TUNEL法检测细胞凋亡
tunel法检测细胞凋亡实验步骤
tunel法检测细胞凋亡实验步骤细胞凋亡是一种重要的生物学过程，它在多种生理和病理情况下发挥着关键作用。
为了研究细胞凋亡的机制和调控，科学家们发展了多种方法来检测细胞凋亡。
其中一种常用的方法是使用tunel法。
本文将介绍tunel法检测细胞凋亡的实验步骤。
实验步骤如下：1. 细胞培养和处理我们需要选择一种适合的细胞系进行实验。
常用的细胞系有HEK293、HeLa和Jurkat等。
将细胞培养在含有适当培养基和补充物的培养皿中，并在37摄氏度、5%二氧化碳的培养箱中培养至细胞密度适当。
在进行实验之前，需要根据实验设计的需要处理细胞。
例如，可以给予细胞不同的处理，如药物刺激、放射线照射或感染病毒等。
2. 固定细胞将处理后的细胞用适当的缓冲液进行固定。
常用的缓冲液有4%的乙醛或4%的甲醛等。
将缓冲液加入培养皿中，使细胞完全覆盖，并在室温下固定15分钟。
3. 洗涤细胞将固定的细胞用磷酸盐缓冲液（PBS）洗涤3次，每次5分钟。
洗涤的目的是去除固定液中的残留物质，以减少后续步骤中的非特异性背景。
4. 使细胞透膜使用蛋白酶K或蛋白酶XXIV等酶将细胞膜上的蛋白质降解，使细胞透膜。
将适量的酶加入细胞中，根据实验的需要，可以调整酶的浓度和作用时间。
一般来说，酶的浓度为20μg/ml，作用时间为30分钟。
5. tunel反应使用tunel试剂盒进行细胞凋亡检测。
tunel试剂盒中含有标记有荧光物质的dUTP，可以与DNA断裂的末端结合。
按照试剂盒说明书的要求，将tunel试剂加入细胞中，与细胞中的DNA断裂末端发生连接反应。
反应时间一般为1-2小时。
6. 洗涤和染色将反应结束后的细胞用PBS洗涤3次，每次5分钟。
然后，可以选择使用荧光染料（如DAPI）染色，以标记细胞核。
将染色液加入细胞中，孵育15分钟后再次用PBS洗涤。
7. 显微镜观察和图像获取将处理后的细胞放置在显微镜载玻片上，并使用合适的显微镜观察细胞。
可以调整显微镜的放大倍数和焦距，以获得清晰的图像。
TUNEL法检测细胞凋亡实验原理和方法
检测晚期凋亡.基本原理：对不同组织切片先增加细胞膜通透性，然后让和标记地进入细胞内，在地辅助下与核断裂地’结合，再用标记地链霉亲和素与上结合（每个链霉亲和素至少可以再结合个分子），最后用、过氧化氢与上地辣根过氧化物酶发生氧化、环化反应，形成苯乙肼聚合物而呈现棕褐色，最终通过计数每张切片上不同视野中阳性细胞地比例来判断细胞凋亡发生情况.罗氏试剂盒一、试剂、酶浓缩溶液×μ——末端脱氧核糖核酸转移酶（×）试剂、标记溶液×μ——含有核苷酸混合液地反应液（×）试剂、转化剂——酶标记抗荧光素抗体（即用型，融后℃保存）二、所需地溶液和仪器（）、配制、、饭盒、吹风机、甲醇溶液、、盖玻片、中性树胶、苏木素、二甲苯和无水乙醇（用量多）、双蒸水（用以配梯度酒精）, 充分脱蜡和水化.脱蜡可以先度，石蜡切片于染色缸中，二甲苯浸洗次共、、、、乙醇浸洗×；②过氧化氢甲醇中浸洗，抑制内源性过氧化氢酶.③用蛋白酶（μ溶于中，）室温孵育分钟.④洗约*次，擦干样品周围地水.此阶段配制反应混合物——从试剂中取出μ标记溶液作为两个阴性对照；将试剂中取μ试剂中μ标记液中，配成μ 反应混合物混匀（即配即用，℃避光！）⑤标记反应：滴加μ地反应混合液，在湿盒中℃孵育分钟（为防蒸发和保证反应混合物均匀分布，可以在孵育过程中加盖盖玻片）.洗*次，至此样品可在荧光镜下（绿色）分析结果.⑥信号转化和分析：擦干样品周围地水分，加入转化剂，湿盒中℃孵育分钟（可以在孵育过程中加盖盖玻片）.洗*次⑦加入μ 底物溶液，室温（℃）孵育，洗*次.（苏木素染秒，以免视野全染，需要摸索条件）⑧中性树胶或者甘油封片（在封片前可以复染），光镜下分析结果.•稳定性：反应混合物需在使用前立即制备，不能储存，配好地此液体必须将放入冰浴中.个人收集整理勿做商业用途、转化剂（即用型）：一旦融化此液体，需在℃保存（最多保存个月），并且不能反复冻存. 蛋白酶一般工作液浓度为,但浓缩液可配制，可用配制，也可用蛋白酶缓冲液（）；注意：)蛋白酶可以帮助渗透组织，但延长孵育时间可能导致切片脱落（）,所以要最优化孵育时间长短.时间一般为，左右地片子可以用，但左右地可用，最终通过摸索最佳时间.过长易脱片、过短起不到通透效果.)对于比较困难地组织，可以选用地枸橼酸盐缓冲液进行修复（石蜡切片无必要用），需修复)对照：阴性对照：经过固定和通透地细胞样品加入μ试剂以代替反应混合物，从标记步骤以下同上.阳性对照：经过固定和通透地细胞样品用细球菌地核酸酶或使之产生链缺口，从标记步骤以下同上.)操作流程：常规脱蜡、脱水处理——冲洗样品——滴加反应混合物，℃孵育分钟——冲洗样品——选择：荧光镜下观察分析——滴加转化剂，℃孵育分钟——洗样品——滴加底物溶液，室温孵育分钟——光镜下分析结果)假阳性多地原因有很多：封闭不全、显色时间过长等原因假阳性严重，可能原因应该是孵育时间过长，建议首先排除之，同时加强浸洗)显色时间:（）显色时间不是固定地，主要由显微镜下控制显色时间，到出现浅棕色本底时即可冲洗；（）显色时间很短（如几秒或几十秒）就出现很深地棕褐色，这很可能说明你地抗体浓度过高或抗体孵育时间过长，需要下调抗体浓度或缩短你地抗体孵育时间；（）此外，若很短时间就出现背景很深，还有可能你前面地封闭非特异性蛋白不全，需要延长封闭时间；（）显色时间很长（如超过十几分钟）才出现阳性染色，一方面可能说明你地抗体浓度过低或孵育时间过短（最好一抗度过夜）；另一方面就是封闭时间过长.)脱片产生地原因和如何防止脱片:（）多聚赖氨酸玻片质量地问题.我原先是买地，迈新按说也是不错地，可是都脱成什么样子了.后面补做第二批时用地病理科老师自己做地片子，要好一点.（）组织切地不好，切片机地问题例如比较老地旧地机器切地厚或者不均匀，或者切片者手法不好等.（）组织地问题，越是有坏死之类越容易脱.（）没烤好，时间短温度不够之类.（）操作地时候甩地太猛了，有脱片嫌疑地片子最好不甩或轻轻甩，用卫生纸从边缘上慢慢吸水.（）此外，一旦见到有组织漂起来操作就更加要谨慎，用地时候尽量用泡地，不要冲.个人收集整理勿做商业用途。
TUNEL细胞凋亡检测试剂盒(显色法)说明书
TUNEL 细胞凋亡检测试剂盒(显色法)产品编号 产品名称包装 C1098TUNEL 细胞凋亡检测试剂盒(显色法)50次产品简介：碧云天生产的显色法TUNEL 细胞凋亡检测试剂盒(Colorimetric TUNEL Apoptosis Assay Kit)为您提供了一种高灵敏度又快速简便的细胞凋亡检测方法。
对于待检测的细胞或组织样品，经过生物素标记和后续的DAB 显色等步骤，即可在普通光学显微镜下观察到凋亡细胞。
细胞在发生凋亡时，会激活一些DNA 内切酶，这些内切酶会切断核小体间的基因组DNA 。
细胞凋亡时抽提DNA 进行电泳检测，可以发现180-200bp 的DNA ladder 。
基因组DNA 断裂时，暴露的3'-OH 可以在末端脱氧核苷酸转移酶(Terminal Deoxynucleotidyl Transferase, TdT)的催化下加上生物素(Biotin)标记的dUTP(Biotin-dUTP)，随后和辣根过氧化物酶(HRP)标记的Streptavidin (Streptavidin-HRP)结合，最后在HRP 的催化下通过DAB 显色来显示凋亡细胞，从而可以通过普通光学显微镜检测到凋亡的细胞，这就是TUNEL(TdT-mediated dUTP Nick-End Labeling)法检测细胞凋亡的原理。
本试剂盒有如下优点。
(1) 高灵敏度：背景染色极低，阳性染色强，可以在单细胞水平检测到细胞凋亡，同时由于凋亡早期就有DNA 断裂，可以检测到早期的细胞凋亡。
(2) 特异性好：TUNEL 检测时通常更容易标记凋亡细胞，而不容易标记坏死细胞。
(3) 快速：仅需约2-3个小时即可完成。
(4) 应用范围广：可以用于检测冷冻或石蜡切片中的细胞凋亡情况，也可以检测培养的贴壁细胞或悬浮细胞的凋亡情况。
(5) 实测效果好：参考图1。
图1. 本试剂盒的检测效果图。
A. HeLa 细胞未处理或用DNase I 室温孵育10分钟后的检测效果图。
Tunel染色实验-检测细胞凋亡
Tunel染色操作流程及步骤：实验准备：1、固定溶液：4%的聚甲醛。
2、封闭溶液：3%H2O2的甲醇溶液，共计4ml。
其中30%H2O2 ：甲醇为1:9即：400ul30%H2O2+3.6ml甲醇。
3、透化溶液：0.1g柠檬酸+100mlddH2O+100ulTriston[1]。
实验步骤：1、磷酸盐缓冲液（PBS）洗3次每次5min[2-3]。
2、固定溶液：4%的聚甲醛固定1h[3-5]。
3：PBS洗4次每次7min[3]。
以下步骤全部避光:4、在15-25℃下与封闭溶液200ul孵育10min[3,6]。
5、PBS洗4次每次7min[3]。
6、透化溶液5min（4℃摇床）。
7、PBS洗4次每次7min[3]。
8、tunel溶液配制瓶1：瓶2=1:9（遮光），每孔加200mltunel混合物孵育60min[3,7] 。
8、PBS洗4次每次7min[3]。
9、加DAPI 200ml 15min[3,8]10、PBS洗4次每次7min[3]。
11、荧光显微镜拍片。
待学习…心得体会及注意事项：1、因柠檬酸量太少直接配制所需溶液量误差较大所以配制100ml体系。
2、洗去培养液。
3、加完液后放在摇床上。
4、每孔加200ul4%的聚甲醛。
5、为防止细胞聚集成团，宜在侧摆摇床或水平摇床上缓慢摇动的同时进行固定。
6、封闭细胞内的氧化酶。
7、染凋亡细胞的DNA。
8、DAPI即4',6-二脒基-2-苯基吲哚(4',6-diamidino-2-phenylindole)，能够与DNA强力结合的荧光染料，用于荧光显微镜对比观测。
所有细胞DNA均可染色。
目的及原理目的：检测细胞凋亡原理：TUNLE染色即原位末端转移酶标记技术。
凋亡细胞的DNA双链断裂或一条链出现缺口，产生一系列3′-OH末端，在脱氧核糖核苷酸末端转移酶作用下，将脱氧核糖核苷酸和生物素所形成的衍生物标记到DNA的3′末端，从而进行凋亡细胞的检测。
TUNEL细胞凋亡试剂盒内容及操作步骤精
TUNEL细胞凋亡试剂盒内容及操作步骤精TUNEL（Terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick end labeling）细胞凋亡试剂盒是一种常用的检测细胞凋亡的方法。
本文将介绍TUNEL细胞凋亡试剂盒的内容及操作步骤。
1.引物溶液：含有dUTP（脱氧尿苷三磷酸）的荧光标记的核苷酸。
2.终止缓冲液：用于停止反应和洗涤。
3. TUNEL酶溶液：含有DNA连接酶（terminal deoxynucleotidyl transferase），用于在DNA断裂的末端添加dUTP标记。
4.正对照组：包括经过DNA内切酶处理的组织切片或细胞，用于确定试剂盒的反应情况。
步骤一：取材将需要检测的组织切片或细胞标本取出，放入离心管或培养皿中。
步骤二：固定用4%的冷乙醇或4%的帕拉醛对组织切片或细胞标本进行固定，固定时间为10-30分钟。
步骤三：洗涤用PBS（磷酸盐缓冲液）洗涤固定的样本3次，每次洗涤5分钟。
步骤四：蛋白酶消化对组织切片或细胞标本进行蛋白酶消化，以去除背景蛋白质干扰。
消化时间和消化酶的浓度需要根据实验条件进行优化。
步骤五：洗涤用PBS洗涤样本3次，每次洗涤5分钟。
步骤六：加入TUNEL酶溶液将TUNEL酶溶液滴加到样本上，保持湿润。
反应时间为1-2小时，可以根据实验需要进行优化。
步骤七：终止反应加入终止液停止反应，并用PBS洗涤样本3次，每次洗涤5分钟。
步骤八：显微镜观察将样本用荧光或显色试剂染色，然后用荧光显微镜或普通显微镜观察，并拍摄照片。
步骤九：分析数据使用图像分析软件对显微镜拍摄的照片进行图像分析，在感兴趣区域计算标记的细胞数量，并计算相对细胞凋亡率。
值得注意的是，在进行TUNEL细胞凋亡试剂盒检测时，需要根据实验需要进行优化，如反应时间、荧光染色时间、荧光强度测量等。
此外，为了准确地判断细胞中的凋亡现象，可以与其他细胞凋亡指标一起使用，如Annexin V染色、Caspase活性检测等。
细胞凋亡的六种检查方法
细胞凋亡的六种检查方法一、引言细胞凋亡是一种重要的细胞死亡方式，它在生物体的正常发育和疾病的发生中都起到了重要作用。
因此，对于细胞凋亡的检测方法也成为了科学家们关注的焦点之一。
本文将介绍六种常见的细胞凋亡检测方法。
二、TUNEL法TUNEL法是一种常见的检测DNA断裂和凋亡细胞数量的方法。
它利用末端脱氧核苷酸转移酶(TdT)标记DNA断裂末端，并通过荧光或酶标记来检测。
操作步骤如下：1. 取出样品，并将其固定在载玻片上；2. 用缓冲液进行处理，使得DNA断裂末端暴露出来；3. 加入TdT和dUTP标记物，使得dUTP与DNA断裂末端连接；4. 洗涤样品，并加入抗dUTP抗体标记物；5. 洗涤样品，并观察荧光或颜色变化。
三、Annexin V染色法Annexin V染色法可以同时检测早期和晚期凋亡细胞。
它利用细胞表面磷脂酰肌醇二磷酸(PIP2)的变化，通过Annexin V结合检测细胞凋亡。
操作步骤如下：1. 取出样品，并将其固定在载玻片上；2. 加入Annexin V标记物，使得其与PIP2结合；3. 加入PI染色剂，使得细胞核染色；4. 观察荧光或颜色变化。
四、Caspase活性检测法Caspase活性检测法可以检测细胞内Caspase的活性水平，从而判断凋亡的程度。
操作步骤如下：1. 取出样品，并将其固定在载玻片上；2. 加入Caspase底物和缓冲液，使得Caspase底物被水解；3. 观察荧光或颜色变化。
五、DNA Ladder分析法DNA Ladder分析法可以检测DNA的断裂情况，从而判断凋亡的程度。
操作步骤如下：1. 取出样品，并提取其中的DNA；2. 用琼脂糖凝胶电泳分离DNA，并观察条带形态。
六、电子显微镜观察法电子显微镜观察法可以直接观察细胞的形态和结构变化，从而判断凋亡的程度。
操作步骤如下：1. 取出样品，并进行适当处理；2. 用电子显微镜观察细胞形态和结构变化。
七、总结以上六种方法是常见的细胞凋亡检测方法，每种方法都有其特点和优缺点。
TUNEL细胞凋亡检测_荧光
TUNEL 细胞凋亡检测
1.二甲苯中脱蜡5-10分钟，换用新鲜的二甲苯，再脱蜡5-10分钟，无水乙醇5分钟，
90%乙醇2分钟，70%乙醇2分钟，蒸馏水2分钟。
2.滴加20μg/ml不含DNase的蛋白酶K（用pH7.4~8.0 10mM Tris），20-37℃作用15-30
分钟（不同组织的最佳作用温度和时间需自行摸索），用PBS洗涤3次（注意：这一步必须把蛋白酶K洗涤干净，否则会严重干扰后续的标记反应。
）。
3.标记液准备：从标记液中取100μl作为两个阴性对照，然后将TdT酶溶液（50μl）
加入到剩下的标记液（450μl）中，混匀。
4.样品的标记：在样品上加50μl 生物素标记液，37℃避光孵育60分钟（注意：孵
育时需注意在周围用浸足水的纸或药棉等保持湿润，以尽量减少标记液的蒸发）。
5.用PBS洗涤3次。
6.Mounting media 封片观察染色情况。
1.将细胞爬片在空气中风干，加入4% PFA 室温固定1h，PBS清洗3次。
2.破膜液（0.1% Triton X-100 in 0.1% 柠檬酸钠）4℃破膜2min，PBS清洗三次。
3.标记液准备：从标记液中取100μl作为两个阴性对照，然后将TdT酶溶液（50μl）
加入到剩下的标记液（450μl）中，混匀。
4.DNAase 处理阳性对照片，PBS洗涤三次。
5.样品的标记：在样品上加50μl 荧光标记液，37℃避光孵育60分钟（注意：孵育
时需注意在周围用浸足水的纸或药棉等保持湿润，以尽量减少标记液的蒸发）。
6.用PBS洗涤3次。
7.Mounting media 封片观察染色情况。
TUNEL法检测细胞凋亡
细胞在发生凋亡时，会激活一些DNA内切酶，这些内切酶会切断核小体间的基因组DNA。
基因组DNA断裂时，暴露的3’-OH可以在末端脱氧核苷酸转移酶(Terminal Deoxynucleotidyl Transferase,TdT)的催化下加上荧光素(FITC)标记的dUTP(fluorescein-dUTP)，从而可以通过荧光显微镜或流式细胞仪进行检测，这就是TUNEL 法检测细胞凋亡的原理。
TUNEL法特异性检测细胞凋亡时产生的DNA断裂，但不会检测出射线等诱导的DNA断裂(和细胞凋亡时的断裂方式不同)。
这样一方面可以把凋亡和坏死区分开，另一方面也不会把射线等诱导发生DNA断裂的非凋亡细胞判断为凋亡细胞。
针对问题2（TUNEL法的实验原理是什么？）：基本原理：对不同组织切片先增加细胞膜通透性，然后让rTDT和bio标记的dUTP进入细胞内，在rTDT的辅助下dUTP与核断裂的DNA 3’-OH结合，再用HRP标记的链霉亲和素与dUTP上的biotin结合（每个链霉亲和素至少可以再结合3个biotin分子），最后用DAB、过氧化氢与SP上的辣根过氧化物酶HRP发生氧化、环化反应，形成苯乙肼聚合物而呈现棕褐色，最终通过计数每张切片上不同视野中TUNEL阳性细胞的比例来判断细胞凋亡发生情况。
1.TUNEL工作原理：简单说就是——TUNEL细胞凋亡检测试剂盒是用来检测细胞在凋亡过程中细胞核DNA的断裂情况。
其原理是；生物素（biotin）标记的dUTP在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT Enzyme）的作用下,可以连接到凋亡细胞中断裂的DNA的3'－OH末端，并可与连接了的辣根过氧化酶的链霉亲和素（Streptavidin-HRP）特异结合，在辣根过氧化酶底物二氨基联苯胺（DAB）的存在下，产生很强的颜色反应（呈深棕色），特异准确地定位正在凋亡的细胞，因而在普通显微镜下即可观察和计数凋亡细胞；由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA的断裂，因而没有3'-OH形成，很少能够被染色。
tunel和dapi染色原理
TUNEL 和 DAPI 染色原理近年来，细胞生物学和病理学领域的研究对于细胞凋亡和核酸染色方法的需求逐渐增加。
TUNEL 和 DAPI 染色方法作为常用的细胞学染色技术，被广泛运用于细胞凋亡和核酸检测方面。
下面将对 TUNEL 和DAPI 染色原理进行详细介绍。
TUNEL（Terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP Nick End Labeling）染色原理：1. TUNEL 染色原理概述TUNEL 技术是一种用于检测细胞凋亡的方法。
在细胞凋亡过程中，DNA 断裂是一个重要的特征。
TUNEL 技术利用末端脱氧核苷酸转移酶（TdT）在 DNA 断裂端引入标记的 dUTP 的原理，通过检测 DNA 断裂端的标记来识别凋亡细胞。
2. TUNEL 染色方法步骤（1）取样处理：将样本固定和包埋后，进行脱水和脱脂等处理。
（2）蛋白酶预处理：利用蛋白酶处理打开细胞核膜，提高核酸的透过性。
（3）TUNEL 反应：在 TdT 的作用下，未修饰的末端脱氧核苷酸与荧光素化的 dUTP 形成共价结合。
（4）显微镜观察：使用荧光显微镜观察并拍摄图像。
3. TUNEL 染色原理应用TUNEL 染色方法被广泛应用于许多领域，如肿瘤研究、病理学、药理学等。
通过检测细胞中凋亡的程度，可以对生物样品进行定量和定性分析。
DAPI（4',6-diamidino-2-phenylindole）染色原理：1. DAPI 染色原理概述DAPI 是一种结合到 DNA 的蓝色荧光染料，具有高度亲和力和高度特异性。
DAPI 与 DNA 结合后在核型显微镜下会呈现出亮蓝色的荧光。
2. DAPI 染色方法步骤（1）细胞固定：利用适当的方式将细胞固定在载玻片上。
（2）DAPI 染色液：将含有 DAPI 的染色液滴在载玻片上，让细胞充分吸收。
（3）显微镜观察：利用蓝光激发荧光显微镜观察并拍摄图像。
3. DAPI 染色原理应用DAPI 染色方法在细胞学和病理学领域有着广泛的应用。
tunel细胞凋亡率计算
tunel细胞凋亡率计算摘要：1.细胞凋亡简介2.计算tunel 细胞凋亡率的方法3.tunel 细胞凋亡率计算的实验步骤4.结果与分析5.总结正文：细胞凋亡是细胞程序性死亡的一种方式，它在生物体的生长、发育、组织修复等过程中起着重要作用。
准确地计算细胞凋亡率对于研究细胞凋亡的机制和调控具有重要意义。
tunel 法是一种常用的检测细胞凋亡的方法，通过特定的试剂和仪器，可以定量地检测细胞凋亡的情况。
计算tunel 细胞凋亡率的方法主要包括以下几个步骤：（1）取样：从实验组和对照组中分别取出等量的细胞；（2）固定：将细胞用固定液固定，使细胞内的核酸不易分解；（3）切片：将固定后的细胞进行切片处理；（4）透化：用透化液将细胞膜通透化，使核酸标记物能够进入细胞；（5）标记：用特定的核酸标记物（如TUNEL 试剂）标记细胞内的核酸；（6）洗涤：用洗涤液将细胞内的非特异性标记物去除；（7）检测：用特定的仪器检测细胞内的标记物；（8）统计：根据检测结果计算细胞凋亡率。
实验过程中，需要注意以下几点：（1）确保实验组和对照组的细胞数量、状态一致；（2）固定液的浓度、处理时间等因素会影响细胞凋亡的检测结果，需严格控制；（3）切片处理要均匀，避免细胞破损；（4）透化时间和温度要严格控制，避免影响标记效果；（5）洗涤要充分，去除非特异性标记物。
通过以上方法，可以得到tunel 细胞凋亡率的数据。
这些数据可以反映细胞凋亡的程度，为研究细胞凋亡的机制和调控提供依据。
需要注意的是，实验结果可能会受到多种因素的影响，因此需要在统计分析时考虑这些因素，确保结果的准确性。
总之，计算tunel 细胞凋亡率是研究细胞凋亡的一种重要方法。
TUNE L法检测细胞凋亡
TUNE L法检测细胞凋亡1 原理TUNEL〔terminal deoxynucleotidyl transferase (TdT)-mediated dUTP nick end labeling, 脱氧核糖核苷酸末端转移酶介导的缺口末端标记法〕是通过检测细胞凋亡早期过程中细胞核DNA的断裂情况来评价细胞凋亡的有效方法。
细胞凋亡中染色体DNA的断裂是个渐进的分阶段的过程，染色体DNA首先在内源性的核酸水解酶的作用下降解为50-300kb的大片段。
然后大约30﹪的染色体DNA 在Ca ²和Mg²依赖的核酸内切酶作用下，在核小体单位之间被随机切断，形成180～200bp核小体式DNA片段〔核小体式剪切〕。
由于DNA双链断裂或只要一条链上出现缺口即可产生一系列DNA的3’-OH末端。
增加细胞膜通透性→脱氧核糖核苷酸末端转移酶〔TdT Enzyme〕和荧光素〔fluorescein〕标记的dUTP进入细胞内→在TdT的辅助下dUTP与凋亡细胞中断裂DNA的3’-OH末端结合→再用辣根过氧化酶(HRP)标记的抗荧光素抗体与dTUT上的荧光素〔fluorescein〕特异结合〔荧光显微镜观察〕→最后用辣根过氧化酶底物二氨基联苯胺〔DAB〕、过氧化氢与HRP发生氧化、环化反响，形成苯乙肼聚合物而呈现棕褐色→特异准确地定位正在凋亡的细胞→普通显微镜下观察和计数不同视野中TUNEL阳性细胞的比例来判断细胞凋亡发生情况。
由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA的断裂，因而没有3'-OH形成，很少能够被染色。
适用于组织样本〔石蜡包埋、冰冻和超薄切片〕和细胞样本〔细胞爬片、涂片〕的凋亡原位检测。
还可应用于抗肿瘤药的药效评价，以及通过双色法确定细胞死亡类型和分化阶段。
2 器材与试剂2.1器材：光学显微镜及其成像系统、染色缸、湿盒、各种规格的加样器及枪头、镊子、24孔或6孔板、盖玻片、载玻片、1.5mleppendorf管、平皿、吸管、锡纸、摇床、计时表、荧光显微镜、光镜、MARKER笔、冰盒、恒温箱、加湿器、塑料缸、微波炉等。
tunel细胞凋亡率计算
tunel细胞凋亡率计算
摘要：
1.细胞凋亡的概念
2.细胞凋亡率计算的方法
3.Tunel 细胞凋亡率计算的应用
正文：
细胞凋亡是细胞在生命周期中自然死亡的过程，对于生物体生长、发育和维持内环境稳定具有重要意义。
Tunel 细胞凋亡率计算是一种常用于检测细胞凋亡的方法，通过特定的染色技术，对细胞凋亡进行定量分析。
细胞凋亡率计算的方法有很多种，其中Tunel 法是一种较为常用的方法。
它是通过检测细胞内的DNA 断裂来判断细胞是否发生凋亡。
具体操作步骤如下：
(1) 固定细胞：将细胞固定在载玻片上，以保持细胞形态。
(2) 切片：对固定后的细胞进行切片，以便于观察。
(3) 脱脂：用脱脂剂去除细胞内的脂质，以降低背景干扰。
(4) 透化：用Tunel 试剂盒中的透化剂使细胞膜通透，使染色剂能够进入细胞内。
(5) 染色：将细胞内的DNA 断裂部位与荧光染料结合，使细胞内的凋亡信号得以显现。
(6) 封片：将载玻片封片，防止荧光染料挥发和褪色。
(7) 观察与拍照：在荧光显微镜下观察细胞，并记录观察结果。
通过以上步骤，可以对细胞凋亡率进行计算。
Tunel 细胞凋亡率计算在生物医学领域有广泛的应用，如研究细胞凋亡与疾病的关系、药物筛选、生物制品质量控制等。
tunel法检测细胞凋亡原理
tunel法检测细胞凋亡原理一、介绍细胞凋亡是细胞程序性死亡的一种形式，它在多种生理和病理过程中发挥重要作用。
tunel法（Terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick end labeling）是一种常用的检测细胞凋亡的方法，它利用细胞凋亡时DNA断裂产生的末端暴露的3’-OH末端为基础，通过连接dUTP标记的核苷酸，再经过酶促反应形成标记物，最终通过染色和显微镜观察来检测细胞凋亡。
本文将深入探讨tunel法检测细胞凋亡的原理、步骤以及其优缺点和应用。
二、tunel法的原理1.细胞凋亡的DNA断裂细胞凋亡在DNA断裂的过程中，导致DNA链上产生单链和双链断裂，这些断裂可暴露3’-OH末端。
这些断裂的末端会暴露出来，为tunel法提供了基础。
2.核苷酸连接在tunel法中，细胞内的3’-OH末端与dUTP（脱氧尿嘧啶核苷酸）结合，形成连接的核苷酸。
3.核酸标记连接的核苷酸可以通过酶促反应来标记。
一般使用terminaldeoxynucleotidyl transferase（TdT）酶，它能够将标记物连接到核苷酸的3’-OH末端。
4.核酸染色标记后的核酸可以通过荧光染色或者抗体染色来可视化。
tunel法通常使用具有荧光标记的抗体，这样可以直接观察细胞凋亡的情况。
三、tunel法的步骤tunel法的主要步骤包括样品的处理、反应体系的建立、酶促反应和染色。
下面是一个通常的tunel法的实验步骤：1.样品的制备将要研究的细胞或组织制备成切片或细胞悬液的形式。
对于固定的组织样品，可以通过切片的方式得到。
2.反应体系的建立根据实验的需要，建立适当的反应体系。
通常使用含有一定浓度TdT酶和dUTP的反应缓冲液，其中还包括辅酶和其他必要的试剂。
3.酶促反应将反应体系与样品共同处理，保持一定的反应时间，以便TdT酶能够与3’-OH末端发生连接作用。
4.染色完成酶促反应后，使用荧光标记的抗体或者其他染料染色，以便观察细胞凋亡的情况。
TUNEL细胞凋亡检测程序
TUNEL细胞凋亡检测程序（Promega公司）一、原理与意义：TUNEL（TdT-mediated dUTP nick end labeling）细胞凋亡检测试剂盒是用来检测组织细胞在凋亡早期过程中细胞核DNA的断裂情况，其原理是生物素biotinylate标记的dUTP在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT Enzyme）的作用下，可以连接到凋亡细胞中断裂DNA的3’-OH末端，并与连接辣根过氧化酶（HRP，horse-radish peroxidase）的链霉亲和素streptavidin特异性结合，后者又与POD底物H2O2、二氨基联苯胺（DAB）产生深棕色反应，特异准确地定位正在凋亡的细胞，因而在光学显微镜下即可观察凋亡细胞；由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA断裂，因而没有3'-OH形成，很少能够被染色。
本试剂盒适用于组织样本（石蜡包埋、冰冻和超薄切片）和细胞样本（细胞涂片）在单细胞水平上的凋亡原位检测。
还可应用于抗肿瘤药的药效评价，以及通过双色法确定细胞死亡类型和分化阶段。
二、器材与试剂1.器材：光学显微镜及其成像系统、摇床、组化笔、小型染色缸、湿盒（塑料饭盒与纱布）、塑料盖玻片或封口膜、吸管、各种规格的移液器及枪头等。
2.试剂：试剂盒含TdT 2×、Biotinylated标记的dUTP、标记streptavidin的HRP、SSC 20×、Proteinase k、DAB 20×、DAB底物Buffer 20×、H2O2 20×；3.自备试剂：1)1×PBS（pH 7.4，2.5L＝20.0157g 137mM NaCl＋0.499552g 2.68mM KCl＋0.50013075g 1.47mM KH2PO4＋7.253337g 8.1mM Na2HPO4），115℃×15 min；2)0.85％NaCl 500 ml＝4.25 g Nacl＋500 ml三蒸水，115 ℃×15 min；3)4％多聚甲醛500 ml＝20 g多聚甲醛＋500 ml PBS在65 ℃水箱中3 h多，再放入4 ℃保存。
TUNEL 法测凋亡操作步骤
TUNEL 法测凋亡操作步骤一、TUNEL检测原理TUNEL 细胞凋亡检测试剂盒是采用非同位素方法来检测细胞在凋亡过程中DNA 的断裂情况，可在原位快速准确地检测单个凋亡细胞。
本试剂盒适用于组织样本（石蜡包埋、冰冻和超薄切片）和细胞样本（细胞涂片）的凋亡原位检测。
其原理是细胞凋亡发生时，内源性核酸酶激活，使DNA的双链断裂或一条链出现缺口，产生一系列3’-OH末端，在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT）作用下，组织细胞原位DNA切口可被标记上生物素-dUTP，即TUNEL（Terminal deoxynucleotidyl TransferaseBiotin-dUTP Nick End Labeling），可与连接了的辣根过氧化酶的链霉亲和素（Streptavidin-HRP）特异结合，在辣根过氧化酶底物二氨基联苯胺（DAB）的存在下，显示为棕色（过氧化物酶活性），特异准确地定位正在凋亡的细胞，在普通显微镜下即可观察和计数凋亡细胞；由于正的或正在增殖的细胞几乎没有DNA 的断裂，因而没有3'-OH 形成，很少能够被染色。
二、试剂盒组份组份10 assays25 assays 储存条件A：Equilibration Buffer 1.0 mL 2.5 mL -20 ℃B：Biotinylated Nucleotide Mix 10 μL 25 μL -20 ℃C：TdT Enzyme 10 μL 25 μL -20 ℃D：500×Proteinase K 10 μL 25 μL -20 ℃20×SSC 15 mL 38mL 4 ℃E：Streptavidin-HRP 10 μL 25 μL 4 ℃F：20×DAB Substrate Buffer 50 μL 125 μL 4 ℃G：20×DAB Chromogen 50 μL 125 μL 4 ℃H：20×Hydrogen Peroxide 50 μL 125 μL4 ℃三、操作流程1.操作流程概览2.细胞样本制备准备：● PBS：8.0g NaCl， 0.2 g KCl， 1.44g Na2HPO4，0.24g KH2PO4，溶于800ml去离子水中，HCl调pH至7.4，加水定容至1L。
TUNEL检测细胞凋亡实验报告
TUNEL法检测细胞凋亡实验实验原理：细胞凋亡是生物体内细胞在特定的内源和外源信号诱导下,其死亡途径被激活,并在有关基因的调控下发生的程序性死亡过程。
细胞凋亡涉及caspase活化、线粒体跨膜电位下降，位于细胞膜脂内层的磷脂酰丝氨酸转位到蛋白表面，DNA呈规律性断裂等。
基于这些特征，多种检测凋亡的方法也迅速发展起来，常用的方法包括形态学检查，分子生物学方法，免疫电泳和细胞学检查。
TUNEL，为原位末端转移酶标记技术。
其原理是：先增加细胞膜通透性，让rTDT和荧光素生物素标记的dUTP进入细胞内，在脱氧核糖核苷酸末端转移酶的辅助下将脱氧核糖核苷酸和荧光素等形成的衍生物标记到DNA的3’末端，从而可进行凋亡细胞的检测。
最终通过计数每张切片上不同视野中TUNEL阳性细胞的比例来判断细胞凋亡发生情况。
实验前准备在开始实验前，确保所用到的试剂都准备到位。
如：0.2% TritonX 100，TUNEL检测试剂盒（包含10× TdT酶浓缩液、荧光素标记的1× dUTP、转化剂POD），DAB试剂盒，3%过氧化氢甲醇，磷酸缓冲液PBS等。
本实验所使用到的仪器和耗材有：芬兰百得公司提供的移液器，赛默飞公司的QSP盒装吸头，湿盒，恒温箱等。
本次TUNEL实验按照以下常规步骤来展开，首先样品处理，封闭内源性过氧化物酶干扰后进行细胞通透化。
滴加TUNEL反应液反应后POD转换，DAB显色后在显微镜下观察并进行结果分析。
样品处理在标有实验组，阳性对照组和阴性对照组的切片上滴加4%不含甲醇的甲醛室温固定10min。
弃去甲醛，用PBS洗两次，每次5min。
封闭用滤纸擦去周围多余的PBS，滴加3%过氧化氢甲醇，室温孵育10min，消除内源性过氧化物酶干扰后，弃去将载玻片用PBS洗2次，每次5min。
细胞通透化去尽PBS后，滴加100μl由PBS配制的0.2% TritonX 100。
于湿盒中室温孵育5min。
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细胞在发生凋亡时，会激活一些DNA内切酶，这些内切酶会切断核小体间的基因组DNA。
基因组DNA 断裂时，暴露的3'-0H 可以在末端脱氧核苷酸转移酶（Terminal Deox yn ucleotidyl Tran sferase,TdT）的催化下加上荧光素（FITC）标记的dUTP（fluorescein-dUTP），从而可以通过荧光显微镜或流式细胞仪进行检测，这就是TUNEL 法检测细胞凋亡的原理。
TUNEL法特异性检测细胞凋亡时产生的DNA断裂，但不会检测出射线等诱导的DNA断裂（和细胞凋亡时的断裂方式不同）。
这样一方面可以把凋亡和坏死区分开，另一方面也不会把
射线等诱导发生DNA断裂的非凋亡细胞判断为凋亡细胞。
针对问题2（TUNEL法的实验原理是什么？）：
基本原理：对不同组织切片先增加细胞膜通透性，然后让rTDT和bio标记的dUTP进入细
胞内，在rTDT的辅助下dUTP与核断裂的DNA 3 -0H结合，再用HRP标记的链霉亲和素与dUTP 上的biot in 结合（每个链霉亲和素至少可以再结合3个biot in 分子），最后用DAB
过氧化氢与SP上的辣根过氧化物酶HRP发生氧化、环化反应，形成苯乙肼聚合物而呈现棕褐色，最终通过计数每张切片上不同视野中TUNEL阳性细胞的比例来判断细胞凋亡发生情
况。
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1. TUNEL工作原理：简单说就是一一TUNEL细胞凋亡检测试剂盒是用来检测细胞在凋亡过程中细胞核DNA的断裂情况。
其原理是；生物素（biot in ）标记的dUTP在脱氧核糖核苷酸末端转移酶（TdT En zyme）的
作用下，可以连接到凋亡细胞中断裂的DNA的3' - 0H末端，并可与连接了的辣根过氧化酶的
链霉亲和素（Streptavidin-HRP ）特异结合，在辣根过氧化酶底物二氨基联苯胺（DAB的存在下，产生很强的颜色反应（呈深棕色），特异准确地定位正在凋亡的细胞，因而在普通
显微镜下即可观察和计数凋亡细胞；由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA的断裂，因而没有3'-0H形成，很少能够被染色。
针对问题3 （TUNEL实验中几个关键步骤是什么？）：
1. 充分脱蜡和水化。
脱蜡可以先60度20min，再用二甲苯两次5~10min ;而水化用梯度乙
醇从高浓度到低浓度浸洗，这些以便后面的结合反应充分、均匀；
2. 把握好细胞通透的时间。
一般根据切片的厚薄，选择蛋白酶k的孵育时间，常用10~30min,
几um切片用短时间；几十um切片用长时间，通过摸索达到既不脱片，有能够使后面的酶和
抗体进入胞内。
3. 适当延长TUNEL反应液的时间。
一般是37度1h,你也可以根据你的凋亡损伤程度，选择更长的时间，可长至2h,但要结合你最终的背景着色。
4. DAB显色条件的选择。
一般DAB反应10分钟左右，结合镜下控制背景颜色，最长不超过
30min;我不喜欢用promega公司提供的DAB液（桃红色），不利于辨认棕褐色。
5. PBS的充分清洗。
我个人认为，在TUNEL反应后和酶标反应后的清洗应十分严格，可增加
次数达5次，因为这些清洗直接决定最后切片的非特异性着色。
6. 此外，内源性POD的封闭也十分关键。
对于肝脏、肾脏等血细胞含量多的组织，我的经
验是适当延长封闭时间和升高过氧化氢的浓度，可以达到很好的封闭效果，且不影响最终的
特异性染色。
针对问题5.细胞通透的原理、通透剂的浓度、孵育时间及其配制方法？
1. 蛋白酶K是消化膜蛋白，从而起打孔作用，增加
膜通透性，使rTDT酶、抗体易透过细胞膜进入细胞反应；一
2. 蛋白酶K一般工作液浓度为20ug/ml,但浓缩液可配制1~10mg/ml，可用PBS配制，也可用蛋白酶K缓冲液（100mM Tris HCl PH8.0+50mM EDTA ）;
3. 蛋白酶K反应时间一般为10~30 min，具体时间长短与切片厚薄有关，4um左右的片子可以用10 min，但30 um左右的可用30 min，最终通过摸索最佳时间。
过长易脱片、过短起
不到通透效果。
1. 抗原修复的原因是标本在甲醛等固定过程中，因发生蛋白交联和甲醛的封闭作用使抗原性降低，可以通过抗原修复使抗原决定族充分暴露出来；
2. 免疫组化中经常使用抗原修复，因为它的原理主要是抗原和抗体反应，通过抗原修复使更多的抗原与抗体结合，避免假阴性结果；
3. 而TUNEL的原理是dUTP与断裂的DNA上的3 '0H结合，故不需抗原修复；
4. 第一次TUNEL反应只需37度反应1h,或者延长时间即可
1. PROMEG公司去年是40t要3300元（按100ul/片，实际可根据切片大小，加到30ul/pian ）；而roche公司一般10t国内分装1300元（同样也是100/pian ）；
2. 两个公司试剂盒内均没有PBS试剂，也不含DNase（以制作标准对照片）；
3. 我一般用4%PFA多聚甲醛，至少浸泡24 h后进行石蜡包埋、制片。
此外，Promega公司在操作步骤中加了两步4%PFA以固定组织，试剂盒内无PFA但提供了配制方法。
再次请教：
1. 我做TUNEL M染用苏木素几秒钟，请问还用不用 1 %盐酸究酒精分化了？
2. 我想用罗氏的TUNEL式剂盒做荧光显像，请问用什么封片，配方？针对你的问题，我分析如下：
1. 盐酸酒精分化的目的：一方面是分色；另一方面是减弱过强的苏木素核染色。
所以你若把握好苏木素着色，也可不分化。
2. 分化时间不能过长，否则阳性着色也褪色。
3. 一般荧光成像后可用高纯度甘油封片即可，若需长期保存，也可用无色指甲油片周围封固（必要性不大）。
这是我的操作步骤（Promega公司），看完后就知道了：
1. 脱蜡：用二甲苯浸洗5 min X2次；
2. 水化：用梯度乙醇（100%x 5 min、100%x 3 min、95%x 3 min、85%x 3 min、70%
x 3 min、50 %x 3 min ）；
3. 浸洗：0.85 % NaCl x 5 min PBS 洗5 min ；
4. 固定：浸入4%多聚甲醛15 min ；
5. 浸洗：PBS 5 min X2 次；
6. 细胞通透：用每片100 ul 20 卩g/ml Protein ase K 处理组织15 （10~30）min RT ；
7. 浸洗：PBS洗5 min ；
8. 固定：浸入4%多聚甲醛5 min ；
9. 浸洗：PBS 5 min X2 次;
10.平衡：加100 ul平衡液，湿盒平衡10 （5〜10）min ;
11.制备TUNEL反应混合液: 处理组用1卩l rTdT + 1卩l生物素标记的dUTP+ 98 ul 平衡液混匀；而阴性对照组不加rTdT，改为三蒸水；阳性对照组先加入100卩l DNase1缓冲液孵育5 min，甩掉液体后再加100 ul DNase 1 （10 U/ml ）酶切10 min，用去离子水冲洗4次, PBS浸洗5 min，后面步骤从第10步开始。
12.标记反应：加100卩l TUNEL反应混合液于标本上，加盖玻片或封口膜在暗湿盒中
反应37°CX 1 h。
13.终止反应：浸入2X SSC 15 min；
14.浸洗：PBS 5 min X3 次；
15.封闭POD 浸入0.3 % H2O2 15 min ;
16.浸洗：PBS 5 min X3 次；
17.酶标反应：加100 ul streptavidin 标记HRP （按1:500 PBS 稀释）30 min ；
18.浸洗：PBS 5 min X3 次；
19.DAB显色（避光）：力口100 ulDAB混合液（50 ulDAB+50 ulDAB 底物缓冲液+ 50 ul
H2O22Q<+ 950 ul 三蒸水）10min左右，镜下出现浅棕色背景时。
20.用去离子水冲洗几次；
21.用苏木素复染，3 s左右后立即用自来水冲洗。
梯度酒精脱水（50、70、85、95、100、100%各1 min ）、二甲苯透明1 min X2次、中性树胶封片。
1、蛋白酶k的目的是通透细胞膜和核膜，从而使反应试剂充分进入细胞核进行反应，提高阳性率。
但浓度过高或孵育时间太长容易脱片，只要不脱片，好像影响不大，其作用类似与Triton X100等细胞通透剂。
2、蛋白酶K浓度配成贮存液浓度1mg/ ml是可以的，好像工作液浓度是20ug/ml吧，然后
分装成小份，用完一支再用下一支，-20度保存1个月应该没问题的（重复拿的那支），而一直冷冻的至少半年以上（我试过。
的）。