TUNEL细胞凋亡检测(荧光标记)操作流程
Tunel染色步骤
Tunel染色步骤染色是生物学实验中常用的一种技术手段，它可以标记和可视化细胞或组织中的特定分子或结构。
TUNEL（TdT-mediated dUTP Nick-End Labeling）染色技术是一种常用于检测细胞凋亡的方法。
以下是TUNEL染色的步骤：准备工作：1.去离子水：除去离子，避免离子干扰反应。
2. 去氧核酸酶（DNase）的酶标：新鲜制备，如购买的DNase酶标已开封或保存时间较长，需要用氧化热焓（将无水乙酸用过氧化氢气化后灭菌）处理一晚才可以使用。
步骤一：样本固定1.取细胞或组织样本，放入离子缺失的缓冲液中，使其完全被液体覆盖。
2. 加入4%的 paraformaldehyde（或其他细胞或组织固定液），室温下固定10-15分钟。
3.将样本漂洗3次，每次10分钟，使用冷PBS漂洗。
4.用细胞色素染色法染色检测固定细胞总蛋白质。
步骤二：处理样本1. 将细胞或组织样本渗透处理：将固定的细胞或组织置于PBS中含有0.5% Triton X-100（或0.1-0.2%的Bis-vinylsulfonyl] ethane等亲水试剂）的溶液中，室温下渗透30分钟。
2.将样本漂洗3次，每次10分钟，使用冷PBS漂洗。
3. 用DNase酶标法探测样本中DNA裂解。
步骤三：TUNEL反应1.取TUNEL反应液，根据实验需要，在冷冻时保持在冰上。
2.用比色皿将样本恢复到PBS中，将足量的TUNEL反应液加入标本中，使标本完全浸润，尽量避免气泡。
3.在37℃下孵育1-2小时。
步骤四：反应终止1.将标本移至冷藏，室温下用PBS漂洗3次，每次10分钟。
2.用缓冲液漂洗标本3次，每次10分钟。
步骤五：可视化与分析1.在镜下放置标本。
2.加入螢光抑制剂或DAPI等染料，使用荧光显微镜检测标本。
总结：TUNEL染色技术是一项用于检测细胞凋亡的重要方法。
它通过检测DNA的断裂末端来间接检测细胞凋亡。
整个TUNEL染色过程包括样本固定、样本处理、TUNEL反应、反应终止和可视化与分析等步骤。
一步法TUNEL细胞凋亡检测试剂盒红色TRITC标记荧光检
一步法 TUNEL 细胞凋亡检测试剂盒（红色 TRITC 标记荧光检测法，通用型）说明书修订日期：2018.07.31 Catalog No.：KGA7061 / KGA7062 / KGA7063Storage：-20℃ for 12 months,避光For Research Use Only（科研专用）一、TUNEL 检测原理凯基一步法 TUNEL 细胞凋亡检测试剂盒(TRITC红色荧光标记，通用型)提供一种高灵敏度又快速简便的细胞凋亡检测方法，可检测细胞在凋亡过程中细胞核 DNA 的断裂情况，其原理是红色荧光素（Tetramethylrhodamine，TRITC）标记的 dUTP 在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT Enzyme）的作用下，可以连接到凋亡细胞中断裂 DNA 的3′－OH 末端，可用荧光显微镜检测。
由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有 DNA 的断裂，因而没有3′-OH 形成，很少能够被标记。
本试剂盒适用于组织样本（石蜡包埋、冰冻和超薄切片）和细胞样本（细胞涂片或爬片）的凋亡原位检测。
对于经过固定和洗涤的细胞或组织，只要经过一步染色反应，洗涤后就可以通过荧光显微镜检测到凋亡细胞。
二、TUNEL 试剂盒组分运输及保存条件：2-8℃低温运输，收到后-20℃避光保存，保质期一年。
实验前准备：实验前按说明书准备好相应试剂与器具，多聚甲醛、二甲苯、乙醇、1×PBS pH 7.4、H2O2、Triton X-100、甲醇、多聚赖氨酸铺载玻片（细胞样本）、盖玻片、染色缸、温盒、量筒等。
三、操作步骤各个样本请用免疫组化笔做好标记，另外加 2 张样本切片分别用于阳性片和阴性片制备并做好标记。
在每步反应或浸洗的间隙时，配制下一步即用的工作液。
注意事项反应液最好根椐计算好的样本数量集中配制，再分别滴加于各样本上，避免因每个样本单独配制而产生的试剂损耗，TdT 酶反应液如需短暂保存时，请置于冰上。
TUNEL法检测细胞凋亡
细胞在发生凋亡时，会激活一些DNA内切酶，这些内切酶会切断核小体间的基因组DNA。
基因组DNA 断裂时，暴露的3'-0H 可以在末端脱氧核苷酸转移酶（Terminal Deox yn ucleotidyl Tran sferase,TdT）的催化下加上荧光素（FITC）标记的dUTP（fluorescein-dUTP），从而可以通过荧光显微镜或流式细胞仪进行检测，这就是TUNEL 法检测细胞凋亡的原理。
TUNEL法特异性检测细胞凋亡时产生的DNA断裂，但不会检测出射线等诱导的DNA断裂（和细胞凋亡时的断裂方式不同）。
这样一方面可以把凋亡和坏死区分开，另一方面也不会把射线等诱导发生DNA断裂的非凋亡细胞判断为凋亡细胞。
针对问题2（TUNEL法的实验原理是什么？）：基本原理：对不同组织切片先增加细胞膜通透性，然后让rTDT和bio标记的dUTP进入细胞内，在rTDT的辅助下dUTP与核断裂的DNA 3 -0H结合，再用HRP标记的链霉亲和素与dUTP 上的biot in 结合（每个链霉亲和素至少可以再结合3个biot in 分子），最后用DAB过氧化氢与SP上的辣根过氧化物酶HRP发生氧化、环化反应，形成苯乙肼聚合物而呈现棕褐色，最终通过计数每张切片上不同视野中TUNEL阳性细胞的比例来判断细胞凋亡发生情况。
■1. TUNEL工作原理：简单说就是一一TUNEL细胞凋亡检测试剂盒是用来检测细胞在凋亡过程中细胞核DNA的断裂情况。
其原理是；生物素（biot in ）标记的dUTP在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT En zyme）的作用下，可以连接到凋亡细胞中断裂的DNA的3' - 0H末端，并可与连接了的辣根过氧化酶的链霉亲和素（Streptavidin-HRP ）特异结合，在辣根过氧化酶底物二氨基联苯胺（DAB的存在下，产生很强的颜色反应（呈深棕色），特异准确地定位正在凋亡的细胞，因而在普通显微镜下即可观察和计数凋亡细胞；由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA的断裂，因而没有3'-0H形成，很少能够被染色。
tunel法检测细胞凋亡实验步骤
tunel法检测细胞凋亡实验步骤细胞凋亡是一种重要的生物学过程，它在多种生理和病理情况下发挥着关键作用。
为了研究细胞凋亡的机制和调控，科学家们发展了多种方法来检测细胞凋亡。
其中一种常用的方法是使用tunel法。
本文将介绍tunel法检测细胞凋亡的实验步骤。
实验步骤如下：1. 细胞培养和处理我们需要选择一种适合的细胞系进行实验。
常用的细胞系有HEK293、HeLa和Jurkat等。
将细胞培养在含有适当培养基和补充物的培养皿中，并在37摄氏度、5%二氧化碳的培养箱中培养至细胞密度适当。
在进行实验之前，需要根据实验设计的需要处理细胞。
例如，可以给予细胞不同的处理，如药物刺激、放射线照射或感染病毒等。
2. 固定细胞将处理后的细胞用适当的缓冲液进行固定。
常用的缓冲液有4%的乙醛或4%的甲醛等。
将缓冲液加入培养皿中，使细胞完全覆盖，并在室温下固定15分钟。
3. 洗涤细胞将固定的细胞用磷酸盐缓冲液（PBS）洗涤3次，每次5分钟。
洗涤的目的是去除固定液中的残留物质，以减少后续步骤中的非特异性背景。
4. 使细胞透膜使用蛋白酶K或蛋白酶XXIV等酶将细胞膜上的蛋白质降解，使细胞透膜。
将适量的酶加入细胞中，根据实验的需要，可以调整酶的浓度和作用时间。
一般来说，酶的浓度为20μg/ml，作用时间为30分钟。
5. tunel反应使用tunel试剂盒进行细胞凋亡检测。
tunel试剂盒中含有标记有荧光物质的dUTP，可以与DNA断裂的末端结合。
按照试剂盒说明书的要求，将tunel试剂加入细胞中，与细胞中的DNA断裂末端发生连接反应。
反应时间一般为1-2小时。
6. 洗涤和染色将反应结束后的细胞用PBS洗涤3次，每次5分钟。
然后，可以选择使用荧光染料（如DAPI）染色，以标记细胞核。
将染色液加入细胞中，孵育15分钟后再次用PBS洗涤。
7. 显微镜观察和图像获取将处理后的细胞放置在显微镜载玻片上，并使用合适的显微镜观察细胞。
可以调整显微镜的放大倍数和焦距，以获得清晰的图像。
Tunel染色实验-检测细胞凋亡
Tunel染色操作流程及步骤：实验准备：1、固定溶液：4%的聚甲醛。
2、封闭溶液：3%H2O2的甲醇溶液，共计4ml。
其中30%H2O2 ：甲醇为1:9即：400ul30%H2O2+3.6ml甲醇。
3、透化溶液：0.1g柠檬酸+100mlddH2O+100ulTriston[1]。
实验步骤：1、磷酸盐缓冲液（PBS）洗3次每次5min[2-3]。
2、固定溶液：4%的聚甲醛固定1h[3-5]。
3：PBS洗4次每次7min[3]。
以下步骤全部避光:4、在15-25℃下与封闭溶液200ul孵育10min[3,6]。
5、PBS洗4次每次7min[3]。
6、透化溶液5min（4℃摇床）。
7、PBS洗4次每次7min[3]。
8、tunel溶液配制瓶1：瓶2=1:9（遮光），每孔加200mltunel混合物孵育60min[3,7] 。
8、PBS洗4次每次7min[3]。
9、加DAPI 200ml 15min[3,8]10、PBS洗4次每次7min[3]。
11、荧光显微镜拍片。
待学习…心得体会及注意事项：1、因柠檬酸量太少直接配制所需溶液量误差较大所以配制100ml体系。
2、洗去培养液。
3、加完液后放在摇床上。
4、每孔加200ul4%的聚甲醛。
5、为防止细胞聚集成团，宜在侧摆摇床或水平摇床上缓慢摇动的同时进行固定。
6、封闭细胞内的氧化酶。
7、染凋亡细胞的DNA。
8、DAPI即4',6-二脒基-2-苯基吲哚(4',6-diamidino-2-phenylindole)，能够与DNA强力结合的荧光染料，用于荧光显微镜对比观测。
所有细胞DNA均可染色。
目的及原理目的：检测细胞凋亡原理：TUNLE染色即原位末端转移酶标记技术。
凋亡细胞的DNA双链断裂或一条链出现缺口，产生一系列3′-OH末端，在脱氧核糖核苷酸末端转移酶作用下，将脱氧核糖核苷酸和生物素所形成的衍生物标记到DNA的3′末端，从而进行凋亡细胞的检测。
TUNEL细胞凋亡试剂盒内容及操作步骤精
TUNEL细胞凋亡试剂盒内容及操作步骤精TUNEL（Terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick end labeling）细胞凋亡试剂盒是一种常用的检测细胞凋亡的方法。
本文将介绍TUNEL细胞凋亡试剂盒的内容及操作步骤。
1.引物溶液：含有dUTP（脱氧尿苷三磷酸）的荧光标记的核苷酸。
2.终止缓冲液：用于停止反应和洗涤。
3. TUNEL酶溶液：含有DNA连接酶（terminal deoxynucleotidyl transferase），用于在DNA断裂的末端添加dUTP标记。
4.正对照组：包括经过DNA内切酶处理的组织切片或细胞，用于确定试剂盒的反应情况。
步骤一：取材将需要检测的组织切片或细胞标本取出，放入离心管或培养皿中。
步骤二：固定用4%的冷乙醇或4%的帕拉醛对组织切片或细胞标本进行固定，固定时间为10-30分钟。
步骤三：洗涤用PBS（磷酸盐缓冲液）洗涤固定的样本3次，每次洗涤5分钟。
步骤四：蛋白酶消化对组织切片或细胞标本进行蛋白酶消化，以去除背景蛋白质干扰。
消化时间和消化酶的浓度需要根据实验条件进行优化。
步骤五：洗涤用PBS洗涤样本3次，每次洗涤5分钟。
步骤六：加入TUNEL酶溶液将TUNEL酶溶液滴加到样本上，保持湿润。
反应时间为1-2小时，可以根据实验需要进行优化。
步骤七：终止反应加入终止液停止反应，并用PBS洗涤样本3次，每次洗涤5分钟。
步骤八：显微镜观察将样本用荧光或显色试剂染色，然后用荧光显微镜或普通显微镜观察，并拍摄照片。
步骤九：分析数据使用图像分析软件对显微镜拍摄的照片进行图像分析，在感兴趣区域计算标记的细胞数量，并计算相对细胞凋亡率。
值得注意的是，在进行TUNEL细胞凋亡试剂盒检测时，需要根据实验需要进行优化，如反应时间、荧光染色时间、荧光强度测量等。
此外，为了准确地判断细胞中的凋亡现象，可以与其他细胞凋亡指标一起使用，如Annexin V染色、Caspase活性检测等。
细胞凋亡的六种检查方法
细胞凋亡的六种检查方法一、引言细胞凋亡是一种重要的细胞死亡方式，它在生物体的正常发育和疾病的发生中都起到了重要作用。
因此，对于细胞凋亡的检测方法也成为了科学家们关注的焦点之一。
本文将介绍六种常见的细胞凋亡检测方法。
二、TUNEL法TUNEL法是一种常见的检测DNA断裂和凋亡细胞数量的方法。
它利用末端脱氧核苷酸转移酶(TdT)标记DNA断裂末端，并通过荧光或酶标记来检测。
操作步骤如下：1. 取出样品，并将其固定在载玻片上；2. 用缓冲液进行处理，使得DNA断裂末端暴露出来；3. 加入TdT和dUTP标记物，使得dUTP与DNA断裂末端连接；4. 洗涤样品，并加入抗dUTP抗体标记物；5. 洗涤样品，并观察荧光或颜色变化。
三、Annexin V染色法Annexin V染色法可以同时检测早期和晚期凋亡细胞。
它利用细胞表面磷脂酰肌醇二磷酸(PIP2)的变化，通过Annexin V结合检测细胞凋亡。
操作步骤如下：1. 取出样品，并将其固定在载玻片上；2. 加入Annexin V标记物，使得其与PIP2结合；3. 加入PI染色剂，使得细胞核染色；4. 观察荧光或颜色变化。
四、Caspase活性检测法Caspase活性检测法可以检测细胞内Caspase的活性水平，从而判断凋亡的程度。
操作步骤如下：1. 取出样品，并将其固定在载玻片上；2. 加入Caspase底物和缓冲液，使得Caspase底物被水解；3. 观察荧光或颜色变化。
五、DNA Ladder分析法DNA Ladder分析法可以检测DNA的断裂情况，从而判断凋亡的程度。
操作步骤如下：1. 取出样品，并提取其中的DNA；2. 用琼脂糖凝胶电泳分离DNA，并观察条带形态。
六、电子显微镜观察法电子显微镜观察法可以直接观察细胞的形态和结构变化，从而判断凋亡的程度。
操作步骤如下：1. 取出样品，并进行适当处理；2. 用电子显微镜观察细胞形态和结构变化。
七、总结以上六种方法是常见的细胞凋亡检测方法，每种方法都有其特点和优缺点。
TUNEL细胞凋亡检测_荧光
TUNEL 细胞凋亡检测
1.二甲苯中脱蜡5-10分钟，换用新鲜的二甲苯，再脱蜡5-10分钟，无水乙醇5分钟，
90%乙醇2分钟，70%乙醇2分钟，蒸馏水2分钟。
2.滴加20μg/ml不含DNase的蛋白酶K（用pH7.4~8.0 10mM Tris），20-37℃作用15-30
分钟（不同组织的最佳作用温度和时间需自行摸索），用PBS洗涤3次（注意：这一步必须把蛋白酶K洗涤干净，否则会严重干扰后续的标记反应。
）。
3.标记液准备：从标记液中取100μl作为两个阴性对照，然后将TdT酶溶液（50μl）
加入到剩下的标记液（450μl）中，混匀。
4.样品的标记：在样品上加50μl 生物素标记液，37℃避光孵育60分钟（注意：孵
育时需注意在周围用浸足水的纸或药棉等保持湿润，以尽量减少标记液的蒸发）。
5.用PBS洗涤3次。
6.Mounting media 封片观察染色情况。
1.将细胞爬片在空气中风干，加入4% PFA 室温固定1h，PBS清洗3次。
2.破膜液（0.1% Triton X-100 in 0.1% 柠檬酸钠）4℃破膜2min，PBS清洗三次。
3.标记液准备：从标记液中取100μl作为两个阴性对照，然后将TdT酶溶液（50μl）
加入到剩下的标记液（450μl）中，混匀。
4.DNAase 处理阳性对照片，PBS洗涤三次。
5.样品的标记：在样品上加50μl 荧光标记液，37℃避光孵育60分钟（注意：孵育
时需注意在周围用浸足水的纸或药棉等保持湿润，以尽量减少标记液的蒸发）。
6.用PBS洗涤3次。
7.Mounting media 封片观察染色情况。
罗氏TUNEL使用说明书(中文)
罗氏公司TUNEL细胞凋亡检测程序（In situ cell death detection kit-POD法）一、原理：TUNEL（TdT-mediated dUTP nick end labeling）细胞凋亡检测试剂盒是用来检测组织细胞在凋亡早期过程中细胞核DNA的断裂情况。
其原理是荧光素（fluorescein）标记的dUTP在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT Enzyme）的作用下，可以连接到凋亡细胞中断裂DNA的3’-OH末端，并与连接辣根过氧化酶（HRP，horse-radish peroxidase）的荧光素抗体特异性结合，后者又与HRP底物二氨基联苯胺（DAB）反应产生很强的颜色反应（呈深棕色），特异准确地定位正在凋亡的细胞，因而在光学显微镜下即可观察凋亡细胞；由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA断裂，因而没有3'-OH形成，很少能够被染色。
本试剂盒适用于组织样本（石蜡包埋、冰冻和超薄切片）和细胞样本（细胞涂片）在单细胞水平上的凋亡原位检测。
还可应用于抗肿瘤药的药效评价，以及通过双色法确定细胞死亡类型和分化阶段。
二、器材与试剂器材：光学显微镜及其成像系统、小型染色缸、湿盒（塑料饭盒与纱布）、塑料盖玻片或封口膜、吸管、各种规格的加样器及枪头等；试剂：试剂盒含TdT 10×、荧光素标记的dUTP 1×、标记荧光素抗体的HRP；自备试剂：PBS、双蒸水、二甲苯、梯度乙醇（100、95、90、80、70％）、DAB工作液（临用前配制，5 µl 20×DAB＋1μL30％H2O2＋94 µl PBS）、Proteinase K工作液（10-20 μg/ml in 10 mM Tris/HCl, pH 7.4-8）或细胞通透液（0.1% Triton X-100 in 0.1% sodium citrate，临用前配制）、苏木素或甲基绿、DNase 1（3000 U/ml– 3 U/ml in 50 mM Tris-HCl，pH 7.5, 10 mM MgCl2，1 mg/ml BSA）等。
TUNEL细胞凋亡检测(荧光标记)操作流程
一、TUNEL实验试剂(1)DeadEnd™Fluorometric TUNEL System试剂盒购自Promega公司(产品编号G3250)(2)二甲苯购自国药集团化学试剂有限公司（产品编号80139118，CAS号108-38-3，500ml）(3)无水乙醇购自中国上海生工生物有限公司（产品编号ET0737-500ml）(4) 过氧化氢购自上海生工生物有限公司(产品编号H1976-500ml)(5) Proteinase K购自上海生工生物工程技术服务公司(产品编号BSP169-2ml)(6)多聚甲醛购自上海生工生物有限公司（产品编号PB0684-500g）(7) Propidium iodide购自Sigma（产品编号P4170-10MG）(8) SlowFade® Gold antifade reagent购自Life Technologies（产品编号36936）二、具体实验步骤A. 石蜡包埋组织预处理：1.二甲苯5min (500ml二甲苯)2.二甲苯5min（500ml二甲苯）3.无水乙醇5min（500ml无水乙醇）4.无水乙醇5min（500ml无水乙醇）5.80%乙醇5min（500x0.8=400ml无水乙醇）6.70%乙醇5min（500x0.7=350ml无水乙醇）7.PBS 5min（500ml）8.PBS 5min（500ml）9.PBS 5min（500ml）10.4%多聚甲醛in PBS，15min11.PBS 5min（500ml）12.PBS 5min（500ml）13.Proteinase K in PBS (100ul每个样品，共6ml), 8-10min14.PBS 5min（500ml）15.PBS 5min（500ml）16.4%多聚甲醛in PBS，5min17.PBS 5min18.PBS 5min共105分钟，实际约2个小时B. 凋亡检测1.每个样品，100ul平衡缓冲液覆盖细胞，室温5-10分钟2.在平衡细胞的同时，在冰上解冻核苷混合物，并且依照表1，准备足够量的用于所有实验的和可选阳性对照反应（见4.E节）的rTdT孵育缓冲液。
tunel细胞凋亡率计算
tunel细胞凋亡率计算
摘要：
1.细胞凋亡的概念
2.细胞凋亡率计算的方法
3.Tunel 细胞凋亡率计算的应用
正文：
细胞凋亡是细胞在生命周期中自然死亡的过程，对于生物体生长、发育和维持内环境稳定具有重要意义。
Tunel 细胞凋亡率计算是一种常用于检测细胞凋亡的方法，通过特定的染色技术，对细胞凋亡进行定量分析。
细胞凋亡率计算的方法有很多种，其中Tunel 法是一种较为常用的方法。
它是通过检测细胞内的DNA 断裂来判断细胞是否发生凋亡。
具体操作步骤如下：
(1) 固定细胞：将细胞固定在载玻片上，以保持细胞形态。
(2) 切片：对固定后的细胞进行切片，以便于观察。
(3) 脱脂：用脱脂剂去除细胞内的脂质，以降低背景干扰。
(4) 透化：用Tunel 试剂盒中的透化剂使细胞膜通透，使染色剂能够进入细胞内。
(5) 染色：将细胞内的DNA 断裂部位与荧光染料结合，使细胞内的凋亡信号得以显现。
(6) 封片：将载玻片封片，防止荧光染料挥发和褪色。
(7) 观察与拍照：在荧光显微镜下观察细胞，并记录观察结果。
通过以上步骤，可以对细胞凋亡率进行计算。
Tunel 细胞凋亡率计算在生物医学领域有广泛的应用，如研究细胞凋亡与疾病的关系、药物筛选、生物制品质量控制等。
罗氏公司TUNEL细胞凋亡检测程序
罗氏公司TUNEL细胞凋亡检测程序（In situ cell death detection kit-POD法）原理：TUNEL（TdT-mediated dUTP nick end labeling）细胞凋亡检测试剂盒是用来检测组织细胞在凋亡早期过程中细胞核DNA的断裂情况。
其原理是荧光素（fluorescein）标记的dUTP在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT Enzyme）的作用下，可以连接到凋亡细胞中断裂DNA的3’-OH末端，并与连接辣根过氧化酶（HRP，horse-radish peroxidase）的荧光素抗体特异性结合，后者又与HR P底物二氨基联苯胺（DAB）反应产生很强的颜色反应（呈深棕色），特异准确地定位正在凋亡的细胞，因而在光学显微镜下即可观察凋亡细胞；由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA断裂，因而没有3‘-OH形成，很少能够被染色。
本试剂盒适用于组织样本（石蜡包埋、冰冻和超薄切片）和细胞样本（细胞涂片）在单细胞水平上的凋亡原位检测。
还可应用于抗肿瘤药的药效评价，以及通过双色法确定细胞死亡类型和分化阶段。
器材与试剂器材：光学显微镜及其成像系统、小型染色缸、湿盒（塑料饭盒与纱布）、塑料盖玻片或封口膜、吸管、各种规格的加样器及枪头等；试剂：试剂盒含TdT 10×、荧光素标记的dUTP 1×、标记荧光素抗体的HRP；自备试剂：PBS、双蒸水、二甲苯、梯度乙醇（100、95、90、80、70%）、D AB工作液（临用前配制，5 μl 20×DAB+1μL 30%H2O2+94 μl PBS）、Prot einase K工作液（10-20 μg/ml in 10 mM Tris/HCl，pH 7.4-8）或细胞通透液（0.1% Triton X-100 in 0.1% sodium citrate，临用前配制）、苏木素或甲基绿、DNase 1（3000 U/ml–3 U/ml in 50 mM Tris-HCl，pH 7.5，10 m M MgCl2，1 mg/ml BSA）等。
TUNEL细胞凋亡原位检测试剂盒说明书
TUNEL细胞凋亡原位检测试剂盒(通用)（BIOTIN标记POD法,适用于细胞、组织样本）一 TUNEL检测原理凯基TUNEL细胞凋亡检测试剂盒是用来检测细胞在凋亡过程中细胞核DNA的断裂情况，其原理是生物素（biotin）标记的dUTP在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT Enzyme）的作用下,可以连接到凋亡细胞中断裂的DNA的3‘－OH末端，并可与连接了的辣根过氧化酶的链霉亲和素（Streptavidin-HRP）特异结合，在辣根过氧化酶底物二氨基联苯胺（DAB）的存在下，产生很强的颜色反应（呈深棕色），特异准确地定位正在凋亡的细胞，因而在普通显微镜下即可观察和计数凋亡细胞；由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA的断裂，因而没有3'-OH形成，很少能够被染色。
本试剂盒适用于组织样本（石蜡包埋、冰冻和超薄切片）和细胞样本（细胞涂片）的凋亡原位检测。
二 TUNEL试剂盒组分组份20 assays 50 assays 100 assays 储存条件Equilibration Buffer 1.0 mL 2.5 mL 5.0 mL -20℃Biotin-11-dUTP 20μL 50μL 100μL -20℃TdT Enzyme 80μL 200μL 400μL -20℃50×Proteinase K40μL 100μL 200μL -20℃Streptavidin-HRP 10μL 25μL 50μL 4℃避光DAB 2mg 5mg 10 mg -20℃注意事项1 使用前请认真阅读本说明书，提前准备好相关试剂。
2 因本试剂盒中组分均为微量，使用前请离心集液。
3 为避免试验误差、降低试剂的损耗，建议使用精密度高的进口微量移液枪及枪头。
4 TdT 酶反应液最好在使用前根椐样本数量集中配制，再分别滴加于各样本片上，避免每个样本单独配制而产生的试剂损耗。
5 另因DAB为固体粉末，使用前加入适量PBS溶解，配制成20×DAB（10 mg/ml）后，按下述方法显色使用。
TUNEL 法测凋亡操作步骤
TUNEL 法测凋亡操作步骤一、TUNEL检测原理TUNEL 细胞凋亡检测试剂盒是采用非同位素方法来检测细胞在凋亡过程中DNA 的断裂情况，可在原位快速准确地检测单个凋亡细胞。
本试剂盒适用于组织样本（石蜡包埋、冰冻和超薄切片）和细胞样本（细胞涂片）的凋亡原位检测。
其原理是细胞凋亡发生时，内源性核酸酶激活，使DNA的双链断裂或一条链出现缺口，产生一系列3’-OH末端，在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT）作用下，组织细胞原位DNA切口可被标记上生物素-dUTP，即TUNEL（Terminal deoxynucleotidyl TransferaseBiotin-dUTP Nick End Labeling），可与连接了的辣根过氧化酶的链霉亲和素（Streptavidin-HRP）特异结合，在辣根过氧化酶底物二氨基联苯胺（DAB）的存在下，显示为棕色（过氧化物酶活性），特异准确地定位正在凋亡的细胞，在普通显微镜下即可观察和计数凋亡细胞；由于正的或正在增殖的细胞几乎没有DNA 的断裂，因而没有3'-OH 形成，很少能够被染色。
二、试剂盒组份组份10 assays25 assays 储存条件A：Equilibration Buffer 1.0 mL 2.5 mL -20 ℃B：Biotinylated Nucleotide Mix 10 μL 25 μL -20 ℃C：TdT Enzyme 10 μL 25 μL -20 ℃D：500×Proteinase K 10 μL 25 μL -20 ℃20×SSC 15 mL 38mL 4 ℃E：Streptavidin-HRP 10 μL 25 μL 4 ℃F：20×DAB Substrate Buffer 50 μL 125 μL 4 ℃G：20×DAB Chromogen 50 μL 125 μL 4 ℃H：20×Hydrogen Peroxide 50 μL 125 μL4 ℃三、操作流程1.操作流程概览2.细胞样本制备准备：● PBS：8.0g NaCl， 0.2 g KCl， 1.44g Na2HPO4，0.24g KH2PO4，溶于800ml去离子水中，HCl调pH至7.4，加水定容至1L。
TUNEL细胞凋亡试剂盒内容及操作步骤
TUNEL细胞凋亡试剂盒内容及操作步骤一、试剂盒内容2.终止缓冲液：用于停止DNA链的合成反应，防止假阳性结果的产生。
3.蛋白酶K：用于溶解细胞质膜和核膜，使DNA暴露出来。
4.异硫氰酸荧光素（FITC）标记转移酶：用于检测dUTP与DNA标记的连接。
5.正控组织切片或细胞悬液：用于检验试剂盒的敏感性和特异性。
二、操作步骤1.细胞处理将要测试的细胞分成实验组和对照组，分别处理。
实验组是要测试凋亡的细胞，对照组是不会凋亡的细胞。
2.固定细胞用4%的乙醛或无氧乙醛等适当浓度的固定液固定细胞。
涂片上的细胞需要进行细胞穿孔，可以使用0.1%的Triton X-100进行细胞穿孔。
3.蛋白酶K消化将蛋白酶K溶解在PBS缓冲液中，加入溶液中胶原酶和蛋白酶蚀解，接着加入盛有细胞的离心管中。
将离心管放入37℃恒温水浴中，反应20-30分钟。
4.清洗细胞用PBS缓冲液洗涤细胞3次。
每次用PBS缓冲液冲洗细胞5分钟。
5.脱水将细胞离心，抽去PBS缓冲液，然后使用3%的过氧化氢来进行脱水。
6.TUNEL染色将细胞加入等量的TUNEL试剂液，轻轻混合后，将离心管放入37℃恒温水浴中，反应30-60分钟。
7.洗涤细胞用PBS缓冲液洗涤细胞3次。
每次用PBS缓冲液冲洗细胞5分钟。
8.反应终止使用终止缓冲液反应终止DNA链合成反应，将离心管放入室温中静置10分钟。
9.洗涤细胞用PBS缓冲液洗涤细胞3次。
每次用PBS缓冲液冲洗细胞5分钟。
10.展片与观察将细胞滴在载玻片上，并加入封片缓冲液。
在载玻片上覆盖盖玻片，用显微镜观察。
通过上述步骤，可以使用TUNEL细胞凋亡试剂盒对细胞进行凋亡分析。
该试剂盒可根据DNA末端的3'-OH羟基与终止缓冲液中标记的dUTP之间的连接，用显微镜观察细胞内是否存在凋亡现象。
荧光标记的dUTP可通过荧光显微镜直接观察，而酶标记的dUTP则需要加入相应的底物，通过酶的催化反应后可通过光学密度法或荧光显微镜来定量测定。
罗氏公司TUNEL细胞凋亡检测程序
罗氏公司TUNEL细胞凋亡检测程序细胞凋亡是生物体内一个自然而常见的程序性死亡过程，它在许多不同的情况下发生，如细胞发育、成熟和肿瘤。
目前发现的细胞凋亡方式有三种：凋亡小体途径、线粒体途径和内质网途径，它们的共同特点是在细胞死亡的过程中释放出很多旁泉酯酶（DNase）和酶联蛋白（ELP），并且同时伴随着核酸的降解、膜表面的翻转和蛋白酶的活化等，这些对于细胞凋亡的检测提供了许多途径和方法。
TUNEL细胞凋亡检测程序是细胞凋亡的常用检测技术之一，采用基于末端脱氧核糖核酸（TUNEL）的特异性核酸检测方法来检测细胞凋亡。
该方法是在细胞凋亡过程中DNA断裂，出现大量自由3’OH末端引导核酸聚合酶独特标记的文库和浓缩。
在该检测程序下，使用了可以不依赖载体的TDT（终端脱氧核糖核酸转移酶）作为核苷酸的生物素化酶，使断裂的DNA末端和蛋白质之间牢固地结合，从而得到了一种可以从细胞中清除的标记DNA分子。
标记DNA可经过染色和流式细胞术检测。
TUNEL技术的优点在于，可以很方便地用来评估细胞凋亡的水平，同时TUNEL技术也具有很高的灵敏度和特异性，可以检测到细胞凋亡的早期阶段。
此外，与许多其他的技术相比，TUNEL技术非常简单、可靠、灵活、快速以及有用。
因此，TUNEL技术被广泛应用于肿瘤、免疫、结构、神经系统和其他疾病等方面的研究。
罗氏公司TUNEL细胞凋亡检测程序采用随机扫描的激光共聚焦显微镜技术，可以在单个细胞水平上直接观察细胞凋亡的过程以及细胞内部的一些分子结构的可视化。
除此之外，该检测程序所采用的标记分子还可以被使用于定量荧光显微镜、流式细胞术和凝胶电泳等其他多种检测技术中。
总的来说，罗氏公司TUNEL细胞凋亡检测程序是一个性能非常高的细胞凋亡检测技术，主要应用于医学和生命科学领域的研究中。
在很多疾病治疗和药物研发方面，TUNEL技术可以为研究人员提供极为重要的信息，因此该技术的发展前景仍然非常广阔。
tunel实验流程
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TUNEL法检测细胞凋亡实验原理和方法tunel完成
TUNEL的原理 TUNEL的操作步骤 结果及注意事项
主要试剂
1. 缓冲液(Labeling Buffer)：
用于维持一定的反应条件，含有以下成分：500mmol/L二甲胂酸钾、 pH7.2 10mmol/L CoCl2 (氯化钴)、1mmol/L DTT(二硫苏糖醇)。
2.末端脱氧核糖核酸转移酶(TdT) ：
TUNEL的原理是：用荧光素（fluorescein）标记的脱 氧核糖核苷酸，在TdT 的作用下连接到凋亡细胞中 断裂DNA的3’-OH末端，用荧光显微镜即可观察结 果。在此基础上连接辣根过氧化酶标记的荧光素抗 体，可进一步放大检测信号，并且普通显微镜观察 实验结果。由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有 DNA的断裂，因而没有3’-OH形成，很少能够被染 色。
TUNEL原理
标 ’-OH末端 dUTP反应的关键酶
3.荧光素-dUTP ：
TdT的底物和本实验的标记物
4.蛋白酶K：
消化组织，增加细胞通透性
TUNEL的原理
凋亡细胞的特征是:内源性核酸内切酶被激活，细胞 自身的染色质DNA被切割，出现单链或双链缺口， 并产生与DNA断点数目相同的 3’-OH末端 。末端 脱氧核糖核酸转移酶(Terminal deoxynucleotidyl Transferase TdT)能将脱氧核糖核苷酸连接到DNA 的3’-末端。
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一、TUNEL实验试剂
(1)DeadEnd™Fluorometric TUNEL System试剂盒购自Promega公司(产品编号G3250)
(2)二甲苯购自国药集团化学试剂有限公司（产品编号80139118，CAS号108-38-3，500ml）
(3)无水乙醇购自中国上海生工生物有限公司（产品编号ET0737-500ml）
(4) 过氧化氢购自上海生工生物有限公司(产品编号H1976-500ml)
(5) Proteinase K购自上海生工生物工程技术服务公司(产品编号BSP169-2ml)
(6)多聚甲醛购自上海生工生物有限公司（产品编号PB0684-500g）
(7) Propidium iodide购自Sigma（产品编号P4170-10MG）
(8) SlowFade® Gold antifade reagent购自Life Technologies（产品编号36936）
二、具体实验步骤
A. 石蜡包埋组织预处理：
1.二甲苯5min (500ml二甲苯)
2.二甲苯5min（500ml二甲苯）
3.无水乙醇5min（500ml无水乙醇）
4.无水乙醇5min（500ml无水乙醇）
5.80%乙醇5min（500x0.8=400ml无水乙醇）
6.70%乙醇5min（500x0.7=350ml无水乙醇）
7.PBS 5min（500ml）
8.PBS 5min（500ml）
9.PBS 5min（500ml）
10.4%多聚甲醛in PBS，15min
11.PBS 5min（500ml）
12.PBS 5min（500ml）
13.Proteinase K in PBS (100ul每个样品，共6ml), 8-10min
14.PBS 5min（500ml）
15.PBS 5min（500ml）
16.4%多聚甲醛in PBS，5min
17.PBS 5min
18.PBS 5min
共105分钟，实际约2个小时
B. 凋亡检测
1.每个样品，100ul平衡缓冲液覆盖细胞，室温5-10分钟
2.在平衡细胞的同时，在冰上解冻核苷混合物，并且依照表1，准备足够量的用于所有实验
的和可选阳性对照反应（见4.E节）的rTdT孵育缓冲液。
对于面积小于5cm2的一个标准反应，其体积是50μl，用50μl乘上实验和阳性对照反应的数目来确定所需rTdT孵育缓冲液的总体积。
对于表面积更大的样本，可成比例的增大试剂体积。
注意：将核苷混合物和rTdT孵育缓冲溶液放置于冰上，避光。
适用于阴性对照：准备一份不含rTdT酶的对照孵育缓冲液：混合45μl平衡缓冲液、5μl 核苷混合物和1μl高压灭菌的去离子水。
（阴性对照孵育缓冲液的最终体积足够一份标准的50μl反应。
）
3.在平衡后的区域周围用吸水纸吸掉100μl平衡缓冲液中的大部分，然后在5cm2
面积的细胞上加上50μl rTdT孵育缓冲液。
不要让细胞干掉。
注意：塑料盖玻片在使用前可以切成两半。
折起盖玻片的边缘以便于移除和操作。
在第3步完成之后，载玻片要避光。
4.把塑料盖玻片盖在细胞上以保证试剂的平均分布。
在湿盒的底部放上用水浸湿的纸巾。
将载玻片置于湿盒内，在37°C孵育60分钟发生加尾反应。
将湿盒用铝箔纸包裹以避免光照。
5.用去离子水1:10稀释20X SSC，加入足量配好的2X SSC装满一个标准的染色缸（40ml）。
移除塑料盖玻片，将载玻片浸入染色缸中的2X SSC，室温放置15分钟以终止反应。
确保20X SSC的全部盐类在稀释之前都是溶解的
6.洗涤样本，将载玻片浸入新鲜的PBS中，室温放置5分钟。
重复两次，总共洗三次以去除未掺入的荧光素-12-脱氧三磷酸尿苷。
7.样本在染色缸中染色，在黑暗中将载玻片浸入装有40ml碘化丙啶溶液的染色缸，室温放置15分钟，此处碘化丙啶溶液是用PBS新配稀释到1μg/ml的。
8.洗涤样本，将载玻片浸入去离子水中，室温放置5分钟
9.洗涤样本，将载玻片浸入去离子水中，室温放置5分钟
10.洗涤样本，将载玻片浸入去离子水中，室温放置5分钟
11.加Antifade封片。