实验动物的捉拿和给药方法
药理学动物实验基本方法
右手拿注射器， 针尖的斜面朝 上，将针 头从远心端插 入血管
回抽有血即可
注射，拔针后 用棉球止血
豚鼠可用足 背静脉注射
实验动物的 给药.MPG
二、实验动物的采血
1 尾尖采血
眼眶静脉丛采血
2
断头采血 腹主动腹脉主动采脉血采血 心脏采血 静脉采血
3 4 5 6
1
尾尖采血
方法：固定动物并露出鼠尾，将尾部在45℃的温水中 浸泡数分钟（或以二甲苯棉球涂擦），使尾部血管扩 张。将鼠尾擦干，用锐器切去尾尖0.3～0.5cm，让血 液滴入盛器或直接以血红蛋白吸管吸取。 对象：大、小鼠 特点：小量采血，可以多次采血。
药理学动物实验基本方法
药学院药理学科组
Contents
1 实验动物的捉持与给药 2 实验动物的采血 3 实验动物的编号和分组 4 实验动物的麻醉
一、捉持与给 药
小鼠 大鼠 豚鼠 家兔 犬
•小鼠的捉持
1、用右手拇指 和食指捏住小鼠 尾巴中部将小鼠 提起，放在饲养 合的面罩上。
用左手拇指和 食指迅速、准 确地捏住小鼠 的两耳后及颈 背部的皮肤， 将小鼠提起。
笼或大小鼠固定 器的孔拉出鼠尾 巴
用左手捏住鼠 尾巴中下部， 用75％
酒精棉球反 复擦拭尾部
大鼠亦可用 舌下静脉注
射
注射时，以左 手拇指和中指 捏住鼠尾两侧， 用食指从下面 托起尾，
右手持4号针 头的注射器， 使针头与
静脉平行 （小于30度角）
•静脉注射给药——犬
前肢皮下头静脉 或后肢小隐静脉 注射 。
用右手食指将 针栓慢慢往下 压，将注射器 中的药液灌入 动物的胃中。
•灌胃给药——兔
将兔放进固 定架
内，灌胃者用左 手拇指和中指挤 压兔两颊，将下 颌挤开使兔被动 张口。
实验一实验动物的捉拿和给药方法
药学 基础兽医
医学 临床兽医
兽医药理学是一门实验性学科
以试验为基础，通过实验熟悉药物的作用、作用原理及应用。
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2
兽医药理学实验安排
授课老 师
郝海红
周别
6 7
实验内容
实验动物给药方法；常用药药制剂的调制 药物的配伍禁忌；药物的反射作用
程古月 8 9
水合氯醛的麻醉作用及氯丙嗪的麻醉增强作用 尼可刹米对呼吸的兴奋作用
兽医药理学实验
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1
兽医药理学的性质和任务：
兽医药理学运用生理学、生物化学、微生物学和免疫学等基础理论， 阐明药物的作用原理、主要适应症（indication）和禁忌症 (contraindication)，为临床合理用药提供理论基础。
药理学是一门桥梁学科
理论基础： 生理学 生物化学 病理学 微生物学 免疫学等
尾部有四条静脉很清楚， 用四号细针头，选出较粗静脉注入。
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15
兔子的捉拿及给药方法
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兔子的捉拿
捉拿：右手把两耳拿在手心，并抓住颈后部皮肤， 提起家兔，然后用左手托住臀部。
固定：手术时，可将家兔固定在兔实验台上，四肢固定， 门 齿用细绳栓住，固定在实验台的铁柱上。
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为防止药液进入血管，在注射药液之前，
应回抽针栓，如无回血，则可给药；
注射完毕后，用手轻轻按摩注射部位，帮
助扩散。
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20
实验动物处理
➢ 小鼠处死（防鼠患）：
一手按头，一手拉尾，咔嚓一声。
➢ 家兔处死： 空气针
试验后安排
➢ 班长安排人将动物尸体送兽医院焚烧池 ➢ 各小组清理自己的台面 ➢ 班长安排人打扫卫生
药理学实验指导
药理学实验指导（供自学助考班用）实验一药理学实验基础知识与常用动物捉拿、给药【目的】1、学习药理学实验基础知识；2、掌握药理学实验常用动物捉拿、给药方法。
【器材】1ml、5ml、20ml注射器，大、小鼠灌胃针头，4号、6号注射针头，250ml烧杯、鼠笼(或铁丝笼)，天平秤、砝码。
【药品】0.9%生理盐水。
【动物】小白鼠、大鼠、家兔。
【内容】一、实验动物的捉拿方法1、蛙和蟾蜍左手握持蛙或蟾蜍，食指和中指夹住左前肢，拇指压住右前肢；右手将双下肢拉直，左手无名指及小指将其压住而固定。
此法用于淋巴囊注射。
毁脑和毁脊髓则用左手食指和中指夹持蛙或蟾蜍的头部，拇指和无名指小指握持双下肢，右手持刺针进行操作。
2、小白鼠可采取双手法和单手法两种形式。
双手法：右手提起鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉，小白鼠则将前肢固定于粗糙面上。
此时迅速用左手拇指和食指捏住小白鼠颈背部皮肤，并以小指与手掌尺侧夹持其尾根部，固定于手中。
单手法：小白鼠置于笼盖上，先用左手食指与拇指抓住鼠尾，手掌尺侧及小指夹住尾根部，然后用左手拇指与食指捏住颈部皮肤。
3、大白鼠大白鼠容易激怒咬人，捉持时左手应戴防护手套或用厚布盖住大鼠，先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与手掌握住背部和腹部。
不要用力过大，切勿捏其颈部，以免窒息致死。
4、家兔用左手抓住颈背部皮肤(抓的面积越大，其吃重点越分散)。
将兔提起，以左手托住其臀部，使兔呈坐位。
二、实验动物的给药途径与方法1、小白鼠给药途径与方法灌胃(ig)：左手固定小鼠，右手持灌胃器，灌胃针头自口角进入口腔，紧贴上腭插入食道。
如遇阻力，将灌胃针头抽回重插，以防损伤。
常用灌胃量为0.1～0.2ml/10g。
皮下注射(ih)：可用腹部、背部、腹股沟的皮下，此处皮肤比较松弛，也可由助手协助。
注药量一般为0.1～0.2ml/10g。
肌肉注射(im)：一人抓住小鼠头部皮肤和尾巴，另一人持连4号针头的注射器，将针头刺入后腿外侧肌肉。
实验动物的捉拿和给药方法
实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。
【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起．置于鼠笼上面或其他粗糙面上，向后拉轻鼠尾，迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤，翻转鼠体，使腹部朝上，然后以无名指及小指压往鼠尾，使小鼠完全固定(实验图1)．实验图1 小白鼠的捉拿法2．给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后，使口部向上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻进入食管，如动物安静，呼吸元异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液(实验图2)．灌胃器0．1一O.25ml/10g。
实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后，右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。
针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏，注射量一般为0．1~O．2 ml/10g 。
(3)皮下注射捉鼠方法同前，右手持注射器，将计头刺人背部皮下注人药液。
注射量一般不超过0.25 ml/10g。
(4)肌内注射由两人合作，一人固定小白鼠后，另一入持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液，注射量为每腿不超过0.lml。
(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。
2．给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。
多采用腹囊给药。
由于蛙的皮肤弹性差，被针头刺破后，针眼不易闭合会便药波外溢，故注射针头必须通过一层隔膜，再进人皮下淋巴囊。
如腹囊绐药时，针头应自大腿上端刺人，经过大腿肌层入腹壁肌层．再浅出进人腹壁皮下入腹囊。
注射量每只可达0.25—1．Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1．捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。
2.给药方法(1)灌胃两人合作，由一人固定兔身，另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开，并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。
家兔基础实验操作及注意事项总结
基本技能操作经验总结（一）家兔的给药、基本手术及相关仪器的初步使用1.家兔的捉拿【实验方法】先轻轻打开笼门，勿使其受惊，随后手伸入笼内，从头前阻拦其跑动，一只手迅速抓住兔的颈背部的皮毛，慢慢提起家兔，然后用另一只手轻轻托住臀部，尽量使兔处在舒适、放松的状态。
【注意事项】避免抓住耳朵提拿家兔，这样不但会损伤家兔的耳朵，而且易引起家兔的紧张并激起挣扎和反抗。
抓取动物时手法不当，动作过激导致家兔惊吓，产生强烈挣扎而长时间处于激动状态，大脑皮层细胞兴奋阈值增加，肾上腺素的释放，大脑中枢电位频率增高，大脑皮层运动区过度兴奋，导致麻醉效果不佳。
2.家兔的称重与放置【实验方法】兔笼放置在电子秤上，去皮。
将兔子脖子卡住兔笼头端的凹槽，盖上兔笼盖，使兔子呈趴伏状，记录数据。
压住兔笼盖和后座，将兔笼转移到操作台准备实验。
【注意事项】兔笼重量提前去皮；尽量避免头尾不对应；时刻注意压住兔笼盖，避免转移途中兔子挣脱。
3.耳缘静脉麻醉【实验方法】穿刺前准备工作：穿刺前应拔除待穿刺血管部位的兔毛，轻柔或以手指轻弹待穿刺的血管使其充血扩张，或用酒精棉球涂擦待穿刺的血管使血管扩张。
穿刺手法：左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持头皮针尽量从静脉的远端刺入。
若回抽注射器有暗红色血液流出或注射时若无阻力、无隆起现象，说明针头在血管内。
移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液缓慢注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。
注：本实验所用麻醉药——乌拉坦用药剂量为1000 mg/Kg。
【注意事项】1. 进针部位宜选择在耳缘静脉远心端的血管段，若穿刺失败，可向近心端前移一段再进行穿刺；2.可利用酒精棉球擦拭使耳缘静脉血管扩张，便于操作；3.静脉注射必须缓慢（大概每分钟推送5ml ），同时观察家兔肌肉紧张、角膜反射和对皮肤夹捏的反应，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停止注射。
在注射麻醉药物时，可先用麻醉药物总量的三分之二，密切观察动物生命体征的变化，若已达到预计麻醉效果剩余药液可暂不注射，以避免麻醉过深抑制呼吸中枢导致动物死亡；4.实验动物的固定【实验方法】将动物麻醉后，仰卧位固定于手术台上，颈部伸直，口腔与气管成一直线，保持气管畅通。
实验1实验动物的捉持法和给药法
实验1 实验动物的捉持法和给药法一、常用实验动物的捉持法1．蛙和蟾蜍通常以左手握持，用食指和中指夹住左前肢，拇指压住右前肢，右手将下肢拉直，左手用无名指及小指夹住（图1）。
图1 蟾蜍捉持法2．小鼠（1）双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗糙面上。
迅速用左手拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持（图2）。
图2 小鼠双手捉持法（2）单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和拇指抓住鼠尾，后手掌尺侧和小指夹住鼠尾，然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤（图3）。
图3 小鼠单手捉持法3. 大鼠大鼠容易激怒咬人，捉持时应戴防护手套。
先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与掌部握住背部和腹部。
注意不要捏其颈部，以防用力过大、过久，窒息死亡。
4．家兔一只手抓住兔颈背部皮肤，将兔轻轻提起，另一只手托住臀部，使兔呈蹲坐姿势（图4）。
切不可用手握持双耳提起兔子。
图4 家兔捉持法5．豚鼠豚鼠性情温和，不咬人，用手轻轻握住身体即可抓起。
6. 猫应戴好防护手套。
轻声呼唤，慢慢将手伸入猫笼，轻抚猫头、颈和背部，一只手抓住颈背部皮肤，另一只手抓住腰背部。
性情凶暴的猫可用布袋或网套捉持，操作中应防其利爪和牙齿伤人。
7. 狗驯服的狗可戴上特制嘴套，用绳带固定于耳后颈部；凶暴的狗可用长柄捕狗夹钳住狗的颈部，然后套上嘴套。
狗嘴也可用绳带固定，操作时先将绳带绕过狗嘴的下颌打结，再绕到颈后部打结，以防绳带滑落。
狗麻醉后四肢固定于手术台上，取下嘴套或绳带，将一金属棒经两侧嘴角，穿过口腔压于舌上，再用绳带绕过金属棒绑缚狗嘴，并固定于手术台上。
应将狗舌拉出口腔，以防窒息。
二、常用实验动物给药法1. 经口给药法此法有口服与灌胃两种方法。
适用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔、犬等动物。
口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中令动物自由摄取。
若为保证剂量准确，可应用灌胃法。
实验动物的捉拿和给药方法
实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】结合实验内容逐步学会实验常用动物的捉拿和给药方法。
【内容】(一)小自鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法用右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起．置于鼠笼上面或其他粗糙面上，向后拉轻鼠尾，迅速用左手拇指和示指挥住其两耳及头部皮肤，翻转鼠体，使腹部朝上，然后以无名指及小指压往鼠尾，使小鼠完全固定(实验图1)．实验图1 小白鼠的捉拿法2．给药方法(1)灌胃将小白鼠固定后，使口部向上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻进入食管，如动物安静，呼吸元异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液(实验图2)．灌胃器0．1一O.25ml/10g。
实验图2 小白鼠灌胃器(左)和灌胃法(布)(2)腹腔注射将小白鼠固定后，右手持注射器自下膜一侧向头部方向以30~45度刺入腹腔(角度太小易刺入皮下)。
针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏，注射量一般为0．1~O．2 ml/10g 。
(3)皮下注射捉鼠方法同前，右手持注射器，将计头刺人背部皮下注人药液。
注射量一般不超过0.25 ml/10g。
(4)肌内注射由两人合作，一人固定小白鼠后，另一入持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液，注射量为每腿不超过0.lml。
(二)螗蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法通常用左手握蛙,食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。
2．给药方法(淋巴囊注射) 蛙皮下淋巴囊分布见实验图3。
多采用腹囊给药。
由于蛙的皮肤弹性差，被针头刺破后，针眼不易闭合会便药波外溢，故注射针头必须通过一层隔膜，再进人皮下淋巴囊。
如腹囊绐药时，针头应自大腿上端刺人，经过大腿肌层入腹壁肌层．再浅出进人腹壁皮下入腹囊。
注射量每只可达0.25—1．Oml.(三)家免的捉拿和给药方法1．捉拿祛用左手抓住颈背部皮肤将兔提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。
2.给药方法(1)灌胃两人合作，由一人固定兔身，另一人用兔开口器(实验图4)将兔口张开，并将兔舌压在开曰器下边横放于兔口中。
药理实验
实验一常用动物的捉拿与给药方法【实验目的】1、了解小鼠的饲养方法2、练习并掌握小鼠的捉拿与给药方法【实验材料】1、器材：鼠笼、饮水瓶、大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品：生理盐水、苦味酸溶液、75%酒精3、动物：小白鼠，20～30g【实验方法】1、捉拿与固定：用右手捉住鼠尾，将其提起置于鼠笼或者粗糙平面上，向后轻拉鼠尾，用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳及颈背部皮肤，将小鼠置于左手掌心，以小指夹住小鼠尾巴即可。
2、给药法⑴灌胃：将小鼠固定，口朝上，颈部拉直，右手持灌胃针，先从口角处插入口腔，再沿上颚轻轻插入食管。
一般给药剂量。
⑵腹腔注射：将小鼠固定，右手持注射器自下腹部一侧刺入皮下后，再刺入腹腔，缓慢注入药物。
一般给药剂量。
⑶皮下注射：两人合作，一人左手抓住小鼠头部，右手拉住小鼠尾巴固定小鼠，另外一人用左手提起皮肤，右手持注射器刺入皮下注入药物。
一般给药剂量为肌肉注射：最好两人合作，一人固定小鼠，另外一人将针头迅速垂直刺入后肢外侧肌肉，回抽无回血即可注入药物，一侧给药剂量为。
⑸静脉注射：一般采用尾静脉注射。
将小鼠固定，使尾巴露出来，在50℃热水中浸泡或者用75%酒精擦拭尾巴，使血管扩张，左手拉住鼠尾，右手持注射器，从鼠尾巴末梢开始进针，注入药液。
一般给药剂量为【心得体会】实验二不同给药途径对药物作用的影响【实验目的】观察不同给药途径对药物作用的影响【实验材料】4、器材：大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品：10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物：小鼠，18～22g【实验方法】1、取小鼠3只，称重编号，分别放入大烧杯中，观察小鼠的正常活动，记录半个小时内活动、呼吸、粪便情况。
2、给药：一号小鼠灌胃10%硫酸镁溶液10g二号小鼠肌肉注射10%硫酸镁溶液10g三号小鼠静脉注射10%硫酸镁溶液10g3、观察小鼠的反应及活动，记录半小时内小鼠活动、呼吸及粪便变化。
4、当第三只小鼠出现垂头，俯卧时，立即静脉缓慢注射5%氯化钙溶液，直至恢复站立。
常见实验动物的捉持和给药方法
常见实验动物的捉持和给药⽅法常见实验动物的捉持和给药⽅法⼀、⼩⽩⿏的捉持和给药⽅法1、捉持⽅法右⼿提起⿏尾，放在粗糙物（如⿏笼）上⾯，轻向后拉其尾；此时⼩⿏前肢抓住粗糙⾯不动；⽤左⼿拇指和⾷指捏住双⽿及头部⽪肤，⽆名指、⼩指和掌⼼夹其背部⽪肤及尾部，便可将⼩⿏完全固定。
腾出右⼿，可以给药。
此外，也可单⼿捉持，难度较⼤，但速度快。
先⽤拇指和⾷指抓住⼩⿏尾巴，⽤⼩指、⽆名指和⼿掌压住尾根部，再⽤腾出的拇指、⾷指及中指抓住⿏双⽿及头部⽪肤⽽固定。
2、给药⽅法ａ.灌胃法⼩⿏固定后，使腹部朝上，颈部拉直，右⼿⽤带灌胃针头的注射器吸取药液（或事先将药液吸好），将针头从⼝交插⼊⼝腔，再从⾆背进沿上腭进⼊⾷道。
若遇阻⼒，应退出后再插，切不可⽤⼒过猛，防⽌损伤或误⼊⽓管导致动物死亡。
灌胃量⼀般不超过0.25ml/10g。
ｂ.腹腔注射法抓⿏⽅法同上，右⼿持注射器（5～6号针头），从耻⾻联合上⼀侧向头端以30度⾓刺⼊腹腔（应避开膀胱）。
可先刺⼊⽪下2～3mm，再刺⼊腹腔，以防药液外漏。
针头刺⼊部位不宜太⾼太深，以免刺破内脏。
注射量⼀般为0.1～0.25ml/10g。
ｃ.⽪下注射法⼀般两⼈合作。
⼀⼈左⼿抓住⼩⿏头部⽪肤，右⼿拉住⿏尾；另⼀⼈左⼿提⾼背部⽪肤，右⼿持住注射器（针头号同上），将针头刺⼊提起的⽪下。
若⼀⼈操作，左⼿⼩指和⼿掌夹住⿏尾，拇指和⾷指提起背部⽪肤，右⼿持注射器给药。
⼀般⽤量为0.05～0.25ml/10g。
ｄ.肌⾁注射法两⼈合作时，⼀⼈抓⿏⽅法同上，另⼀⼈左⼿拉直⼀侧后肢，右⼿持注射器，注射部位多选后腿上部外侧（针头号同上）。
如⼀⼈操作，抓⿏⽅法类似腹腔注射，只是药液注射在肌⾁内。
每腿的注射量不宜超过0.1ml。
ｅ.尾静脉注射法将⼩⿏置于待置的固定筒内，使⿏尾外露，并⽤酒精或⼆甲苯棉球涂擦，或插⼊40℃～50℃温⽔中浸泡⽚刻，使尾部⾎管扩张。
左⼿拉尾，选择扩张最明显的⾎管；右⼿持注射器（4～5号针头），将针头刺⼊⾎管，缓慢给药。
11.常用实验动物的给药途径和方法
常用实验动物的给药途径和方法在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态的变化，常需将药物注入动物体内。
由于实验目的、动物种类、药物剂型不同，给药途径和方法也多种多样。
一经口给药法(一)灌胃法此法给药剂量准确，是借灌胃器将药物直接灌到动物胃内的一种常用给药方法。
1、白鼠灌胃法：抓起小鼠，以左手拇指、食指固定头部，小指、无名指和掌心夹注尾巴，使腹部朝上，颈部拉直，右手持灌胃器，将灌胃针从鼠的口角插入口腔，从舌背沿上腭插入食道。
灌胃量0.2～0.5ml/10g。
胃管可用适宜口径的硬质塑料管或磨去针头的8号注射针头弯成适当的弧度制成。
注意，操作时不要用力猛插，以免插破食道或误插入器官造成动物死亡。
2、白鼠灌胃法：左手戴上棉手套，用左手拇指和食指将大鼠头部固定，将大鼠灌胃器沿腭后壁慢慢插入食道。
灌胃针插入时应无阻力，如有阻力或动物挣扎则应退针或将针拔出，重新再插。
灌胃器由注射器和特殊的灌胃针构成。
灌胃量10～20ml/kg3 兔、犬等:灌胃一般要借助于开口器、灌胃管进行。
先将动物固定，再将开口器固定于上下门齿之间，然后将灌胃管(常用导尿管代替)从开口器的小孔插入动物口中，沿咽后壁而进入食道。
插入后应检查灌胃管是否确实插入食道。
可将灌胃管外开口放入盛水的烧杯中，若无气泡产生，表明灌胃管被正确插入胃中，未误入气管。
此时将注射器与灌胃管相连，注入药液。
4、猪的胃内灌注法：给猪下鼻饲管较困难，因猪的鼻翼与上唇联合形成吻突，鼻腔内上下鼻夹与鼻中隔通道极窄，只能通过F10－12号的导尿管，F14号以上的导尿管不能插入，故一般均给猪采用经口入胃的灌胃方法。
具体方法是，预先做好一矩形小木块，中间有一洞，让小猪咬住，将其固定，然后再由此洞下胃管。
此种操作较为简便。
5、鸟类：包括鸽、鸡等，经口灌胃给药，可由助手将其身体用毛巾裹住固定好。
实验者用左手将动物向后拉，使其颈部倾斜，用左拇指和食指将动物嘴撬开，其他三只手指固定好动物头部，右手取带有灌胃针头的注射器，将灌胃针头由动物舌后插入食管。
药理实验
实验一常用动物的捉拿与给药方法【实验目的】1、了解小鼠的饲养方法2、练习并掌握小鼠的捉拿与给药方法【实验材料】1、器材：鼠笼、饮水瓶、大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签2、药品：生理盐水、苦味酸溶液、75%酒精3、动物：小白鼠，20～30g【实验方法】1、捉拿与固定：用右手捉住鼠尾，将其提起置于鼠笼或者粗糙平面上，向后轻拉鼠尾，用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳及颈背部皮肤，将小鼠置于左手掌心，以小指夹住小鼠尾巴即可。
2、给药法⑴灌胃：将小鼠固定，口朝上，颈部拉直，右手持灌胃针，先从口角处插入口腔，再沿上颚轻轻插入食管。
一般给药剂量0.1-0.3ml/10g。
⑵腹腔注射：将小鼠固定，右手持注射器自下腹部一侧刺入皮下后，再刺入腹腔，缓慢注入药物。
一般给药剂量0.1-0.3ml/10g。
⑶皮下注射：两人合作，一人左手抓住小鼠头部，右手拉住小鼠尾巴固定小鼠，另外一人用左手提起皮肤，右手持注射器刺入皮下注入药物。
一般给药剂量为0.1-0.2ml/10g⑷肌肉注射：最好两人合作，一人固定小鼠，另外一人将针头迅速垂直刺入后肢外侧肌肉，回抽无回血即可注入药物，一侧给药剂量为0.02-0.05ml/10g。
⑸静脉注射：一般采用尾静脉注射。
将小鼠固定，使尾巴露出来，在50℃热水中浸泡或者用75%酒精擦拭尾巴，使血管扩张，左手拉住鼠尾，右手持注射器，从鼠尾巴末梢开始进针，注入药液。
一般给药剂量为0.1-0.2ml/10g【心得体会】实验二不同给药途径对药物作用的影响【实验目的】观察不同给药途径对药物作用的影响【实验材料】4、器材：大烧杯、托盘天平、灌胃器、注射器、棉签少许5、药品：10%硫酸镁溶液、5%氯化钙溶液、苦味酸溶液6、动物：小鼠，18～22g【实验方法】1、取小鼠3只，称重编号，分别放入大烧杯中，观察小鼠的正常活动，记录半个小时内活动、呼吸、粪便情况。
2、给药：一号小鼠灌胃10%硫酸镁溶液0.2ml/10g二号小鼠肌肉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g三号小鼠静脉注射10%硫酸镁溶液0.2ml/10g3、观察小鼠的反应及活动，记录半小时内小鼠活动、呼吸及粪便变化。
药理学实验
实验一实验动物的捉拿和给药方法【目的】逐步学会常用实验动物的捉拿和给药方法【内容】（一）小白鼠的捉拿和给药方法1．捉拿法以右手捉住小白鼠的尾巴将鼠提起，放置于鼠笼边缘或其他易攀抓处，轻轻向后拉鼠尾，用左手拇指和食指捏住其两耳及头部皮肤，使其腹部朝上，屈曲左手中指使鼠背靠在上面，然后以无名指及小指压住鼠尾，使小鼠完全固定（见实验图-1）。
2．给药方法⑴灌胃：小白鼠固定后，使其口部朝上，将颈部拉直，右手持灌胃器自口角插入口腔，沿上颚轻轻地进入食管，如动物安静、呼吸无异常、口唇无紫绀现象，即可注入药液（见实验图-2）。
灌胃量为0.1～0.25ml∕10g。
⑵腹腔注射：小白鼠固定后，右手持注射器自下腹一侧向头部方向以45°刺入腹腔（角度太小易刺入皮下）。
针头刺入不宜太深或太近上腹部，以免刺伤内脏。
注射量一般为0.1～0.2ml∕10g。
⑶皮下注射：固定小鼠后，右手持注射器，将针头刺入其背部皮下注入药液。
注射量一般不超过0.25ml。
⑷肌内注射：由两人合作，一人固定小白鼠后，另一人持注射器，将针头刺入后肢外侧肌肉内注入药液。
注射量一般每腿不超过0.1ml。
（二）蟾蜍或蛙的捉拿和给药方法1．捉拿法一般由左手握蛙，用食指和中指夹住蛙的两上肢，无名指和小指夹住蛙的两下肢，将蛙固定于手中。
2．给药方法多采用淋巴囊注射。
蛙的皮下有许多淋巴囊（见实验图-3），注入药液易吸收。
一般采用腹囊给药。
注射量每只可达0.25～1.0ml。
（三）家兔的捉拿和给药方法⒈捉拿法用左手抓住兔的颈背部皮肤将其提起，以右手托住其臀部，使兔呈坐位姿势。
⒉给药方法⑴灌胃：由两人合作，一人固定兔身（或用固定器将兔固定），另一人用开口器（见实验图-4）将兔口撑开，并将兔舌压在开口器下面横放于兔口中。
取适当的橡胶管涂以液体石蜡，从开口器的中央孔插入，沿上颚实验图-3 蟾蜍的给药部位实验图-4 家兔的灌胃法实验图-5 家兔的耳缘静脉注射后壁缓缓送入食管约15cm左右，即可进入胃内。
实验一 小白鼠和家兔的捉持与给药方法(doc)
实验一小白鼠和家兔的捉持与给药方法(doc)实验动物的捕持和给药是实验操作中非常关键的步骤。
本文主要介绍小白鼠和家兔的捉持和给药方法。
1. 捕持方法小白鼠较为敏感，需要小心捉持。
可以采用直接手抓或使用器械相结合的方法。
① 直接手抓：用左手握住小白鼠的尾巴，将其抬离地面，右手用力抓住身体。
捉持的位置应该落在肩胛骨的后面。
捉持后，将小白鼠稳定住，不要摇晃。
② 使用器械：可以使用长柄刷子、网兜、特殊夹具等工具将小白鼠从底部壁上向上推，然后在手掌捉持。
2. 给药方法对于小鼠的给药方法，有多种选择。
下面分别介绍常见的口服给药和腹腔注射。
① 口服给药：使用灌胃针或切口方法。
前者通常用于液体或悬浮物，后者通常用于固体或片剂。
灌胃针方法：将灌胃针插入小鼠口中，直到其到达胃部。
然后缓慢注入待给药物。
给药完毕后，针头要缓慢拔出。
切口方法：用手或器械拓宽小鼠口腔，将给药物放在其舌根处。
然后轻轻地按住小鼠的颈部，使其吞咽。
② 腹腔注射：使用注射器在小鼠腹部注射待给药物。
首先选择注射部位，一般建议在小鼠的下腹部。
然后用适量的酒精消毒注射部位。
将注射器插入腹部，确保局麻针穿过腹膜。
缓慢注射待给药物后，注射针要慢慢拔出。
二、家兔的捕持和给药方法① 直接手抓：用两只手同时抓住家兔颈部和臀部。
抓住后，将家兔稳定住，不要晃动。
② 使用器械：可以使用外科手套或草绳将家兔绑定在固定位置上。
需要特别注意的是，草绳不要绑定得太紧，以免影响家兔的呼吸。
总的来说，实验动物的捉持和给药方法需要谨慎操作，以保证实验的成功和动物的健康。
在进行操作前，需要进行必要的训练，熟悉其生理特征，了解其习性，确保操作更加顺利。
同时，在实验过程中，也要注意动物的福利和健康，确保其得到最好的关怀和保障。
实验一 实验动物给药途径和方法.
实验一实验动物给药途径和方法一、动物的编号、捉拿和固定。
1、动物的编号犬、兔等动物可用特制的号码牌固定于耳。
白色家兔和小动物可用3-5%的黄色苦味酸溶液涂于毛上标号。
如编号1-10号时，将小白鼠背部分前肢、腰部、后肢的左、中、右部共九个区域，从右到左1-9号，第10号不涂黄色(图1-1)如加上其它颜色的染料还可进行1-100号和1-1000号等更多编号。
图1-1 小白鼠背部编号图1-2 小白鼠双手捉持法（引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）（引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）2、动物的捉拿和固定①小鼠：右手抓住其尾，放在实验台上或鼠笼铁纱网上，在其向前爬时，左手拇指及食指沿其背抓住两耳及头颈部皮肤，并以左手的小指和掌部夹住鼠尾固定。
另一抓法是只用手，用食指和拇指抓住鼠尾后再用小指和掌部夹住鼠尾，以拇指及食指捏住其颈部皮肤。
前一种方法易学，后一种方法便于快速捉拿。
（见图1-2，1-3）图1-3 小白鼠双手捉持法（引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）②大鼠：以右手或持夹子夹住尾巴，左手戴上防护手套固定头部防止被咬，应避免用力过大造成大鼠窒息死亡。
根据实验需要麻醉或固定大鼠于鼠笼内或用绳绑其四肢固定于大鼠手术板上。
③豚鼠：以右手抓住豚鼠头颈部，将其两前肢在豚鼠头与右手拇指与食指之间，轻轻扣住颈胸部，右手抓住两后肢(对体重较大的豚鼠则可托起其臀部)，使腹部向上。
④兔：用手抓起兔脊背近后颈部皮肤，手抓面积应尽量大些。
以另一手托起兔的臀部。
将兔仰卧固定时，一手抓住颈部皮肤，另一只手顺着腹部抚摸至膝关节处压住关节。
另一人将绳子用活结捆绑兔的四肢，使兔腹部向上固定在兔手术台上。
头部则用兔头固定夹固定，也可用棉线将兔的门牙固定于兔手术台上的柱子上，后者更常用(图1-4)。
图1-4 家兔捉持法（引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）二、实验动物的去毛动物去毛是手术野的皮肤准备之一。
实验动物的捉拿和给药方法结果分析
实验动物的捉拿和给药方法结果分析
在进行实验动物的捉拿和给药时，需要遵循科学道德和动物福利的原则。
具体的方法和结果分析将根据具体实验的目的和设计而有所不同。
以下是一般性的回答：
实验动物的捉拿可以采用种种不同的方法，比如使用适当大小的笼子进行引导捕捉，或者使用特定的设备和工具进行捉拿。
在进行捉拿过程中，需要注意动物的安全和福利，避免对动物造成不必要的伤害或痛苦。
给药方法可以根据实验的需要和动物的特点进行选择，常见的包括口服给药、注射给药、皮下给药、静脉给药等。
给药剂量和频次应根据实验的目的、动物的体重、种类以及对实验结果的影响因素进行合理的设定。
结果分析需要根据实验的具体设计和目的进行，可以使用统计学方法对数据进行处理和分析。
常见的分析方法包括描述统计，如平均值和标准差的计算，以及实验组间的比较，如t检验、方差分析等。
分析结果应结合相关背景知识和先前研究成果进行解释和讨论，以得出科学可靠的结论。
需要注意的是，实验动物的使用需遵守相关法律法规和伦理规范，确保动物的福利和利益。
同时，实验过程中应注意实验手段的科学性、合理性和准确性，以及数据的真实性和可靠性。
实验1 实验动物的捉持法和给药法
实验1 实验动物的捉持法和给药法一、常用实验动物的捉持法1．蛙和蟾蜍通常以左手握持，用食指和中指夹住左前肢，拇指压住右前肢，右手将下肢拉直，左手用无名指及小指夹住（图1）。
图1 蟾蜍捉持法2．小鼠（1）双手法：右手提鼠尾，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，向后方轻拉鼠尾，使小鼠前肢固定在粗糙面上。
迅速用左手拇指和食指捏其双耳间颈背部皮肤，无名指、小指和掌心夹其背部皮肤和尾部，便可将小鼠牢固捉持（图2）。
图2 小鼠双手捉持法（2）单手法：小鼠置于笼盖上，先用左手食指和拇指抓住鼠尾，后手掌尺侧和小指夹住鼠尾，然后左手拇指与食指捏住颈部皮肤（图3）。
图3 小鼠单手捉持法3. 大鼠大鼠容易激怒咬人，捉持时应戴防护手套。
先用右手抓住鼠尾，再用左手拇指和食指握住头部，其余手指与掌部握住背部和腹部。
注意不要捏其颈部，以防用力过大、过久，窒息死亡。
4．家兔一只手抓住兔颈背部皮肤，将兔轻轻提起，另一只手托住臀部，使兔呈蹲坐姿势（图4）。
切不可用手握持双耳提起兔子。
图4 家兔捉持法5．豚鼠豚鼠性情温和，不咬人，用手轻轻握住身体即可抓起。
6. 猫应戴好防护手套。
轻声呼唤，慢慢将手伸入猫笼，轻抚猫头、颈和背部，一只手抓住颈背部皮肤，另一只手抓住腰背部。
性情凶暴的猫可用布袋或网套捉持，操作中应防其利爪和牙齿伤人。
7. 狗驯服的狗可戴上特制嘴套，用绳带固定于耳后颈部；凶暴的狗可用长柄捕狗夹钳住狗的颈部，然后套上嘴套。
狗嘴也可用绳带固定，操作时先将绳带绕过狗嘴的下颌打结，再绕到颈后部打结，以防绳带滑落。
狗麻醉后四肢固定于手术台上，取下嘴套或绳带，将一金属棒经两侧嘴角，穿过口腔压于舌上，再用绳带绕过金属棒绑缚狗嘴，并固定于手术台上。
应将狗舌拉出口腔，以防窒息。
二、常用实验动物给药法1. 经口给药法此法有口服与灌胃两种方法。
适用于小鼠、大鼠、豚鼠、兔、犬等动物。
口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中令动物自由摄取。
若为保证剂量准确，可应用灌胃法。
实验一小白鼠和家兔的捉持与给药方法
实验一小白鼠和家兔的捉持与给药方法1、小白鼠和家兔的捉持与给药方法[目的]学习小白鼠的捉持和各种给药法。
[材料]小白鼠3-4只鼠笼天平注射器灌胃针头生理盐水小鼠尾静脉注射用固定筒[方法]1.1、捉持法以右手提鼠尾，将小鼠放于粗糙面上，将鼠尾轻轻向后拉，以左手的拇指及其食指捏双耳及头部皮肤，无名指、小指及掌心夹其背部皮肤及其尾部，便可将小鼠固定。
1.2、灌胃左手持小鼠，使腹部朝上，颈部拉直，右手拿灌胃器子口交插入口腔，从舌面紧沿上颚进入食道。
若遇阻力，应退出后再插。
1.3、皮下注射一人抓小白鼠头部皮肤，右手拉鼠尾，另一人左手捏背部皮肤，右手持注射器刺入背部皮肤。
1.4、腹腔注射左手抓小白鼠，右手持注射器。
取30º将针头从下腹部刺入腹腔。
1.5、尾静脉注射将小白鼠置于固定筒内或倒置的大漏斗下，使鼠尾露出在外。
用酒精棉球擦鼠尾，使血管扩张。
左手拉住尾尖，选一条扩张最明显的尾静脉将针头刺入血管，推药。
若有阻力，且局部变白，则需从新刺入血管。
2、家兔的捉持与给药方法[目的]学习家兔的捉持和各种给药法。
[材料]家兔1-2只兔开口器注射器导尿管生理盐水磅秤兔固定箱[方法]1.1、捉持法一手抓家兔颈背部皮肤，将兔提起。
另一手托起臀部，使兔成坐位姿势。
1.2灌胃需由两人合作进行。
一人取坐位，用两腿夹持兔身，左手握家兔双耳，右手抓住两前肢。
另一人将木制开口器横插家兔口内，压住舌头，并固定之。
取8号导尿管从开口器中小口插入食道。
插管时易误入气管。
区别之法主要在于谨慎观察插管后动物的反应。
插入器官是可引起剧烈挣扎和呼吸困难。
也可将导尿管的外段进入水中，如有气泡吹出，表示插在气管内，此时应该把管重插。
于判明导尿管确实插在食道内以后，取注射器接在导尿管上，将药液推入。
再推注少量空气，是导尿管中不致有药液残留，慢慢抽出导尿管，取出开口器。
家兔灌胃给药时的药液量一般为5~20ml\kg.试以生理盐水进行练习。
1.3皮下、肌内及腹腔注射给药方法基本上同小白鼠，为针头可稍大（选用6号或7号针头），给药量可稍多（皮下与肌内0.5~1.0ml\kg，腹腔1.0~5.0ml\kg）1.4静脉注射将家兔置固定箱内，把去耳壳外缘的毛，选择一条比较明显的耳缘静脉，用酒精棉球涂擦皮肤，使血管显露。
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• 组间对照：阴性对照，阳性对照，同因素不同水平对照； • 自身前后对照
• 重复原则(Repeat)
• 实验动物的选择
• 小白鼠、大白鼠：大量动物的实验，药理毒理学常用动物。 • 豚鼠： 对组胺敏感---抗过敏药、平喘药和抗组胺药的实验； 离体心脏、心房、肠管实验；对结核敏感---抗结核病药实验。 • 家兔： 家兔体温变化敏感---体温实验、热原检查； 脑电生理作用;药物对小肠的作用。 • 狗： 狗是记录血压、呼吸最常用的大动物；胃瘘、肠瘘；慢性毒 性实验
捉住小白鼠的尾巴提起、转几圈，放在鼠笼盖铁纱网上，轻 轻向后拉鼠尾，然后用左手的拇指与食指沿其背部向前抓 住其颈部皮肤,使腹部朝上，左手的无名指及小指压住鼠尾， 使小白鼠完全固定。
小白鼠的给药方法
灌胃给药 ig 腹腔注射 ip 皮下注射 ih 肌内注射 im 尾静脉注射 iv
灌胃法
实验一、 实验动物的捉拿和给药方法
目的和要求 练习对实验动物给药方法的常规操作，为药理及毒理 实验打下基础。
材料 注射器：不同型号和规格的选择；针头向上 灌胃针：2支/组 手套：10只/组 方法 小白鼠的捉拿及给药方法 兔子的捉拿及给药方法
小白鼠的捉拿及给药方法
小白鼠的捉拿
表面消毒药
75%为体积/体积比
C1V1= C2V2 95%乙醇 ：70ml 蒸馏水：25ml
95%*70=70%*95
实验二、常用药物制剂的配制
5%（g/ml）碘酊的配制
表面消毒药 5%为质量/体积比
碘片 碘化钾 蒸馏水 95%乙醇加至
5.0g （ 5%(g/ml) ） 2.0g （ 2%(g/ml) ） 20mL 100mL
理论基础： 生理学 生物化学 病理学 微生物学 免疫学等
药学 基础兽医
医学 临床兽医
兽医药理学是一门实验性学科
以试验为基础，通过实验熟悉药物的作用、作用原理及应用。
兽医药理学实验安排
授课老 师
郝海红
周别
6 7
实验内容
实验动物给药方法；常用药药制剂的调制 药物的配伍禁忌；药物的反射作用
程古月 8 9
制法: 取100mL量杯1个,先碘化钾,加水溶解； 后加碘片和乙醇, 搅拌溶解； 最后乙醇定容.
实验前：温故知新 实验准备：提前去兽医院领取实验动物。 实验时：科学、严谨、认真。 避免无端浪费。 注意安全操作：防火、电、中毒、感染及咬伤事故。 污物放入污物桶内集中处理；
• 实验设计基本原则（3R）
• 随机原则(Random)
• 每一实验对象都有同等的机会抽到实验组或对照组中。
助扩散。
实验动物处理
小鼠处死（防鼠患）：
一手按头，一手拉尾，咔嚓一声。
家兔处死： 空气针
试验后安排
班长安排人将动物尸体送兽医院焚烧池 各小组清理自己的台面 班长安排人打扫卫生
讨论（作业）
实验动物的捉拿和给药方法 操作过程中的注意事项。
实验二、常用药物制剂的配制
75%乙醇溶液的配制
固定→口部朝上，颈部宜 拉直，但不宜过紧，以免 窒息。
右手持连有胃管的注射器， 小心自口角插入口腔内， 将灌胃管自舌背面沿上颚 轻轻进入食道。
腹腔注射法
部位： 左或右侧下腹部 方法： 将针头刺入皮下，沿皮下向前推进3～5mm,
然后使针头与皮肤呈45°角方向穿入腹腔。 针尖进入腹腔有抵抗消失感,此时可轻推药物。
尾部有四条静脉很清楚， 用四号细针头，选出较粗静脉注入。
兔子的捉拿及给药方法
兔子的捉拿
捉拿：右手把两耳拿在手心，并抓住颈后部皮肤， 提起家兔，然后用左手托住臀部。
固定：手术时，可将家兔固定在兔实验台上，四肢固定， 门 齿用细绳栓住，固定在实验台的铁柱上。
兔子的给药方法
耳缘静脉注射 iv 腹腔注射 ip 皮下注射 ih 肌内注射 im
水合氯醛的麻醉作用及氯丙嗪的麻醉增强作用 尼可刹米对呼吸的兴奋作用
局麻药的表面麻醉作用观察 新斯的明及阿托品对唾液分泌及活体肠管的作用
陈品 10 11
药物作用与溶解度的关系；给药途径对药物作用影响 解热镇痛药对发热家兔体温的影响
谢书宇 12 13
利尿药对家兔的利尿作用观察 盐类泻药的泻下机理分析
兽医药理学实验规则
×
肌内注射法 部位：小鼠臀部外侧肌肉。
皮下注射法 部位：背部皮下 方法：轻轻拉起背部皮肤,将注射针头刺入皮下,
稍稍摆动针头,若容易摆动则表明针尖的位置确定在皮下, 拔针时,轻捏针刺部位片刻,以防药液逸出。
尾静脉注射法
部位：尾静脉注射， 方法：将小白鼠装入固定桶内或反转烧杯内，使其尾巴露出。
兔静脉注射
部位：耳缘静脉。 方法：酒精棉球涂擦耳缘静脉部皮肤，
左手食指放在耳下将兔耳垫起， 并以拇指压耳缘部分， 右手持带有针头的注射器， 尽量从血管远端刺入血管， 注射时针头先刺入皮下， 沿皮下向前推进少许，然后刺入血管。 针头刺入血管后再少向前推进, 轻轻推动针栓，若无阻力即可注药。 注射完毕后,用棉球压住针眼,拔去针头。
兽医药理学实验
任课老师： 陈品老师 彭大鹏老师 郝海红老师 程古月老师
兽医药理学的性质和任务：
兽医药理学运用生理学、生物化学、微生物学和免疫学等基础理论， 阐明药物的作用原理、主要适应症（indication）和禁忌症 (contraindication)，为临床合理用药提供理论基础。
药理学是一门桥梁学科
兔皮下注射法
部位：背部皮肤、腹内侧皮肤 方法：用左手拇指及中指将家兔的背部皮肤，
并用食指按压皱褶的一端，使成三角体， 增大皮下空隙，
以右手持注射器，自皱褶下刺入， 松开皱褶将药液注入。
兔肌内注射法
部位：两侧臀肌大腿处 方法：右手持注射器，使注射器与肌肉成60°角
再刺入肌肉中； 为防止药液进入血管，在注射药液之前， 应回抽针栓，如无回血，则可给药； 注射完毕后，用手轻轻按摩注射部位，帮