小白鼠实验性缺氧
机能小鼠缺氧实验报告
一、实验目的1. 复制不同病因导致小鼠缺氧的模型，了解乏氧性、血液性、组织中毒性缺氧的分类。
2. 观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统的影响，以及血液颜色变化。
3. 了解影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理分别复制三型缺氧模型，观察缺氧对机体的影响。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠2. 实验器材：缺氧瓶、一氧化碳发生装置、恒温水浴箱、刻度吸管、注射器、剪刀、镊子等3. 实验药品：钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水等四、实验方法1. 乏氧性缺氧实验1. 将小白鼠放入缺氧瓶中，用钠石灰吸收瓶中的氧气。
2. 观察小鼠的呼吸、黏膜和血液颜色变化，记录小鼠的存活时间。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验1. 将小白鼠放入一氧化碳发生装置中，观察小鼠的呼吸、黏膜和血液颜色变化，记录小鼠的存活时间。
3. 亚硝酸中毒性缺氧实验1. 将小白鼠腹腔注射5%亚硝酸钠，观察小鼠的呼吸、黏膜和血液颜色变化，记录小鼠的存活时间。
五、实验结果1. 乏氧性缺氧实验- 实验组小鼠在缺氧瓶中存活时间为90分钟，与对照组相比，呼吸频率明显加快，黏膜和血液颜色呈紫绀。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验- 实验组小鼠在吸入一氧化碳后，迅速出现呼吸急促、黏膜和血液颜色呈紫绀，最终死亡。
3. 亚硝酸中毒性缺氧实验- 实验组小鼠腹腔注射5%亚硝酸钠后，出现呼吸急促、黏膜和血液颜色呈紫绀，最终死亡。
六、实验分析1. 缺氧对小鼠的影响主要体现在呼吸系统和中枢神经系统。
2. 乏氧性缺氧和一氧化碳中毒性缺氧会导致小鼠迅速死亡，亚硝酸中毒性缺氧会导致小鼠出现呼吸急促、黏膜和血液颜色呈紫绀，最终死亡。
3. 影响缺氧耐受性的因素包括缺氧程度、缺氧速度、小鼠个体差异、缺氧瓶的密闭性、钠石灰的吸附能力等。
七、实验结论1. 缺氧会对小鼠的呼吸系统和中枢神经系统造成严重影响，甚至导致死亡。
2. 乏氧性缺氧、一氧化碳中毒性缺氧和亚硝酸中毒性缺氧均可导致小鼠死亡。
缺氧鼠实验报告
缺氧是机体在氧气供应不足或组织利用氧气障碍时，出现的一系列生理、生化反应。
缺氧可以由多种原因引起，如血液携氧能力下降、呼吸系统功能障碍、组织利用氧气障碍等。
本研究旨在通过模拟不同类型的缺氧，观察缺氧对小鼠的影响，探讨缺氧对机体生理、生化及形态学方面的变化。
二、实验目的1. 复制不同类型的缺氧模型，了解缺氧对小鼠的影响。
2. 观察缺氧对小鼠呼吸、循环、神经系统及形态学方面的变化。
3. 分析缺氧对小鼠生存时间的影响，探讨缺氧耐受性。
三、实验材料与方法1. 实验动物：健康昆明小白鼠20只，体重20-25g。
2. 实验设备：缺氧瓶、气体分析仪、呼吸机、显微镜、电子天平等。
3. 实验分组：将20只小鼠随机分为4组，每组5只，分别为正常对照组、低张性缺氧组、血液性缺氧组、组织中毒性缺氧组。
4. 实验方法：（1）低张性缺氧组：将小鼠放入缺氧瓶中，瓶内充入95%氮气和5%二氧化碳，使氧分压降低至10mmHg，观察小鼠的呼吸、循环、神经系统及形态学变化。
（2）血液性缺氧组：将小鼠放入缺氧瓶中，瓶内充入95%氮气和5%二氧化碳，同时向瓶内注入10%氰化钠溶液，使血液中氧合血红蛋白含量降低，观察小鼠的呼吸、循环、神经系统及形态学变化。
（3）组织中毒性缺氧组：将小鼠放入缺氧瓶中，瓶内充入95%氮气和5%二氧化碳，同时向瓶内注入10%亚硝酸钠溶液，使组织利用氧气障碍，观察小鼠的呼吸、循环、神经系统及形态学变化。
（4）正常对照组：将小鼠放入正常环境中，观察小鼠的呼吸、循环、神经系统及形态学变化。
5. 数据采集与处理：记录每组小鼠的生存时间、呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等生理指标，并观察小鼠的神经系统及形态学变化。
1. 低张性缺氧组：小鼠生存时间为（60±5）min，呼吸频率为（80±10）次/min，心率降低，血压降低，血氧饱和度降低，出现呼吸困难、精神萎靡、四肢无力等症状。
2. 血液性缺氧组：小鼠生存时间为（30±5）min，呼吸频率为（100±15）次/min，心率降低，血压降低，血氧饱和度降低，出现呼吸急促、口唇发绀、抽搐等症状。
小鼠缺氧实验实验报告
\篇二：缺氧缺氧动物模型复制及中枢神经系统功能抑制和低温对缺氧的影响【摘要】目的：本实验学习复制乏氧性缺氧和血液性缺氧的动物模型方法，观察缺氧过程中呼吸的反应及血液色泽和全身一般情况的变化，并了解温度和中枢神经系统机能状态对缺氧耐受的影响以及对照实验和控制实验条件重要性。
方法：通过复制缺氧动物模型，观察不同类型缺氧过程中呼吸、黏膜和血液色泽的变化。
通过测定耗氧量和小鼠的存活时间来观察中枢神经系统机能抑制和低温对缺氧的影响。
结果：中枢神经系统功能抑制和低温对动物耐受缺氧的影响与对照组相比，存活时间和总耗氧率有显著性差异；复制不同原因造成的不同缺氧类型小鼠都表现出了不同的呼吸频率和存活时间的变化。
结论：给小鼠注射氯丙嗪、冰浴降温可显著降低总耗氧率，延长其存活时间（p<0.01）。
co中毒、亚硝酸盐可显著缩短小鼠存活时间，降低呼吸频率。
美兰可以缓解亚硝酸盐对小鼠的作用，已定程度延长小鼠存活时间，延缓呼吸频率的下降。
【关键词】缺氧氯丙嗪总耗氧率 co 亚硝酸盐美兰存活时间当供应组织的氧不足，或组织利用氧障碍时，机体的机能和代谢可发生异常变化，这种病理过程称为缺氧。
根据缺氧的原因不同可将缺氧分为低张性缺氧、血液性缺氧、循环性缺氧和组织中毒性缺氧四种类型，不同类型的缺氧，机体的代偿适应性反应和症状表现有所不同。
1.材料和方法1.1实验动物：小白鼠（雌性）。
1.2 药品：氯丙嗪(chlorpromazine) 、钠石灰（soda lime)，亚硝酸钠（ sodium nitrite ) 、亚甲基蓝(美蓝）（methylene blue，mb）、 0.9％nacl (physiological saline solution) 、co(carbon monoxide)。
1.3 器材：100、500ml广口瓶和测耗氧装置。
1.4 方法1.4.1 中枢神经系统功能抑制和低温对缺氧的影响取2只性别相同体重相近的小鼠，准确称取体重，并随机分为生理盐水组和氯丙嗪组。
机能实验缺氧预实验报告
一、实验背景缺氧是机体因氧供应不足或氧利用障碍而导致的生理功能障碍。
为了研究不同类型缺氧对机体的影响，本实验拟进行缺氧预实验，以了解缺氧实验的基本操作方法、实验结果及影响因素。
二、实验目的1. 掌握缺氧实验的基本操作方法。
2. 研究不同类型缺氧对机体的影响。
3. 分析影响缺氧耐受性的因素。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：昆明小白鼠10只，体重20-25g。
2. 仪器：缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶）、一氧化碳发生装置、恒温水浴箱、5ml或2ml刻度吸管、1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水。
3. 试剂：生理盐水、5%亚硝酸钠溶液、0.1%氰化钾溶液。
四、实验方法与步骤1. 乏氧性缺氧实验（1）将10只小白鼠随机分为两组，每组5只。
（2）将一组小白鼠放入缺氧瓶中，瓶内加入5g钠石灰，密封瓶口。
（3）观察并记录小白鼠的存活时间。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验（1）将10只小白鼠随机分为两组，每组5只。
（2）将一组小白鼠放入一氧化碳发生装置的广口瓶中，瓶内加入适量甲酸和浓硫酸，密封瓶口。
（3）观察并记录小白鼠的存活时间。
3. 亚硝酸钠中毒性缺氧实验（1）将10只小白鼠随机分为两组，每组5只。
（2）将一组小白鼠腹腔注射5%亚硝酸钠溶液0.5ml。
（3）观察并记录小白鼠的存活时间。
4. 影响缺氧耐受性因素的实验（1）温度对缺氧耐受性的影响：将小白鼠分为三组，分别放入不同温度的恒温水浴箱中，观察并记录存活时间。
（2）CO2浓度对缺氧耐受性的影响：将小白鼠分为三组，分别放入不同CO2浓度的缺氧瓶中，观察并记录存活时间。
五、实验结果与分析1. 乏氧性缺氧实验实验结果显示，缺氧瓶中小白鼠的存活时间为（60±10）min。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验实验结果显示，一氧化碳发生装置中小白鼠的存活时间为（30±5）min。
3. 亚硝酸钠中毒性缺氧实验实验结果显示，腹腔注射亚硝酸钠溶液后小白鼠的存活时间为（15±3）min。
小白鼠实验性缺氧
响，并了解相关急救知识。 掌握缺氧的分类及不同类型缺氧的特征。
实验动物与药品器材
成年小鼠，雌雄不限； 钠石灰、甲酸、浓硫酸、5％亚硝酸钠、1％
亚甲蓝、生理盐水 ； 密封广口瓶、一氧化碳发生装置、刻度吸管、
1ml注射器及针头、酒精灯等。
●腹腔注射方法
Discuss and Analysis
（一）低张性缺氧动物实验 【基本体征】
动物所处的环境中空气氧消耗出现氧浓度降低。 呼吸加深加快到变浅边慢，最后呼吸停止。 出现明显的烦躁不安，最终动物死亡。 动物皮肤、黏膜出现明显的紫绀； 注射咖啡因的小白鼠对缺氧的耐受性最差。 注射乌拉坦的小白鼠对缺氧的耐受性最强。
常用血氧指标
血氧分压（PO2):溶解于血液的氧分子所产生的张力； 血氧容量（CO2max）:100ml血液中的血红蛋白，在氧分压 为13.3kPa（100mmHg）,温度为38℃时，所能结合氧的最 大毫升数； 血氧含量(CO2): 标准状态下，100ml血液中实际含有的氧量 （毫升数）； 血氧饱和度(SO2) :Hb的氧饱和度，即Hb结合氧的百分数 约等于血氧含量和血氧容量的比值。
思考
13.什.本么病是例缺所氧述？的常亚用硝的酸血钠氧中指毒标事标件准属是于什那么种？类型的缺氧？如何解救
2.常见缺氧类型有哪几种？发生的原因有哪些？ 4.缺氧时呼吸为什么加深加快？
思考
65.亚.缺硝氧酸对钠机中体毒的性影缺响氧如的何解？救为什么要给予大量维生素C和葡萄糖?
7. CO中毒原性缺氧的症状，机理以及如何解救？ 8. 氧中毒对机体的影响如何？ 9.机体在缺氧时表现为怎样的耐受性？
血液性缺氧
血红蛋白含量减少、供氧不足 血红蛋白结构、功能异常
小鼠耐缺氧实验报告
一、实验目的1. 研究不同因素对小鼠耐缺氧能力的影响。
2. 探讨缺氧对小鼠生理机能的影响。
3. 了解小鼠在缺氧环境下的生存策略。
二、实验原理本实验采用模拟缺氧环境的方法，通过观察小鼠在缺氧条件下的存活时间、生理指标变化等，评估小鼠的耐缺氧能力。
缺氧是指机体在氧气供应不足的情况下，导致细胞代谢障碍和功能受损的病理状态。
本实验通过模拟缺氧环境，研究不同因素对小鼠耐缺氧能力的影响，为临床治疗缺氧相关疾病提供理论依据。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：昆明种小白鼠，体重20-25g，雌雄各半。
2. 仪器：缺氧箱、电子天平、呼吸计数器、血压计、心电图机等。
3. 药品：生理盐水、1%咖啡因、0.25%氯丙嗪等。
四、实验方法1. 将小鼠随机分为实验组和对照组，每组10只。
2. 实验组分为A、B、C三组，分别给予1%咖啡因、0.25%氯丙嗪和生理盐水。
3. 对照组给予生理盐水。
4. 将所有小鼠置于缺氧箱中，观察其在缺氧环境下的存活时间、生理指标变化等。
5. 记录每组小鼠的存活时间、呼吸频率、血压、心电图等数据。
五、实验结果1. 实验组小鼠在缺氧环境下的存活时间均显著高于对照组（P<0.05）。
2. 实验组小鼠的呼吸频率、血压和心电图均无明显变化。
3. 不同处理组之间，呼吸频率、血压和心电图无显著差异。
六、讨论1. 本实验结果表明，给予小鼠咖啡因和氯丙嗪可提高其耐缺氧能力。
这可能是因为咖啡因具有中枢兴奋作用，可提高小鼠的代谢水平，增加能量供应；而氯丙嗪具有中枢抑制作用，可降低小鼠的代谢水平，减少能量消耗。
2. 实验组小鼠在缺氧环境下的呼吸频率、血压和心电图无明显变化，说明小鼠在缺氧条件下具有一定的生理代偿能力。
3. 本实验结果表明，不同处理组之间，呼吸频率、血压和心电图无显著差异，说明咖啡因和氯丙嗪对小鼠耐缺氧能力的影响无显著差异。
七、结论1. 给予小鼠咖啡因和氯丙嗪可提高其耐缺氧能力。
2. 小鼠在缺氧条件下具有一定的生理代偿能力。
缺氧及解救实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 研究缺氧对小鼠的影响，了解缺氧的表现和生理机制。
2. 掌握缺氧解救的方法和技巧，提高动物实验操作技能。
3. 分析影响缺氧耐受性的因素，为临床应用提供理论依据。
二、实验原理缺氧是指动物体内氧气供应不足，导致组织细胞无法进行正常的有氧代谢，产生一系列生理和生化反应。
本实验通过复制不同类型的缺氧模型，观察缺氧对小鼠的影响，探讨缺氧解救的方法。
三、实验材料1. 实验动物：昆明小白鼠20只，体重20-25克。
2. 实验器材：缺氧瓶、一氧化碳发生装置、恒温水浴箱、注射器、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、生理盐水等。
四、实验方法1. 乏氧性缺氧实验（1）将小鼠随机分为5组，每组4只。
（2）将甲、乙、丙、丁组小鼠分别放入装有5g钠石灰的缺氧瓶中，密封瓶口。
（3）观察并记录小鼠的呼吸频率、活动状态、死亡时间等指标。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验（1）将小鼠随机分为5组，每组4只。
（2）将甲、乙、丙、丁组小鼠分别放入装有10%一氧化碳气体的缺氧瓶中，密封瓶口。
（3）观察并记录小鼠的呼吸频率、活动状态、死亡时间等指标。
3. 缺氧解救实验（1）将小鼠随机分为5组，每组4只。
（2）将甲、乙、丙、丁组小鼠分别放入装有5g钠石灰的缺氧瓶中，密封瓶口。
（3）观察并记录小鼠的呼吸频率、活动状态、死亡时间等指标。
（4）当小鼠出现明显缺氧症状时，立即将小鼠取出缺氧瓶，放入装有新鲜空气的容器中，观察并记录小鼠的恢复情况。
五、实验结果与分析1. 乏氧性缺氧实验实验结果显示，乏氧性缺氧组小鼠的呼吸频率逐渐减慢，活动状态逐渐减弱，最终死亡。
死亡时间与缺氧瓶的密闭性、小鼠个体差异、钠石灰等因素有关。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验实验结果显示，一氧化碳中毒性缺氧组小鼠的呼吸频率逐渐减慢，活动状态逐渐减弱，最终死亡。
死亡时间与一氧化碳浓度、小鼠个体差异、缺氧瓶的密闭性等因素有关。
3. 缺氧解救实验实验结果显示，缺氧解救组小鼠在取出缺氧瓶后，呼吸频率逐渐恢复，活动状态逐渐好转，大部分小鼠得以存活。
小白鼠缺氧实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧对小白鼠生理机能的影响。
2. 探讨缺氧条件下小白鼠的生存能力。
3. 为相关医学研究提供实验依据。
二、实验材料1. 实验动物：小白鼠6只，体重约为20g。
2. 实验仪器：氧气瓶、气压表、缺氧实验装置、计时器、电子天平、体温计等。
3. 实验试剂：生理盐水。
三、实验方法1. 将小白鼠分为实验组和对照组，每组3只。
2. 对照组小白鼠在正常条件下饲养，实验组小白鼠进行缺氧实验。
3. 缺氧实验装置：将小白鼠放入一个密封的容器中，容器底部放置氧气瓶，通过调节气压表使容器内氧气浓度达到一定水平。
4. 缺氧实验过程中，记录小白鼠的存活时间、呼吸频率、体温等生理指标。
5. 实验结束后，对实验组小白鼠进行解剖观察，记录内脏器官的变化。
四、实验结果1. 实验组小白鼠在缺氧条件下，存活时间明显短于对照组。
2. 实验组小白鼠呼吸频率加快，体温逐渐降低。
3. 实验组小白鼠心脏、肝脏、肾脏等内脏器官出现不同程度的损伤。
五、实验分析1. 缺氧条件下，小白鼠的生理机能受到严重影响。
由于氧气供应不足，导致呼吸频率加快，体温降低，最终导致死亡。
2. 缺氧对小白鼠内脏器官的损伤程度与缺氧时间、缺氧程度有关。
实验结果显示，缺氧时间越长，内脏器官损伤越严重。
3. 本实验结果表明，小白鼠在缺氧条件下的生存能力较差，为相关医学研究提供了实验依据。
六、实验结论1. 缺氧对小白鼠的生理机能有显著影响，可导致呼吸频率加快、体温降低、内脏器官损伤等。
2. 小白鼠在缺氧条件下的生存能力较差，为相关医学研究提供了实验依据。
七、实验注意事项1. 实验过程中，应注意观察小白鼠的生理指标变化，及时调整实验条件。
2. 实验结束后，对实验组小白鼠进行解剖观察，确保实验结果的准确性。
3. 实验过程中，注意安全操作，避免发生意外事故。
八、实验展望1. 进一步研究缺氧对不同品种、不同体重小白鼠的影响。
2. 探讨缺氧条件下小白鼠的生理机制，为相关疾病的治疗提供理论依据。
小鼠缺氧病理实验报告
一、实验目的1. 复制小鼠缺氧模型，了解缺氧对机体的影响。
2. 观察缺氧对呼吸系统、中枢神经系统及血液的影响。
3. 分析影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指机体在供氧不足的情况下，组织细胞无法获得足够的氧气进行代谢，导致能量代谢障碍，引起一系列生理和病理变化。
本实验通过模拟不同类型的缺氧，观察缺氧对小鼠的影响，以期为临床治疗缺氧相关疾病提供理论依据。
三、实验材料1. 实验动物：健康小白鼠10只，体重20-25克。
2. 实验仪器：缺氧箱、呼吸机、显微镜、离心机、电子天平等。
3. 实验试剂：生理盐水、亚硝酸钠、氰化钾、钠石灰等。
四、实验方法1. 缺氧模型制备（1）低张性缺氧：将小白鼠放入缺氧箱中，箱内氧气浓度控制在5%以下，持续30分钟。
（2）一氧化碳中毒性缺氧：将小白鼠放入一氧化碳发生装置中，持续吸入一氧化碳30分钟。
（3）氰化钾中毒性缺氧：将小白鼠腹腔注射氰化钾50mg/kg，观察动物中毒症状。
2. 实验分组将小白鼠随机分为五组：对照组、低张性缺氧组、一氧化碳中毒性缺氧组、氰化钾中毒性缺氧组和钠石灰组。
3. 指标检测（1）呼吸频率：观察并记录实验前后小鼠的呼吸频率。
（2）中枢神经系统功能：观察并记录小鼠的行为变化，如兴奋、抑制、抽搐等。
（3）血液指标：检测小鼠血红蛋白、血氧饱和度等指标。
（4）组织学观察：取小鼠脑组织、肺组织等，进行光镜和电镜观察。
五、实验结果1. 低张性缺氧组（1）呼吸频率明显下降，表现为呼吸困难。
（2）中枢神经系统功能受到影响，出现兴奋、抑制等症状。
（3）血红蛋白和血氧饱和度明显降低。
（4）组织学观察：脑组织出现水肿、神经元变性等。
2. 一氧化碳中毒性缺氧组（1）呼吸频率明显下降，出现紫绀。
（2）中枢神经系统功能受到影响，出现昏迷、抽搐等症状。
（3）血红蛋白和血氧饱和度明显降低。
（4）组织学观察：肺组织出现水肿、肺泡出血等。
3. 氰化钾中毒性缺氧组（1）呼吸频率明显下降，出现紫绀。
缺氧因素实验报告
一、实验目的1. 探究不同缺氧因素对生物体的影响。
2. 分析缺氧因素对生物体生理、生化指标的影响。
3. 了解缺氧因素对生物体适应性的影响。
二、实验原理缺氧是指生物体组织细胞在供氧不足的情况下，无法满足其正常生理活动所需氧气的现象。
缺氧因素主要包括低氧环境、一氧化碳中毒、亚硝酸盐中毒等。
本实验通过模拟不同缺氧环境，观察缺氧因素对生物体的影响，分析缺氧因素对生物体生理、生化指标的影响，以及缺氧因素对生物体适应性的影响。
三、实验材料1. 实验动物：昆明小白鼠（体重20克左右）4只。
2. 实验设备：缺氧瓶（100ml-125ml带塞广口瓶）、一氧化碳发生装置、恒温水浴箱、5ml或2ml刻度吸管、1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子、钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%硝酸钠、0.1%氰化钾、生理盐水、pH计、分光光度计等。
3. 实验试剂：0.25%氯丙嗪、生理盐水、5%亚硝酸钠、1%美兰、蒸馏水等。
四、实验方法与步骤1. 乏氧性缺氧实验（1）取体重相近的小白鼠2只，分别编号为甲、乙。
（2）甲鼠腹腔内注入0.25%氯丙嗪0.1ml/10g；乙鼠腹腔内注入生理盐水0.1ml/10g。
（3）将甲、乙鼠分别放入装有5g钠石灰的广口瓶内，然后塞紧瓶塞，连通测氧耗装置。
（4）开始计时，观察并记录上述指标，以后每3min重复观察上述指标一次，直至动物死亡。
2. 一氧化碳中毒性缺氧实验（1）取体重相近的小白鼠1只，观察正常表现。
（2）将小白鼠放入一氧化碳发生装置中，观察并记录死亡时间。
3. 亚硝酸盐中毒性缺氧实验（1）取体重相近的小白鼠1只，观察正常表现。
（2）向小白鼠腹腔内注射5%亚硝酸钠0.5ml。
（3）立即腹腔注射1%美兰。
（4）观察并记录死亡时间。
4. 数据处理（1）计算小鼠耗氧率（r）。
（2）分析缺氧因素对小鼠生理、生化指标的影响。
五、实验结果与分析1. 乏氧性缺氧实验（1）甲鼠存活时间为90min，乙鼠存活时间为120min。
小白鼠耐缺氧实验报告
小白鼠耐缺氧实验报告1. 实验背景在科学的世界里，小白鼠可是个“明星”，总是被用来进行各种实验。
这不，我们最近就搞了一个耐缺氧的实验，想看看这些小家伙在缺氧的环境下到底能撑多久。
哎，说到这儿，我就忍不住想笑，这些小白鼠们，真是个可爱的小勇士，仿佛在说：“缺氧？我不怕！”1.1 实验目的咱们这次实验的目的其实很简单，就是想弄清楚小白鼠在低氧条件下的生理反应。
缺氧嘛，听起来挺可怕的，其实就是空气里氧气少了。
你想想，如果我们在一个封闭的地方，氧气越来越少，那得多难受呀！不过，咱们的小白鼠们可不一般，能不能忍受这种“缺氧挑战”，就是我们的关注点。
1.2 实验方法实验的过程其实也不复杂。
首先，我们准备了一个密闭的箱子，确保小白鼠们在里面的氧气会逐渐减少。
然后，咱们就像是在看一场精彩的比赛，记录下每只小白鼠的表现。
嘿，别小看这些小家伙，它们的反应可是相当灵敏，有时候还挺搞笑的，感觉它们在跟我们打“耐力赛”呢。
2. 实验结果接下来的结果就有意思了。
在氧气浓度下降到某个临界点时，这些小白鼠们的反应开始变得古怪。
有的小鼠竟然开始“发呆”，眼神空洞，仿佛在思考人生；有的则开始四处乱跑，像是喝了兴奋剂，完全不知所措。
这一幕幕真是让人忍俊不禁，心想：“小家伙们，你们这是干嘛呢？”2.1 各小鼠表现在实验过程中，我们观察到，有的小白鼠在缺氧的情况下表现得异常顽强，居然能坚持好久。
这让我想到了成语“韧性十足”，它们真是小小的勇士。
相反，有的小白鼠可能就没那么幸运，氧气少了几分钟就开始软绵绵的，甚至有些摇摇欲坠。
这让我不禁感慨，生存真是个残酷的游戏。
2.2 数据分析经过一番认真分析，我们发现，不同的小白鼠在缺氧状态下的耐受能力差异还真是明显。
有的小鼠能撑得特别久，甚至让我们怀疑它们是不是有“超级能力”。
这让我想到，生活中也是一样，有的人在逆境中能不断突破自己，而有的人却容易被打倒，真是人外有人，天外有天啊！3. 实验总结总的来说，这次的小白鼠耐缺氧实验，给我们带来了不少欢笑和启示。
小白鼠的缺氧实验(参考模板)
缺氧对小白鼠体征的影响（潍坊医学院 2009级临床26班山东潍坊261053）[摘要]目的：观察缺氧对小白鼠体征的影响。
方法：取五只小白鼠，通过制作小白鼠的乏氧性缺氧、一氧化碳中毒性缺氧、亚硝酸钠中毒性缺氧三种模型并与正常状态的小白鼠作对比，观察小白鼠的行为及皮肤、黏膜、肝脏的变化。
结果：小白鼠的乏氧性缺氧模型肝脏为青紫色，一氧化碳中毒性缺氧模型为樱桃红色，亚硝酸钠中毒性缺氧模型肝脏青石板颜色，正常小白鼠肝脏为红色。
结论：不同的缺氧因素对小白鼠肝脏颜色有不同影响。
[关键词]乏氧性缺氧，一氧化碳中毒性缺氧，亚硝酸钠中毒性缺氧，青石板颜色前言缺氧是由于机体供氧不足或组织利用氧障碍引起的机体代谢、功能和形态结构改变的病理过程[1]。
理论上由于不同机制的缺氧通过对血红蛋白的影响改变了血红蛋白的颜色从而我们可以复制相应模型以观察其血液的变化。
至于类似的实验，前人已经将其机制研究清楚了，做本次实验只是加以验证，观察是否与理论相符合，有时也许会有新的发现，但主要是为以后的临床学习打下基础。
材料与方法1 实验材料器材：小白鼠缺氧瓶、CO发生装置、1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊子。
药品：钠石灰、甲酸、浓硫酸、5%亚硝酸钠、1%亚硝酸钠、1%美兰、生理盐水。
动物：小白鼠2 缺氧模型的制备2．1乏氧性缺氧模型的制备(1) 取钠石灰约5g及小白鼠一只放入缺氧瓶内。
观察动物的一般情况，呼吸频率（次/10s），深度，皮肤和口唇粘膜颜色，然后紧塞瓶塞，记录时间，以后每3min重复观察上述指标1次（如有其他变化则随时记录）直到动物死亡为止。
(2) 动物尸体留待2.2、2.3、2.4实验做完后，再依次打开其腹腔，比较血液或肝脏颜色。
2.2一氧化碳中毒性缺氧模型的制备(1) 装好CO发生装置。
(2) 将小白鼠放入广口瓶中，观察其正常表现，然后与CO发生装置连接。
(3) 取甲酸3ml放入试管中，加入浓硫酸2ml，塞紧。
（可用酒精灯加热，加速CO产生，但不可过热以至液体沸腾，因CO产生过多过快动物迅速死亡，血液颜色改变不明显。
实验性缺氧
实验性缺氧一、实验目的1、通过对乏氧性、血液性缺氧动物模型的复制，了解缺氧的原因、分类与发病环节。
2、观察缺氧对呼吸的影响和皮肤粘膜、肝脏颜色的变化。
二、实验材料1、实验动物：成年小白鼠6只2、器材：注射器（1ml、5ml）、注射针头、手术剪、镊子、止血钳、滴管、试管、小白鼠缺氧瓶装置、一氧化碳发生装置、酒精灯、火柴、测氧仪3、药品：钠石灰(NaOH·CaO)、甲酸、浓硫酸、5%亚硝酸钠、0.4%亚甲蓝、、生理盐水三、实验方法和步骤1、实验分组：乏氧性缺氧2只；CO中毒性缺氧1只；NaNO2中毒性缺氧及抢救2只；对照1只2、乏氧性缺氧：①将2只小白鼠及钠石灰置于广口瓶中，观察、记录小白鼠的精神状态，呼吸频率（数其腹部起伏次数）、幅度、口唇颜色。
②塞紧瓶盖，记录时间，每5min记录上述指标一次，直至动物死亡，记录死亡时间。
③使用测氧仪测定瓶中氧浓度：每10min记录一次，直至动物死亡。
3、CO中毒性缺氧：①将小白鼠1只放入广口瓶中，观察其正常表现。
②取甲酸9ml放入烧瓶中，缓慢加入6ml浓硫酸塞紧后与装有小鼠的广口瓶相连（可用酒精灯加热，但不可过热使液体沸腾）③观察、记录小鼠的口唇颜色、小白鼠的精神状态、呼吸频率（其腹部起伏频率）、幅度的变化，直至动物死亡，记录死亡所需时间。
4、亚硝酸钠中毒性缺氧：①取体重相近的两只小鼠，腹腔注射②A鼠：5% NaNO2 0.3ml→立即亚甲蓝0.3ml ③B鼠：5% NaNO2 0.3ml→立即生理盐水0.3ml④观察、记录小鼠的口唇颜色、小白鼠的精神状态、呼吸频率（其腹部起伏频率）、幅度的变化，直至动物死亡，记录死亡所需时间。
5、将乏氧性缺氧、CO中毒性缺氧、NaNO2中毒性缺氧及抢救、对照的6只小鼠（还存活的小鼠使用颈椎脱臼法处死）尸检。
死亡后打开腹腔，观察血液和肝颜色，互相对比，并记录。
四、实验结果不同缺氧条件对小鼠的影响乏氧性缺氧紫绀198∙144∙0 活泼∙渐渐安静∙开始抽搐∙死亡13 21∙19.6 暗红色活泼∙剧烈抽搐∙死亡3：30 剧烈挣扎∙失去活动∙死亡7：30亚硝酸钠中毒后抢救粉红色90∙108∙120安静∙安静∙偶尔走动15 暗红色正常小鼠（对照）灰色暗红色乏氧性缺氧CO中毒性缺氧亚硝酸中毒性缺氧亚硝酸钠中毒后解救正常乏氧性缺氧CO中毒性缺氧亚硝酸中毒性缺氧亚硝酸钠中毒后解救正常五、实验讨论1、本实验是如何引起乏氧性，血液性，组织性缺氧的，其机制如何？乏氧性缺氧：由于吸入气氧分压过低而引起的缺氧。
《小白鼠实验性缺氧》课件
失衡。
缺氧的原因
03
缺氧可以由多种原因引起，如呼吸系统障碍、血液性缺氧、组
织性缺氧等。
缺氧对机体的影响
01
02
03
神经系统损伤
缺氧会导致脑组织损伤， 引起意识障碍、昏迷等症 状。
呼吸系统异常
缺氧会导致呼吸急促、呼 吸困难等症状，严重时可 能导致窒息。
心血管系统紊乱
缺氧会导致心率失常、血 压下降等症状，严重时可 能导致心脏骤停。
实验性缺氧的应用
实验性缺氧不仅可用于研究缺氧 的病理生理机制，还可用于评估 药物对缺氧的保护作用和治疗效 果。
02
实验原理
缺氧的生理机制
氧气在体内的运输
01
氧气通过呼吸系统进入体内，通过血液运输到各个组织和器官
，供细胞代谢使用。
缺氧的判定标准
02
缺氧是指组织或细胞得不到充足的氧气供应，导致氧气的供需
组织性缺氧
由于组织细胞利用氧的能力降低或耗 氧量增加，导致组织细胞氧供不足引 起的缺氧。
理解实验性缺氧的意义
实验性缺氧的意义
通过实验性缺氧研究，可以深入 了解缺氧的发生机制、病理生理 变化和防治措施，为临床治疗提 供理论依据和实践指导。
实验性缺氧的方法
实验性缺氧可以通过控制氧气供 应、改变血红蛋白性质、药物干 预等方法实现。
实验性缺氧的方法
窒息法
使小白鼠处于密闭环境中 ，逐渐消耗氧气，造成缺 氧状态。
药物法
使用药物抑制呼吸酶活性 ，导致小白鼠缺氧。
物理法
通过物理手段改变小白鼠 的呼吸环境，如改变气压 等，造成缺氧状态。
03
实验步骤
实验动物准备
选择实验动物
选择健康、体重相近的小白鼠，确保其处于良好 的健康状态。
缺氧病理生理实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解缺氧的基本概念和分类。
2. 探讨不同类型缺氧对机体的影响和病理生理机制。
3. 通过实验观察缺氧对小鼠生理指标的影响，如呼吸频率、心率、血液pH值等。
4. 分析缺氧耐受性的影响因素。
二、实验材料1. 实验动物：健康小白鼠（体重20克左右）10只。
2. 实验仪器：呼吸频率计、心率计、血液pH计、注射器、玻璃管、缺氧装置等。
3. 实验试剂：生理盐水、5%亚硝酸钠溶液、1%美兰溶液、1%氰化钾溶液等。
三、实验方法1. 将小白鼠随机分为五组，每组2只。
2. 第一组（对照组）不做任何处理。
3. 第二组（低张性缺氧组）：将小白鼠放入缺氧装置中，通过通入氮气使氧气浓度降低至5%以下，持续观察其生理指标变化。
4. 第三组（一氧化碳中毒性缺氧组）：将小白鼠放入缺氧装置中，通入一定浓度的一氧化碳，持续观察其生理指标变化。
5. 第四组（亚硝酸钠中毒性缺氧组）：将小白鼠腹腔注射5%亚硝酸钠溶液，持续观察其生理指标变化。
6. 第五组（氰化钾中毒性缺氧组）：将小白鼠腹腔注射1%氰化钾溶液，持续观察其生理指标变化。
7. 观察并记录各组小白鼠的呼吸频率、心率、血液pH值等生理指标变化，直至动物死亡。
四、实验结果1. 对照组：小白鼠生理指标无明显变化。
2. 低张性缺氧组：呼吸频率和心率逐渐加快，血液pH值降低。
3. 一氧化碳中毒性缺氧组：呼吸频率和心率明显加快，血液pH值降低，动物死亡时间约为30分钟。
4. 亚硝酸钠中毒性缺氧组：呼吸频率和心率逐渐加快，血液pH值降低，动物死亡时间约为40分钟。
5. 氰化钾中毒性缺氧组：呼吸频率和心率迅速加快，血液pH值降低，动物死亡时间约为10分钟。
五、实验分析1. 缺氧对机体的影响：缺氧会导致机体出现一系列生理和病理生理反应，如呼吸频率和心率加快、血液pH值降低等。
2. 不同类型缺氧的影响：低张性缺氧和一氧化碳中毒性缺氧对机体的影响较为相似，表现为呼吸频率和心率加快、血液pH值降低。
小白鼠病生缺氧实验报告
一、实验目的1. 研究不同类型缺氧对小白鼠生理功能的影响。
2. 探讨影响小白鼠缺氧耐受性的因素。
3. 了解缺氧对呼吸系统、中枢神经系统的影响。
二、实验材料与方法1. 实验动物：健康小白鼠10只，体重20-25g，雌雄不限。
2. 实验仪器：缺氧瓶、呼吸频率计、血氧饱和度仪、电子天平、温度计等。
3. 实验药品：生理盐水、咖啡因、乌拉坦、亚硝酸钠、氰化钠等。
（一）实验分组将10只小白鼠随机分为5组，每组2只，分别为：1. 对照组：正常生理盐水灌胃。
2. 乏氧性缺氧组：将小白鼠放入缺氧瓶中，瓶内氧气含量降低至5%以下，观察缺氧对生理功能的影响。
3. 血液性缺氧组：给予小白鼠亚硝酸钠灌胃，导致血红蛋白含量降低，观察缺氧对生理功能的影响。
4. 循环性缺氧组：给予小白鼠氰化钠灌胃，导致循环功能障碍，观察缺氧对生理功能的影响。
5. 组织性缺氧组：给予小白鼠咖啡因灌胃，导致呼吸中枢兴奋，观察缺氧对生理功能的影响。
（二）实验方法1. 观察指标：记录每组小白鼠的呼吸频率、血氧饱和度、存活时间、活动状况等。
2. 数据分析：采用SPSS软件对实验数据进行统计分析。
三、实验结果1. 乏氧性缺氧组：小白鼠呼吸频率逐渐加快，血氧饱和度降低，存活时间为60分钟。
2. 血液性缺氧组：小白鼠呼吸频率加快，血氧饱和度降低，存活时间为50分钟。
3. 循环性缺氧组：小白鼠呼吸频率加快，血氧饱和度降低，存活时间为40分钟。
4. 组织性缺氧组：小白鼠呼吸频率加快，血氧饱和度降低，存活时间为70分钟。
5. 对照组：小白鼠生理功能正常，存活时间超过120分钟。
四、讨论与分析1. 乏氧性缺氧对小白鼠生理功能的影响：缺氧导致小白鼠呼吸频率加快，血氧饱和度降低，存活时间缩短。
这表明缺氧对小白鼠的生理功能有明显的负面影响。
2. 血液性缺氧对小白鼠生理功能的影响：血液性缺氧导致血红蛋白含量降低，血液携氧能力下降，使小白鼠出现呼吸频率加快、血氧饱和度降低等症状。
缺氧耐受性实验报告
一、实验背景缺氧是指组织细胞在氧气供应不足的情况下，不能维持正常的生理功能。
缺氧耐受性是指机体在缺氧条件下维持生命活动的能力。
本研究旨在通过模拟不同类型的缺氧环境，探讨影响小鼠缺氧耐受性的因素，为临床治疗缺氧性疾病提供理论依据。
二、实验目的1. 复制不同类型的缺氧模型，观察缺氧对小鼠的影响。
2. 分析影响小鼠缺氧耐受性的因素。
3. 为临床治疗缺氧性疾病提供参考。
三、实验材料与方法1. 实验动物：健康昆明小白鼠30只，体重20-25g。
2. 实验仪器：缺氧箱、呼吸机、氧分压测定仪、血液分析仪等。
3. 实验方法：（1）缺氧模型建立：① 乏氧性缺氧：将小鼠置于缺氧箱中，控制箱内氧浓度为10%。
② 低氧性缺氧：将小鼠置于模拟海拔3000m的高原环境中。
③ 组织中毒性缺氧：给予小鼠腹腔注射亚硝酸钠溶液，造成血液性缺氧。
（2）缺氧耐受性观察：① 记录小鼠在不同缺氧模型下的存活时间。
② 观察小鼠呼吸频率、节律和活动能力的变化。
③ 分析血液氧饱和度、血红蛋白浓度等指标。
四、实验结果1. 乏氧性缺氧组：小鼠存活时间为（120±15）min，呼吸频率和节律明显加快，活动能力减弱。
2. 低氧性缺氧组：小鼠存活时间为（100±10）min，呼吸频率和节律加快，活动能力减弱。
3. 组织中毒性缺氧组：小鼠存活时间为（80±10）min，呼吸频率和节律加快，活动能力减弱。
4. 氧饱和度、血红蛋白浓度等指标在不同缺氧模型组中均有明显下降。
五、分析与讨论1. 缺氧对小鼠的影响：缺氧会导致小鼠呼吸频率加快、节律紊乱，活动能力减弱，甚至死亡。
本研究结果表明，不同类型的缺氧均能影响小鼠的缺氧耐受性。
2. 影响缺氧耐受性的因素：（1）缺氧类型：乏氧性缺氧、低氧性缺氧和组织中毒性缺氧对小鼠的影响程度不同。
（2）缺氧程度：缺氧程度越高，小鼠的缺氧耐受性越差。
（3）个体差异：不同小鼠的缺氧耐受性存在差异。
3. 临床意义：本研究结果可为临床治疗缺氧性疾病提供参考，如提高患者氧疗效果、合理调整治疗方案等。
病理生理学实验性缺氧
病理生理学实验性缺氧病理生理学实验报告实验题目：实验性缺氧实验目的：① 复制低张性缺氧、血液性缺氧的动物模型，观察不同类型缺氧过程中实验动物一般状况、呼吸、唇尾颜色及死亡时间等机体功能变化。
② 加深对缺氧分类和缺氧机制以及不同类型缺氧特点的理解。
③ 了解常见类型缺氧的解救办法。
实验步骤：一、低张性缺氧成年小白鼠 3 只，新生鼠一只分别标号1~4，做以下处理：1 号鼠腹腔注射一定量0.1ml/10g 乌拉坦。
2 号鼠腹腔注射等量0.05ml/10g/ 可拉明。
3、 4 号不做任何处理。
2、上述处理之后将1~4 号老鼠同时放入等容积的广口瓶中，并盖好瓶塞，同时用导管把四个广口瓶连通。
3、观察计时，并五分钟观察记录一次。
直至成年鼠全部死亡。
4、解剖死亡小鼠尸体，并观察记录其肝脏颜色。
二、等张性缺氧1、一氧化碳中毒性缺氧① 将装有小白鼠的广口瓶与一氧化碳发生装置连接。
② 用吸管吸取适量甲酸加入试管中，再吸取适量的浓硫酸加入试管中，塞紧瓶塞，并加热。
仔细观察小鼠的变化并记录。
③ 待小鼠死亡后，取出小鼠，并解剖小鼠尸体，观察记录其肝脏颜色。
1、亚硝酸钠中毒性缺氧①取成年健康小白鼠一只，观察其正常表现后，向腹腔注射适量0.3ml/20g 亚硝酸钠。
②观察并记录小鼠的表现，待其死亡后，解剖小鼠尸体，观察并记录其肝脏颜色。
实验结果：一、低张性缺氧(1)一般状况唇尾颜色呼吸频率存活时间肝脏颜色次 /min乌拉坦活泼发绀9868min52s鲜红可拉明活泼发紫9816min40s深暗红色成年空白活泼发紫9857min54s暗红色新生空白活泼存活Co 中毒活泼苍白色982min39s樱桃红亚硝酸钠活泼青紫996min45s咖啡色(2)成年空白鼠实验过程中呼吸频率的变化：成年鼠呼吸频率变化)n250i m200204210/次150141153159135(120114率1009896频50吸36 0呼0 0510152025303540455055时间 (min)①一号鼠注射乌拉坦之后行为状态比较活泼，放入广口瓶后较安静。
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实验方法
血液性缺氧
1. 一氧化碳中毒性缺氧
CO与血红蛋白的亲和力>O2与血红蛋白的亲和力,碳氧血红 蛋白（HbCO）不能与O2结合，还可抑制红细胞的糖酵解， 使2，3-DPG生成减少，氧离曲线左移，HbO2中的O2不易释 放。
（1）准备一氧化碳发生装置
血液性缺氧
血红蛋白含量减少、供氧不足 血红蛋白结构、功能异常
循环性缺氧
全身循环功能障碍 局部循环功能障碍
组织性缺氧
线粒体功能受抑制用氧障碍 呼吸酶合成减少Biblioteka 线粒体损伤缺氧时体征及血氧改变
➢ 呼吸运动的变化规律（频率、幅度、节律） ➢ 循环系统的变化规律（心率、心肌收缩力，心输出量） ➢ 皮肤粘膜颜色的变化规律（紫绀、苍白等） ➢ 存活时间的变化 ➢ 中枢神经系统的变化规律 ➢ 血氧变化
各种类型缺氧的血氧特点
类型
血氧特点 动脉血氧分压 动脉血氧含量 动脉血氧容量 动脉血氧饱和度 动静脉氧含量差 静脉血氧分压 静脉血氧含量 静脉血氧容量 静脉血氧饱和度
乏氧性缺氧 血液性缺氧 循环性缺氧 组织性缺氧
N
N
N
N
N
N
N
N
N
N
N
N或
N
N
N
N
N
实验目的
➢复制低张性与血液性缺氧的动物模型。 ➢观察低张性缺氧时，不同神经机能状态对
常用血氧指标
血氧分压（PO2):溶解于血液的氧分子所产生的张力； 血氧容量（CO2max）:100ml血液中的血红蛋白，在氧分压 为13.3kPa（100mmHg）,温度为38℃时，所能结合氧的最 大毫升数； 血氧含量(CO2): 标准状态下，100ml血液中实际含有的氧量 （毫升数）； 血氧饱和度(SO2) :Hb的氧饱和度，即Hb结合氧的百分数 约等于血氧含量和血氧容量的比值。
将1只小鼠放入广口瓶中，观
察其正常表现后与一氧化碳发生装置连接
用刻度吸管取甲酸3
ml放于试管内，沿试管壁缓慢加入浓硫酸2 ml，塞紧瓶口（间断加热）
观察各项指标。
（2）当小白鼠出现中毒表现（痉挛、跌倒）时，立即关闭CO发生 装置，迅速将小白鼠放入通风处进行抢救。待小白鼠恢复正常后，再 重复上述实验步骤直至死亡，并记录存活时间。
观察指标
➢ 动物一般状况 ➢ 呼吸频率和深度 ➢ 存活时间 ➢ 皮肤粘膜颜色改变
乏氧性缺氧
实验方法
（1）选取体重相近的小鼠3只。
分别做
红（甲）、 蓝（乙）、 无（丙）标记
分别腹腔注射 1%咖啡因、 2%乌拉坦、生理盐水
（注射剂量：0.1ml/10g）
（2）安静15分钟，放入广口瓶中（已加钠石灰少许） 观察记录小鼠 缺氧前呼吸次数、深度和粘膜颜色等指标 塞紧瓶塞，开始记录存 活时间，并每 3min重复观察其他指标1次，如有其他变化，随时记录， 直至动物死亡。 （3）动物死亡后立即检测耗氧量，并计算耗氧率：
小白鼠实验性缺氧
哈尔滨医科大学机能实验学中心
病例
某患者，女，45岁，误将亚硝酸钠白色粉末晶体当做 食盐食入约1 g，出现呕吐、腹痛、呼吸困难，抽搐、昏迷， 呼吸频率加快且幅度显著增加。心率90次/分，律不齐，各瓣膜 听诊区闻病理性杂音，电图显示：窦性心动过缓、频发室性早搏、 完全性右束支传道阻滞，出现室颤。皮肤粘膜的颜色呈咖啡色， 血液颜色变为暗红色，动脉血氧分压PaO2为6.3kPa， 动脉血氧容量CO2max为28.8 mmol/L，动脉血氧含量CaO2为 19.93 mmol/L，动脉氧饱和度SO2为55%。 临床诊断为严重亚硝酸盐中毒性缺氧。对此患者进行紧急抢救， 给予美兰（亚甲蓝）20mg以50％葡萄糖40ml稀释后静脉缓注， 同时予高流量吸氧，大剂量维生素C，ATP，辅酶A，细胞色素C， 输葡萄糖液，速尿静脉注射，抢救成功。
●腹腔注射方法
Discuss and Analysis
（一）低张性缺氧动物实验 【基本体征】
动物所处的环境中空气氧消耗出现氧浓度降低。 呼吸加深加快到变浅边慢，最后呼吸停止。 出现明显的烦躁不安，最终动物死亡。 动物皮肤、黏膜出现明显的紫绀； 注射咖啡因的小白鼠对缺氧的耐受性最差。 注射乌拉坦的小白鼠对缺氧的耐受性最强。
思考
1.什么是缺氧？常用的血氧指标标准是什么？ 2.常见缺氧类型有哪几种？发生的原因有哪些？ 3.本病例所述的亚硝酸钠中毒事件属于那种类型的缺氧？如何解救 4.缺氧时呼吸为什么加深加快？
思考
5.缺氧对机体的影响如何？ 6.亚硝酸钠中毒性缺氧的解救为什么要给予大量维生素C和葡萄糖? 7. CO中毒原性缺氧的症状，机理以及如何解救？ 8. 氧中毒对机体的影响如何？ 9.机体在缺氧时表现为怎样的耐受性？
原
理
氧代谢四大环节： ➢ 外界氧气的含量与肺组织的摄取氧 ➢ 血液系统的携带氧 ➢ 循环系统的运输氧 ➢ 组织细胞的利用氧 缺氧：由于组织氧的供应减少或对氧的利用障碍， 而引起
机体代谢、功能和形态结构异常变化的病理过程。
缺氧的分类
低张性缺氧
吸入气中氧分压降低 肺通气、换气功能障碍 静脉血分流入动脉
机体缺氧耐受性的影响。 ➢观察一氧化碳及亚硝酸盐中毒对机体的影
响，并了解相关急救知识。 ➢掌握缺氧的分类及不同类型缺氧的特征。
实验动物与药品器材
➢ 成年小鼠，雌雄不限； ➢ 钠石灰、甲酸、浓硫酸、5％亚硝酸钠、1％
亚甲蓝、生理盐水 ； ➢ 密封广口瓶、一氧化碳发生装置、刻度吸管、
1ml注射器及针头、酒精灯等。
实验方法
2. 亚硝酸钠中毒性缺氧 亚硝酸盐可使血红素中的二价铁氧化成三价铁，形成高 铁血红蛋白，与羟基结合牢固，失去结合氧的能力。
选取体重相近的小鼠2只，观察正常指标 腹腔注射5％亚 硝酸钠0.3 ml 立即取其中 1只动物腹腔内注入l％亚甲蓝 溶液0.3 ml；另 1只立即注入生理盐水 0.3 ml 观察各项指 标，比较2只小鼠的表现及死亡时间。
注意事项
➢ 广口瓶一定要密闭。 ➢ 进行亚硝酸钠中毒实验时，要事先用注射器准备
好抢救药品，以便及时解毒。 ➢ 亚甲兰勿污染环境。 ➢ 浓硫酸是强腐蚀药品，加液时要小心。 ➢ 给小鼠腹腔注射时，应稍靠左下腹，勿损伤肝脏，
但也应避免将药液注入肠腔或膀胱。
实验动物和器材
实验动物 小白鼠 ●捉拿小鼠的方法