人脐静脉内皮细胞的体外分离培养及鉴定.
人脐静脉内皮细胞分离、培养及鉴定
人脐静脉内皮细胞分离、培养及鉴定权燕;郑练【期刊名称】《汕头大学医学院学报》【年(卷),期】2009(22)4【摘要】目的:寻求一种简单、实用的人脐静脉内皮细胞(HUVECs)分离及培养方法。
方法:在传统HUVECs分离、培养的基础上,进行实验方法的改进,用Ⅰ型胶原酶分离HUVECs;通过倒置显微镜观察HUVECs生长情况,最后使用Ⅷ因子免疫荧光及摄取Dil-Ac-LDL实验鉴定HUVECs,采用流式细胞术检测HUVECs纯度。
结果:改进实验工序和精化实验操作后,HUVECs分离不受影响,原代HUVECs3~4d后融合,传代后2~3d融合,倒置显微镜下见细胞呈"铺路石"状,有接触性抑制现象,Ⅷ因子及摄取Dil-Ac-LDL实验呈阳性,流式细胞术检查细胞纯度达92.9%。
结论:本培养方法操作简便,培养周期短,获得的HUVECs纯度较高,有助于体外研究血管内皮细胞模型的构建。
【总页数】4页(P209-211)【关键词】人脐静脉;内皮细胞;细胞培养;分离;鉴定【作者】权燕;郑练【作者单位】汕头大学医学院第一附属医院小儿外科【正文语种】中文【中图分类】R329.2【相关文献】1.人脐静脉内皮细胞分离培养及鉴定技术 [J], 吴金义;张蕾;张秀英;曲丽梅2.人脐静脉内皮细胞的分离培养和鉴定及酪氨酸激酶受体-2在其中的表达 [J], 吴世卿;郑俊发;曾曙光;陈少鹏;薛国初;章锦才3.人脐静脉内皮细胞体外分离培养方法改进的探索及鉴定 [J], 林少芬;周焕娇;丁运刚;梁小玲;罗燕;唐仕波4.人脐静脉内皮细胞的分离培养及鉴定 [J], 牛成伟;曹凯5.人脐静脉内皮细胞的体外改良分离、培养及鉴定 [J], 阮溦;李锁北;戴如平;徐军美因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
人脐静脉内皮细胞的培养及鉴定
本课题为安徽省自然科学基金安科医药专项资助项目(01043708)作者单位:230001 合肥 安徽省立医院普外科安徽医科大学2001级硕士研究生(傅斌生)人脐静脉内皮细胞的培养及鉴定余继海 许戈良 汪 建 荚卫东 傅斌生[摘 要] 目的 探讨新生儿脐静脉内皮细胞的培养及鉴定方法,建立血管内皮细胞培养模型,为体外研究血管内皮细胞提供实验手段。
方法 采用胶原酶 灌流消化法培养人脐静脉内皮细胞,当原代培养细胞80%以上汇合后,用胰蛋白酶消化传代;根据细胞生长特点、形态特征、细胞表型和分泌蛋白流式细胞术(F M 术)免疫荧光检查对细胞进行鉴定。
结果 种植在培养瓶中的内皮细胞12小时贴壁生长,48~72小时生长最快,7~10天汇合。
内皮细胞呈接触抑制生长、呈鹅卵石样外观,FM 术检测CD31和V -R-Ag 均为阳性表达。
结论 消化酶灌注脐静脉消化内皮细胞是获取血管内皮细胞的一种好方法,可靠性大,成功率高,可以构建体外研究血管内皮细胞的模型。
[关键词] 内皮细胞;培养C ulture and identif ication of human endothelial cells derived f rom umbilical veins Y u Jihai ,Xu Geliang,W ang J ian,et al A nhui Prouincial H osp ital,H ef ei 230001[Abstract] Objective T o extablish the methods of culturing human endothelial cells (EC)and identifing the cells ac cording to t he antigens expressed and their morpholog ical aspect.Methods A fter digestion w ith t ype collagenase at 37!for 10minutes,the cells were centrifuged,and the cell pellet was resuspended in DEM E medium containing fetal bovine serum (10%vol/vol),seeded on gelatin(0.1%w t/vol)procoated dishes at aconcentr at ion of 10,000per square centimeter.T he medium was changed 1days later when the cells w er e attached and every 2days,until the cells reached confluence.Phase con trast microscopy and flow cy tometry with specific antisera against von willebrand factor and CD31were used to obser ve and i dentify the culturedcells.Results At confuluence (7~9days),the cultured cells had a cobbestone appear ance wit h a strict monolayer grow th and contact inhibition.T he mean fluorescence intensity of the cells was similar w ith both antibodies for the cultured cells vs controls.C onclusion T he cultured cells are endothelial cells,and the method of identification is practical and convenient.[Key words] Endot helial cells;Culture我们采用胶原酶 灌流消化法成功培养人脐静脉内皮细胞,根据细胞生长特点、形态特征、细胞表型和分泌蛋白流式细胞术免疫荧光检查对细胞进行鉴定,从而构建体外研究血管内皮细胞的模型,现报告如下。
人脐血间充质干细胞体外分离、培养与鉴定
人脐静脉内皮细胞分离培养及鉴定技术
2 1 4月 0 0年
第1 4卷
第 4期
一
5l 一 I
文 章 编 号 :07— 272 1)4 5 1 3 10 4 8 (00 0 —0 1 —0
人 脐 静 脉 内皮 细 胞 分 离 培 养 及 鉴 定 技 术
吴金 义 张 , 蕾 , 张秀英 曲丽梅 ,
(. 1吉林大学 中 日联谊 医院 心内科 , 吉林 长 春 10 3 ; . 303 2 一医院 病理科 ) 摘要: 目的 探讨人脐静脉 内皮 细胞 ( V C 体外 分离 原代 培养 的方法 ,  ̄JE ) 并总结对培养 的细胞 鉴定 方法。方法
通过胰酶灌注法从人脐带获取 内皮 细胞 进行分离培养 , 并采用免疫组 化法及 光镜和透射 电镜观察 超微结构 鉴定所获
得 的细胞系 。结果
分离 的 H V C在体外 7 0天左右可长成单层 , UE —1 光镜下 胞体 为单层铺 路石状排列 。第 VI 因子 I I
用胰酶灌 注法是获
相关抗原 的检测 为阳性 。透射 电镜下 观察培养的内皮细胞胞浆内可见 We e—a d 小体 。结论 il le b Pa 得脐静脉 内皮细胞 的有效 方法 。本 方法 为血 管内皮细胞的研究提供 了实验模型 。
( ’ L bD a n 2 1 ,4 0 1 ) C J a / , 0 1 : 1 g 0 5
ce a n te c i p a m u d ree t n—m co c p h c e e ie t e C . n l s n T ed g s o f a c e t e _ l sw s i el l e lcr h s n o i rs o yw ih w r d ni d a E s Co c i h i t n o n rai p d — i f s u o ei p n u s n i a f c v t o o g i C , d ti me o r vd se p r na d lfrV Cl C e e r h i e e t e meh d t an E s a hs t d p o ie x e i t mo e o a la E sr s ac . o sn i n h me l s l r Ke r s h ma a c lr n oh l eli mbl a v i c l c tr ;d n i c t n y wo d : u n v s u a d tei c l n u i c en; e u u e i e t ai e l a il l i f o
人脐静脉内皮细胞的分离培养及鉴定
两种易混 杂其 它血管壁细胞 , 年 已逐渐被酶 消化 法取 近
代 _。 蛋 白酶 、 原 酶 均 可 用 于 消 化 血 管 内皮 细 胞 , 2胰 I 胶 但 胰 蛋 白酶 对 内 皮 细 胞 的 损 伤 较 大 ; 原 酶 作 用 较 温 和 , 胶 但 价 格 昂 贵 , 制 了 其 在 大 规 模 实 验 研 究 中 的应 用 。 限 本
用S P系 列 试剂 盒 、 DAB显 色 试 剂 盒 为 中杉 金 桥 生 物 技 术
2 结果
2 1 形 态 学观 察 原 代 细 胞 呈单 层生 长 , 界 清楚 , . 边 形 态 为 卵 圆 形 。 养 3 d 合 , 典 型 的铺 路 石 状 镶 嵌 排 培 —4 融 呈
列 。 代细 胞的形 态和 生长特 点与原 代细胞 类似 。 传
公司; 净化工作台 , 上海新苗 医疗 器械制 造有限公司。
1 2 方 法 .
人 脐静 脉 作 为 内皮 细胞 的 材料 来 源 , 有取 材 容 具
易 、 作 方 便 的 特 点 , 与 各 种 实 验 动 物 相 比 , 实 验 条 操 且 其 件 更 符 合 人 体 情 况 , 果 更 具 有 意 义 。 培 养 细 胞 的 获 结 在 取 方 法 上 , 机 械 刮 取 、 织 块 移 植 和 酶 消化 法三 种 。 有 组 前
洗脐静 脉 , 将冲洗液一并收 集在锥形瓶 中 , 离心 l mi n; 0
固定 1mi ,%H, 浸泡3 mi , 0 n 3 O, 0 n 山羊血清封闭 , 加入兔抗 人Ⅷ 因子I G抗体 ( g 一抗 ) ℃过夜 , AB显色 , 4 D 苏木精 复 染 , 水透 明封 片 后显微镜 下观察 。 脱 以胞 质内 出现棕 黄
人脐血CD133 +血管内皮祖细胞的培养、鉴定与分化研究
可分化为梭形血管 内皮细胞及形成集 落 ; C D 1 3 3 细胞培 养过 程 中 D i l - L D L及 F TC I - L e c t i n摄取 阳性 , 双染 阳性率为 ( 9 5 . 8 3± 1 . 7 2 ) %; C D 1 3 3 细胞 培养 1周后经 免疫组 织化学 检测 C D 3 4 、 Ⅷ因子 阳性 率 分别 为( 9 5 . 8 3± 2 . 2 3 ) % 和( 9 5 . 9 2±1 . 4 3 ) %, 与人脐静 脉 内皮 细胞 比较 差异无统计 学意 义 ; C D 1 3 3 细胞体外培养 4 d 、 1 周可形成小血 管结 构。结论 免疫 磁珠分选法 可获取 较高 纯度 C D 1 3 3 血 管 内 皮祖细胞 , 在生长因子作 用下诱 导其分化为成熟血管 内皮细胞 。
维普资讯
2 0 0 7年 5月 第 4 5卷 第 9期
C h i n J S u r K . Ma y 2 0 0 7, V o 1 . 4 5 , N o . 9
・
61 9・
.
论 著
人脐血 C D 1 3 3 + 血 管 内皮 祖 细胞 的 培养 、 鉴 定 与 分 化 研 究
【 关键词】 血管 内皮 ; 干细胞 ; 细胞培养
S t u d y o n c u l t u r e . i d e n t i ic f a t i o n a n d 谶  ̄n ia t i t o n o f CD1 3 3 e n d o t h e l i a l p r o g e n i t o r c e l l s f r o m
验、 细胞 免疫组 织 化 学 等 进 行 鉴 定 。结果 经 流 式 细 胞 仪 检 测 C D 1 3 3 细 胞 平 均 占单 核细 胞 的
两种人脐静脉内皮细胞培养方法的比较
两种人脐静脉内皮细胞培养方法的比较目的:用两种不同的方法培养人脐静脉内皮细胞,比较两种方法的优缺点。
方法:(1)方法1,用0.125%胰酶加0.02%的EDTA消化液消化、方离脐静脉内皮细胞,用含20%的胎牛血清的DMEM完全培养液,于37 ℃、5% CO2条件下培养。
(2)方法2,用胶原酶Ⅱ消化脐静脉内皮细胞,用含20%胎牛血清+细胞生长因子+明胶铺板,于37 ℃、5% CO2条件下培养。
比较两种方法对细胞活力、培养细胞数量等方面的影响。
结果:以改良方法培养的内皮细胞4 h贴壁生长,细胞数量达到整瓶的80%~90%,48~72 h生长最快,细胞融合,内皮细胞呈单层铺路石样外观。
传统方法培养的内皮细胞24 h后细胞数量只达到整瓶的20%~30%,细胞融合较慢。
结论:用0.125%胰酶加0.02%的EDTA灌注脐静脉消化内皮细胞是获取内皮细胞的一种好方法,更加简便、经济,是建立稳定的人脐静脉内皮细胞分离和培养的好方法。
标签:人脐静脉内皮细胞;消化液;培养方法人脐静脉内皮细胞为位于血管内壁与血液直接接触的单层细胞。
内皮功能失常可破坏血管壁凝血和循环功能障碍,与多种疾病发生密切相关,血管细胞的研究因此成为动脉粥样硬化以及其他血管疾病研究的重要方向[1-2]。
人们常用脐静脉作为获取血管内皮细胞的来源。
本研究利用健康婴儿脐带,分别采用改良方法和传统方法来获取内皮细胞,结果发现细胞数量和细胞活力都出现不同的效果。
1 材料与方法1.1 实验材料及主要试剂、仪器1.1.1 材料足月健康出生的新生儿脐带由太和医院妇产科提供,产妇及其家属签署知情同意书。
1.1.2 主要试剂M199培养基,胎牛血清(Hyclone公司),胰蛋白酶,EDTA (国产,武汉天源生物技术有限公司),胶原酶Ⅱ(Amresco公司)1.1.3 仪器倒置显微镜(Olympus公司,日本),恒温恒湿培养箱(Thermo 公司,美国)1.2 实验方法HUVECs的原代培养:无菌条件下取新生儿脐带两根(离体时间6 h以内),长度至少15~20 cm,在超净工作台内剪去脐带两端易污染及血肿部分,找到脐静脉后,净尖端已磨平的50 ml注射器针头插入脐静脉一端的管腔中,用止血钳夹闭固定针头,用37 ℃预热的PBS冲洗脐静脉管腔2遍,将脐静脉内的血液冲洗至无色。
原代人脐静脉内皮细胞培养方法经验总结
原代人脐静脉内皮细胞培养方法经验总结刘文;陈瑞云;王志伟【摘要】目的建立分离培养原代人脐静脉内皮细胞的方法.方法采用0.125%胰酶+0.01%乙二胺四乙酸(EDTA)消化液灌注法,获得原代人脐静脉内皮细胞,用免疫组织化学方法进行细胞鉴定.结果原代培养的脐静脉内皮细胞呈典型的铺路石样排列;细胞鉴定可见内皮细胞胞浆中人第Ⅷ因子相关抗原呈阳性反应.结论 0.125%胰酶+0.01%EDTA消化法能够获取大量且纯度高的原代人脐静脉内皮细胞,为体外实验提供可靠的细胞模型.【期刊名称】《中国医学工程》【年(卷),期】2016(024)008【总页数】3页(P11-13)【关键词】原代人脐静脉内皮细胞;分离;细胞培养【作者】刘文;陈瑞云;王志伟【作者单位】山东省青岛科技大学校医院内科,山东青岛266044;山东省青岛大学第二附属医院胃肠外科,山东青岛266042;山东省青岛大学第二附属医院肛肠外科,山东青岛266042【正文语种】中文【中图分类】Q813.11血管内皮细胞(endothelial cell, EC)是血管内表面的单层扁平上皮,构成了血管壁与血液之间的机械屏障,EC能吞噬异物、细菌、坏死和衰老的组织,能分泌很多生物活性物质以调节血管通透性、参与凝血和动脉粥样硬化过程,还能通过调节血管的收缩和舒张以调节血压等。
为研究人体大血管内皮功能需要体外建立人血管内皮细胞模型,而内皮细胞株ECV304,在形态学、基因学等生物特性上与内皮细胞存在明显差异[1],因此,体外分离培养原代人脐静脉血管内皮细胞(human umbilical vein endothelial cells, HUVECs)是获取内皮细胞的重要途径。
本实验总结了体外培养HUVECs的方法,应用消化酶灌注法,成功分离了人脐静脉内皮细胞,获取了大量的HUVECs,创建了研究内皮细胞的模型。
1 材料与方法1.1 标本来源脐带均来自于剖宫产的新生儿脐带,于无菌条件下获取,迅速转移至细胞室超净台中,进行分离培养。
内皮实验报告
实验目的:本研究旨在通过体外实验,探讨内皮细胞在不同条件下的生物学特性,包括细胞增殖、凋亡、迁移和血管生成能力,以期为内皮细胞在疾病发生发展中的作用提供实验依据。
实验材料:1. 人脐静脉内皮细胞(HUVECs)2. DMEM培养基(高糖)3. 胎牛血清(FBS)4. 0.25%胰蛋白酶5. 细胞培养箱6. 倒置显微镜7. 流式细胞仪8. 实验试剂(如Annexin V-FITC/PI双染试剂盒、血管内皮生长因子(VEGF)检测试剂盒等)实验方法:一、细胞培养与鉴定1. 将HUVECs接种于培养皿中,置于37℃、5%CO2的培养箱中培养。
2. 每2-3天更换一次培养基。
3. 利用免疫荧光染色法鉴定内皮细胞,观察细胞形态和内皮细胞标记物(如VE-cadherin)的表达。
二、细胞增殖实验1. 将细胞分为实验组和对照组。
2. 实验组给予不同浓度的VEGF处理,对照组给予等量DMEM培养基。
3. 在不同时间点收集细胞,利用CCK-8法检测细胞增殖情况。
三、细胞凋亡实验1. 将细胞分为实验组和对照组。
2. 实验组给予不同浓度的肿瘤坏死因子α(TNF-α)处理,对照组给予等量DMEM 培养基。
3. 利用Annexin V-FITC/PI双染试剂盒检测细胞凋亡情况。
四、细胞迁移实验1. 将细胞分为实验组和对照组。
2. 实验组给予不同浓度的细胞外基质(ECM)蛋白处理,对照组给予等量DMEM培养基。
3. 利用Transwell小室检测细胞迁移能力。
五、血管生成实验1. 将细胞分为实验组和对照组。
2. 实验组给予不同浓度的VEGF处理,对照组给予等量DMEM培养基。
3. 利用血管生成实验试剂盒检测细胞血管生成能力。
实验结果:一、细胞培养与鉴定成功培养出HUVECs,细胞形态为长梭形,细胞表面表达VE-cadherin。
二、细胞增殖实验VEGF处理组细胞增殖能力明显增强,与对照组相比,增殖率显著提高。
三、细胞凋亡实验TNF-α处理组细胞凋亡率显著升高,与对照组相比,凋亡率显著增加。
人脐静脉内皮细胞的分离及原代培养体会
人脐静脉内皮细胞的分离及原代培养体会杜利君;蒋兴亮【摘要】目的:建立一种操作简便、且能够获得数量较多及活力良好的人脐静脉内皮细胞的分离、培养方法.方法:采用0.1% IV型胶原酶灌注消化分离人脐静脉内皮细胞,将其置于含有20%胎牛血清、内皮细胞生长因子及肝素的M199培养基内培养,倒置显微镜观察内皮细胞生长情况,免疫荧光方法鉴定内皮细胞的Ⅷ因子相关抗原.结果:细胞呈梭形或椭圆形生长,单层铺路石状排列或呈漩涡状排列.免疫荧光检测结果显示细胞的胞浆内有大量绿色荧光颗粒,Ⅷ因子相关抗原呈阳性反应.结论:实验建立的人脐静脉内皮细胞分离和培养方法简单、可靠,且能获得足够数量和高纯度的血管内皮细胞,为进一步研究人体大血管内皮细胞的功能奠定了较好的基础.【期刊名称】《川北医学院学报》【年(卷),期】2013(028)001【总页数】4页(P48-51)【关键词】内皮细胞;脐静脉;细胞培养【作者】杜利君;蒋兴亮【作者单位】川北医学院附属医院,四川南充637000【正文语种】中文【中图分类】R329.2体外建立人血管内皮细胞模型是研究人体大血管内皮功能的主要手段之一。
由于内皮细胞株ECV304在形态学、基因学等生物特性上与内皮细胞比较存在明显差异[1],因此,体外分离和原代培养人脐静脉血管内皮细胞(human umbilicalvein endothelial cells,HUVECs)已成为国内外学者获取内皮细胞的重要途径。
本实验在借鉴其他学者体外分离、培养HUVECs技术的基础上,通过大量的实验并对此加以改良,旨在建立一种操作简便、且能够获得数量较多及活力良好的HUVECs的分离、培养方法,为进一步研究血管内皮细胞的功能及阐明相关疾病的生理和病理机制奠定基础。
1 材料与方法1.1 材料M199培养液和胎牛血清分别为Invitrogen公司和Hyclone公司产品,IV型胶原酶、内皮细胞生长因子(ECGS)、肝素钠均为Sigma公司产品,胰蛋白酶为Amresco公司产品,PBS、兔抗人Ⅷ因子抗体及FITC标记的羊抗兔IgG抗体为北京中杉金桥公司产品,青霉素和链霉素为华北制药股份有限公司产品。
人脐静脉内皮细胞体外培养方法的改进
I p ov m e t o um a m bii a e n e o h la e l ulu e i ir m r e n fh nu lc lv i nd t e i lc l c t r n v t o s
CHEN C u — e YIL n JI xi e 1 h ny , o g, N n,t . a
mi t r f0 1 t p i c l g n s n . 5 t y sn s ( xu eo . y e ol e aea d0 2 a r p l a e 1:1 )we et s e yc l c u t g a d t y a le e c u in me h d . r e t d b el o n i n r p n b u x l so t o s n
vto M eh d Th u e n ibl y o i . tos r en mb ra d va it fHUVE ep ciey i ltd b . 5 i Csr s e t l s ae y 0 2 v o ty sn s , . r p ia e 0 1 tp olg n s , h y eIc l e ae t e a
究 奠 定基 础 。方 法 比较 0 2 胰酶 、 . I型胶 原酶 、 . 5 胰 酶 与 0 1 I型胶 原酶 ( .5 01 0 2 . 1:1 3种 消化 方 法 分 离 HUVE ) Cs的
细 胞 数 量 和活 细 胞 卒 的 差异 。观 察 血 管 内皮 细 胞 生 长 因 子 ( E F 对 细胞 生 长 的影 响 。细 胞 鉴 定 采 用 形 态 学观 察 和 免 疫 荧 光 法 V G ) 检 测 。结 果 0 1 I型胶 原酶 单 独 或 混 合 0 2 胰 酶 消 化 分 离 细胞 数 量 较 多 、 细 胞 率较 高( < O 0 ) VE F能 明显 促 进 细 . .5 活 P , 5。 G 胞 增 殖 能 力 , 长细 胞 自然 生 长 时 间 。细 胞 呈 单层 “ 延 铺路 石 ” 样排 列 , 疫 荧光 细 胞 化 学 法 染 色 , 光 县 聚 焦检 测 可见 胞 质 中绿 色 免 激
人脐静脉内皮胞细体外培养及鉴定
sn t 1 .Deat n ado g ,T e 6 o i lfP A hn d ee0 70 C i 2 et l ti upyDea m n,T e og ,ea.1 p r tfC rioy h 6H s t L ,C eg e bi 6 00, hn me o l 2 pa o H a; .Cnr el Spl p r et h a C re t Afae o i l C eg e d a o ee C eg e ee0 7 0 , hn ;.Dp r etfC rioy Scn H si lfTaf f lt i dH s t o hn d Mei l lg , hn d H bi 6 0 0 C i 3 ea m n ado g , eo p af c Cl a t o l d o t ii p ao n nMei l - dc aU
P Y.a dtee a n t nwi nie so u n Ⅷ fco sp s ie n h x miai t a t n fh ma o h g atrwa o iv .Co cu in Pef so t peI olgn s nefciewa oclet t n lso ru inwi t l e a ei a fe t yt olc hy c a s v
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人 脐 静 脉 内皮胞 细体 外 培 养及 鉴 定
李 东升 邵 素玲 杨 万松 黄 体钢 1解放 军 2 6医院心 内科 河 北 承德 ( 6 2承德 医学 院附属 医院 消毒 供应 中心 河 北 3天 医科 大 学第二 医院心脏 科 天津 承德 070 600; 30 1 ) 02 1
血管内皮细胞体外三维培养方法的比较
1 . 1 材料 主要 试 剂 : DME M 高糖 培 养基 、 P B S缓 冲液 与 0 . 2 5 胰 蛋 白酶 ( 美 国 Gi b c o公 司) , 克 隆 胎 牛血 清 ( F B S , 奥地 利 P AA 公 司 ) , 支 原 体 抗 生 素 P l a s mo c i n ( 美国 I n v i v o g e n公 司 ) , 内皮 生 长 支 持 物 ( E C GS , 美国 S i g ma公 司 ) , 抗第 Ⅷ 因子 抗体 、 抗 C D 3 1 抗体 、 抗C D 3 4抗体 及相 关抗 原 免疫 染 色试 剂 ( 美国 S a n t a C r u z公 司 ) , 三 维 细 胞 培 养 基 试 剂 盒 ( 美国 C h e mi c o n公 司 ) , 青 霉素 、 链 霉素、 两 性 霉 素 ( 华北制药集 团) 。主要 仪器 : 水 套式 C O z 培 养 箱 ( 3 1 1 0型 , 美 国 Th e r mo F o r ma公 司 ) , 倒 置 相 差 显
少, 出 现 细 胞 连 接 形 成 的 细 胞 索 与 三 维 网 状 结 构 数 量 较 少 。两 种 培 养 方 法 形 成 的 血 管 样 结 构 的数 量 与 长 度 明 显 不
同。 结论 表 面培 养法 体 外 血 管 三 维 培 养 , 具有操作 简便 、 细胞 生长快 、 三 维血管结 构形 成数 量多 、 血 管 网 络 结
表 面 培 养 法 与 混 合 培 养 法 行 脐 静 脉 内皮 细 胞 体 外 三 维 培 养 , 观 察 形 成 的三 维 管 网 状 结 构 。 结 果 表 面 培 养 法 : 细胞 生 长 快 , 管状结构形成多 , 细 胞 分 支 连 接 形 成 复 杂 的 三 维 网状 结 构 ; 混 合培 养 法 : 细胞生 长缓慢 , 管 状 结 构 形 成
改良酶消化法体外培养人脐静脉内皮细胞
4 6・ 7
Hale Waihona Puke JS n iMe i h x d Unv,J n2 2,Vo 3 No6 u u 01 l 4
改 良酶 消 化 法体 外 培 养人 脐 静 脉 内皮 细胞
张 瑛 邹和群 h , 夏 学颖 ( , 南方医科大学第三附属医院肾内科, 广州 503; 广东省妇幼保健院整形 1 0 6
M o iid e z me d g si n tc n q e f r c l rn u a b l lv i n o h l l el d f n y i e t e h i u o u t i g h m n u e o u m i a en e d t ei l i a c s
Z A G Yn Z U H -u , I u -i 2 etfNp rl y T i fia dH si l S u enMei lU i rt, un - H N i ,O eq n XA X ey g (Dp eho g ,hr A l t o t ot r dc nv sy G ag g n o o d ie pao f h a ei
胞模型的构建。
离培养方法 , 以在体外获得较高数量的 H V C , 可 U E s在细胞形态 、 面抗原标志等方 面具 内皮细胞特 征 , 以用于血管 内皮细 表 可
关键词 : 脐静脉 内皮细胞 ; 细胞培养 ; 抗原 表达
中图分类号: Q 1. 文献标志码: A 文章编号 : 10 831 0 7—6 1 (0 2 0 0 7 6 1 2 1 ) 6— 4 6—0 D I1 .99 J IS .0 7—6 1 .0 2 0 .2 3 O :0 3 6/ .S N 10 6 12 1.6 0 3
t pi oti n . 1% E T . U E sw r osre n e vr dmcocp n e ie y r s cna ig 0 6 y n n 0 D A) H V C e bevdud r ne e i soeadi n f db e i t r dt i
人脐静脉内皮细胞的原代传代冻存复苏及鉴定
人脐静脉内皮细胞的原代传代冻存复苏及鉴定人脐静脉内皮细胞的原代培养和传代、冻存、复苏及鉴定1人脐静脉内皮细胞的分离及培养1.1 原代血管内皮细胞的获取与培养在细胞的获取方法上,有机械刮取、组织块移植和酶消化法3种。
前两种易混杂其他血管壁细胞,近年已逐渐被酶消化法取代。
其中胰蛋白酶灌注法及胶原酶消化法获取原代人脐静脉血管内皮细胞的方法。
1.1.1胰蛋白酶消化法在无菌条件下取新生儿脐带,剪去钳痕和凝血块阻塞部分,找到脐静脉。
一端插上带有胶管的玻璃管后结扎固定,经胶管接注射器,用生理盐水灌洗。
待脐静脉内的残血除净后,用37℃磷酸盐缓冲液(浓度0.01 mol/L,pH=7.6)冲洗2次,将另一端用铁夹夹闭,向脐静脉内灌注0.25%胰蛋白酶8~10 mL,夹闭胶管放入已灭菌的大平皿中。
37℃孵育12 min,在此期间经常翻动脐带,使酶溶液在血管内流动,促使内皮细胞与酶均匀接触。
取出脐带轻轻挤压管壁,将含有内皮细胞的胰蛋白酶注入50 mL锥形离心管中,加入小牛血清2 mL终止酶反应,再以30 mL磷酸盐缓冲液冲洗管腔,流出液一并入离心管,1000 r/min离心10 min,弃上清(小牛血清及磷酸盐缓冲液),加入含有10%小牛血清的IMDM培养液,充分混合制成细胞悬液。
取0.1mL 细胞悬液在血细胞计数板计数。
最后调细胞数,以1×105mL接种至24孔培养板中,每孔1mL。
置于5% CO2,37℃静止培养24 h更换培养液,以除去未贴壁的细胞。
以后每隔2天换液1次,维持细胞的营养和内环境稳定。
1.1.2胶原酶消化法在无菌条件下取新生儿脐带,剪去钳痕和凝血块阻塞部分,用磷酸盐缓冲液初步清洗,找到脐静脉后,用50 mL注射器吸取磷酸盐缓冲液反复灌注冲洗,洗净残留的血液后用止血钳封住一端,用注射器从另一端灌入15mLⅡ型胶原酶。
超净台内温度一般高于室温,此条件下胶原酶作用15min,期间可不时晃动。
消化完毕打开止血钳,将消化液流入事先准备好的离心管中,用注射器吸取1倍于消化液体积的内皮细胞培养基灌洗消化后的血管,收集并与消化液合并,900 r/min离心10min,弃去上清,加入事先孵育至37℃的细胞培养液,吹打均匀。
人脐血内皮祖细胞的体外培养
w s f96 _ .5% o e e a s T e d u l p s i aeo D1 3 a d K a 78 i e ec l . t o l ee— a 8 .7 20 ) n sv n d y . h o b e o iv rt f + te C 3 n DR w s 8 .% n t s e s I c ud d tr h l
『 要1目的 从 人脐 带血 中分离 内皮 祖 细胞 (n ohl l rgntr el, P s , 立人 脐 血 内皮祖 细胞 体 外培 养 的方 摘 e d te a po e i l E C )建 i oc s
法 .为实 现 内皮祖 细 胞 的移 植 及实 验研 究 提供 足量 的细 胞 来源 。 方 法 采 用密 度梯 度 离心 法 分离 人 脐 带 血内 皮祖 细胞 . E M一 在 G 2培 养 基 中 培养 , 用 流式 细 胞 仪 、 疫 组 化 和免 疫 荧 光鉴 定 E C 。 结果 脐带 血 单 个 核 细胞 在 经 采 免 Ps
自 19 9 7年 A a aa 首 次 在成 人 外周 血 分离 到循 环 内 sh r 等川 皮 祖 细 胞 (n oh l l rgntrcl , P s 以 来 , 后 又 陆 e d tei o e i el E C ) ap o s 此 续 在 骨 髓 、 带 血 和其 他软 体组 织 中发 现 E C 内皮祖 细 脐 P s] L 2 。 胞 是 来 源于 骨髓 、 外周 血 及脐 带 血和 其 他软 体 组 织在 外 周血 中循 环 . 能 增殖 分化 为 成熟 的 内皮 细 胞 的一 类 前体 细 胞[ 并 3 1 。 从 脐 带 血 中分离 获 取 E C 进 行体 外 培养 , Ps 较从 骨 髓 、 周血 外 和其 他 软体 组 织获 取 E C P s的量更 多 , 伤 和风 险更 小 , 损 虽然 从 外周 血 中分 离 E C 也 很方 便 ,但 其 含量 仅 为从 脐带 血 中 Ps 分 离 E C 量 的十 分之 一I 。本 实 验通 过 密度 梯度 离 心得 到 P s 蜘 单 个 核 细 胞 后 , 过 添 加 一 些 细 胞 因 子 进 行 体 外 培 养 . 而 通 从
人脐静脉血内皮祖细胞的分离、培养及鉴定
i mmu o u rse e sa . P s q a t a v ee t n o u fc r e s b o yo t C 3 C 3 t e x rsin a d n f oe c n ea s y E C u n tt e d tci f s r e mak r y f w e tmer l i i o a l y: D1 3, D 4 a i n e p e s n g o n KD E Csiv r d mir so e o s rain o h r h l gc lc a g s c l c u ta d te go t u v . s l L n u i r R. P et c o c p b e v t ft e mop oo ia h n e , e o n h rw h c r e Re ut n e o l n s o g f f m s o c l ,h e sw r m l rp r ce pn l h p ; el te c l e e s al at lss ide s a e 6—1 d ee t e r w h frte s i de c l tn y a d ice s d te n n— s l e i 0 d a h r n l go t p n e cl o h l l ̄ e c rae u n n h h r f rle t g 1 e p i r i ; 0— 1 oo y l e go hit e l fso , ec l e esg i c t n ra e c e s ogo hp a om . lo o o fa n 4 d c ln - k rw i t noc u in t e sw r inf a l ce s d a c s t rw lt r F u — h i n yi t f
人脐动脉内皮细胞和平滑肌细胞体外培养鉴定及缝隙连接通讯功能测定
能 。方法 : 人脐动脉 E C s 、 S MC s 分 离培养 , Ⅷ 因子 和 S M o t - a c t i n 相关抗 原鉴定 E C s 和S MC s , 应用 F R A P技 术测定血管 内皮细胞 、 平滑肌细胞之 间的 G J I c功能 , 记 录实 时成像结果 , 应用动态 比( M) 计算漂 白区域 内标记荧光 的分子 中动态分子 的 比例。结果 : 第一组 E C s 和S MC s 单独培养 , 选 择漂 白细胞 与周围至少 3个 同种细胞相连接 , S MC s 被漂 白后平均 M 值为 3 1 . 7 9± 5 . 6 9 ; E C s 被漂 白后平均 M值为 2 3 . 4 3± 2 . 1 1 ; 第 二组 E C s和 S MC s混合培 养 , 选择 E C s和 S MC s独立 相连 的 2个 细胞 , S MC s 被 漂 白后 平均 M 值 为 1 4 . 4 7± 3 . 2 8 , E C s 被漂 白后平 均 M值为 6 . 4 1 4 - 0 . 8 0 。结论 : F R A P实时动态恢 复曲线 可直 接观察 荧光恢 复强度及速度 , 参照 F R A P恢复 曲线 , M 值可 做为组 间 G J I c比较相对 定量 的可靠 指标 , 通 过检 测证 实 E C s 和S MC s 之问存在 G J I c , 且荧光 由 E C s 向S MC s 方向的传递大于 由 S MC s 向E C s 方 向的传递 。 [ 关键词 ] 荧 光光漂 白恢复技术 ;缝隙连接通讯 ; 人 脐带动脉 ;内皮细胞 ;平滑肌细胞 【 中图分 类号] 1 1 5 4 [ 文献标识码] A [ 文章 编号] 1 0 0 7 - 5 0 6 2 ( 2 0 1 3 ) 0 4 - 5 0 3 - 0 4
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人脐静脉内皮细胞的体外分离培养及鉴定作者:秦明春,王若光,秦莉花,刘小丽,李春梅,刘惠萍,叶赞【摘要】目的探讨人脐静脉内皮细胞的原代培养方法,提高体外分离培养血管内皮细胞的成功率。
建立血管内皮细胞培养模型,为体外研究血管内皮细胞提供实验基础。
方法取2根脐带(至少20 cm)冲净淤血,采用加工穿刺针固定脐静脉灌注消化液, 一根用0.2%胶原酶Ⅱ,另一根用0.1%胶原酶Ⅰ和0.25%胰酶等比混合消化液,比较两种酶的消化效果。
收集细胞并用含有10 ng/mL的VEGF的培养基中培养,观察细胞的生长及传代。
并在倒置显微镜下观察细胞的形态学特点,同时用免疫组织化学的方法对所得细胞进行鉴定。
用流式细胞术观察细胞周期。
结果两种消化酶方法均获得了相当数量的人脐静脉内皮细胞,胶原酶Ⅱ的消化效果稍优于混合消化酶,且比较理想的消化时间均为13 min,细胞接种后4~5 h开始贴壁生长,1周左右可生长成单层,光镜下呈多角形,“铺路石”样排列,免疫组织化学法可见内皮细胞胞浆中人第Ⅷ因子相关抗原呈阳性反应。
细胞周期显示约有50.6%的细胞处于G0/G1期。
结论胶原酶Ⅱ和胶原酶Ⅰ与胰酶等比混合消化液灌注法是获得脐静脉内皮细胞的一种可取方法,而胶原酶是分离培养脐静脉内皮细胞的首选消化液,成功率高,可靠性大,可成功构建体外研究血管内皮细胞的模型。
【关键词】人脐静脉内皮细胞;细胞培养;流式细胞术;细胞周期;分离;鉴定Cultivation and in vitro identification of endothelial cells from human umbilical vein〔Abstract〕ObjectiveTo explore the primary culture method of human vascular endothelial cells(ECs) from umbilical vein, enhance the succes s rate of separating and culturing ECs in vitro, establish the model of human vascular ECs, and provide an experimental method for research of ECs. Methods The umbilical veins in human umbilical cords, 20 cm long, were fixed and filled the digestive fluids, 0.2% collagenenaseⅡin one cord and t he complex enzyme of 0.25% trypsin and 0.1% collagenaseⅠin an other, and the digestive results were compared. All the cells were collected and cultured in fluid with 10 mg/mL VE GF, their procreation and generation were observed, the morph ologic characteristics of ECs were observed with light micros copy and immunohistochemistry under inverted microscope, and t he cell cycle was observed by flow cytometer. Results EnoughECs were obtained from both digestive liquids, and collagen enaseⅡwas better than complex enzyme, the effective digesti ng time was 13 minutes. the culturing cells grew on the wa ll appeared after 4-5 hours and the monolayer cells were formed after one week.Ⅷfactor in the ECs showed positive reaction by immunohis tochemistry. Cell cycle revealed that 50.6% cells were at st age of G0/G1. Conclusion The perfusion with colla 〔Keywords〕human vascular endothelial cell in umbilical vein; cell culture; flow cytometry; cell cycle; separation; identifica tion血管内皮细胞是位于血管内壁的单层细胞,通过产生和分泌许多血管活性物质,在维持血管舒缩、抗凝血及血管构建等方面起重要作用,同时由于其特殊的解剖学部位使内皮细胞能敏感地感知血流、压力、炎症信号以及血液循环中激素水平的变化,通过一系列的信号转导过程与邻近及远处的细胞相互联系,对各种刺激作出反应,维持机体内外环境的稳定。
内皮细胞的体外培养是研究内皮细胞生物学与多种疾病关系的重要方法。
新生儿脐带由于取材方便,来源充足,而成为血管内皮细胞体外实验的主要材料。
本文利用健康产妇正常娩出的胎盘端游离脐带,采用改进的灌注消化法,运用不同的消化酶成功分离了人脐静脉内皮细胞,并用免疫组织化学法进行了鉴定,从而为构建体外研究血管内皮细胞的模型及进一步实验研究打下了基础。
1 材料与方法1.1 材料1.1.1 标本来源与采集标本均来自于湖南中医药大学第一附属医院妇产科正常足月妊娠娩出的新生儿脐带。
于无菌条件下剪下脐带(至少20 cm)放入装有培养基的无菌容器中,快速移入实验室,1 h内行脐静脉内皮细胞的分离培养。
1.1.2 试剂PRMI-1640培养基、类标准胎牛血清(Hyclone);L-谷氨酰胺(Sigma公司);VEGF(Sigma公司);胰蛋白酶(Amresco公司);胶原酶Ⅰ、Ⅱ(Gibco公司);兔抗人Ⅷ因子相关抗原免疫组织化学检测试剂盒(北京中杉金桥生物技术有限公司);青-链霉素(Gibco公司);其它试剂均为国产分析纯。
1.1.3 仪器水套式CO2培养箱(2300型,SHEL-LAB);超净工作台(SW-CJ-IF,苏州安泰空气技术公司);台式多管自动平衡离心机(TDZ5-WS,长沙平凡仪器仪表有限公司);倒置显微镜(XD-101型,南京江南光电股份有限公司);制冰机(AF100型,斯科茨曼公司);超纯水仪(Maxima Scientific,ELGA公司);电热重蒸水器(ZLSC,上海申安医疗器械厂);座式自控电热压力蒸气灭菌器(ZDX-35型,上海申安医疗器械厂);电子分析天平(AB204N型,梅特勒-托力多有限公司);流式细胞仪(BECTON Dickinson)。
1.2 方法1.2.1 人脐静脉内皮细胞的原代分离及培养将取来的脐带迅速移入洁净操作台内,无菌条件下将其放入提前盛有预热PBS培养皿中,剪去有钳夹痕及血肿的部分,挤出脐带中的血,用剪刀修齐两断面,分成20 cm的一段。
找出脐静脉(2根管腔较细的是脐动脉,1根管腔较粗的是脐静脉),用带平针头的注射器从一端插入脐静脉,血管钳固定,再用预热的PBS冲洗3次以上,将血迹完全冲洗干净。
为防止脐动脉残留的血液混入,可将动脉分离少许用消毒线结扎,用止血钳钳夹另一端。
从冲洗的针头中注入0.1%胶原酶Ⅱ使其充盈,另一条以同样的方法注入0.1%胶原酶Ⅰ和0.25%胰酶等比混合消化液。
取出针头,用止血钳夹住注入端,移入无菌烧杯中,置于37 ℃培养箱中孵育13 min。
取出,松开注入端的血管钳,收集脐静脉内的消化液,然后注入含10%胎牛血清的RPMI-1640培养液再次冲洗管腔,将消化液与冲洗液一并收集于离心管,1 000 r/min,离心5 min,弃上清,加入RPMI-1640完全培养液(含20%胎牛血清,10 ng/mL VEGF。
L-谷氨酰胺2 mmoL/L,青霉素100 U/mL,链霉素100 mg/mL),用巴氏吸管轻轻吹打均匀,按1×106个接种于培养瓶,置于5% CO2,37 ℃培养箱中培养,24 h后更换培养液去除未贴壁的细胞,然后每隔24 h半定量换液1次至细胞生长铺满瓶底。
1.2.2 人脐静脉内皮细胞的传代培养待细胞生长融合成单层细胞后,弃去培养液,加入0.125%胰蛋白酶/0.02% EDTA混合消化液2~3 mL,倒置显微镜下观察,当细胞回缩变圆后弃去消化液,加入RPMI-1640完全培养液5~10 mL终止消化,用巴氏吸管吹打制成细胞悬液,按1∶2或1∶3比例将细胞悬液接种于培养瓶中,置于培养箱中培养。
1.2.3 人脐静脉内皮细胞的形态学观察及鉴定细胞换液后直接在倒置显微镜下观察细胞的形态及生长特征,并作相差摄影,同时进行常规HE 染色观察并摄片。
鉴定采用DAB免疫组织化学法,在6孔培养板中放置载玻片,玻片上植入2 mL含有1×106的细胞悬液,待细胞贴壁后,取出载玻片,放入-20 ℃的冷丙酮中固定30 min,用PBS冲洗3次,每次2 min,滴加3% H2O2室温孵育10 min,PBS冲洗3次,每次2 min,以消除内源性过氧化物酶的活性。
滴加兔抗人Ⅷ因子相关抗原多抗工作液,放入湿盒内4 ℃过夜,同时另一盖玻片不加一抗作阴性对照。
次日,用PBS冲洗3次,每次2 min,滴加辣根酶标记的羊抗兔IgG, 37 ℃孵育30 min, PBS冲洗3次,每次2 min,用DAB底物混合工作液显色,显微镜下观察,待出现特异性染色后,终止显色,进行复染,脱水,透明,封片,相差显微镜下观察摄影。
1.2.4 流式细胞术检测细胞周期将消化所得的细胞悬液1 000 r/min离心5 min,弃去上清,用PBS洗3次,加入-20 ℃预冷的70%乙醇,调整细胞数量大于106以上,重悬、固定12 h以上,取1 mL细胞悬液,用PBS洗3次,细胞重悬于1 mL的PI染液中,37 ℃孵育30 min进行流式分析,检测细胞周期。
2 结果2.1 人脐静脉内皮细胞的形态学观察相差倒置显微镜下观察,人脐静脉内皮细胞贴壁单层生长,呈短梭状或铺路石样镶嵌排列,细胞为扁平多角形,边界清楚,胞浆丰富(见图1-B、C)。