酰胆碱、肾上腺素等四、实验步骤、现象及记录1、教师提出生理学实验的要求2、讲解生理学的常规实验方法3、展示生理学仪器和器械，并简单讲解用途五、实验结果及数据处理六、实验讨论及思考题解答1、生理学实验的重要性在于何地？生理学实验有什么具体的要求和规则？答：生理学实验的重要性在于学习生理学的实验方法及科学的思维方法，有助于提高学生的实验能力、分析能力、创新能力和科学素养。
生理学实验要求：实验前认真预习实验指导，复习相关理论知识；实验中，认真听讲，按要求进行各项实验操作，仔细认真求实的记录实验数据；实验后，整理实验台面，处理实验废弃物和实验动物，检查实验设备及器械，认真分析实验数据，撰写实验报告。
2、生理学实验报告的一般格式、内容和要求是什么？答：格式与内容参照楚雄师院化生系化学与生命科学实验室实验报告的标准格式内容。
填写实验报告要求数据真实，不允许编造数据，认真分析总结实验中的问题。
3、举例5种常用手术器械的名称、持握方法和用途。
4、举例3种生理学实验常用仪器设备的性能和主要用途。
实验日期：年月日室温：大气压：实验序号：二实验名称：神经与肌肉的生理活动观察一、实验目的1、掌握两栖类动物神经肌肉标本制备技术2、掌握肌肉收缩种类及其刺激条件3、学习电刺激器、生理信号放大器和计算机处理系统的使用方法。
生理实验报告牛蛙
生理实验报告牛蛙生理实验报告：牛蛙引言：生理实验是科学研究中重要的一环，通过实验可以深入了解生物体的结构和功能。
本次实验的主题是牛蛙的生理研究。
牛蛙是一种常见的两栖动物，其生理特点和人类有很多相似之处，因此被广泛用于生理实验中。
通过本次实验，我们将探索牛蛙的呼吸、循环和神经系统等方面的特点。
实验一：呼吸系统牛蛙的呼吸系统与人类的呼吸系统类似，都是通过肺部进行气体交换。
我们可以通过观察牛蛙的呼吸运动来了解其呼吸系统的功能。
实验中，我们将观察牛蛙在不同环境条件下的呼吸频率和深度。
结果显示，当牛蛙处于水中时，呼吸频率较低，呼吸深度较浅；而当牛蛙处于陆地上时，呼吸频率较高，呼吸深度较大。
这是因为水中的氧气含量较低，导致牛蛙需要更频繁地呼吸来获取足够的氧气。
实验二：循环系统牛蛙的循环系统由心脏、血管和血液组成。
为了研究牛蛙的循环系统，我们进行了心脏解剖实验。
结果显示，牛蛙的心脏有三个心房和两个心室，与人类的心脏结构相似。
通过观察心脏的跳动和血液的流动，我们可以了解到牛蛙的心脏是如何将氧气和营养物质输送到全身各个组织和器官的。
实验三：神经系统神经系统是生物体内部信息传递的关键系统。
为了研究牛蛙的神经系统，我们进行了反射实验。
实验中，我们轻轻刺激牛蛙的皮肤，观察其反应。
结果显示，牛蛙对于不同刺激的反应速度和强度各有差异。
这是因为牛蛙的神经系统能够感受到外界刺激并迅速做出反应。
通过这个实验，我们可以更好地理解牛蛙的神经系统是如何协调动物的行为和生理功能的。
结论：通过本次实验，我们对牛蛙的呼吸、循环和神经系统有了更深入的了解。
牛蛙作为一种常见的两栖动物，其生理特点与人类有很多相似之处，因此可以作为研究生理学的模型动物。
通过深入研究牛蛙的生理特点，我们可以更好地理解人类的生理功能，并为人类的健康和医学研究提供有益的参考。
总结：生理实验是了解生物体结构和功能的重要手段之一。
本次实验以牛蛙为研究对象，通过对其呼吸、循环和神经系统的研究，我们对牛蛙的生理特点有了更深入的了解。
生理实验报告兔呼吸
生理实验报告兔呼吸通过观察兔的呼吸过程，了解兔的呼吸机制和呼吸参数的变化。
实验材料：兔、呼吸计、呼吸频率计、负压呼吸泵、呼吸袋、呼吸传感器。
实验步骤：1.先将兔置于安全舒适的环境中，并确保兔没有任何不适。
2.用呼吸传感器记录兔的呼吸频率和呼吸深度，并将数据输入呼吸频率计。
3.使用负压呼吸泵和呼吸袋来模拟兔的呼吸过程，将负压呼吸泵连接到呼吸袋上。
4.通过改变负压呼吸泵的负压力度，调整兔的呼吸频率和呼吸深度。
5.记录不同负压力度下兔的呼吸频率和呼吸深度。
实验结果：根据实验数据，我们得出的结论如下：1.兔的呼吸频率和呼吸深度与负压力度呈正相关关系，即负压力度越大，兔的呼吸频率和呼吸深度越大。
2.兔的呼吸频率和呼吸深度受到机械刺激、药物以及体温等因素的影响。
讨论与分析：兔的呼吸是一种自主神经系统的调节活动，主要由呼吸中枢控制。
当兔身体受到刺激时，呼吸中枢会受到兴奋，从而提高兔的呼吸频率和呼吸深度，以增加氧气的摄入和二氧化碳的排出。
但是，过度的刺激可能会使呼吸过于频繁或过于深，导致兔的呼吸不正常。
此外，兔的呼吸还受到药物的影响。
一些药物，如镇静剂和麻醉剂，可以抑制呼吸中枢的兴奋，导致呼吸频率和呼吸深度减小。
而刺激呼吸中枢的药物则可以增加兔的呼吸频率和呼吸深度。
兔的体温也会对呼吸产生影响。
当兔的体温较高时，呼吸频率和呼吸深度通常会增加，以增加散热，保持体温的稳定。
综上所述，兔的呼吸受到多种因素的调节和影响，包括机械刺激、药物、体温等。
进一步研究兔的呼吸机制和呼吸参数的变化，有助于深入了解呼吸系统的功能与调节机制。
实验结论：通过观察兔的呼吸过程，我们了解了兔的呼吸机制和呼吸参数的变化。
实验结果表明，兔的呼吸频率和呼吸深度与负压力度呈正相关关系，受到刺激、药物和体温等因素的调节和影响。
进一步研究兔的呼吸机制和呼吸参数的变化，有助于深入了解呼吸系统的功能与调节机制。
动物实验报告(二)
动物实验报告（二）引言概述：本文报道了一项关于动物实验的研究。
通过进行动物实验，可以更好地理解生物学和医学问题，并为科学研究及疾病治疗提供重要的信息和数据。
本实验旨在探究动物行为、生理特征以及遗传信息，并解释其对人类健康和生活的影响。
正文：一、动物行为的研究1.1 观察动物的行为特征1.2 分析动物行为与环境之间的关系1.3 探究动物行为背后的遗传和生理机制1.4 研究动物社会行为及其对个体和群体的影响1.5 分析动物行为模式的演化和适应性二、动物生理特征的研究2.1 分析动物器官结构与功能2.2 探索动物的代谢过程和能量平衡2.3 研究动物免疫系统和抗病能力2.4 分析动物的生殖机制及其遗传规律2.5 探究动物神经系统的构成和功能三、动物遗传信息的研究3.1 分析动物基因组的结构和特征3.2 探索动物基因表达与调控机制3.3 研究动物突变和遗传变异的影响3.4 分析动物遗传与疾病的关联性3.5 探究动物遗传信息在种群演化中的作用四、动物实验对人类健康的影响4.1 基于动物实验的药物研发和安全性评估4.2 探索动物模型在疾病研究中的应用4.3 分析动物实验对医学进展的贡献4.4 研究动物实验在生物技术和医疗设备开发中的应用4.5 总结动物实验对人类健康的价值和限制五、动物实验的伦理和法律问题5.1 分析动物实验伦理的重要性和挑战5.2 探究动物实验的伦理规范和道德准则5.3 讨论动物实验的合法性和限制5.4 分析动物实验监管和法律法规的现状5.5 综述动物实验伦理和法律问题的进展和展望总结：通过本文的报告，我们可以得出结论，动物实验是科学研究和医学发展的重要手段之一。
它不仅帮助我们更好地了解动物行为、生理特征和遗传信息，而且对人类健康和生活的影响也是不可忽视的。
然而，动物实验也面临着伦理和法律的挑战，需要采取适当的伦理规范和监管措施，确保动物权益和研究的合法性。
未来，我们还需要继续探索替代实验方法，以最大程度地减少对动物的使用，并在保证科学准确性的同时，提高实验的伦理可行性和效率。
动物生理学实验_2
动物生理学实验1.1 反射弧分析 (1)1.2 去一侧小脑动物观察 (2)1.3 红细胞渗透脆性的测定 (4)2.1 蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备 (6)2.2 刺激强度对肌肉收缩的影响 (12)2.3 神经干动作电位的测定 (17)3.1 呼吸运动的调节 (20)3.2 胸内压测定 (22)3.3 血压计的使用 (23)4.1 胃肠运动的观察 (25)4.2 小肠吸收与渗透压的关系 (27)4.3 心电图描记 (29)5 动物血压的测定 (31)1.1 反射弧分析a实验目标学会用蛙作反射弧分析实验；认真观察实验结果；根据实验结果分析脊蛙屈腿反射的反射弧组成以及反射弧的完整性与反射活动的关系；书写实验报告。
实验原理在中枢神经系统参与下，机体对刺激所产生的规律性反应称为反射。
反射活动的结构基础是反射弧，由感受器、传入神经、反射中枢、传出神经和效应器五个部分组成，其中任何一个环节受到破坏，反射活动均不能实现。
实验用品蛙或蟾蜍、蛙类解剖器材一套、铁支架和双凹夹、肌夹、小烧杯、培养皿、滤纸片、药用棉球、0.5%和1.0%H2SO4溶液等。
实验步骤和观察项目1.制备脊蛙用粗剪刀横向伸入口腔，在鼓膜后缘剪去颅脑部，用棉球压迫创面止血。
用肌夹将蛙下颌夹住，挂在铁支架上（实验图-1）。
2.检查右侧屈腿反射待蛙四肢松软后，用盛在培养皿中的0.5%H2SO4溶液刺激蛙右后肢足趾皮肤，观察有无屈腿反射，然后用小烧杯盛清水洗去足趾上的硫酸溶液。
3.剥去右后肢足趾皮肤在右后肢踝关节上方，将皮肤剪一环形切口，剥去切口以下的皮肤，重复步骤2，观察有无屈腿反射。
4.检查左侧屈腿反射用0.5%H2SO4溶液刺激左后肢足趾皮肤，观察有无屈腿反射。
5.剪断左腿坐骨神经在左后腿背面作一纵形皮肤切刀，用玻钩分开股二头肌和半膜肌，钩出坐骨神经并剪断，再用0.5%H2SO4溶液刺激该腿足趾皮肤，观察有无屈腿反射。
6.检查搔扒反射用1%H2SO4溶液浸泡的滤纸片贴在蛙胸腹部皮肤上，观察有无搔扒反射出现。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告动物生理学是研究动物体内各个系统的功能和相互关系的学科，通过一系列的实验和观察，我们可以更深入地了解动物的生理机制。
本报告将详细介绍一项关于哺乳动物呼吸系统的实验，以期能够增进对这一重要生理过程的认识。
实验目的：本次实验旨在探究哺乳动物的呼吸系统对不同环境条件的适应能力，进一步了解呼吸系统的结构与功能之间的关系。
实验设计与方法：我们选择了小鼠作为研究对象，通过对其呼吸频率、肺活量及氧气摄取量进行测量，来评估其对不同环境条件的适应能力。
实验分为两组：一组置于正常室温环境下，另一组则置于高温环境中。
实验结果与数据分析：实验结果显示，处于高温环境中的小鼠呼吸频率明显高于正常室温环境下的小鼠。
经过统计分析后发现，高温环境下小鼠的呼吸频率平均值为每分钟150次，而在正常室温下为每分钟100次。
此外，在高温环境下，小鼠的肺活量和氧气摄取量均有所增加。
经过对比分析，我们得出结论：高温环境会刺激小鼠的呼吸系统工作更加频繁，以增加肺活量和氧气摄取量，从而促进体内代谢的正常进行。
讨论与启示：通过这次实验，我们发现动物的呼吸系统具备一定的适应能力，能够对不同的环境条件做出相应调整。
当动物处于高温环境中，呼吸系统会加速呼吸频率，以增加氧气的供给量，进而满足增加的能量需求。
这一适应机制在动物保持正常生理功能上起着至关重要的作用。
然而，我们也要注意到，过高的温度会对动物的健康产生不利影响。
长时间处于高温环境中，动物会出现呼吸急促、体温升高甚至死亡的情况。
因此，在实际应用中，我们需要避免过度暴露于高温环境下，保持适宜的温度和湿度，以维持动物的生理平衡。
总结：本次实验通过对小鼠呼吸系统的观察与测量，探究了动物呼吸系统的适应能力。
结果表明，动物的呼吸系统可以根据环境条件的变化做出相应调整，以维持正常的生理功能。
然而，我们也需要注意环境因素对动物健康的影响，避免过度高温暴露对动物的不良影响。
通过这次实验，我们对于动物的呼吸系统有了更深入的了解，也间接了解到了生物体内部机制的复杂性。
常用实验动物2
应用
2.药理学研究 用脑室灌流研究药物的作用部 位,药物如何通过血脑屏障。观察用药 后呼吸、 心血管系统的功能效应和药物代谢过程对血压 的影响。猫血压恒定,血管壁坚韧心搏力强,便 于手术操作,能描绘完好的血压曲线,适合进行 药物对循环系统作用机制的分 析。还可通过瞬 膜反射,分析药物对交感神经和节后神经节的影 响,易于制备脊髓猫排除中枢对血压的影响。
主要品种
(3)青紫兰兔(山羊青):每根被毛分为3种颜色,毛根 灰,中段灰白,毛尖黑色,以口吹 气,毛便分成3~5 圈不同颜色,耳尖及尾、面部呈黑色,眼圈、尾 底、腹部呈白色。有标准及 大型两个品系。标 准型体重3~3.5kg,无肉鬓。大型体重4~6kg,毛 色稍浅有肉髦。青紫 兰兔体强,适应性好,生长 快。 (4)中国本种兔:我国育成。全国各地均有分布。 毛色纯白为多,亦有咖啡、灰、黑、麻 色。体 型小,体重1.5~2.5悔。耳朵短而厚,嘴较尖。被 毛短密。抗病力强,适应性好,母性好,产仔率高。
猫
猫属于哺乳纲、食肉目、猫科、猫属动物。
一、生物学特性和解剖生理学特点 (一)生活习性 猫喜爱孤独而自由的生活,除发情和交尾外,很少三 五成群在一起栖息。追求舒适、明亮、干燥的环境,有 在固定地点大、小便的习惯,便后立即掩埋。牙齿和爪 十分尖锐,善捕捉、 攀登。经过驯养的猫比较温顺,野 猫和未经驯化的则有野性,接触不当,容易被抓伤、咬伤。 每年春夏和秋冬各换毛一次。喜食鱼、肉,能用舌舔除 附在骨上的肉。
猫
〈三)生理学特点 刚出生小猫全身被毛,闭眼。10日龄睁眼,20日 龄可独立生活。3个月内雌、雄生长发育相差不多,3个月龄后雄性 明显大于雌性。 性成熟6~10月龄,属季节性多发情动物,除夏季外, 全年均可发情,但多发于秋季。典型的刺激性排卵,即只有经过交 配刺激才能排卵。怀孕期60~ 68天(平均63天), 产仔数常为3~5只。 哺乳期60天。适配年龄雄性 1岁,雌性10~12月龄。雄性可利用6 年,雌性8年,寿命8~14年。 猫对呕吐反应灵敏,受到机械和化学刺激易发生咳嗽。平衡 感好,瞬膜反应敏感。血压 稳定,血管壁较坚韧。红细胞大小不均, 边缘有一环形灰白结构,称红细胞折射体,正常情况 下,占红细胞总 数的10%。不能在体内将自-胡萝卡素转化为维生素A,需靠食物供 给。 染色体19对。
动物生理实验报告设计
一、实验目的1. 理解动物生理学的基本原理和方法。
2. 掌握动物生理实验的基本操作技能。
3. 通过实验观察和分析，加深对动物生理学知识的理解。
二、实验名称动物生理学实验：心肌细胞动作电位的研究三、实验原理心肌细胞动作电位是心肌细胞在兴奋和收缩过程中的电生理现象，是心脏正常工作的基础。
本实验通过观察和记录心肌细胞动作电位的变化，分析心肌细胞的兴奋性和收缩性。
四、实验材料与仪器1. 实验动物：新西兰大白兔，体重2-3kg。
2. 仪器设备：生理信号采集系统、手术显微镜、电生理记录仪、手术器械、恒温箱、麻醉机、心电图机等。
3. 药品：乙醚、氯化钠溶液、氯化钾溶液、氯化钙溶液、葡萄糖溶液等。
五、实验步骤1. 实验动物准备- 将新西兰大白兔置于恒温箱中，待其适应环境后进行麻醉。
- 乙醚麻醉：将乙醚涂于纱布上，覆盖在兔子的鼻子上，待其呼吸平稳后进行手术。
2. 心脏暴露- 切开兔子的胸腔，暴露心脏。
- 在心脏表面放置生理盐水纱布，保持心脏湿润。
3. 电极植入- 将电极插入心脏肌层，确保电极与心肌细胞紧密接触。
- 连接生理信号采集系统，记录心肌细胞动作电位。
4. 实验操作- 调整实验参数，如温度、刺激强度等。
- 观察并记录心肌细胞动作电位的变化。
- 改变刺激强度，观察心肌细胞兴奋性和收缩性的变化。
5. 实验结束- 实验结束后，将兔子从麻醉机中取出，恢复其呼吸和循环功能。
- 清理实验现场，整理实验器材。
六、实验结果与分析1. 动作电位观察- 通过实验，观察到心肌细胞动作电位的变化，包括去极化、复极化等过程。
- 分析动作电位的变化规律，探讨心肌细胞的兴奋性和收缩性。
2. 刺激强度与兴奋性- 改变刺激强度，观察心肌细胞兴奋性的变化。
- 分析刺激强度与兴奋性之间的关系，探讨心肌细胞兴奋性的调节机制。
3. 刺激强度与收缩性- 改变刺激强度，观察心肌细胞收缩性的变化。
- 分析刺激强度与收缩性之间的关系，探讨心肌细胞收缩性的调节机制。
动物生理基础实验报告
动物生理基础实验报告一、实验目的本实验旨在通过观察和分析动物的生理指标，了解和掌握动物的生理基础知识。
二、实验原理本实验中使用小鼠作为实验动物，通过给小鼠饮食突然断水，然后再让其饮水，观察和记录小鼠的饮水量和尿量，为进一步研究小鼠的水尿平衡提供数据。
三、实验步骤1.将小鼠随机分为实验组和对照组，每组10只。
2.实验组小鼠在实验开始前禁水5小时，对照组小鼠正常饮水。
3.记录实验组小鼠给水前的体重，并放入装有给水的瓶子中。
4.分别记录两组小鼠每隔1小时的饮水量和尿量。
5.实验结束后，记录实验组小鼠给水后的体重，并计算出每个小时的饮水量和尿量。
四、实验结果实验组小鼠在5小时内未给水前的体重平均为25.68g，给水后的体重平均为25.39g，减轻了0.29g。
对照组小鼠的体重没有变化。
实验组小鼠在给水后的第1小时饮水量为7.22ml，尿量为2.45ml。
第2小时饮水量为9.08ml，尿量为3.25ml。
第3小时饮水量为8.96ml，尿量为2.98ml。
第4小时饮水量为8.15ml，尿量为2.64ml。
第5小时饮水量为7.32ml，尿量为2.35ml。
五、实验讨论通过实验结果，可以看出实验组小鼠在未给水前体重有所减轻，这是由于禁水导致体液的丧失，体重下降。
给水后，实验组小鼠的体重有所恢复，说明小鼠摄入的水分得到了补充。
在给水的过程中，实验组小鼠的饮水量逐渐减少，而尿量则呈现出一个相对稳定的状态。
这说明小鼠在饮水后尿液的产生速度不如饮水量的减少速度快，体内部分水分被皮肤和呼吸道蒸发散失。
实验组小鼠在给水后的饮水量和尿量与时间的关系基本上呈现出相反的趋势。
这也是由于小鼠通过饮水摄取水分后，经过肾脏过滤形成尿液，一方面满足体内水分平衡的需要，另一方面有一部分水分会被其他途径散失。
六、实验结论通过本次实验，我们可以得出以下结论：1.经过禁水后，小鼠体重会有所减轻，给水后能恢复部分体重。
2.小鼠的饮水量和尿量呈现出相对稳定的状态，但饮水量的减少速度大于尿液产生速度。
生理学实验和动物试验的设计原则及其伦理问题
生理学实验和动物试验的设计原则及其伦理问题生理学实验和动物试验是生命科学领域中非常重要的手段。
它们能够通过实验的方式，深入研究生命现象，解决一些问题，促进科学的发展。
然而，这些实验的进行也面临着一些伦理问题。
本文将探讨生理学实验和动物试验的设计原则及其伦理问题。
1. 生理学实验设计原则生理学实验的设计应该考虑到以下几个原则：1.1 实验的目的实验应该有一个明确的目的。
研究者应该清楚地了解自己的目的，并且在实验过程中遵守这个目的。
1.2 实验设计的严谨性实验设计应该是经过许多修订、严格的反复测试和控制的。
实验者应该知道如何正确地进行实验，以便从结果中得出可靠而正确的结论。
1.3 可重复性实验的结果应该是可以重复的。
实验应该能够在不同的环境条件下得出相同的结果。
1.4 避免不必要的痛苦实验应该尽可能地减少动物的痛苦和不适，而同时保持实验的有效性。
1.5 避免资源的浪费实验设计应该考虑资源的使用情况，尽可能减少资源的浪费。
2. 动物试验的设计原则动物试验是指在实验室用动物进行的实验，以研究生命现象。
为确保该实验的质量，并且保护实验动物的利益，设计动物试验应遵循以下原则：2.1 选择动物根据实验的目的，应该选择合适的动物进行试验。
试验应该遵循“3R”原则，即减少（Reduce）、替代（Replace）和改善（Refine）。
2.2 实验环境及条件动物试验应该在恰当的环境和条件下进行，以保证试验结果的准确性。
此外，动物应该有足够的休息和食物。
2.3 避免痛苦和苦难动物试验应尽可能减少动物的痛苦和苦难，而同时保持实验的有效性。
在必须进行痛苦实验时应该采取麻醉和处理疼痛的方法。
2.4 实验的持续时间动物试验持续时间应该控制在最小范围内，而且应该在试验周期结束后及时停止。
3. 伦理问题生理学实验和动物试验的实施会涉及一些伦理问题。
这些伦理问题包括实验者与被试者之间的责任以及动物的保护等等。
以下是两个重要的伦理问题：3.1 人体试验的伦理问题人体试验是生理学实验的一种形式。
动物生理学实验课件(二) 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备
附3 :蛙坐骨神经——腓肠肌标本的制备图解附4：蛙骨神经——腓肠肌标本的制备图解
五.实验应注意事项
1.本制备过程中尽可能避免损伤神经，不可用力牵拉或用金属器械钳 夹神经。
2.随时滴加任氏液保持神经湿润，并将暂时不用的标本置于任氏液中 备用。
实验二 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备步骤图解
实验二 制备完成的蛙坐骨神经-腓肠肌标本
实验二 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备
六.作业与思考
1.为什么制备过程中要避免用金属器械接触神经？ 2.兴奋是如何从神经传递到肌肉的？ 3.肌肉收缩是钙离子有什么作用？ 4.神经兴奋与肌肉收缩如何保证是一对一的关系？
注明：本课件的完成引用了各院校的资料和图片，谨此一 并致谢！
附1：实验二 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备过程
附2：蛙坐骨神经——腓肠肌标本的制备图解
（4）检查标本的兴奋性：用经任氏液湿润的铜锌弓迅速接触坐骨神 经，如腓肠肌发生明显的收缩，表明标本的兴奋性良好，即可将标本 置于盛有干净任氏液的培养皿中待用。
（二）坐骨神经干标本制备
实验二 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备
分离坐骨神经的方法及步骤与上述1-5项的(1)项同.当坐骨神经游 离至膝关节处后再向下继续剥离,在腓肠肌两侧肌沟内找到肌神经和 腓神经,分别分离二支神经直至足趾,用线分别结扎(棉线留10厘米长, 以便提拿标本),在结扎的远端剪断.注意胫腓二支在绕过膝关节时,其 上覆有肌腱和筋膜,分别时慎勿剪断或损伤神经.标本置任氏液中浸泡 10分钟备用.
4.分离两腿: 沿正中线用剪刀将脊柱分为两半(勿损伤坐骨神经),并从 耻骨联合中央剪开两侧大腿.分离后两腿浸于盛有任氏液的烧杯内.
5.制作坐骨神经腓肠肌标本: 取一腿放置蛙板中央的玻璃板上,腹侧向 上用蛙钉固定之.
动物生理实验2
1.家兔麻醉后正常的呼吸曲线：曲线疏密表示频率；高度表示呼吸深度。
呼吸正常。
2.窒息对呼吸运动的影响由图可知：用手堵住气管插口处，兔子窒息，呼吸变慢加深；松开手后，兔子呼吸加快加深现象解释：窒息后，肺泡中的P CO2 升高，随之动脉血的PCO2升高，PO2减少，二氧化碳主要刺激中枢化学感受器，刺激经迷走神经传入延髓，反射性的使呼吸加快加深，肺通气量增加；低氧气对呼吸的刺激作用完全是通过外周化学感受器实现的，来直接抑制延髓呼吸中枢的兴奋性。
二者共同的影响使得呼吸反射性的加快、加深。
3.增大无效腔在Y形气管的一端插上50cm长的橡胶管，相当于增大了兔子的生理无效腔。
现象：增大无效腔后，兔子呼吸加快加深。
解释：肺泡通气量是每分钟吸入肺泡的新鲜空气量（潮气量—生理无效腔）乘以呼吸频率。
生理无效腔增大，则肺泡通气量减少，使得肺泡气体的更新效率降低，不利于肺换气。
这样就会导致肺泡中二氧化碳的分压增加，氧气分压减少。
二氧化碳主要刺激中枢化学感受器，刺激沿迷走神经传入到延髓，反射性的使呼吸加快加深，肺通气量增加。
低氧气完全刺激外周化学感受器，对中枢呼吸系统直接抑制。
二者共同作用，反射性的使呼吸加快加深。
4.静脉注射乳酸血液中氢离子浓度升高，可导致呼吸运动加深加快，肺通气流量增加。
氢离子对呼吸的调节也是通过刺激中枢和外周化学感受器，但中枢化学感受器对氢离子的敏感性是外周化学感受器对氢离子的25倍，但是血脑屏障的存在限制了氢离子对中枢化学感受器的作用，所以呼吸运动的变化不如他们作用引起的变化大。
5.切断一侧迷走神经切断一侧迷走神经会出现长吸现象，呼吸变慢变深。
解释：肺扩张反射，当吸气时，肺容积扩大，会刺激位于气管和支气管管壁上的牵拉感受器，感受器将兴奋沿迷走神经上传至中枢，中枢内大量的神经元将信息整合，使吸气切断机制兴奋，切断吸气，转为呼气。
这样就加速了吸气和呼气的交替频率，使呼吸频率增加。
切断一侧迷走神经后，吸气延长加深，呼吸变得慢而深。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
实验二
蛙心起搏点的观察及期前收缩和代偿间歇
实验目的：
1、用结扎法观察两栖类动物心脏的起搏点和心脏不同部位传导系统的自动节律性高低。
2、学习在体蟾蜍（或蛙）心搏动曲线的记录方法
3、观察期前收缩和代偿间歇，并理解其生理意义
实验对象：蛙
实验器材和药品：
二道生理记录仪或计算机实时分析系统、机械—电换能器、刺激器、刺激电极、铁支柱、双凹活动夹、蛙板、蛙类手术器械、刺蛙针、蛙心夹、线、小烧杯、滴管、胶泥、任氏液。
实验步骤：
1、取一只蛙，捣髓，解剖，得到暴露的心脏
2、将生物信号采集系统与所得到的标本连接起来，并且调到足以刺激蛙肌肉收缩的电压上
3、描记正常心跳曲线，观察心脏收缩期与舒张期相对应的心跳曲线
4、单击刺激器调节区上的“启动刺激”命令按钮。
选择适当的阈上刺激强度，分别在心舒张的早、中、晚期，给予心室一次刺激，注意心跳曲线的变化
5、观察蛙心各部分收缩的顺序，记录每分钟静脉窦、心房、心室的收缩次数
6、分别斯氏第一节扎、第二结扎并分别记录下每分钟静脉窦、心房、心室的收缩次数
实验结果：
1、分别在收缩期和舒张期的早、中、晚期给予心房一次刺激，其心跳曲线的变化是不同的。
在收缩期和舒张前期、中期，其心跳变化基本与正常的没有区别，但是在舒张的后期刺激心房，会加快下一次心跳的收缩期的到来，即出现了期前收缩的现象。
在提前收缩的那次跳动后，会有较长一段时间的舒张期，即为代偿间歇。
具体情况如下列图表示：
图一舒张的前期刺激心房产生的心跳曲线
（其中，上边的一条为正常情况下的心跳曲线，下边的一条为舒张前期刺激心房产生的心跳曲线，可看出两者无较大区别）
图二舒张的中期刺激心房产生的心跳曲线
（其中，上边的一条为正常情况下的心跳曲线，下边的一条为舒张中期刺激心房产生的心跳曲线，可看出两者并无较大的区别）
图三舒张后期刺激心室产生的心跳曲线
（其中，上边一条为正常情况下的心跳曲线，下边的一条为舒张后期刺激心房产生的心跳曲线，可看出两者有较大的区别，下边曲线的第二个波峰较上边曲线的第二个波峰前移了，此为期前收缩。
而下边曲线第二个波峰与第三个波峰直接的距离较上边曲线的波峰距离远，此即为代偿间歇，且此实验中代偿间歇为2s）
图四收缩期刺激心房产生的心跳曲线
(上图中，上边一条为正常情况下的心跳曲线，下边一条为收缩期刺激心房产生的心跳曲线，可看出两者没有差别。
)
2、蛙心起搏点的观察：
斯氏第一结扎阻断了静脉窦与心房直接的传导，故在斯氏第一节扎扎上之后，可看到心房与心室的搏动明显减慢，而静脉窦的跳动则基本不受影响。
在心室与心房的搏动恢复后，斯氏第二结扎阻断了心房与心室的传导，可看到心房、静脉窦的搏动都较为正常，而心室的搏动则大大降低。
具体如下表：
表一心脏各部分自动节律性兴奋频率的比较
部位正常心搏动频率斯氏第一节扎后
心搏动频率斯氏第二结扎后心搏动频率
静脉窦心房心室25
25
25
24
10
10
24
20
1
实验分析与讨论：
1、在做蛙心的期前收缩与代偿间歇的实验时，我们组的蛙心并没有像老师的课件上一样，每个大收缩的波动之后会紧接着有一个较小的波动，而是大的波动和小的波动分的很开，甚至两个大波动之间差很多个小波动，也就是说蛙心的心房与心室的收缩并不是同步的，即为医学上的心律不齐现象，故得到的曲线是单一的心脏某个部位的收缩。
本实验的截图中全部用的是心房的收缩曲线。
2、在做蛙心起搏点观察的实验时，由于是在上一个实验的结束后继续用同一个标本做的，由于时间较久，故标本失活情况较严重，甚至出现了某个部位很久都不跳动的现象。
对此我们只好又换了一只青蛙，重新解剖，只做第二个起搏点的观察这个实验。
故得到的表一中的数据和图1、2、3中的结论并非是同一只青蛙。
3、我们在结扎时有时会结扎完了但是仍然各部位搏动同步的现象，这是因为结扎没有结扎好，可能是由于结扎的位置找的不对，或者是由于结扎力度不够，未能做到完全阻断两部位之间的传导。