鼠类动物的固定(固定器)和灌胃操作说明书

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小鼠灌胃的方法及注意事项

小鼠灌胃的方法及注意事项

小鼠灌胃方法比较简单,需要关注的只有两点:
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线,方便灌胃针头进入;
二是动作要轻柔,从口角进入,防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下:
1. 准备灌胃针头。

一般可以从市场上面买到,实在没有的话,可以用12号的针头,剪去针尖,用砂纸将头端磨平,也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口,自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉,用这样的针头灌胃,损失小鼠食道的可能性比较大。

2.抓住小鼠,使其头、颈和身体呈一直线。

抓小鼠的动作很简单,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中,若一次抓的感觉不是很顺手,要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作。

3. 抓好小鼠就可以灌胃了,一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入,压住舌头,抵住上颚,轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感,进入食道后就可以推注药液了。

(我认为,所谓的灌胃,不必要灌胃针头进入小鼠的胃部,进入食管后就可以推药了,这样对小鼠食道的损伤要小点,特别是要长期灌胃给药的情况
下。

)当然,灌胃针头也可以再往里面深入一点,防止药液从口中流出。

4. 灌胃容积一般是0.1~0.2ml/10g,最大0.35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。

如有侵权请联系告知删除,感谢你们的配合!。

小鼠灌胃操作要点及注意事项

小鼠灌胃操作要点及注意事项

小鼠灌胃操作要点及注意事项一、操作要点。

1.准备工作:在操作前要准备好所需物品:小鼠、胃管、吸管、注射器、药品或营养液等。

同时,还要确保操作过程中的安全和舒适性,维持操作环境的清洁和温度的适宜。

2.选择合适的胃管和吸管:胃管和吸管应根据小鼠的体重和年龄选择,胃管应略长于小鼠体长的1/5,吸管要略短于胃管的长度,以便有效吸取经过胃肠道的液体。

3.固定小鼠:将小鼠取出放入操作台上,用手掌将其身体固定,让小鼠头部向上,使其舌头伸出口外,用手持注射器或吸管轻压舌头,使其张开嘴巴。

4.插入胃管:将已冲洗干净的胃管沿着舌头推入口腔内,让其顶到舌根部的位置,然后沿着颈部咽喉处缓慢推进,直到胃管穿过食管,进入胃内为止。

注意:操作过程中要避免将胃管插入气管或肺部,同时要注意不要刺伤食管,以免引起感染。

5.插入吸管:将吸管插入口腔,经过较粗的食管及胃肠道,插入胃管一端,只留下另一端露出口外。

然后,将吸管口与注射器连接,缓慢将药物或营养液注入。

6.除去胃液:将药物或营养液注入胃管后,用注射器或吸管轻吸几次,排出胃液和药物或营养液中的气泡,然后拔出胃管和吸管,松开小鼠以便排空胃肠道。

二、注意事项。

1.准确测量:在给小鼠灌胃时,必须准确测量所需药物或营养液的剂量,尽可能减少误差和副作用。

3.保护小鼠:操作时要保持小鼠的身体舒适和安全,不要让其感到惊恐或疼痛。

将小鼠固定时避免施加过大的力量,插入胃管和吸管时不能过于粗暴。

4.清洁和消毒:使用过的器材要及时清洁和消毒,以避免污染和传播病原体。

综上所述,正确的小鼠灌胃操作方法和注意事项能有效提高实验结果的准确性和可靠性,从而确保实验的科学性和严密性。

小鼠灌胃操作要点及注意事项

小鼠灌胃操作要点及注意事项

小鼠灌胃操作要点及注意事项小鼠灌胃是一种常用的实验操作方法,用于给小鼠灌输溶液、药物或其他物质。

正确的灌胃操作可以保证实验结果的可靠性,同时也要注意对小鼠的生理和行为影响。

一、灌胃操作要点:1. 预备工作:(1) 准备所需的实验器材,包括灌胃针、注射器、药物或其他物质。

(2) 确保操作环境的清洁和消毒,以防止潜在的感染。

(3) 合理安排实验时间,以避免影响小鼠正常的进食、活动和休息。

2. 小鼠准备:(1) 选择适合的小鼠,一般选择体重在20-30g之间、健康的小鼠。

(2) 在操作前,将小鼠放置在灌胃台上,尽量保持其镇静和稳定。

(3) 清洁小鼠鼻孔和口腔,以防止灌胃时出现异物或分泌物。

3. 操作步骤:(1) 抓住小鼠的脖子部位,将小鼠的口腔打开。

(2) 将灌胃针插入小鼠的食管,插入位置应当与小鼠头部姿势平行,以减少损伤食管和误入气道的风险。

(3) 慢慢注入所需的溶液或物质,注射器压力应适中,以防止液体流入气管或其他不正确的位置。

(4) 边灌胃边轻轻摇动小鼠的体部,帮助溶液更好地进入胃部。

(5) 操作结束后,保持小鼠的体位稳定,以便溶液在胃中充分混合和吸收。

4. 灌胃后的处理:(1) 在灌胃结束后,及时将小鼠放回其饲养箱内,并观察其恢复情况。

(2) 注意监测小鼠的进食、水分摄入和体重变化,以评估灌胃对其生理状况的影响。

(3) 根据实验需求,可在一定时间范围内重复灌胃操作,但要注意避免对小鼠造成过多的应激和伤害。

二、注意事项:1. 灌胃操作需要经过专业培训,并严格按照实验室的规范操作。

操作人员应掌握灌胃技巧,并了解小鼠的生理特点和行为习性。

2. 灌胃针的选择要合适,长度和直径应根据小鼠的体重和年龄来选择,以免造成食管和胃部的损伤。

3. 注射器的压力要适中,过大的压力会导致溶液迅速注入胃部,增加小鼠感受到的不适。

过小的压力则可能导致溶液无法流入胃部。

4. 灌胃操作时要注意观察小鼠的反应,如有异常反应,如嗳气、剧烈挣扎等应立即停止操作,并观察小鼠的恢复情况。

大小鼠灌胃

大小鼠灌胃

大、小鼠灌胃给药标准操作规程【操作规范】1.抓取实验动物,在手中要稳,使鼠不可随意挣扎。

2.保持鼠头部和颈部成一直线,方便灌胃针头进入口腔。

3.灌胃针头从动物嘴角进入,压住舌头,抵住上颚,轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感。

4.将灌胃针沿咽后壁慢慢插入食道,回抽注射器无空气逆流方可注入药液。

5.灌胃针进入不宜过深,一般灌胃针插入深度为:小鼠2-3cm,大鼠4-6cm。

6.常用一次灌胃量:小鼠0.2 mL/10g(体重×20),大鼠1-2 mL/100g。

7.小鼠<30g,建议用8、9号;30g以上可选择12号灌胃针(配1ml注射器)。

其中9号针头直径小于常规的大头,特别适用幼鼠。

大鼠多用16号,20号,并根据注射药物的量配套2或5ml的注射器。

【灌胃针选择】【循环途径】食管→胃→小肠→小肠毛细血管(吸收入血)→空回肠静脉→肠系膜上静脉→肝门静脉→肝→肝静脉→下腔静脉→右心房→右心室的吸收进入血液循环。

【主要特点】●安全性高:各种给药方式中,口服给药是最安全的;●可选的剂型比较多:只要保证药物是均匀且稳定即可;●生物利用度低:药物经胃肠道吸收,并存在胃肠道首过代谢和肝脏首过代谢,生物利用率相对较低,仅为静脉的25-30%;对于部分化合物吸收不恒定,误差较大。

【常见问题】1.灌胃后,为何小鼠死亡?A.因为小鼠的气管靠近食管,若灌胃针误入气管,药物会进入气管导致小鼠当场窒息死亡;B.刺伤食道:若入针不当,损伤或穿破食管,会导致小鼠逐渐消瘦并死亡。

2.灌胃时为了避免小鼠死亡,最应该注意?一定要主要正确抓取和插入。

抓取时:小鼠体位一定要保持,头、颈部及身体一条线,尽量保证插入的是食管而不是气管。

插入时:嘴角进针,然后竖直向下,先试探性的稍微用力,慢慢向下,一旦感觉有阻碍就得停止,针无阻力才可注射。

3.大鼠灌胃和小鼠区别主要在于哪里?大鼠操作步骤与小鼠基本一样,但因大鼠个体很大,易挣扎,所以难度更大,所以一定要准确抓取;另外灌胃针型号不一样,多用16号,20号适合更大型大鼠,并根据注射药物的量配套2或5ml的注射器。

灌胃方法

灌胃方法

随着生命科学技术的发展,动物实验已成为医学实验研究的基本方法。

根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同,要求对实验动物实施不同的给药方法。

尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定,经口灌胃给药方法是一种重要的途径。

在国内文献上却很少见到具体的描述。

在此,作者将在实践中摸索出的一套实用于小鼠、大鼠、豚鼠、家兔经口灌胃给药的方法介绍如下。

一、灌胃器具制作1.1小鼠、大鼠、豚鼠灌胃器的制作小鼠、大鼠灌胃器的来源有两个,一是从市面上购买特制的I2~l6号灌胃针。

二是自制。

自制方法为:取l2号普通注射针头,首先将针头尖部去掉,然后用细锉刀把去掉部分锉平、锉光,再用沙纸磨光滑,有条件时可在针尖处点焊成球型。

加工成有20度弧度的灌胃针,连接1ml或5ml的注射器,即成为大小鼠的灌胃器。

在打磨针头或加工弧度时用力一定要均匀,否则就会将针管弄扁,影响针管畅通。

豚鼠灌胃器,可采用大鼠灌胃器。

1.2家兔灌胃器的制作取12号腰椎穿刺针。

加工方法同小鼠、大鼠灌胃器的制作,针体长约9cm,并连接10ml或20ml注射器,即家兔灌胃器。

二、灌胃操作方法2.1小鼠经口灌胃给药方法先保定动物,即用右手将小鼠尾巴提起,置于鼠笼或粗糙的平面上,当小鼠向前挣扎时,用左手的拇指和食指捏住小鼠两耳后颈背皮肤,翻转小鼠置于掌心,拉直后肢,以小指压住小鼠尾巴即可。

在保定小鼠过程中,不要用力过大,勿握其颈部,以免窒息死亡。

以灌胃器轻轻压其头部,使口腔与食道成一条直线,再将灌胃针沿上腭壁轻轻进入食道,当灌胃针进入约3cm左右时即达胃内。

如果灌胃针的位置插入正确,小鼠可自行吞服药,灌胃针插入位置不正确,小鼠会强烈挣扎,必须拔出重插,否则可能将药物灌入气管,造成小鼠死亡。

注完药液后轻轻抽出灌胃针。

小鼠一次最大灌胃量为:0.4ml/10g.w。

2.2大鼠经口灌胃给药方法大鼠的捕捉方法与小鼠基本相同。

根据长期的实践经验,我们发现如用一块湿的纱布盖在大鼠身上,既可以防滑,又可以给初学者一种安全感。

灌胃1准备药物和灌胃器械2抓取老鼠3灌胃注意事项:1)抓取老鼠

灌胃1准备药物和灌胃器械2抓取老鼠3灌胃注意事项:1)抓取老鼠

灌胃1.准备药物和灌胃器械2.抓取老鼠3.灌胃注意事项:1)抓取老鼠时,可以戴大手套,但是操作起来会很不方便;建议只戴橡胶手套或不戴手套。

左手大拇指和食指从耳后固定老鼠头部,将颈部皮肤抓紧,使头部不能转到(但也不要窒息),剩余手指将老鼠背部皮肤抓紧,使其身体不能扭动。

使其和身体成一直线。

可以两人配合,但是会浪费时间,更增加灌胃难度;强烈建议一人独立操作。

2)老鼠抓好后,要正确持针,中指、无名指和大拇指夹住针体,食指放在推塞上;针务必要沿口角进入,大概进入针体的2/3即可将药物注射入胃,注意进针不顺时切忌用力,应重新进针。

如果当时药物没有流出,既可确认灌胃成功,如果流出则失败。

3)在正式实验灌胃前,务必先练习。

首先不要惧怕老鼠,其次不要先老鼠脏(清洁级老鼠很干净的),再次,不能生硬,不要让老鼠紧张。

4)熟能生巧,边学习边练习边思考方能学好。

有不足之处,敬请各位老师同学批评指正,以使该实验更加臻美。

若有不解之处,请询冯展波139****4731,或者免疫学技术交流群:85460640。

QQ:929108912谢谢。

2VO模型1.准备手术器械2.麻醉3.去除颈部毛4.切开中正颈部皮肤,分离肌肉、血管、神经5.分离目标血管,双线结扎,血管无需剪断6.缝合伤口注意事项:1)缝合线用4号线;2)麻药目前本实验室暂时使用水合氯醛,一般是10%的,按照350mg/kg量给药,由于老鼠对药物的耐受差异较大,麻醉把握不好死亡率较高;麻醉不足时,补药不超过前总量的10%,补药时非常容易导致死亡,且等待时间会明显延长;麻醉过度则可进行口腔插管和辅助呼吸,如果均不行,则死亡放弃。

3)分离血管时务必不能将神经损伤。

4)出麻醉状态的老鼠体温调节失衡,所以手术过程中注意保温;5)老鼠体重在250-280g左右最适合实验,死亡率最低;6)打麻药时注意:首先正确抓取老鼠(见灌胃操作规程),再次将老鼠头朝下倒置成30度角,右手持针,腹中线和两后腿中间连线相交处进针,回抽后,注射。

小鼠灌胃的操作和注意事项

小鼠灌胃的操作和注意事项

小鼠灌胃的操作和注意事项
小鼠灌胃,这可是一项需要技巧和细心的操作呢!就好像给一个小宝贝喂饭,得特别小心才行。

先来说说操作吧。

你得准备好合适的灌胃针,这就好比战士上战场得有称手的武器一样。

然后轻轻抓住小鼠,可别太用力了,不然小鼠会不舒服的。

把它固定好,让它没法乱动,这时候就像是在安抚一个调皮的小孩子。

接着,把灌胃针沿着小鼠的嘴角慢慢插入,动作要轻柔,就像在走钢丝一样,不能有丝毫差错。

当灌胃针顺利进入食管后,就可以慢慢推送药液啦。

这过程中,有好多注意事项呢!比如灌胃针的选择,不合适的话那不就糟糕啦!还有啊,固定小鼠的时候一定要牢固,不然它挣扎起来可就麻烦大了。

灌胃的速度也得控制好,太快了小鼠会受不了,这就跟人吃饭不能噎着一个道理呀!每次灌胃的量也要把握好,太多太少都不行,这多关键呀!
你想想,如果操作不当会怎样?那小鼠可能会受伤,实验结果可能就不准确了,这可不是开玩笑的呀!所以,每一个步骤都要认真对待,不能有丝毫马虎。

这就跟盖房子一样,基础打不好,房子能牢固吗?
在进行小鼠灌胃的时候,我们要把它当成一个小生命来对待,要有耐心和爱心。

就好像我们对待自己的宠物一样,要用心去呵护。

只有这样,才能保证操作的顺利进行,才能得到可靠的实验数据。

这可不是一件容易的事,但只要我们认真去做,就一定能做好。

小鼠灌胃虽然看似简单,但里面的学问可大着呢!我们要不断学习,不断提高自己的技能,这样才能在实验中取得好的结果。

所以啊,大家一定要重视起来呀!。

小鼠灌胃的方法及注意事项

小鼠灌胃的方法及注意事项

. 小鼠灌胃的方法及注意事项
小鼠灌胃方法比较简单,需要关注的只有两点:
一、要保持小鼠的头部和颈部成一直线,方便灌胃针头进入;
二、动作要轻柔,从口角进入,防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下:
1. 准备灌胃针头。

一般可以从市场上面买到,实在没有的话,可以用12号的针头,剪去针尖,用砂纸将头端磨平,也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口,自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉,用这样的针头灌胃,损失小鼠食道的可能性比较大。

2.抓住小鼠,使其头、颈和身体呈一直线。

抓小鼠的动作很简单,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中,若一次抓的感觉不是很顺手,要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作。

3. 抓好小鼠就可以灌胃了,一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入,压住舌头,抵住上颚,轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感,进入食道后就可以推注药液了。

(我认为,所谓的灌胃,不必要灌胃针头进入小鼠的胃部,进入食管后就可以推药了,这样对小鼠食道的损伤要小点,特别是要长期灌胃给药的情况下。

)当然,灌胃针头也可以再往里面深入一点,防止药液从口中流出。

4. 灌胃容积一般是0.1~0.2ml/10g,最大0.35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。

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动物实验基本操作

动物实验基本操作

动物实验基本操作一(固定、性别判定、标识)【实验目的】在做动物试验时,为确保给药、实验顺利进行,防止被动物咬伤、准确辨别动物性别、准确标识动物,要学会用正确方法捉拿实验动物、掌握辨别动物性别的方法以及掌握标识动物的方法。

【实验对象】SD大鼠,KM小鼠,雌雄各半,体重180-250g。

【实验器材和药品】器材:鼠笼、大小鼠固定器、方木板、美式图钉、细绳、防护手套药品:苦味酸80%~90%酒精饱和溶液、20%乌拉坦【实验步骤】一、小鼠的捉拿1、徒手固定:用右手提起尾巴中部,放在鼠笼盖或其他粗糙面上。

向后上方轻拉,此时,小鼠前肢紧紧抓住粗糙表面。

左手拇指和食指迅速捏住小鼠颈背部皮肤,再置小鼠于左手心,并以左手掌心和中指夹住小鼠背部皮肤,无名指压住小鼠尾根部,将其固定于手中。

右手可行注射或其它操作。

2、固定器固定:尾静脉注射或给药时,将小鼠放进固定器中或者大小和重量适当的容器(如烧杯),只露出尾巴,该类容器能够压住尾部,避免其活动。

勿固定过紧造成窒息死亡。

进行腹腔手术或心脏采血时,先准备一个15-20cm的方木板,边缘钉入五颗钉子。

将小鼠四肢分别用20-30cm的线绳捆绑,线的另一头分别绑在方木板的钉子上,并且在头部上颚切齿牵引一根线绳,也固定在钉子上,达到完全固定。

二、大鼠的捉拿4-5周内的大鼠,方法同小鼠。

周龄较大的,则:1、首先戴好防护手套。

2、用右手拇指和食指抓住大鼠尾巴中部将大鼠提起,放在大鼠饲养盒的面罩上。

3、左手顺势按、卡在大鼠躯干背部,稍加压力向头颈部滑行。

4、以左手拇指和食指捏住大鼠两耳后部的头颈皮肤,其余三指和手掌握住大鼠背部皮肤,完成抓取保定。

三、性别判定小鼠、大鼠性别判定(1)幼鼠外生殖器与肛门间隔短的是♀,外生殖器与肛门间隔长的是♂。

(2)成年动物可直接肉眼辨认,雄性有膨起的阴囊和阴茎,雌性动物有阴道口。

四、动物的标记小鼠的短期标记法:苦味酸80%~90%酒精饱和溶液(黄色),标出属于自己的编号【注意事项】1、实验人员要有精神准备:掌握方法,胆大心细,做好防护。

小鼠灌胃的方法及注意事项

小鼠灌胃的方法及注意事项

小鼠灌胃的方法及注意事项
小鼠灌胃方法比较简单,需要关注的只有两点:
一、要保持小鼠的头部和颈部成一直线,方便灌胃针头进入;
二、动作要轻柔,从口角进入,防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下:
1. 准备灌胃针头。

一般可以从市场上面买到,实在没有的话,可以用12号的针头,剪去针尖,用砂纸将头端磨平,也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口,自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉,用这样的针头灌胃,损失小鼠食道的可能性比较大。

2.抓住小鼠,使其头、颈和身体呈一直线。

抓小鼠的动作很简单,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中,若一次抓的感觉不是很顺手,要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作。

3. 抓好小鼠就可以灌胃了,一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入,压住舌头,抵住上颚,轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感,进入食道后就可以推注药液了。

(我认为,所谓的灌胃,不必要灌胃针头进入小鼠的胃部,进入食管后就可以推药了,这样对小鼠食道的损伤要小点,特别是要长期灌胃给药的情况下。

)当然,灌胃针头也可以再往里面深入一点,防止药液从口中流出。

4. 灌胃容积一般是0.1~0.2ml/10g,最大0.35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。

小鼠灌胃的方法及注意事项(精选课件)

小鼠灌胃的方法及注意事项(精选课件)

小鼠灌胃的方法及注意事项小鼠灌胃方法比较简单,需要关注的只有两点:
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线,方便灌胃针头进入;ﻫ二是动作要轻柔,从口角进入,防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下:
1. 准备灌胃针头.一般可以从市场上面买到,实在没有的话,可以用12号的针头,剪去针尖,用砂纸将头端磨平,也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口,自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉,用这样的针头灌胃,损失小鼠食道的可能性比较大。

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2.抓住小鼠,使其头、颈和身体呈一直线。

抓小鼠的动作很简单,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部即可.因为小鼠始终在活动中,若一次抓的感觉不是很顺手,要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作。

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3。

抓好小鼠就可以灌胃了,一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入,压住舌头,抵住上颚,轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感,进入食道后就可以推注药液了.(我认为,所谓的灌胃,不必要灌胃针头进入小鼠的胃部,进入食管后就可以推药了,这样对小鼠食道的损伤要小点,特别是要长期灌胃给药的情况下。

)当然,灌胃针头也可以再往里面深入一点,防止药液从口中流出。

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4. 灌胃容积一般是0.1~0.2ml/10g,最大0.35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0。

8ml。

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小白鼠灌胃给药法流程及注意事项

小白鼠灌胃给药法流程及注意事项

小白鼠灌胃给药法流程及注意事项下载提示:该文档是本店铺精心编制而成的,希望大家下载后,能够帮助大家解决实际问题。

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(完整word版)小鼠灌胃的方法及注意事项

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一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线,方便灌胃针头进入;
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做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下:
1. 准备灌胃针头。

一般可以从市场上面买到,实在没有的话,可以用12号的针头,剪去针尖,用砂纸将头端磨平,也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口,自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉,用这样的针头灌胃,损失小鼠食道的可能性比较大。

2.抓住小鼠,使其头、颈和身体呈一直线。

抓小鼠的动作很简单,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中,若一次抓的感觉不是很顺手,要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作。

3. 抓好小鼠就可以灌胃了,一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入,压住舌头,抵住上颚,轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感,进入食道后就可以推注药液了。

(我认为,所谓的灌胃,不必要灌胃针头进入小鼠的胃部,进入食管后就可以推药了,这样对小鼠食道的损伤要小点,特别是要长期灌胃给药的情况
下。

)当然,灌胃针头也可以再往里面深入一点,防止药液从口中流出。

4. 灌胃容积一般是0.1~0.2ml/10g,最大0.35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。

小鼠灌胃的方法及注意事项之欧阳物创编

小鼠灌胃的方法及注意事项之欧阳物创编

小鼠灌胃方法比较简单,需要关注的只有两点:
一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线,方便灌胃针头进入;二是动作要轻柔,从口角进入,防止损失食道。

做的多了自然就熟练了。

具体操作过程如下:
1. 准备灌胃针头。

一般可以从市场上面买到,实在没有的话,可以用12号的针头,剪去针尖,用砂纸将头端磨平,也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口,自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉,用这样的针头灌胃,损失小鼠食道的可能性比较大。

2.抓住小鼠,使其头、颈和身体呈一直线。

抓小鼠的动作很简单,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中,若一次
抓的感觉不是很顺手,要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作。

3. 抓好小鼠就可以灌胃了,一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入,压住舌头,抵住上颚,轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感,进入食道后就可以推注药液了。

(我认为,所谓的灌胃,不必要灌胃针头进入小鼠的胃部,进入食管后就可以推药了,这样对小鼠食道的损伤要小点,特别是要长期灌胃给药的情况下。

)当然,灌胃针头也可以再往里面深入一点,防止药液从口中流出。

4. 灌胃容积一般是0.1~0.2ml/10g,最大0.35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0.8ml。

小鼠灌胃的方法及注意事项(精品课件)

小鼠灌胃的方法及注意事项(精品课件)

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一是要保持小鼠的头部和颈部成一直线,方便灌胃针头进入;
二是动作要轻柔,从口角进入,防止损失食道。

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具体操作过程如下:
1。

准备灌胃针头.一般可以从市场上面买到,实在没有的话,可以用12号的针头,剪去针尖,用砂纸将头端磨平,也可以用。

但是买的灌胃针头的头端用锡或者适宜的方法处理了针头的锐口,自己用砂纸不可能将所有的锐口都磨掉,用这样的针头灌胃,损失小鼠食道的可能性比较大.。

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2。

抓住小鼠,使其头、颈和身体呈一直线.抓小鼠的动作很简单,左手的小指和无名指抓住小鼠的尾巴,另外三个手指抓住小鼠的颈部即可。

因为小鼠始终在活动中,若一次抓的感觉不是很顺手,要放开重新抓,不要逞强进行下一步操作.。

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3。

抓好小鼠就可以灌胃了,一般用1ml的注射器配灌胃针头。

灌胃针头从小鼠的嘴角进入,压住舌头,抵住上颚,轻轻向内推进,进入食管后会有一个刺空感,进入食道后就可以推注药液了.(我认为,所谓的灌胃,不必要灌胃针头进入小鼠的胃部,进入食管后就可以推药了,
这样对小鼠食道的损伤要小点,特别是要长期灌胃给药的情况下。

)当然,灌胃针头也可以再往里面深入一点,防止药液从口中流出。

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4。

灌胃容积一般是0。

1~0.2ml/10g,最大0.35ml/10g,每只小鼠的灌胃最大容积不超过0。

8ml。

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小鼠灌胃方法

小鼠灌胃方法

小鼠灌胃方法
2016年08月16日浏览量: 5274 次评论(0)来源:《基础动物实验技术与方法》作者:师长宏冯秀亮张海责任编辑:admin 摘要:操作者左手抓取并固定住鼠,使其头颈变直,右手持连接有灌胃针头(大鼠用6号,小鼠用5号)的注射器,针头沿鼠右侧(背卧位时)嘴角,顺着舌下插入咽,针头稍上撬便于通过食道进入胃内。

操作者左手抓取并固定住鼠,使其头颈变直,右手持连接有灌胃针头(大鼠用6号,小鼠用5号)的注射器,针头沿鼠右侧(背卧位时)嘴角,顺着舌下插入咽,针头稍上撬便于通过食道进入胃内,这时方可给药,药量为小鼠一次0.3ml,大鼠一次1~1.5ml。

进针过程中,若动物有呕吐动作或强烈挣扎,则表明针头插入气管,这时应及时退针,不可推药,待动物恢复安静后,再重复操作。

小鼠的灌胃深度
小鼠灌胃。

大鼠灌胃给药标准操作规程

大鼠灌胃给药标准操作规程

大鼠灌胃给药的标准操作规程1.目的规范大鼠灌胃给药的具体操作,良好使用实验动物,保持实验质量的稳定性,合理控制因操作引起的实验误差,以确保实验的可靠性和准确性。

2.范围适用于实验大鼠灌胃给药的操作人员。

3.内容3.1准备工作3.1.1核对实验方案,按照实验计划规定时间准时进行灌胃给药。

3.1.2从供试品管理部领取受试物,核对专题名称和剂量。

3.1.3若操作在SPF级动物房进行,按照动物房的更衣SOP进行更衣,按人流路径行走,进入操作动物房。

3.2操作程序3.2.1从笼内将大鼠取出,放在饲养盒的盒盖(或表面粗糙的物体)上,根据体表标记识别动物编号。

3.2.2操作者用合适规格的灌胃注射器抽取所需受试物的剂量,排空注射器内的空气,放在操作台上或者交给辅助人员。

3.2.3操作者用一只手的拇指和中指从背侧伸入大鼠腋下,固定大鼠的手翻转,将大鼠头朝上,腹面对着操作者,同时食指抵住顶骨,确保食道平直。

3.2.4另一只手拿起准备好的灌胃注射器,大致定好灌胃针头应插到胃内后的位置。

3.2.5将灌胃针头由大鼠左侧口角,顺着上颚后壁插入咽部,轻轻移动灌胃针头前端,沿着平行于动物的纵轴,进入食道,没有抵触感,把灌胃针头插入胃部。

3.2.6若感到阻力或者动物挣扎时,应立即停止进针或将针拔出,稍作安抚后重新进行灌胃操作,以免损伤或穿破大鼠食道以及误入气管。

3.2.7将灌胃针头插入胃内后,稳定推动针芯,慢慢注入受试物。

3.3给药后程序3.3.1在完成每只大鼠灌胃操作后,应立即填写“给药记录表”上相应内容,在完成该批大鼠灌胃操作后,必须立即在“给药记录表”上签名和注明日期,并作好核查。

3.3.2仔细观察每只动物情况,检查是否有迟发的异常情况。

3.3.3核对各类标签指标、用药量以及记录,防止发生漏给药和错给药的情况。

3.3.4将剩余受试物及盛装受试物的容器交还供试品管理部。

3.3.5由项目负责人将“给药记录表”放入课题档案。

3.4注意事项3.4.1开始给药之前,必须核对实验方案,确定不同剂量组的动物编号。

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灌胃法
分两步操作(以大小鼠为例):
(1)固定:(小鼠)右手抓住其尾,放在鼠笼铁纱网上,然后用左手拇指及食指沿其背向前抓住其颈部,并以左手的小拇指和掌部夹住其尾固定在手上;(大鼠)实验者应戴帆布手套,用右手将鼠尾抓住提起,放在粗糙的台面或鼠笼上,抓住鼠尾向后轻拉,左手抓紧两耳和头颈部皮肤,余下三指紧捏鼠背部皮肤,如果大鼠后肢挣扎厉害,可将鼠尾放在小指和无名指之间夹住,将整个鼠固定在左手中;
(2)灌胃:左手固定好动物以后,右手持灌胃器,将灌胃针从鼠的口腔插入,压迫鼠的头部,使口腔与食道成一直线,将灌胃针沿咽后壁慢慢插入食道,可感到轻微的阻力,此时可略改变一下灌胃针方向,以刺激引起吞咽动作,顺势将药液注入。

一般灌胃针插入小鼠深度为3~4cm,大鼠或豚鼠为4~6cm。

常用灌胃量小鼠为0.2~1ml,大鼠1~4ml,豚鼠1~5ml。

图3 大小鼠的灌胃方法
鼠类动物固定方法(固定器)
以大鼠为例(固定小鼠的操作和大鼠一样):
第一步:准备好固定器
第二步:将固定器和大鼠平放,动物很容易进入固定器
第三步:动物进入固定器以后,将后端盖上
第四步:将前端盖上,以免大鼠往前跑
第五步:将前端盖往后推,锁紧,固定动物完毕。

第六步:大鼠固定后,可进行尾静脉注射、血压测量等
注意事项:
(1)勿将动物垂直放入,否则动物会抓固定器(如下图所示)
(2)固定鼻锥时保证动物舒适,呼吸顺畅,不会大幅度移动;不能使头部向旁侧弯曲,也不能使动物身体紧贴固定器尾部窗口受到挤压;整个过程保证动物舒适、轻松。

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