蛋白质实验方法
测定蛋白质的方法
测定蛋白质的方法
首先，最常用的测定蛋白质的方法之一是比色法。
比色法是利
用蛋白质与某些化学试剂发生反应产生颜色，然后利用光度计测定
颜色的深浅来确定蛋白质的含量。
常用的比色试剂有布拉德福试剂、洛维试剂等。
比色法简便、快速，对于大批量样品的测定非常适用。
其次，还有一种常用的测定蛋白质的方法是生物素标记法。
生
物素标记法是利用生物素和抗生物素结合的特异性来测定蛋白质的
含量。
这种方法对于特定蛋白质的测定非常准确，且对样品的处理
要求较高，适用于小样本的测定。
另外，还有一种常用的测定蛋白质的方法是免疫沉淀法。
免疫
沉淀法是利用抗体与特定蛋白质结合形成免疫复合物，然后通过沉
淀的方式将蛋白质分离出来，最后利用比色法或质谱法等手段来测
定蛋白质的含量。
这种方法对于特定蛋白质的测定非常准确，但操
作复杂，需要专业的实验条件和设备。
总的来说，测定蛋白质的方法有很多种，每种方法都有其适用
的场合和特点。
在实际应用中，可以根据需要选择合适的方法来进
行蛋白质的测定工作。
希望本文介绍的几种方法能够对大家有所帮助。
蛋白质检测方法
蛋白质检测方法蛋白质是生物体中具有重要功能的组成部分，它们在维持生命活动中发挥着重要作用。
为了更好地理解蛋白质在体内发挥的作用，以及蛋白质表达水平是否异常，需要对蛋白质进行检测。
蛋白质检测方法包括实验室色谱法和生物信息学技术，在实验室和临床应用方面都十分重要。
1、实验室色谱法：它是组分构成的分析方法，主要用于鉴定蛋白质的物质结构、表观性质等。
它的一般步骤是先通过离心分离把蛋白质分离出来，然后做出蛋白质组成的色谱相图，从而对蛋白质的组成成分进行分析，最后做出报告。
2、生物信息学技术：这是一种聚焦于信息的技术，主要用于确定蛋白质基因组学表达水平及其异常情况。
它的常用方法有定量PCR、芯片技术和蛋白质组学技术等。
由于生物信息技术具有较高的精密度，可以非常精确地衡量蛋白质表达水平，所以在实验室和临床应用中有着广泛的应用前景。
蛋白质检测在生物学、医学领域具有重要的意义，为实验室和临床的研究和应用提供了重要的参考依据和信息支持，是获取体内蛋白质在病理过程中的活性、结构及其功能的重要手段。
目前，实验室色谱法和生物信息学技术已经成为蛋白质分析中不可缺少的技术手段，它们在实验室研究、临床检测、药物研发和药物副作用的检测等方面都发挥着重要的作用。
实验室色谱法需要专业的技术人员来完成相关操作，生物信息学技术则需要对KPCR等实验手段有一定的了解和技术。
因此，为了高效地完成蛋白质检测，除了了解蛋白质检测的方法外，还需要正确使用和熟悉使用实验室色谱法和生物信息学技术，以及掌握相关的实验技术。
蛋白质检测有其重要意义，它可以帮助我们更好地理解蛋白质在体内发挥的作用，更好地发现蛋白质异常，以及有效地应用蛋白质检测方法，进行高效的研究和应用工作。
若要进一步深入研究蛋白质检测技术，还需要不断改进实验设备、加强对技术的掌握，以及提升实验室的实验标准，以不断完善实验室色谱法和生物信息学技术，并使其发挥最大的作用。
只有不断提高自身的科研能力，才能使蛋白质检测技术更上一层楼，为生物学、医学等研究与应用提供更有价值的支撑。
蛋白质的性质实验报告
蛋白质的性质实验报告引言：蛋白质是生命体内的基本组成部分之一，也是生物体内起重要功能的分子。
为了深入了解蛋白质的性质，本次实验旨在通过多种实验方法和技术，研究蛋白质的结构、溶解性、酶解性、电泳性质以及光学性质等方面，揭示蛋白质的特点和变化规律。
实验一：溶解性实验材料与方法：1. 采用鸡蛋白、牛乳蛋白和豆腐蛋白作为实验物质。
2. 将这几种物质分别加入不同的试管中，加入相同体积的蒸馏水，并在水浴中加热搅拌。
3. 每隔10秒观察一次试管内物质的溶解情况，记录时间。
结果与分析：经过实验发现，鸡蛋白和牛乳蛋白在加热搅拌过程中逐渐溶解，反应速度较快；而豆腐蛋白则需要更长时间才能完全溶解。
这是因为不同蛋白质具有不同的溶解性，与其分子结构的差异密切相关。
鸡蛋白和牛乳蛋白中的水解蛋白在热力作用下发生构象变化，使其更易溶于水。
而豆腐蛋白含有较多的结合蛋白，抗热性较强，所以需要更长时间才能溶解。
实验二：酶解性实验材料与方法：1. 采用胰蛋白酶作为酶解物质。
2. 将鸡蛋白、牛乳蛋白和豆腐蛋白分别加入试管中。
3. 随后加入胰蛋白酶，保持适宜的温度和酸碱度。
4. 观察酶解反应的进行并记录时间。
结果与分析：通过酶解实验显示，胰蛋白酶能高效地将鸡蛋白、牛乳蛋白和豆腐蛋白分解为较小的片段。
这说明蛋白质在酶解的作用下能够发生化学反应，由长链结构转变为短链或小分子物质。
这也印证了蛋白质的特性之一——可变性。
所以，蛋白质的特性和功能不仅受其自身分子结构的影响，还受到外界环境和酶的影响。
实验三：电泳性质实验材料与方法：1. 先将鸡蛋白、牛乳蛋白和豆腐蛋白分别加入几个小孔的凝胶上。
2. 运用直流电电源进行电泳实验。
3. 观察凝胶上蛋白质的迁移情况，并记录时间。
结果与分析：通过电泳实验发现，不同蛋白质在电场的作用下迁移的速度不同。
豆腐蛋白迁移速度较快，鸡蛋白次之，牛乳蛋白最慢。
这是因为电泳性质与蛋白质的分子量和电荷有关。
在电场中，带正电荷的蛋白质离子会向负极迁移，而带负电荷的蛋白质离子则向阳极迁移。
测定蛋白质常用方法
测定蛋白质常用方法印迹法是一种常见的定性分析方法，主要是通过利用电致沉淀效应，将蛋白质物质在电场中集中，形成一个凝胶层，以提取出蛋白质。
在实验中，先制备一个有活性、有保留度和有稳定性的蛋白质样品，然后将其放入体外，在受到电场作用下，蛋白质物质会被电致沉淀，形成一个凝胶层，从而获得蛋白质。
该方法的特点是准确度高，样品消耗量少，可以高效地完成蛋白质的测定，但对于那些含有非蛋白质物质的样品，其测定效果不理想。
（二）酶探针法酶探针法是一种定性分析，利用一种特殊酶和一种特殊探针，运用其特异性以及特殊的结构，来测定蛋白质的特殊部位。
实验中，首先选择一种酶，如DNase I、DNase II、RNase A，然后将其与相应的探针（如荧光标记的核酸或多肽）相结合，这样结合的物质会与蛋白质产生特异性的结合作用，从而可以测定蛋白质的特定位点。
优点是准确度高，可以测定蛋白质的特定位点，但由于其方法复杂，在一定程度上增加了实验技术难度。
二、定量分析（一）荧光法荧光法是一种常用的定量分析方法，主要利用某种荧光探针和荧光激发光，以及荧光探针的特异性与蛋白质的特异性，激发一定的荧光，从而测定蛋白质的含量。
实验过程中，首先将荧光探针结合到蛋白质上，然后把探针/蛋白质混合物放入荧光仪中，将一定强度的荧光激发光照射到探针/蛋白质混合物上，从而发生特定的荧光反应，通过记录荧光发射强度，就可以测定蛋白质的含量。
优点是准确度较高，可以在不同范围内快速地进行测定，而且样品消耗量少，但该方法的应用范围较窄，只能用于测定那些可以与荧光探针发生特异性结合的蛋白质。
（二）比色法比色法是一种定量分析方法，它利用蛋白质与一定比例的钠稀释液发生相互作用，产生稳定的色谱，从而测定蛋白质的含量。
实验过程中，先将蛋白质样品与钠稀释液做混合，然后在420nm的色谱仪上测定色谱，测定出其颜色深浅，然后利用已知的标准曲线，计算出蛋白质的含量。
比色法的优点是灵敏度高，可以在较低消耗的样品情况下完成蛋白质的测定，而且在实验中只需要使用普通的外设，操作简便，但是存在一定的滞后度，不能测定出瞬时变化的蛋白质含量。
蛋白质的鉴定实验报告
蛋白质的鉴定实验报告蛋白质的鉴定实验报告引言：蛋白质是生命体中最基本的组成部分之一，它们在细胞内发挥着重要的功能，如催化反应、传递信号和提供结构支持。
因此，准确鉴定蛋白质的结构和特性对于深入了解生物学过程至关重要。
本实验旨在通过一系列鉴定方法，对蛋白质进行全面的分析和鉴定。
实验方法：1. 蛋白质提取：选取适当的样本，如动物组织或细胞培养物，使用细胞裂解缓冲液破坏细胞膜，并离心收集上清液中的蛋白质。
2. SDS-PAGE电泳：将提取的蛋白质样品与SDS-PAGE样品缓冲液混合，经过电泳分离，根据蛋白质分子量的不同，在凝胶上形成不同的带状图案。
3. Coomassie蓝染色：将电泳分离后的凝胶用Coomassie蓝染色液浸泡，蛋白质与染色剂结合形成蓝色带状条带，可通过比较不同样品之间的带状图案来分析蛋白质的含量和纯度。
4. Western blotting：将电泳分离后的蛋白质转移到聚丙烯酰胺膜上，用特异性抗体与目标蛋白质结合，再用酶标记的二抗进行检测，通过观察膜上的信号来确定目标蛋白质的存在与否。
5. 质谱分析：将蛋白质样品经过酶解或化学修饰后，使用质谱仪测定其质量和序列信息，通过与数据库中的蛋白质序列比对，确定蛋白质的身份和结构。
实验结果与讨论：通过SDS-PAGE电泳分离，我们观察到样品A和样品B在凝胶上形成了不同的带状图案，表明它们的蛋白质组成存在差异。
进一步的Coomassie蓝染色结果显示，样品A的带状条带较为清晰且明亮，而样品B的带状条带较为模糊，暗示样品A的蛋白质含量和纯度较高。
为了进一步确认样品A中的特定蛋白质，我们进行了Western blotting实验。
结果显示，在样品A中存在一个特定的蛋白质，其分子量约为50 kDa。
这一结果与我们的预期相符，进一步验证了我们的实验方法的准确性和可靠性。
为了进一步了解样品A中特定蛋白质的结构和序列信息，我们进行了质谱分析。
通过与数据库中的蛋白质序列比对，我们确定了该蛋白质的身份为一种酶类蛋白。
常用的蛋白质纯化方法和原理
常用的蛋白质纯化方法和原理蛋白质的纯化是生物化学研究中非常重要的一步，纯化蛋白质可以用于结构解析、功能研究、动态过程研究等各种生物学实验。
常用的蛋白质纯化方法有盐析法、凝胶过滤法、离子交换色谱法、亲和色谱法、逆渗透法和层析法等。
下面将对这些方法的原理和步骤进行详细阐述。
1. 盐析法盐析法是根据蛋白质在溶液中的溶解性随盐浓度的变化而变化的原理进行蛋白质的纯化。
该方法是利用蛋白质在高盐浓度下与水结合能力降低，使其从溶液中沉淀出来。
应用盐析法时，需要先调节溶液的盐浓度使蛋白质溶解，然后逐渐加入盐使其过饱和，蛋白质便会析出。
最后通过离心将蛋白质的沉淀物分离，得到纯化的蛋白质。
2. 凝胶过滤法凝胶过滤法是利用凝胶的pores 来分离蛋白质的一种方法。
凝胶通常是聚丙烯酰胺（也称作Polyacrylamide）或琼脂糖。
研究者将蛋白质样品加入到过滤膜上，较小的蛋白质能够通过pores，较大的分子则被排出。
通过选择不同大小的凝胶孔径，可以根据蛋白质的大小来选择合适数目的过滤膜。
凝胶过滤法需要进行缓冲液体积的连续换流，将蛋白质与其他杂质分离开来。
3. 离子交换色谱法离子交换色谱法是利用蛋白质与离子交换基质之间静电吸引力的不同而分离的方法。
离子交换基质通常是富含正离子或负离子的高分子材料。
在离子交换色谱法中，样品溶液在特定的pH 下流经离子交换基质，带有不同电荷的蛋白质能够与基质发生反应，吸附在基质上。
为了获得纯化蛋白质，需要通过梯度洗脱，逐渐改变缓冲液pH 或离子浓度，使吸附在离子交换基质上的蛋白质逐渐释放出来。
4. 亲和色谱法亲和色谱法是利用蛋白质与特定的配体相互作用特异性进行分离的方法。
配体可以是天然物质，如金属离子、辅酶或抗体，也可以是人工合成的结构。
在亲和色谱法中，样品溶液经过含有配体的固定相，与配体发生特异性相互作用，蛋白质与其它组分分离。
然后可以通过改变某些条件（如pH、温度或离子浓度）来洗脱纯化的蛋白质。
蛋白质的检验方法
蛋白质的检验方法
蛋白质是生命体内重要的组成部分，对于维持生命活动和调节生理功能起着至关重要的作用。
因此，对蛋白质进行检验是十分必要的。
蛋白质的检验方法主要包括定性检验和定量检验两种，下面将分别介绍这两种方法。
定性检验是指通过实验方法来判断样品中是否含有蛋白质。
常用的定性检验方法有：
1. 硫酸沉淀法，将待检样品加入硫酸，再加入硝酸银。
如果有蛋白质存在，会生成白色沉淀。
2. 碱性铜蛋白法，将待检样品加入碱性铜蛋白溶液，如果有蛋白质存在，会生成紫色沉淀。
3. 生物素-亲和素法，利用生物素和亲和素之间的特异性结合来检验蛋白质的存在。
定量检验是指通过实验方法来确定样品中蛋白质的含量。
常用的定量检验方法有：
1. 比色法，利用蛋白质与某种试剂（如布拉德福试剂）发生显色反应，通过比色计或分光光度计测定吸光度，再根据标准曲线来确定蛋白质含量。
2. 琼脂糖凝胶电泳法，通过电泳将待检样品中的蛋白质分离，再利用染色方法来定量分析。
3. 酶标记法，利用酶标记的抗体或配体与待检样品中的蛋白质结合，通过酶的底物来测定蛋白质的含量。
总的来说，蛋白质的检验方法多种多样，可以根据实际需要选择合适的方法进行检验。
在进行蛋白质检验时，需要注意实验条件的控制，避免干扰因素对结果的影响。
同时，也要严格按照操作规程进行操作，确保实验结果的准确性和可靠性。
希望以上介绍的蛋白质检验方法能够对您有所帮助，如果您对蛋白质的检验方法还有其他疑问，欢迎随时咨询。
蛋白质测定常用的几种方法
I. 紫外分光光度法测定蛋白质的含量一、实验目的掌握紫外分光光度法测定蛋白质的含量的方法。
二、实验原理蛋白质分子中存在含有共轭双键的酪氨酸和色氨酸，使蛋白质对280nm的光波具有最大吸收值，在一定的范围内，蛋白质溶液的吸光值与其浓度成正比，可作定量测定。
该法操作简单、快捷，并且测定的样品可以回收，低浓度盐类不干扰测定，故在蛋白质和酶的生化制备中广泛被采用。
但此方法存在以下缺点：1．当待测的蛋白质中酪氨酸和色氨酸残基含量差别较大是会产生一定的误差，故该法适用于测定与标准蛋白质氨基酸组成相似的样品。
2．若样品中含有其他在280nm吸收的物质如核酸等化合物，就会出现较大的干扰。
但核酸的吸收高峰在260nm，因此分别测定280nm和260nm两处的光吸收值，通过计算可以适当的消除核酸对于测定蛋白质浓度的干扰作用。
但因为不同的蛋白质和核酸的紫外吸收是不同的，虽经校正，测定结果还存在着一定的误差。
三、实验器材1．紫外分光光度计2．移液管3．试管及试管架4．石英比色皿四、材料与试剂1．标准蛋白质溶液：准确称取经凯氏定氮校正的牛血清清蛋白，配制成浓度为1mg/mL的溶液。
2．待测蛋白溶液：酪蛋白稀释溶液，使其浓度在标准曲线范围内。
五、操作方法1．标准曲线的制作按表1加入试剂。
表1 标准曲线的制作度为横坐标，吸光度为纵坐标，绘制出血清蛋白的标准曲线。
2．未知样品的测定取待测蛋白质溶液1mL，加入3mL蒸馏水，在280nm下测定其吸光度值。
并从标准曲线上查出待测蛋白质的浓度。
II. Bradford法测定蛋白质的含量一、实验目的学习考马斯亮蓝G-250染色法测定蛋白质的原理和方法。
二、实验原理1976年Bradford建立了用考马斯亮蓝G-250与蛋白质结合的原理，迅速而准确的定量蛋白质的方法。
染料与蛋白质结合后引起染料最大吸收光的改变，从465nm变为595nm。
蛋白质-染料复合物具有高的消光系数，因此大大提高了蛋白质测定的灵敏度（最低检出量为1μg）。
蛋白质的提取和分离实验操作
蛋白质的提取和分离实验操作蛋白质的提取和分离一样分为四步:样品处理、粗分离、纯化和纯度鉴定。
(1)样品处理①红细胞的洗涤洗涤红细胞的目的:去除杂蛋白，以利于后续步骤的分离纯化。
采集的血样要及时分离红细胞，分离时采纳低速短时刻离心，如500r/min离心2min，然后用胶头吸管吸出上层透亮的黄色血浆，将下层暗红色的红细胞液体倒入烧杯，再加入五倍体积的生理盐水，缓慢搅拌10min，低速短时刻离心，如此重复洗涤三次，直至上清液中没有黄色，说明红细胞已洗涤洁净。
洗涤次数、离心速度与离心时刻十分重要。
洗涤次数过少，无法除去血浆蛋白;离心速度过高和时刻过长会使白细胞等一同沉淀，达不到分离的成效。
②血红蛋白的开释将洗涤好的红细胞倒人烧杯中，加蒸馏水到原血液的体积，再加40%体积的甲苯，置于磁力搅拌器上充分搅拌10min。
蒸馏水和甲苯作用:使红细胞破裂开释出血红蛋白。
③分离血红蛋白溶液将搅拌好的混合液转移到离心管中，以2000r/min的速度离心10min后，能够明显看到试管中的液体分为4层。
第1层为无色透亮的甲苯层，第2层为白色薄层固体，是脂溶性物质的沉淀层，第3层是红色透亮液体，这是血红蛋白的水溶液，第4层是其他杂质的暗红色沉淀物。
将试管中的液体用滤纸过滤，除去脂溶性沉淀层，于分液漏斗中静置片刻后，分出下层的红色透亮液体。
④透析取lmL的血红蛋白溶液装入透析袋中，将透析袋故交盛有300mL的物质的量浓度为20mmol/L的磷酸缓冲液中(pH为7.0)，透析12h。
(2)凝胶色谱操作①凝胶色谱柱的制作②凝胶色谱柱的装填将色谱柱垂直固定在支架上。
运算所用凝胶量，并称量。
凝胶用蒸馏水充分溶胀后，配成凝胶悬浮液，在与色谱柱下端连接的尼龙臂打开的情形下，一次性缓慢倒入色谱柱内，装填时可轻轻敲动色谱柱，使凝胶装填平均。
色谱柱内不能有气泡存在，一旦发觉有气泡，必须重装。
装填完后，赶忙连接缓冲液洗脱瓶，在约50cm高的操作压下，用300ml的物质的量浓度为20mmol/L的磷酸缓冲液充分洗涤平稳凝胶12h，使凝胶装填紧密。
中国药典中测蛋白质的方法
中国药典中测蛋白质的方法在生物医药领域，蛋白质的测定是实验室常规检测的重要项目之一。
中国药典中收录了多种测蛋白质的方法，主要包括总蛋白质检测法、尿化学分析法和电泳法。
本文将详细介绍这三种方法的应用范围、实验原理、实验步骤及注意事项。
1. 总蛋白质检测法总蛋白质检测法是一种常用的实验室方法，可用于检测生物样品中总蛋白质的含量。
该方法基于双缩脲反应原理，通过测定反应后溶液的颜色变化，计算出样品中总蛋白质的浓度。
总蛋白质检测法具有操作简便、反应灵敏、重复性好等优点，适用于生物医药领域中的蛋白质含量测定。
实验步骤：(1) 准备试剂：包括双缩脲试剂A液和B液，分别储存于棕色瓶中。
(2) 制备样品：将待测样品用生理盐水或去离子水稀释至适当浓度。
(3) 加样：取适量样品加入到试管中，加入双缩脲试剂A液2mL，摇匀。
(4) 孵育：将试管置于37℃水浴中孵育15分钟。
(5) 加试剂B：取出试管，加入双缩脲试剂B液4滴，摇匀。
(6) 测定吸光度：用紫外可见分光光度计在540nm波长处测定吸光度值。
(7) 计算：根据标准曲线或回归方程计算样品中总蛋白质的浓度。
注意事项：(1) 双缩脲试剂应储存于棕色瓶中，防止见光分解。
(2) 实验过程中应保持温度适宜，以利于反应进行。
(3) 注意吸光度的测量范围，避免超出仪器的测量范围而导致误差。
2. 尿化学分析法尿化学分析法是一种用于检测尿液中蛋白质的方法。
该方法通过测定尿液在特定波长下的吸光度值，来判断尿液中蛋白质的含量。
尿化学分析法具有操作简便、快速、灵敏度高等优点，适用于临床诊断及生物医药研究中的蛋白质含量测定。
实验步骤：(1) 收集尿液：采集受试者的尿液样本。
(2) 加样：将试纸浸入尿液中，轻轻搅拌数次后取出。
(3) 读数：将试纸放置在尿液干化学分析仪中，读取吸光度值及相关指标。
如果仪器具有半自动或全自动功能，可以直接打印出结果。
(4) 结果判断：根据试纸上的颜色变化及仪器测得的吸光度值，判断尿液中蛋白质的含量是否正常。
蛋白质纯化实验步骤
蛋白质纯化实验步骤引言:蛋白质是生物体内重要的基本组成部分，对于深入了解蛋白质的结构和功能具有重要意义。
蛋白质纯化是一个关键步骤，可以从复杂的混合物中分离出目标蛋白质，并去除杂质。
下面将介绍一种常用的蛋白质纯化实验步骤。
一、样品制备在开始蛋白质纯化实验之前，首先需要准备样品。
样品可以是细胞提取物、培养基中的蛋白质等。
样品制备的关键是要保证样品的完整性和纯度，避免蛋白质的降解和杂质的污染。
二、离心将样品进行离心，以去除细胞碎片和细胞核等大颗粒物质。
离心过程中，可以根据颗粒物质的大小和密度来选择合适的离心条件，如转速、离心时间等。
三、初步分离将离心后的上清液取出，进行初步分离。
可以采用一些常用的分离技术，如离子交换色谱、凝胶过滤等。
这些技术可以根据蛋白质的电荷、大小等特性进行分离，从而使目标蛋白质得到部分纯化。
四、亲和层析亲和层析是一种常用的蛋白质纯化技术，通过利用目标蛋白质与某种亲和剂之间的特异性相互作用来实现纯化。
亲和剂可以是金属离子、抗体、配体等，可以根据目标蛋白质的性质和特点来选择合适的亲和剂。
五、凝胶电泳凝胶电泳是一种常用的蛋白质分离和分析技术，通过电场作用使蛋白质在凝胶中迁移，根据蛋白质的大小和电荷来实现分离。
凝胶电泳可以用于检测和鉴定目标蛋白质，同时也可以用于纯化蛋白质。
六、柱层析柱层析是一种常用的蛋白质纯化技术，通过将样品溶液通过填充在柱子中的吸附剂层析，实现蛋白质的分离和纯化。
柱层析可以根据蛋白质的性质和特点来选择合适的吸附剂，如离子交换柱、凝胶过滤柱等。
七、透析透析是一种常用的蛋白质纯化技术，通过溶液之间的渗透压差来实现目标蛋白质的分离和杂质的去除。
透析可以用于去除一些小分子杂质，如盐类、小分子药物等。
八、浓缩浓缩是一种常用的蛋白质纯化技术，通过去除大量的水分来提高目标蛋白质的浓度。
常用的浓缩技术有深度过滤、超滤等，可以根据蛋白质的分子量和颗粒大小来选择合适的浓缩方法。
九、纯化验证在蛋白质纯化实验结束之后，需要对纯化后的目标蛋白质进行验证。
wb实验的原理和步骤
wb实验的原理和步骤WB实验的原理和步骤。
一、实验原理。
WB实验，即Western Blot实验，是一种常用于检测蛋白质的实验方法。
它通过电泳将蛋白质分离开来，然后用特定的抗体结合目标蛋白，最后通过化学发光或染色等方法来检测目标蛋白的存在与表达水平。
在WB实验中，主要包括蛋白质电泳分离、转膜、抗体结合和检测等步骤。
下面将详细介绍WB实验的步骤及操作要点。
二、实验步骤。
1. 蛋白质电泳分离。
首先，将待测样品加入SDS-PAGE凝胶槽中，进行蛋白质电泳分离。
电泳结束后，将蛋白质转移到聚丙烯酰胺凝胶膜上。
2. 蛋白质转膜。
将电泳分离后的蛋白质转移到聚丙烯酰胺凝胶膜上，通常采用湿法转膜或半干法转膜。
转膜后，将膜进行封闭处理，以防止非特异性结合。
3. 抗体结合。
将待测蛋白质与特异性一抗进行孵育结合，然后进行洗脱，接着与辣根过氧化物酶标记的二抗结合。
最后再次进行洗脱，以去除非特异性结合。
4. 检测。
通过化学发光或染色等方法来检测目标蛋白的存在与表达水平。
化学发光法是常用的检测方法之一，它通过特定底物的化学反应产生发光信号，用于检测目标蛋白的存在与表达水平。
三、实验操作要点。
1. 实验前的准备工作要做到充分，包括准备好所需试剂、仪器设备的检查和调试等。
2. 在操作过程中要严格遵守操作规程，保证实验的准确性和可靠性。
3. 注意实验中各步骤的时间控制，避免步骤之间的等待时间过长或过短。
4. 蛋白质转膜时要注意膜的完整性和均匀性，避免出现膜上蛋白质分布不均匀的情况。
5. 在抗体结合和检测过程中，要注意洗脱的次数和时间，严格控制非特异性结合的发生。
6. 实验结束后，要及时清洗和维护仪器设备，妥善保存实验结果和数据。
通过以上步骤和操作要点的介绍，相信大家对WB实验的原理和操作有了更清晰的认识。
在进行实验操作时，一定要认真细致，严格按照操作规程进行，确保实验结果的准确性和可靠性。
希望本文对大家有所帮助，谢谢阅读！。
蛋白质测定标准
蛋白质测定标准
蛋白质测定是生物化学和分子生物学中常见的实验操作，用于确定样品中蛋白质的含量。
以下是常见的蛋白质测定标准：Lowry法：Lowry法是最常用的蛋白质定量方法之一，基于蛋白质与某些重铜络合物的相互作用产生的颜色变化。
该方法灵敏度高，适用于含有大量蛋白质的样品。
Bradford法：Bradford法利用考马斯亮蓝G-250与蛋白质之间的相互作用产生的颜色变化来测定蛋白质含量。
与Lowry法相比，Bradford法的操作更简单，但灵敏度略低。
Biuret法：Biuret法利用蛋白质与铜离子形成的络合物产生的紫色来测定蛋白质含量。
该方法比较粗略，适用于快速测定蛋白质含量。
BCA法：BCA（Bicinchoninic Acid）法是一种比较常用的蛋白质定量方法，利用蛋白质与铜离子和BCA试剂的反应产生的紫色螯合物来测定蛋白质含量。
光谱法：光谱法通过测量蛋白质在特定波长下的吸光度来确定其浓度。
UV-Vis分光光度计是常用的测量设备，通常在280 nm波长下进行测量。
荧光法：荧光法利用蛋白质在特定激发波长下发射荧光信号的特性来测定蛋白质含量。
例如，荧光素蛋白（fluorescamine）可与蛋白质中的氨基结合产生荧光，用于蛋白质的定量。
这些方法各有优缺点，选择合适的方法取决于样品的特性、实验条件以及所需的灵敏度和准确性。
通常，根据实验的具体要求和可用的设备，科学家可以选择最适合其实验目的的蛋白质测定方法。
1。
蛋白质含量测定方法大全
实验一蛋白质含量测定本实验的目的是学会各种蛋白质含量的测定方法。
了解各种测定方法的基本原理和优缺点。
蛋白质含量测定法，是生物化学研究中最常用、最基本的分析方法之一。
目前常用的有四种古老的经典方法，即定氮法，双缩尿法（Biuret法）、Folin－酚试剂法（Lowry法）和紫外吸收法。
另外还有一种近十年才普遍使用起来的新的测定法，即考马斯亮蓝法（Bradford法）。
其中Bradford法和Lowry法灵敏度最高，比紫外吸收法灵敏10～20倍，比Biuret法灵敏100倍以上。
定氮法虽然比较复杂，但较准确，往往以定氮法测定的蛋白质作为其他方法的标准蛋白质。
值得注意的是，这后四种方法并不能在任何条件下适用于任何形式的蛋白质，因为一种蛋白质溶液用这四种方法测定，有可能得出四种不同的结果。
每种测定法都不是完美无缺的，都有其优缺点。
在选择方法时应考虑：①实验对测定所要求的灵敏度和精确度；②蛋白质的性质；③溶液中存在的干扰物质；④测定所要花费的时间。
考马斯亮蓝法（Bradford法），由于其突出的优点，正得到越来越广泛的应用。
一、微量凯氏（Kjeldahl）定氮法样品与浓硫酸共热。
含氮有机物即分解产生氨（消化），氨又与硫酸作用，变成硫酸氨。
经强碱碱化使之分解放出氨，借蒸汽将氨蒸至酸液中，根据此酸液被中和的程度可计算得样品之氮含量。
若以甘氨酸为例，其反应式如下：CH2COOH|+3H2SO4→2CO2+3SO2+4H2O+NH3(1)NH22NH3+H2SO4→(NH4)2SO4(2)(NH4)2SO4+2NaOH→2H2O+Na2SO4+2NH3(3)反应（1）、(2)在凯氏瓶内完成，反应（3）在凯氏蒸馏装置中进行。
为了加速消化，可以加入CuSO4作催化剂，K2SO4以提高溶液的沸点。
收集氨可用硼酸溶液，滴定则用强酸。
实验和计算方法这里从略。
计算所得结果为样品总氮量，如欲求得样品中蛋白含量，应将总氮量减去非蛋白氮即得。
蛋白质测定的实验报告
一、实验目的1. 掌握蛋白质测定的原理和方法。
2. 熟悉实验操作步骤和注意事项。
3. 通过实验，提高实验技能和数据分析能力。
二、实验原理蛋白质是生物体内重要的生物大分子，具有多种生物学功能。
蛋白质的测定方法主要有凯氏定氮法、双缩脲法、比色法等。
本实验采用双缩脲法测定蛋白质含量。
双缩脲法基于蛋白质分子中的肽键与铜离子反应生成紫红色络合物，其颜色深浅与蛋白质含量成正比。
通过测定该络合物在特定波长下的吸光度，可以计算出蛋白质含量。
三、实验材料与试剂1. 实验材料：鸡蛋清、牛奶、豆奶等蛋白质样品。
2. 试剂：（1）双缩脲试剂A：称取硫酸铜0.1g，溶解于100ml蒸馏水中。
（2）双缩脲试剂B：称取酒石酸钾钠0.5g，溶解于100ml蒸馏水中，加入10g 氢氧化钠。
（3）标准蛋白质溶液：称取牛血清白蛋白0.1g，溶解于100ml蒸馏水中，配制成1mg/ml的标准蛋白质溶液。
（4）0.1mol/L氢氧化钠溶液。
四、实验仪器1. 电子天平2. 移液器3. 721分光光度计4. 烧杯5. 试管6. 滴管五、实验步骤1. 样品制备：取适量蛋白质样品，加入蒸馏水稀释至一定浓度。
2. 标准曲线绘制：分别取0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0ml标准蛋白质溶液于试管中，加入2ml双缩脲试剂A，摇匀，静置2min。
然后加入2ml双缩脲试剂B，摇匀，静置2min。
以蒸馏水为空白，于540nm波长下测定吸光度。
以蛋白质浓度为横坐标，吸光度为纵坐标，绘制标准曲线。
3. 样品测定：分别取0.2ml样品溶液于试管中，按照步骤2的操作进行测定。
以蒸馏水为空白，于540nm波长下测定吸光度。
4. 结果计算：根据标准曲线，计算样品中蛋白质含量。
六、实验结果与分析1. 标准曲线绘制：根据实验数据，绘制标准曲线，计算相关系数R²，验证标准曲线的线性关系。
2. 样品测定：根据标准曲线，计算样品中蛋白质含量，并与理论值进行比较。
蛋白质的测定实验报告
一、实验目的1. 掌握蛋白质的测定原理和方法；2. 学会使用双缩脲试剂和凯氏定氮法测定蛋白质含量；3. 了解蛋白质在生物体中的重要作用。
二、实验原理蛋白质是由氨基酸通过肽键连接而成的大分子化合物，是生物体的重要组成部分。
蛋白质的测定方法有很多，本实验主要介绍双缩脲试剂法和凯氏定氮法。
1. 双缩脲试剂法：蛋白质分子中的肽键在碱性条件下与铜离子反应，生成紫红色络合物。
根据络合物颜色的深浅，可以测定蛋白质的含量。
2. 凯氏定氮法：蛋白质分子中的氮含量相对稳定，约为16%。
通过测定样品中的氮含量，可以计算出蛋白质的含量。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：鸡蛋清、硫酸铵、氯化钠、双缩脲试剂、凯氏定氮试剂、蒸馏水、滴定管、试管、烧杯、电炉、天平等。
2. 仪器：双缩脲比色计、凯氏定氮仪、分析天平、移液管、滴定管、酒精灯等。
四、实验步骤1. 双缩脲试剂法测定蛋白质含量（1）取一定量的鸡蛋清溶液，加入双缩脲试剂，观察颜色变化。
（2）用双缩脲比色计测定吸光度。
（3）根据标准曲线计算蛋白质含量。
2. 凯氏定氮法测定蛋白质含量（1）取一定量的鸡蛋清溶液，加入硫酸铵和氯化钠，混匀。
（2）将混合液转移到凯氏烧瓶中，加入硫酸和硫酸铜，加热消化。
（3）将消化液转移到蒸馏瓶中，加入过氧化氢和氢氧化钠，进行蒸馏。
（4）收集蒸馏液，用滴定管滴定剩余的酸液。
（5）根据滴定结果计算氮含量，进而计算出蛋白质含量。
五、实验结果与分析1. 双缩脲试剂法测定蛋白质含量通过双缩脲比色计测定吸光度，得到蛋白质含量为x g/L。
2. 凯氏定氮法测定蛋白质含量通过滴定计算，得到氮含量为y g/L，进而计算出蛋白质含量为z g/L。
六、实验结论1. 通过双缩脲试剂法和凯氏定氮法，可以测定蛋白质含量。
2. 蛋白质在生物体中具有重要作用，是生命活动的基础。
3. 本实验操作简便，结果可靠，为蛋白质的测定提供了有效方法。
七、注意事项1. 在进行双缩脲试剂法测定时，应确保试剂的准确性，避免误差。
测蛋白质含量实验报告
一、实验目的1. 熟悉蛋白质含量测定的原理和方法；2. 掌握双缩脲法和凯氏定氮法测定蛋白质含量的操作步骤；3. 了解不同方法测定蛋白质含量的优缺点；4. 培养实验操作能力和数据处理能力。
二、实验原理1. 双缩脲法：蛋白质分子中含有大量彼此相连的肽键（-CO-NH-），在碱性溶液中能与Cu2+发生双缩脲反应，生成紫红色络合物。
此反应和两个尿素分子缩合后生成的双缩脲（H2N-OC-NH-CO-NH2）在碱性溶液中与铜离子作用形成紫红色的反应相似，故称之为双缩脲反应。
这种紫红色络合物在540nm处的吸光度与蛋白质含量在一定范围内呈正比关系。
2. 凯氏定氮法：蛋白质中的氮含量相对稳定，约为16%左右。
通过凯氏定氮法测定样品中的氮含量，再乘以 6.25，即可得到蛋白质含量。
该方法包括样品的消化、蒸馏、滴定等步骤。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：鸡蛋清、牛肉、花生、大豆、玉米粉等蛋白质样品；标准蛋白质溶液；NaOH溶液；双缩脲试剂；凯氏定氮试剂等。
2. 实验仪器：分光光度计、电子天平、移液器、试管、锥形瓶、凯氏烧瓶、电炉、蒸馏装置、滴定管等。
四、实验步骤1. 双缩脲法（1）配制标准蛋白质溶液：准确称取一定量的标准蛋白质，用蒸馏水溶解并定容至100ml，得到浓度为1mg/ml的标准蛋白质溶液。
（2）制备样品溶液：准确称取一定量的蛋白质样品，用蒸馏水溶解并定容至10ml，得到浓度为0.1mg/ml的样品溶液。
（3）测定吸光度：分别取标准蛋白质溶液和样品溶液各1ml，加入2ml双缩脲试剂，混匀后放置10分钟，用分光光度计在540nm处测定吸光度。
2. 凯氏定氮法（1）样品消化：准确称取一定量的蛋白质样品，加入适量的浓硫酸和硫酸钾，放入凯氏烧瓶中，加热消化至无色透明。
（2）蒸馏：将消化后的溶液转移到蒸馏装置中，加入适量的浓氢氧化钠溶液，加热蒸馏，用硼酸溶液吸收蒸馏出的氨气。
（3）滴定：待吸收完全后，用0.1mol/L盐酸标准溶液滴定至终点，记录消耗的盐酸体积。
蛋白质有关的各类实验
1 蛋白质含量测定法2 WESTERN PROTOCOL3 Western免疫印迹（Western Blot）4 蛋白质沉淀法5 蛋白质提取的方法总汇1 蛋白质含量测定法本实验的目的是学会各种蛋白质含量的测定方法。
了解各种测定方法的基本原理和优缺点。
蛋白质含量测定法，是生物化学研究中最常用、最基本的分析方法之一。
目前常用的有四种古老的经典方法，即定氮法，双缩尿法（Biuret法）、Folin－酚试剂法（Lowry法）和紫外吸收法。
另外还有一种近十年才普遍使用起来的新的测定法，即考马斯亮蓝法（Bradford法）。
其中Bradford法和Lowry法灵敏度最高，比紫外吸收法灵敏10～20倍，比Biuret法灵敏100倍以上。
定氮法虽然比较复杂，但较准确，往往以定氮法测定的蛋白质作为其他方法的标准蛋白质。
值得注意的是，这后四种方法并不能在任何条件下适用于任何形式的蛋白质，因为一种蛋白质溶液用这四种方法测定，有可能得出四种不同的结果。
每种测定法都不是完美无缺的，都有其优缺点。
在选择方法时应考虑：①实验对测定所要求的灵敏度和精确度；②蛋白质的性质；③溶液中存在的干扰物质；④测定所要花费的时间。
考马斯亮蓝法（Bradford法），由于其突出的优点，正得到越来越广泛的应用。
一、微量凯氏（Kjeldahl）定氮法样品与浓硫酸共热。
含氮有机物即分解产生氨（消化），氨又与硫酸作用，变成硫酸氨。
经强碱碱化使之分解放出氨，借蒸汽将氨蒸至酸液中，根据此酸液被中和的程度可计算得样品之氮含量。
若以甘氨酸为例，其反应式如下：CH2COOH| + 3H2SO4 ® 2CO2 + 3SO2 +4H2O +NH3 (1)NH22NH3 + H2SO4 ® (NH4)2SO4 (2)(NH4)2SO4 + 2NaOH ® 2H2O +Na2SO4 + 2NH3 (3)反应（1）、(2)在凯氏瓶内完成，反应（3）在凯氏蒸馏装置中进行。
蛋白质含量测定方法汇总
蛋白质含量测定方法汇总-CAL-FENGHAI.-(YICAI)-Company One1实验七蛋白质含量测定?测定蛋白质的定量方法有很多，目前常用的有染料法，双缩脲(Biuret)法，酚试剂法(Lowry)法及紫外吸收法。
[目的要求]1．掌握测定蛋白质的含量基本方法。
2．了解染料法、双缩脲法、Lowry法和紫外吸收法测定原理。
?一、染料法[实验原理]在酸性溶液中染料考马斯亮蓝G-250与蛋白质结合，此时考马斯亮蓝G-250颜色从红色变为蓝色，吸收高峰从460nm移至595nm。
利用这个原理可以测定蛋白质含量。
该法近年在某些方面有取代经典的Lowry法趋势，因为它操作简单，反应时间短，染料-蛋白质颜色稳定，抗干扰性强。
本法的缺点是：对于那些与标准蛋白氨基酸组成有较大差异的蛋白质，有一定误差，因为不同的蛋白质与染料的结合是不同的，故该法适合测定与标准蛋白质氨基酸组成相近的蛋白质。
[器材]吸量管；试管；721型分光光度计[试剂]1.标准牛血清白蛋白溶液：配成ml的溶液。
2.待测蛋白质溶液。
3.染料溶液：称取考马斯亮蓝G-250溶于95%的酒精50ml，再加入85%的浓磷酸100ml，用水稀释至1000ml,混匀备用。
[操作步骤]按上表分别向各支试管内加入各种试剂，充分混匀，5min后在595nm波长处以0号管调零,测定各管吸光度值（A）。
以吸光度值为纵坐标,蛋白质浓度为横坐标绘制标准曲线。
2．样品测定：取1ml样品溶液（约含25～250微克蛋白质），加入染料溶液5ml混匀，5min后测定其595nm吸光度值，对照标准曲线求得蛋白质浓度。
?二、双缩脲(Biuret)法测定蛋白质含量?[实验原理]在碱性溶液中，双缩脲(H2N-CO-NH-CO-NH2)与二价铜离子作用形成紫红色的络合物，这一反应称双缩脲反应。
凡分子中含二个或二个以上酰胺基(—CO-NH2)，或与此相似的基团[如—CH2-NH2，—CS-NH2，—C(NH)NH2]的任何化合物，无论这类基团直接相连还是通过一个碳或氮原子间接相连，均可发生上述反应。
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蛋白质溶液由于具有水化层与双电层两方面的稳定因素，所以 作为胶体系统是相对稳定的。
(2)方法
①等电点沉淀：蛋白质在等电点时的溶解度最低。 ②盐析沉淀：中性盐的亲水性大于蛋白质分子，夺走水分子， 破坏水膜；同时又中和电荷，破坏亲水胶体。 ③有机溶剂沉淀：使蛋白质分子间的静电引力增加，水化作 用降低。 ④有机聚合物沉淀：聚乙二醇、葡聚糖、右旋糖酐硫酸钠等。
peptide或loop）：
连接二级结构单元，在肽链中出现频率较高的短肽，
长约1～5个残基。 •超二级结构（super－secondary structure）： 两个或者几个二级结构单元被连接肽段连接起来， 进一步组合成有特殊几何排列的局域立体结构。
结构域（domain）：蛋白质超二级结构形成的紧密、稳定而 且蛋白质分子构象上明显可分的区域， 它们承担着蛋白质分子不同的功能，是 整个蛋白质分子中的一些生物功能实体。
医学实验方法(4)
Methods of Medical Experiment (4)
蛋白质实验方法
第一节 第二节 蛋白质的结构 蛋白质分析技术
第一节 蛋白质的结构
一、相关概念
• 蛋白质(protein)：体现生命现象的一类生物大分子；含 C、H、O、N、S等元素；以氨基酸为 基本结构单元，以共价键连接构成的 不分支的线性序列分子。
• 构象（comformation）：分子内空间位置的改变，并不 涉及共价键的断裂和生成发生 的改变，单链旋转时，分子中 的基团或者原子可能形成不同 的空间排列和位置排列。又称 为空间结构、立体结构、高级 结构等三维结构。
二、氨基酸（amino acid，AA）
蛋白质的基本结构单位，20种L－α氨基酸
①连续密度梯度离心
②非连续密度梯度离心
2、沉淀法
（1）蛋白质胶体性质
①蛋白质分子量很大，在水溶液中形成直径1-100nm之间的颗 粒，已达到胶体颗粒范围的大小，因而具有胶体溶液的通性。
②蛋白质的水溶液能形成稳定的亲水胶体： A、蛋白质多肽链上含有许多极性基团。如：－NH3＋、－COO－ 、 －OH－、-SH－、-CONH－等，它们都具有高度的亲水性，当与水接 确时，极易吸附水分子，使蛋白质颗粒外围形成一层水化膜，将 颗粒彼此隔开，不致因互相碰撞凝聚而沉淀。 B、蛋白质是两性电解质，在非等电状态时，相同蛋白质颗粒带 有同性电荷，与周围的反离子构成稳定的双电层。使蛋白质颗粒 之间相互排斥，保持一定距离，不致互相凝聚而沉淀。
氨基酸残基（residue）：肽链中的氨基酸分子因脱水缩合 而基团不全。
四、蛋白质结构的组织层次
蛋 白 质 的 结 构 层 次 一级结构
二级结构
空间结构 三级结构
超二级结构 结构域
四级结构
1、蛋白质的一级结构（primary structure）
蛋白质分子中氨基酸的排列顺序（主要的化学键是肽键）
不同生物与人的Cytc的AA差异数目
生物 与人不同的AA数目 0 1 9 10 11 12 13 14 15 21 23 25 31 35 43 44 黑猩猩 恒河猴 兔 袋鼠 牛、猪、羊、狗 马 鸡、火鸡 响尾蛇 海龟 金枪鱼 角饺 小蝇 蛾 小麦 粗早链孢霉 酵母
圆圈代表分歧点
根据细胞色素 C的 顺序种属差异建立 起来的进化树
这类疾病包括：人纹状体脊髓变性病、老年痴呆症、亨停顿 舞蹈病、疯牛病等。
疯牛病中的蛋白质构象改变
疯牛病是由朊病毒蛋白(prion protein, PrP)引起的一组人 和动物神经退行性(大脑淀粉样) 病变。 正常的PrP富含α-螺旋，称为PrPc。 PrPc在某种未知蛋白质的作用下可转变成全为β-折叠的 PrPsc，从而致病。
一级结构不同, 但空间构象极为相似
血红蛋白、肌红蛋白是氧的运载体， 分别存在于红细胞和肌肉中
第二节
蛋白质分析技术
一、 蛋白质的提取
抽提：是指用适当的溶剂和方法，从原料中把有效成分分离 出来的过程。 （一）蛋白质材料的来源 1、动物 （1）物种的不同，蛋白质氨基酸的序列有可能不同。 （2）尽可能接近正常状态下获得组织与器官。 （3）取出的组织和器官要迅速使用或冷冻保存（-80℃）。 2、植物 3、微生物 一般应在细菌的生长对数期的后半部份收集菌体。 4、基因工程产品
2、抑制蛋白水解酶
（1）改变提取液的pH，多数蛋白水解酶的最适pH为3～5， 提取液可以采用高于5的缓冲液。 （2）使用蛋白酶水解抑制剂。 （3）低温操作，应尽量保持温度在0～4 ℃ 。
（四）蛋白质的分离 1、离心法
（1）差 速离心用 于蛋白质 沉降系数 相差一个 数量级 （10倍） 以上的。
（2）密度梯度离心
2、蛋白酶抑制剂
（1）PMSF（苯甲磺酰氟）：抑制丝氨酸蛋白酶和巯基蛋白酶。 （2）EDTA（乙二胺四乙酸）：抑制金属蛋白水解酶。 （3）aprotinin（胰蛋白酶抑制剂）：抑制丝氨酸蛋白酶。 （4）pepstatin（胃蛋白酶抑制剂）：抑制酸性蛋白酶。 （5）leupeptin（亮抑蛋白酶）：抑制丝氨酸蛋白酶和巯基蛋白酶。
氢 键 疏水作用
盐 键
阴、阳离子借静电引力形成的键
一级结构： 肽键、二硫键 二级结构： 氢键 三级结构： 疏水作用、氢键、 离子键、范德华力 四级结构： 氢键、离子键
6、蛋白质的变性
一般说来
一级结构决定构象
构象决定生物活性
蛋白质的空间结构是实现蛋白 质生物学功能的基础 蛋白质构象异常可导致疾病
在外来理化因素的作用下，维系蛋白质空间结构的次 级键断裂，天然构象被破坏，生物活性丧失；溶解度 降低，对于球状蛋白粘度增加；光吸收系数增大；生 物化学性质改变。 一级结构和分子量不变。
。
4、四级结构（quaternary structure）
亚基（subunit）：三级结构的一条多肽链。 亚基之间相互作用形成的。具有生物活性的蛋白 质近似球形或者椭球形。
5、次级键
范德华力
范德华力是存在于分子间的一种吸引力，它比化 学键弱得多。一般来说，某物质的范德华力越大， 则它的熔点、沸点就越高。对于组成和结构相似 的物质，范德华力一般随着相对分子质量的增大 而增强。 与氢连接的原子具有电负性大、半径小、含孤 对电子的特点 ，如：N, O, F, Cl等 疏水即憎水，疏水分子之间并不相互吸引， 是在水分子的作用下而聚集在一起
O=C 0.123nm 键长=0.133nm N-C 0.145nm
肽键平面：组成肽键的4个原子和2个相邻的α 碳原子都处于 同一个平面内，此刚性结构的平面。
两相邻酰胺平面之间，能 以共同的Cα为定点而旋转， 绕Cα-N键旋转的角度称φ 角，绕C-Cα键旋转的角度 称ψ角。
肽、蛋白质是氨基酸的线性多聚体
牛胰岛素
核糖核酸酶A
2、蛋白质的二级结构（secondary structure）
在蛋白质一级结构的基础上，氨基酸之间以氢键维持盘旋或 折叠。主要是α -螺旋（ α - helix）和β -片层（ β pleated sheet），以及β - 转角和无规卷屈。
无规则卷曲
• 连接肽段（connecting
3、低温保存
4 ℃、-20 ℃、 -80℃和 -196℃（液氮） 短期（1周之内）和长期（超过1周）
4、冻溶
低温（ -20 ℃或 -80℃ ）至4 ℃解冻1天，然后室温溶解，溶解 过程要规则的均匀摇晃（勿产生气泡），减少沉淀产生。
二、 蛋白印迹（western blot）
蛋白质印迹：蛋白质经过聚丙烯酰胺凝胶电泳，使 蛋白质按分子大小分开后，通过电转 移使其固定于滤膜上，再与溶液中的 其他蛋白分子相互结合。其中常用抗 体检测，因此也称为免疫印迹技术 （immunoblotting），亦称为Western blotting（蛋白质印迹）。主要用于检 测样品中特异性蛋白质的存在、细胞 中特异蛋白质的半定量分析以及蛋白 质分子的相互作用研究等。
•
•
4、过滤法
过滤（10um）、微过滤（0.1-10um）、超滤（0.01-0.1um）
（五）蛋白质的保存
1、冷冻干燥
CHRIST ALPHA2-4 LD plus 冷冻干燥机主要技术指标： •凝冰能力：最大4kg •凝冰效率：最大4kg/24h •冷室容积：6.5 L •制冷功率：2×370Kw •凝冰温度：-85℃ •冷室阱冷冻的温度：-50℃ •独立控制的外接口：12个 •控制器：LD plus •工作环境温度：10℃-32℃ 6 •机器大小：390×415×540mm
氨基酸的两性解离
紫外吸收性质（280nm）
大多数蛋白质含有色 氨酸和酪氨酸残基
茚三酮反应
原理：茚三酮溶液与氨基酸共热，生成氨。氨与茚三酮和还 原性茚三酮反应，生成紫色化合物。该化合物颜色的 深浅与氨基酸的含量成正比，可通过测定570nm处的 光密度，测定氨基酸的含量。
三、肽
肽键（peptide bond）：连接两个氨基酸的酰胺键。一个氨基 酸分子的α－羧基与另一个氨基酸分 子的α－氨基脱水缩合而成的酰胺键。
α -C
α -氨基
α -羧基
侧链R
对映结构体(手性 /question/5117897.html?fr=qrl3 ) 在化学中，组成相同但空间结构上互成镜像（对映体）的分子 叫手性分子。 能使平面偏振光按顺时针方向旋转的对映体称右旋体，记作(+) 或者D，反之称作左旋体，记作(-)或者L 。
按照极性分类: 1、非极性氨基酸，2、不带电荷的极性氨基酸，3、带正 电的碱性氨基酸，4、带负电的酸性氨基酸
按R基的极性性质可以分成以下4组：
非蛋白质氨基酸
天冬氨酸 谷氨酸 赖氨酸 碱性氨基酸 精氨酸 组氨酸 极性氨基酸
氨 基 酸
酸性氨基酸
蛋白质氨基酸 （20种）
色氨酸 蛋氨酸 丝氨酸 苏氨酸 半胱氨酸 酪氨酸 天冬酰胺 谷氨酰胺 中性氨基酸 丙氨酸 亮氨酸 异亮氨酸 非极性氨基酸 苯丙氨酸 缬氨酸 甘氨酸 脯氨酸