禽流感病毒的悬浮培养
细胞悬浮培养技术在兽用疫苗领域的应用
细胞悬浮培养技术在兽用疫苗领域的应用发布时间:2021-07-06T03:05:52.323Z 来源:《中国科技人才》2021年第10期作者:刘艳昭刘洋谭源[导读] 对悬浮细胞进行分析,不同条件下生长的细胞的驯化可能不同于对病毒的敏感性,不同的克隆菌株对同一病毒表现出不同的敏感性。
因此,如何使用细胞系统大规模生产疫苗,必须有一个可繁殖病毒的适应性选择,适用于悬浮作物的特点有:高生物稳定性、耐腐蚀性强,产品生产周期短,产品表现效率高,满足大规模生产需求等。
哈药集团生物疫苗有限公司黑龙江哈尔滨 150069摘要:目前,生物反应堆的悬浮液技术已广泛用于海外动物疫苗的生产。
由于我国细胞悬浮技术起步晚,与其他国家的差距仍然存在,但是也取得了令人鼓舞的进展。
此外,对生物技术反应堆中的悬浮液技术进行深入研究,加强和发展悬浮细胞培养技术,有助于进一步完善与细胞悬浮液有关的生产。
关键词:动物细胞;悬浮培养;兽用疫苗动物细胞培养始于20世纪初,以青蛙凝固的淋巴细胞被冻结作为基础,在无菌条件下,试验管成功地发展了青蛙的胚胎神经组织,并观察了细胞生长过程。
随着细胞培养技术的发展,悬浮液培养技术被用于大规模发展疫苗,并广泛用于生产。
悬浮培养法是一种技术,在生物技术反应堆中有效培育动物细胞,用于生物产品生产。
细胞悬浮液培养由于其生产效率高、质量控制简便,被广泛用于研究和开发体外生长的细胞,更重要的是将细胞培养技术应用于生产动物疫苗。
一、悬浮培养技术的核心要素对悬浮细胞进行分析,不同条件下生长的细胞的驯化可能不同于对病毒的敏感性,不同的克隆菌株对同一病毒表现出不同的敏感性。
因此,如何使用细胞系统大规模生产疫苗,必须有一个可繁殖病毒的适应性选择,适用于悬浮作物的特点有:高生物稳定性、耐腐蚀性强,产品生产周期短,产品表现效率高,满足大规模生产需求等。
1、细胞培养的选择。
在细胞悬浮过程中,选择营养介质也是一个重要的环节。
一般来说,血清是动物细胞生长所需的营养素之一,然而,由于血清的复杂性和各批血清的不均匀性,生产受到了阻碍。
流感疫苗生产用MDCK细胞悬浮培养技术研究进展
也 就 是 说 依 靠 传 统 的 驯化 方 式 或 者 贴 壁 培 养 时 的 代 谢 变 化 不 大 ,丑
C K 细胞 悬 培 养 基可 通用 等等 。 生产会遇到很大的难题,如细胞的消 单 纯 的用 机 械 搅拌 使 MD
化 问题 ,因此 ,使 MDCK 细 胞适 应 悬 浮 生 长 进 而 培 养 流 感 病 毒 就 成 为
1 )细 胞贴 壁表 面积 大大 增 赖性 上 皮细胞 ,且 它具 有 典 型的 “ 失 包 括 ( 巢 凋 亡 ” 现 象 ,即 一 种 特 殊 的 细 胞 培 养基 利用 充分 , 细胞 密度 增大 。 微 载 体 可 在 搅 拌 停 止 时 沉 降 ,侣 将 培养 基与细胞 分离。( 3 )与
是 在 生 物 反 应 器 中 ,在 人 工 条件 下 ,
产 成 本 。 因此 , 自主 开 发 无 血
养 基进 行 MDCK 细胞 悬 浮培 养 前 的发展 趋势 。 2 .无血 清 单细 胞 悬 浮培 养 。
胞 能 在 微 载 体 表 面 附 着 生 长 , 同 时
高 效 率 大 规 模 的 培 养 动 物 细 胞 进 而 加 以 持 续 搅 动 使微 载 体 始 终 保 持 悬 应 用 于生 物制 品生 产 的技术 ,可根 据 浮 状 态 。 反 应 器 中 使 用 微 载 体 是 一
研 究 的重 点 。
浮 生 长 难 度 相 当 大 。Va n We z e l 创
但 是 , 目前 生 物 反 应 器 微 培养研究 只是单批次 的培养, 化 放 大 培 养 依 旧是 难 题 。且 微
立 的 微 载 体 悬 浮 培 养 系 统 开 创 了 细 胞 体 外 大 规 模 培 养 的 先 河 ,更 为 准 确 的说 是 使 贴 壁 细 胞 大 规 模 培 养 成
禽流感疫苗生产中病毒培养工艺研究进展
禽流感疫苗生产中病毒培养工艺研究进展
王萱;李群辉;高照;孙中涛;程欣;刘佳佳;王晓泉;刘晓文
【期刊名称】《中国家禽》
【年(卷),期】2014(36)18
【摘要】禽流感疫苗大规模生产一直备受关注,建立以生物反应器技术为基础的动物细胞大规模培养技术是禽流感疫苗生产的主流模式。
目前国内外报道禽流感疫苗的病毒培养方式主要有传统的SPF鸡胚生产法、哺乳动物细胞贴壁培养法、微载体悬浮培养法、全悬浮无血清培养法。
文章介绍了不同病毒培养工艺的优缺点,尤其是全悬浮无血清细胞培养法,该技术是进行大规模禽流感疫苗生产的必然趋势。
【总页数】3页(P41-43)
【作者】王萱;李群辉;高照;孙中涛;程欣;刘佳佳;王晓泉;刘晓文
【作者单位】扬州大学兽医学院农业部畜禽传染病学重点开放实验室
【正文语种】中文
【中图分类】S855.3
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MDCK细胞悬浮驯化及对H9亚型禽流感病毒敏感性的研究
doi:10. 11751 / ISSN. 1002 - 1280. 2019. 10. 01
·1·
MDCK 细胞悬浮驯化及对 H9 亚型 禽流感病毒敏感性的研究
习 硕,赵 蕾,史爱华,章振华,李 林,沈 佳,崔丽娜,姜北宇,张建伟∗
( Institute of Animal Husbdicine Beijing Academy of Agriculture and Forestry Sciences, Beijing 100097, China) Corresponding author: ZHANG Jian - wei, E - mail:jweizhang@ sina. com
禽流感 ( Avian influenza, AI) 是由禽流感病毒 ( Avian influenza virus, AIV) 引起的禽流行性感冒。 自 1878 年首先在意大利发现以来,全世界范围内 都有禽流感毒株引起的流感的流行,不仅给养禽业 造成巨大的经济损失,还给人类的公共卫生带来严 重威胁[1] 。 接种由流行毒株制备的疫苗,是预防禽 流感最有效的手段。 目前,国内的禽流感病毒疫苗 抗原主要采用鸡胚增殖的方法制备,然而使用鸡胚 制苗存在以下缺点:首先,病毒在鸡胚中的连续传 代易造成 HA 基因发生变异[2 - 3] ,从而导致病毒的 免疫原性和病毒毒力的变化;其次,收获的尿囊液 中存在的鸡胚杂质可造成被免疫鸡的过敏反应;第 三,大规模生产时鸡胚来源不同,致使抗原批间一 致性差;最后,收获毒液后残留的带毒鸡胚,处理不 当也会造成潜在生物安全危害,为此急需寻求一种 新的模式制备禽流感疫苗抗原[4] 。
重组禽流感病毒灭活疫苗(细胞源)破乳方法对比及应用
2018年第1期 吉林畜牧兽医17·实验研究·ShiYan YanJiu重组禽流感病毒灭活疫苗(细胞源)破乳方法对比及应用宋海岩,付春杰,石 莹,孟令伟,张 丹,李 莉,赵海源*,王玉红吉林冠界生物技术有限公司,吉林省梅河口 135000摘 要:为寻找适合重组禽流感病毒灭活疫苗(细胞源)油包水剂型疫苗的破乳方法,进而能够快速、有效的提取疫苗中的水相,通过析出的水相,尝试进行一些关于疫苗质量的试验,寻找合适的破乳方法并进行检测方法的运用。
破乳采用三种方法进行对比,即:冻融法、水浴法、丙酮沉淀法,提取的水相进行细菌内毒素测定和红细胞凝集试验。
结果表明:通过冻融的方法能够提取水相,而水浴方法和丙酮沉淀方法未出现水相析出,故采用冻融的方法更适合重组禽流感病毒灭活疫苗(细胞源)油包水剂型水相的析出并且操作简便。
对提取的水相进行细菌内毒素测定和红细胞凝集试验:细菌内毒素测定结果均小于10 EU/mL,与乳化前半成品细菌内毒素测定结果相一致。
通过乳化前半成品的红细胞凝集试验结果和乳化后破乳析出水相的细胞凝集试验结果对比,无明显变化,符合乳化时水相各组分配比情况,通过两组试验说明乳化后灭活病毒细菌内毒素未增加,HA 效价无变化,疫苗仍保持良好的质量。
关键词:重组禽流感病毒;灭活疫苗(细胞源);破乳方法禽流感病毒可引起禽类的呼吸器官或全身性感染。
高致病性禽流感病毒可以直接感染禽类,偶尔也能直接或间接感染人类。
禽流感的流行会严重影响畜牧业发展和国际进出口贸易。
低致病性禽流感病毒可以经基因突变或基因重配转变成高致病性禽流感病毒。
高致病性禽流感病毒是在人群中引发流感的一个潜在危险因素,并会严重地威胁人类健康。
因此对禽流感病毒的检测和监测以及对其药物的研发和疫苗的研制,已成为世界各国政府及卫生防疫部门日益关注和积极着手解决的重大问题之一[1]。
吉林冠界生物技术有限公司所生产的重组禽流感病毒灭活疫苗(细胞源)[2]采用细胞悬浮工艺进行培养,根据其乳化工艺制备成油包水剂型疫苗,为客观的反映产品质量,有时会根据试验需要提取水相,根据此目的现采用:冻融、水浴、丙酮沉淀三种方法进行对比。
适应H9亚型禽流感病毒增殖的MDCK悬浮细胞株的驯化及其生物学特性
江苏农业学报(Jiangsu J.of Agr.Sci.),2016,32(6):1377~1383h ttp://www.js n y x 吴培培,唐应华,褚 轩,等.适应H9亚型禽流感病毒增殖的MDCK 悬浮细胞株的驯化及其生物学特性[J].江苏农业学报,2016,32(6):1377⁃1383.doi:10.3969/j.issn.1000⁃4440.2016.06.028适应H9亚型禽流感病毒增殖的MDCK 悬浮细胞株的驯化及其生物学特性吴培培1,2,3, 唐应华1,2,3, 褚 轩1,2,3, 王伟峰1,2,3, 陈 丽1,2,3, 侯继波1,2,3, 冯 磊1,2,3(1.江苏省农业科学院国家兽用生物制品工程技术研究中心,江苏南京210014;2.农业部兽用生物制品工程技术重点实验室,江苏南京210014;3.江苏省动物重要疫病与人兽共患病防控协同创新中心,江苏扬州225009)收稿日期:2016⁃09⁃14基金项目:江苏省农业科技自主创新基金项目[CX(14)5045];中央财政农业技术推广基金项目[TG(14)067]作者简介:吴培培(1982⁃),女,江苏南通人,硕士,助理研究员,从事兽用生物制品工程技术研究㊂(Tel)025⁃84392018;(E⁃mail)wupeipei2015@通讯作者:冯 磊,(E⁃mail)fenglei@ 摘要: 本研究通过筛选驯化的MDCK 细胞获得无血清悬浮生长MDCK 细胞(命名为MDCK⁃sus),测定该细胞的比生长速率㊁细胞活力及细胞最大生长密度等生长特性,采用间接免疫荧光法和流式细胞仪检测法比较母本MDCK 细胞与MDCK⁃sus 细胞流感病毒受体[唾液酸⁃α⁃2,3⁃半乳糖糖链受体(SAα2,3Gal)和唾液酸⁃α⁃2,6⁃半乳糖糖链受体(SAα2,6Gal)]的丰度,用荧光定量PCR 检测比较细胞中α⁃2,3唾液酸转移酶(ST3Gals )基因与α⁃2,6唾液酸转移酶(ST6Gals )基因表达水平的差异,通过测定流感病毒血凝HA 效价比较母本MDCK 细胞与MDCK⁃sus 细胞对流感病毒的增殖能力㊂结果表明,经驯化获得的适合无血清悬浮培养的MDCK⁃sus 细胞,细胞密度最高可达1ml 3.6×106个细胞,最大比生长速率可达1d 0.56㊂MDCK⁃sus 细胞表面流感病毒受体SAα2,3Gal 的丰度明显高于母体MDCK 细胞,ST3Gal 转移酶基因表达水平也明显高于母本MDCK 细胞㊂MDCK 细胞驯化后增殖禽流感病毒的能力增强,其中H9亚型禽流感病毒AH1102株在MDCK⁃sus 细胞中HA 效价达到9lg2(25μl)㊂MDCK⁃sus 细胞各种生长特性表明,其适于H9亚型禽流感的繁殖,可以为采用悬浮细胞培养禽流感疫苗的大规模工业化生产提供技术支持㊂关键词: MDCK 细胞;无血清;单细胞悬浮;生物学特性;流感病毒受体中图分类号: S831.7 文献标识码: A 文章编号: 1000⁃4440(2016)06⁃1377⁃07Domestication of MDCK suspension cell lines for the H9subtype of avian influenza virus proliferation and its biological characteristics evaluationWU Pei⁃pei 1,2,3, TANG Ying⁃hua 1,2,3, CHU Xuan 1,2,3, WANG Wei⁃feng 1,2,3, CHEN Li 1,2,3, HOU Ji⁃bo 1,2,3,FENG Lei 1,2,3(1.National Research Center of Engineering and Technology for Veterinary Biologicals ,Jiangsu Academy of Agricultural Sciences ,Nanjing 210014,Chi⁃na ;2.Key Laboratory of Veterinary Biological Engineering and Technology ,Ministry of Agriculture ,Nanjing 210014,China ;3.Jiangsu Co⁃InnovationCenter for the Prevention and Control of Important Animal Infectious Disease and Zoonoses ,Yangzhou 225009,China ) Abstract : To provide technology supports of manufacture of vaccine based on this cell lines,this study characterizesthe biological features of the suspension⁃cultured MDCK⁃sus cell.The MDCK cells were adapted and screened in suspension growth mode,named MDCK⁃sus.Its growth rate,cell viability and density were tested.The indirect fluorescence assay and flow cytometry were employed to determine the abundance of receptor for influenza virus,SAα2,3Gal and SAα2,6Gal,on the cell membrane of the parent MDCK and MDCK⁃sus cells.The fluorescence 7. All Rights Reserved.quantitive real⁃time PCR was adopted to analysis the difference in the mRNA levels of ST3Gals and ST6Gals,and the deter⁃mination of the influenza virus HA titer of coagulation was used to compare the parent and suspended MDCK cells.The ad⁃herence MDCK cells were successfully converted to serum⁃free and suspended cultured cells with the maximum cell density of3.6×105cells in1ml,cell viability of99%and growth rate of0.56every pared to the parent MDCK cells,the abundance of influenza viruses receptor,SAα2,3Gal,the expression level of ST3Gals,and the propagation capability of a⁃vian influenza viruses of the MDCK⁃sus were higher.HA titer of AH1102virus strain in MDCK⁃sus cells was9lg2in25μl.The growth features of the MDCK⁃sus cell indicate that it is capable of propagation of H9subtype influenza viruses and can provide technical support for industrial manufacturing of avian influenza vaccine in suspended culture cell.Key words: MDCK;serum free;suspension;biological characteristics;influenza virus receptors 1958年Madin和Darby从美国Cocker spaniel 母曲架犬的肾脏组织中分离并培育建立了犬肾上皮连续细胞系(Madin⁃Darby canine kidney cells,MD⁃CK)[1]㊂MDCK细胞株被用于多种病毒的增殖,其中包括禽流感病毒(Avian influenza virus,AIV)[2⁃3]㊂MDCK细胞株对流感病毒感染效率高并且增殖快,是WHO推荐用于流感疫苗增殖的细胞系之一[4],从其被用于生产疫苗的历史来看,MDCK细胞可以安全地生产人用疫苗并且具有很强的产毒能力[5⁃7]㊂传统的MDCK培养大多采用血清贴壁的方式,该培养方式工艺复杂,占地面积大,需大量人工操作并且在培养过程中需要添加血清,增加了被外源病毒㊁支原体等污染的可能性,而且不同批次间的血清差异也会导致产品质量难以控制,同时也加大了下游分离纯化的难度[8]㊂与血清贴壁培养技术相比,无血清悬浮培养技术无需昂贵的微载体,省去了消化收获细胞的操作,降低了污染风险和生产成本,缩短了生产时间㊂由于无血清悬浮培养技术不需要贴附基质,可节约设备空间,提高设备利用率,便于扩大生产规模㊂因此,无血清悬浮培养技术是细胞工业化生产疫苗的必然趋势[9]㊂本研究拟通过驯化贴壁MDCK细胞,获得无血清悬浮生长MDCK⁃sus细胞,并对该细胞的生物学特性进行分析,同时对驯化后细胞表面的流感受体丰度和增殖流感病毒能力进行检测[10⁃11]㊂1 材料与方法1.1 试验材料犬肾上皮连续细胞系MDCK细胞购自ATCC公司,采用含10%新生牛血清NBS(Newborn bovine serum,GIBCO公司提供)的DMEM培养基培养㊂DMEM(GIBCO公司提供)补加584mg/L谷氨酰胺(Sigma公司提供)和3.7g/L碳酸氢钠(Sigma公司提供),根据细胞培养及无血清驯化的需要添加不同浓度新生牛血清㊂无血清培养基EX⁃CELL TM MD⁃CK Serum⁃Free Medium(Sigma公司提供)补加1.8g/L碳酸氢钠(Sigma公司提供),酸碱调节至pH值为7.1,0.22μm滤膜过滤备用㊂地高辛(DIG)标记的黑接骨木果凝集素(Sam⁃bucus nigra agglutinin,SNA)和高丽槐黄柏甙凝集素(Maackia amurensis agglutinin,MAA)以及FITC标记的抗地高辛(DIG)抗体均购自Roche公司,RNA提取试剂TRIzol Reagent购自Invitrogen公司,AMV反转录酶及Taq DNA聚合酶购自Fermentas公司, RNA酶抑制剂(RNasin)购自大连TaKaRa公司, QuantiFast SYBR®Green PCR Kit购于QIAGEN公司,支原体Elisa检测试剂盒购于Roche公司㊂禽流感H9亚型病毒包括A/chicken/Jiangsu/ 07/2008(JS0807)㊁A/chicken/Jiangsu/03/2012 (JS1203)㊁A/chicken/Anhui/02/2011(AH1102)㊁A/ chicken/Hunan/04/2011(HN1104)㊁A/chicken/Han⁃gzhou/03/2012(HZ1203)㊁A/chicken/Henan/03/ 2011(HN1103)和A/chicken/Jiangsu/08/2012 (JS1208),均由国家兽用生物制品工程技术研究中心分离鉴定并保藏㊂1.2 仪器设备倒置显微镜购自Olympus公司,细胞摇床购自美国Nova Biomedical公司,流式细胞仪购自BD公司,Real⁃Time PCR仪购自ABI公司㊂1.3 MDCK细胞的悬浮驯化[12]MDCK细胞悬浮驯化的具体方法为:在静置的条件下培养,逐步降低有血清培养基中的FBS含量至MDCK细胞适应无血清培养基,将无血清静置培养的MDCK细胞消化后转移至摇床上培养(90 r/min),起初每2d更换新鲜培养基,待细胞比生长速率趋于稳定后,每次传代前将细胞密度调整至适8731江苏农业学报 2016年第32卷第6期. All Rights Reserved.当值(1ml3×105~5×105个细胞),直至细胞完全失去粘壁能力,以单细胞悬浮方式稳定增殖,冻存细胞株,命名为MDCK⁃sus㊂1.4 间接免疫荧光检测MDCK⁃sus细胞表面SAα2,3Gal和SAα2,6Gal[13] MDCK⁃sus细胞和MDCK母本细胞在24孔板中贴壁后,用pH值为7.2的PBS洗涤3次,加入冰预冷的丙酮固定15min,分别加入1μg/ml的DIG⁃SNA㊁DIG⁃MAA(含1%BSA),室温孵育1h后用预冷的PBS洗涤3次,再加入10mg/ml FITC标记的抗DIG抗体,室温孵育30min后用预冷的PBS洗涤3次,于暗视野荧光显微镜下检测㊂1.5 流式细胞检测MDCK单克隆细胞株细胞表面SAα2,3Gal和SAα2,6Gal丰度 MDCK⁃sus和MDCK母本细胞重悬于灭菌的EP管中,对细胞进行计数,控制细胞数目为1×106个,用TBS清洗2遍,再用pH值为7.5的Buffer1 (50mmol/L Tris⁃HCl㊁0.15mol/L NaCl㊁1mmol/L MgCl2㊁1mmol/L MnCl2㊁1mmol/L CaCl2)洗1次㊂用封闭液均匀重悬细胞,于冰上封闭1h,重复洗涤步骤,分别用DIG⁃SNA㊁DIG⁃MAA及空白对照(不加一抗)以相同方法处理细胞,于冰上孵育1h后重复洗涤步骤,再用1μl FITC标记抗DIG二抗,于30μl 的Buffer1中均匀重悬细胞沉淀,冰上孵育1h,最后用TBS洗涤3次即可用于流式细胞仪检测㊂1.6 MDCK⁃sus细胞的ST3Gals基因和ST6Gals 基因相对定量分析[14] 将筛选出来的MDCK⁃sus细胞和母本MDCK细胞调整至相同细胞密度,使用TRizol Reagent提取细胞总RNA,具体方法参照TRizol Reagent说明书,并按常规方法将其反转录成cDNA,qRT⁃PCR的引物见表1㊂每个样品设计3个平行对照,同时以灭菌的超纯水代替cDNA模板作为空白对照㊂反应结束后,直接由软件7300system SDS software计算出C t 值(每个反应管内的荧光信号到达设定阈值时所经历的循环数,C t值越高,基因丰度越低),按公式(1)计算目的基因的相对变化倍数㊂△C t=试验组目的基因C t-试验组内参基因C t(1)表1 ST3Gal转移酶基因和ST6Gal转移酶基因qRT⁃PCR引物Table1 Primers for detecting ST3Gal and ST6Gal genes by qRT⁃PCR基因引物名称 引物序列(5′→3′)扩增长度(bp) ST3Gal ST3up ATGGCCCTGGAGCTCTTGGAGA238ST3down CCTTGATGGTATTGTTGATGATST6Gal ST6up CAGAAATCCTTGCAGGTGTGGGA280ST6down TATGCCAAGGCCCAGCCTTGGTTCGAPDH GAPDHup GTGATGCTGGTGCTGAGTATGTT299GAPDHdown GGTCTTCTGGGTGGCAGTGAT1.7 MDCK⁃sus细胞增殖流感病毒比较悬浮培养MDCK⁃sus细胞,待细胞密度达1ml 1×106个时,接种7株H9亚型禽流感病毒,37℃培养72h后收获病毒,检测培养液的血凝价,同时跟母本MDCK细胞增殖流感病毒的情况做比较㊂2 结果与分析2.1 MDCK⁃sus细胞驯化过程及生长特性在MDCK细胞对无血清培养基的起初适应期(0~22d),大部分细胞贴壁,小部分悬浮于上清液中㊂至此,将该细胞培养物全部转移到摇床中培养(图1)㊂定期换液,待悬浮细胞明显增殖后,每次传代前将细胞密度调整到1ml3.0×105个细胞左右, 2~3代后细胞基本失去粘附能力,以单细胞悬浮方式稳定增殖,获得了1株单细胞悬浮驯化的MDCK 细胞,命名为MDCK⁃sus㊂ MDCK⁃sus在无血清培养基EX⁃CELL TM MDCK 中的正常形态如图2显示,其生长过程中延滞期的时间较短,仅为8h,此后进入对数生长期,平均最大比生长速率可达1d0.56,细胞密度最大为1ml 3.6×106个细胞,细胞活力可保持在96%以上㊂2.2 MDCK⁃sus细胞表面SAα2,3Gal和SAα2, 6Gal受体 本试验使用高辛标记的2种凝集素检测悬浮驯9731吴培培等:适应H9亚型禽流感病毒增殖的MDCK悬浮细胞株的驯化及其生物学特性. All Rights Reserved.图1 悬浮培养驯化过程中MDCK 细胞生长的活力和密度Fig.1 The dynamic changes of cell viability and density duringadaptation of suspension culture图2 MDCK 细胞在无血清驯化后悬浮培养形态Fig.2 Morphology of MDCK cells in a suspension culture afterserum⁃free adaptation化后MDCK⁃sus 细胞SAα2,3Gal 和SAα2,6Gal 受体含量的变化㊂SNA 特异性识别α⁃2,6连接型唾液酸,MAA 特异性识别α⁃2,3连接型唾液酸,以FITC 标记抗地高辛抗体为二抗㊂间接免疫荧光检测结果(图3)显示,在荧光显微镜下观察,悬浮后的MD⁃CK⁃sus 表面结合MAA 明显高于未悬浮前㊂流式细胞仪检测结果(图4)显示,与母本MDCK 细胞相比,MDCK⁃sus 细胞的荧光强度道数区向右偏移[图4(c)㊁图4(d)],荧光强度道数区由101~102变为102~103,表明MDCK⁃sus 细胞中SAα2,3Gal 含量显著高于MDCK 细胞,MDCK 细胞悬浮驯化后,细胞表面SAα2,3Gal 丰度显著提高㊂而SAα2,6Gal 在2种细胞中的含量并没有表现出明显差异㊂2.3 ST3Gal 和ST6Gal 转移酶基因的表达丰度 基因表达水平常采用实时定量RT⁃PCR 法进行检测,该方法灵敏度高,适用于某一特定基因表达水平的研究,可比较2个或2个以上样本中某个基因表达量的变化,本试验采用看家基因GAPDH 作为内参,分析比较MDCK⁃sus 细胞和母本MDCK 细胞中ST3Gal ㊁ST6Gal 转移酶基因转录水平上的差异[15⁃16]㊂结果(图5)表明,通过与看家基因GAPDH 进行比较,MDCK⁃sus 细胞中ST3Gal 转移酶基因的表达丰度显著高于MDCK 母本细胞,MDCK⁃sus 细胞中ST6Gal 转移酶基因的表达丰度与MDCK 母本细胞没有明显差异㊂A:唾液酸⁃α⁃2,3⁃半乳糖苷糖链受体无血清驯化过程中的MDCK 细胞株(静置贴壁生长);B:唾液酸⁃α⁃2,3⁃半乳糖苷糖链受体无血清悬浮生长驯化后MDCK⁃sus 细胞株(单细胞悬浮生长);C:唾液酸⁃α⁃2,6⁃半乳糖苷糖链受体无血清驯化过程中的MDCK 细胞株(静置贴壁生长);D:唾液酸⁃α⁃2,6⁃半乳糖苷糖链受体无血清悬浮生长驯化后MDCK⁃sus 细胞株(单细胞悬浮生长)㊂图3 间接免疫荧光检测不同MDCK 细胞株细胞膜表面SAα2,3Gal 和SAα2,6GalFig.3 Analysis of SAα2,3Gal and SAα2,6Gal on membrane of different MDCK cells line with indirect immunofluorescence0831江苏农业学报 2016年第32卷第6期. All Rights Reserved.A:无血清驯化过程中的MDCK 细胞株(静置贴壁生长);B:无血清悬浮生长驯化后MDCK⁃Sus 细胞株(单细胞悬浮生长);C:唾液酸⁃α⁃2,3⁃半乳糖苷糖链受体无血清驯化过程中的MDCK 细胞株(静置贴壁生长);D:唾液酸⁃α⁃2,3⁃半乳糖苷糖链受体无血清悬浮生长驯化后MD⁃CK⁃Sus 细胞株(单细胞悬浮生长);E:唾液酸⁃α⁃2,6⁃半乳糖苷糖链受体无血清驯化过程中的MDCK 细胞株(静置贴壁生长);F:唾液酸⁃α⁃2,6⁃半乳糖苷糖链受体无血清悬浮生长驯化后MDCK⁃sus 细胞株(单细胞悬浮生长)㊂图4 流式细胞仪分析MDCK 细胞驯化前后唾液酸受体的丰度变化Fig.4 FACS analysis of abundance changes of sialic acid receptor before and after the MDCK adaptation of suspensionculture图5 不同细胞株中ST3Gal 和ST6Gal 转移酶基因mRNA 的表达Fig.5 The mRNA expression of ST3GalNacV and ST6GalNacVin MDCK and MDCK⁃sus cells2.4 禽流感病毒增殖情况本试验将7株不同的AIV⁃H9亚型病毒在母本MDCK 细胞和MDCK⁃sus 细胞中进行增殖比较㊂如图6显示,MDCK⁃sus 细胞对禽流感病毒的增殖能力优于普通MDCK 细胞㊂AH1102株H9病毒在MDCK⁃sus 细胞株中增殖后HA 效价相对于在母本MDCK 细胞中提高了2个滴度,达到9lg2(25μl),这可能与MDCK⁃sus 细胞表面受体丰度相对较高有关㊂此外,不同毒株在2种MDCK 细胞中增殖的性能也有所差异,这个可能与不同毒株在MDCK 细胞上的适应性有关㊂3 讨论流感病毒感染细胞需要流感病毒HA 蛋白受体识别宿主细胞受体,并与之结合㊂这种结合使病毒吸附在细胞表面,并在受体[17]介导下通过胞吞进入1831吴培培等:适应H9亚型禽流感病毒增殖的MDCK 悬浮细胞株的驯化及其生物学特性. All Rights Reserved.图6 不同H9亚型禽流感病毒在母本MDCK和MDCK⁃sus细胞中增殖后的HA效价Fig.6 The HA titers of different H9subtype avian influenza viruses replication in MDCK and MDCK⁃sus cells细胞内进行繁殖和复制㊂因此,受体是影响流感病毒感染细胞的主要决定因素之一[18]㊂禽流感病毒倾向识别α⁃2,3连接型受体(Neu5Ac2,3⁃Gal),而人流感病毒倾向识别α⁃2,6连接型受体(Neu5Ac2, 6⁃Gal)[19⁃20]㊂流感病毒不同毒株在受体识别倾向性以及亲和能力上存在显著差异,进而影响其对宿主细胞的感染㊁增殖和扩散能力[18]㊂研究结果表明,人类的Siat7e基因(ST6Gal转移酶基因)与细胞的贴壁性能有关,通过比较转染了Siat7e基因的HeLa细胞与未转染的贴壁HeLa 细胞,发现转染细胞的贴壁性能明显降低,而通过SiRNA技术抑制Siat7e基因的表达时,其贴壁性能明显增强[21]㊂本研究通过物理方式驯化MDCK贴壁细胞,获得了悬浮的细胞株MDCK⁃sus㊂通过间接免疫荧光和流式细胞仪检测发现,驯化前MDCK细胞表面SAα2,3Gal和SAα2,6Gal受体含量均较少,悬浮驯化后SAα2,3Gal含量升高㊂同时,我们对母本MD⁃CK细胞和MDCK⁃sus细胞进行荧光定量PCR检测,比较2种细胞在ST3Gal转移酶基因和ST6Gal 转移酶基因转录水平上的差异㊂结果显示,在相同的细胞数下,MDCK⁃sus细胞中ST3Gal转移酶基因表达丰度与母本MDCK细胞相比有明显的提高㊂该基因表达丰度的提高导致细胞表面SAα2,3Gal 受体丰度提高,从而提高了该细胞株对流感病毒的适应性㊂MDCK悬浮驯化后的MDCK⁃sus细胞生长状态良好,适应悬浮培养并且能较好地增殖禽流感病毒,为大规模悬浮培养增殖禽流感病毒奠定了较好的基础㊂参考文献:[1] MADIN S H,DARBY N B.Established kidney cell lines of nor⁃mal adult bovine and ovine origin[J].Experimental Biology and Medicine,1958,98(3):574⁃576.[2] TREE J A,RICHARDSON C,FOOKS A R,et parison oflarge⁃scale mammalian cell culture systems with egg culture for the production of influenza virus A vaccine strains[J].Vaccine, 2001,19(25):3444⁃3450.[3] ONIONS D,EGAN W,JARRETT R,et al.Validation of thesafety of MDCK cells as a substrate for the production of a cell⁃de⁃rived influenza vaccine[J]. Biologicals,2010,38(5):544⁃551.[4] GENZEL Y,OLMER R M,SCHÄFER B,et al.Wave microcar⁃rier cultivation of MDCK cells for influenza virus production in ser⁃um containing and serum⁃free media[J].Vaccine,2006,24(35):6074⁃6087.[5] GENZEL Y,DIETZSCH C,RAPP E,et al.MDCK and Verocells for influenza virus vaccine production:a one⁃to⁃one compari⁃son up to lab⁃scale bioreactor cultivation[J].Applied Microbiolo⁃gy and Biotechnology,2010,88(2):461⁃475.[6] PAN S C,KUNG H C,KAO T M,et al.The Madin⁃Darby ca⁃nine kidney cell culture derived influenza A/H5N1vaccine:A phase I trial in Taiwan[J].Journal of Microbiology,Immunology and Infection,2013,46(6):448⁃455.[7] SIDORENKO Y,REICHL U.Structured model of influenza virusreplication in MDCK cells[J].Biotechnology and Bioengineering, 2004,88(1):1⁃14.[8] EVEN M S,SANDUSKY C B,BARNARD N D.Serum⁃free hy⁃bridoma culture:ethical,scientific and safety considerations[J].Trends in Biotechnology,2006,24(3):105⁃108. 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All Rights Reserved.specificity of influenza viruses from birds and mammals:new data on involvement of the inner fragments of the carbohydrate chain [J].Virology,2005,334(2):276⁃283.[14]TICHOPAD A,DZIDIC A,PFAFFL M W.Improving quantitativereal⁃time RT⁃PCR reproducibility by boosting primer⁃linked ampli⁃fication efficiency[J].Biotechnology Letters,2002,24(24): 2053⁃2056.[15]MO D,COSTA S A,IHRKE G,et al.Sialylation of N⁃linked gly⁃cans mediates apical delivery of endolyn in MDCK cells via a ga⁃lectin⁃9⁃dependent mechanism[J].Molecular Biology of the Cell, 2012,23(18):3636⁃3646.[16]CHU C,LUGOVTSEV V,GOLDING H,et al.Conversion ofMDCK cell line to suspension culture by transfecting with human siat7e gene and its application for influenza virus production[J].Proceedings of the National Academy of Sciences,2009,106(35):14802⁃14807.[17]IBRICEVIC A,PEKOSZ A,WALTER M J,et al.Influenza virusreceptor specificity and cell tropism in mouse and human airwayepithelial cells[J].Journal of Virology,2006,80(15):7469⁃7480.[18]SHINYA K,EBINA M,YAMADA S,et al.Avian flu:influenzavirus receptors in the human airway[J].Nature,2006,440 (7083):435⁃436.[19]OH D Y,BARR I G,MOSSE J A,et al.MDCK⁃SIAT1cellsshow improved isolation rates for recent human influenza viruses compared to conventional MDCK cells[J].Journal of Clinical Mi⁃crobiology,2008,46(7):2189⁃2194.[20]KIM J A,RYU S Y,SEO S H.Cells in the respiratory and intes⁃tinal tracts of chickens have different proportions of both human and avian influenza virus receptors[J].The Journal of Microbiolo⁃gy,2005,43(4):366.[21]JALURIA P,BETENBAUGH M,KONSTANTOPOULOS K,etal.Application of microarrays to identify and characterize genes in⁃volved in attachment dependence in HeLa cells[J].Metabolic En⁃gineering,2007,9(3):241⁃251.(责任编辑:王 妮)3831吴培培等:适应H9亚型禽流感病毒增殖的MDCK悬浮细胞株的驯化及其生物学特性. All Rights Reserved.。
【医学实验】禽流感病毒的鸡胚培养法 PPT课件
4. 温度、反应时间、反应体系对血凝试验的结果影 响都很大。温度过高病毒毒力过强会出现溶血, 不利于判定。反应的时间不能太长,对照孔出现 沉淀就可以判定。
思考问题
加病毒液和红细胞悬液时为什么要反向加? 血凝试验设置空白对照的意义? 病毒悬液为什么采取倍比稀释而不是更高倍 数如十倍比稀释?
鸡胚原代细胞培养及流感病毒感染细胞的红细胞吸附
鸡胚的结构与生理
鸡胚由三个胚层发育而来,即外胚层,中胚 层和内胚层,它们构成了胚胎的组织与器官
鸡 胚培养的病毒接种
(一)活胚检查
1.血管 2.胎动 3.绒毛尿囊膜
(二)实验材料
鸡受精卵, 照蛋灯, 打孔器或剪刀, 蛋盘, 无菌注 射器和针头, 消毒酒精, 酒精灯, 石腊 病毒毒种用生理盐水稀释备用
1. 第1孔加入0.4ml尿囊液,第2孔加入0.1ml 尿囊液。
2. 吸取0.9ml生理盐水于血凝板第2孔,从第 3孔至第10孔每孔各加生理盐水0.4ml。
3. 反复吹打3~4次第2孔,从混匀的第2孔中 丢弃0.2ml,吸取0.4ml至第3孔混匀,再 吸0.4ml至第4孔,依次稀释到第9孔,第9 孔经稀释吹打后吸出0.4ml,
6)将烧杯中的细胞平均分配于5个25ml细胞瓶中, 补充1640培养基至3ml,置37 ℃培养
7)培养24小时后观察细胞的生长情况并描述细胞形 态。
原代细胞的培养与维持
1) 充分漂洗; 2) 起始的2天中尽量减少振荡; 3) 分离繁殖或测定病毒之用,细胞浓度可以加大,
尽量贴壁形成厚层; 4) 待细胞基本贴壁伸展并逐渐形成网状,此时的pH
(四)收获病毒
鸡胚为活的有机体,因此要严格无菌操作, 同时动作要仔细,以免造成物理死亡。接种 后24小时内死亡应不计结果。
细胞悬浮培养技术实现规模化生产禽流感疫苗
据悉 . 把 细胞 悬 浮培 养技 术 大规 模 用于 动 物 用 禽流 感疫 苗 的生产 , 目前 在 国际上 仅 有 山东 信 得 一家 。“ 细胞 悬浮 培 养技 术是 在传 统 的转 瓶 培 养 基 础 上 发展 而 来 的大 量 培养 动物 细 胞 的 新 兴 技术 . 目前 , 该 技术 在欧 美 国家 仅 用 于小 规 模 生 产 人用禽 流感疫 苗 。” 此前 , 山东 信得有 关负 责人 在 接受 笔者 采 访 时表示 . 作 为一 家 同时拥 有 生物
弃物处 理 不 当而存 在 的散 毒危 险 。同 时 , 由于各 种技 术参 数 由 电脑 程 序统 一操 控 , 整个 生 产过 程 更加 可控 .无外 源病 毒污 染 和母源 抗 体影 响 。 疫
苗质 量批 间差异最 小化 。 产 品更 加稳定 。“ 简单” 山东 信 得这
细胞悬浮踌 技 术
≮ { 融 横 化 拜 禽 流感疫苗
从 山东 省青 岛 高科 园管 委 获悉 . 历 经 7年 科
技 攻关 , 青 岛 市科技 企 业青 岛 信得 科技 股 份有 限 公 司( 以下 简 称 “ 山东信 得 ” ) 利 用 国际 最先 进 的 细 胞悬 浮 培养 技术 , 率 先 在 国内实 现 了应 用 生物
的代表项 目。 为此 , 在2 0 1 0年 。 山东 信得 专 门成 立 动物 疫 苗 有限公 司 .并投 资 1 . 5 亿 元 建成 了 国内首 家大 规 模 细 胞 悬 浮 培养 工 艺 生 产 高致 病 性 禽 流 感 灭 活疫苗 的 G MP车 间 ,并 于 次 年初 通 过 了农业 部 的 GM P动 态验 收 . 获得 G MP证书 和兽 药 生产 许 可证 。一 年后 , 即2 0 l 2年 6月 。 山东 信得 获得 农
适应 H9亚型禽流感病毒增殖的 MDCK 悬浮细胞株的驯化及其生物学特性
适应 H9亚型禽流感病毒增殖的 MDCK 悬浮细胞株的驯化及其生物学特性吴培培;唐应华;褚轩;王伟峰;陈丽;侯继波;冯磊【摘要】To provide technology supports of manufacture of vaccine based on this cell lines, this study characterizes the biological features of the suspension-cultured MDCK-sus cell. The MDCK cells were adapted and screened in suspension growth mode, named MDCK-sus. Its growth rate, cell viability and density were tested. The indirect fluorescence assay and flow cytometry were employed to determine the abundance of receptor for influenza virus, SAα2,3Gal and SAα2,6Gal, on the cell membrane of the parent MDCK and MDCK-sus cells. The fluorescence quantitive real-time PCR was adopted to analysis the difference in the mRNA levels ofST3Gals and ST6Gals, and the deter-mination of the influenza virus HA titer of coagulation was used to compare the parent and suspended MDCK cells. The ad-herence MDCK cells were successfully converted to serum-free and suspended cultured cells with the maximum cell density of 3.6í105 cells in 1 ml, cell viability of 99% and growth rate of 0. 56 every day. Compared to the parent MDCK cells, the abundance of influenza viruses receptor, SAα2,3Gal, the expression level of ST3Gals, and the propagation capability of a-vian influenza viruses of the MDCK-sus were higher. HA titer of AH1102 virus strain in MDCK-sus cells was 9lg2 in 25μl. The growth features of the MDCK-sus cell indicate that it is capable of propagation of H9 subtype influenza viruses and can provide technical support forindustrial manufacturing of avian influenza vaccine in suspended culture cell.%本研究通过筛选驯化的MDCK细胞获得无血清悬浮生长MDCK细胞(命名为MDCK-sus),测定该细胞的比生长速率、细胞活力及细胞最大生长密度等生长特性,采用间接免疫荧光法和流式细胞仪检测法比较母本MDCK细胞与MDCK-sus 细胞流感病毒受体[唾液酸-α-2,3-半乳糖糖链受体( SAα2,3Gal)和唾液酸-α-2,6-半乳糖糖链受体(SAα2,6Gal)]的丰度,用荧光定量PCR检测比较细胞中α-2,3唾液酸转移酶(ST3Gals)基因与α-2,6唾液酸转移酶(ST6Gals)基因表达水平的差异,通过测定流感病毒血凝HA效价比较母本MDCK细胞与MDCK-sus细胞对流感病毒的增殖能力。
一种血清4型禽腺病毒悬浮培养扩增方法[发明专利]
专利名称:一种血清4型禽腺病毒悬浮培养扩增方法
专利类型:发明专利
发明人:张伟,殷键,叶建强,李文迹,张建军,赵益超,李婷婷,石宝兰
申请号:CN201610821360.7
申请日:20160913
公开号:CN106318913A
公开日:
20170111
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明公开了一种血清4型禽腺病毒悬浮培养扩增方法。
具体过程为:将经PCR鉴定为血清4型禽腺病毒的病毒接种于鸡肝细胞,通过细胞悬浮培养技术高效扩增血清4型禽腺病毒。
本发明本发明利用鸡肝细胞,建立的血清4型禽腺病毒悬浮培养扩增方法,能实现对血清4型禽腺病毒高效扩增,与鸡胚接种比较,病毒滴度比鸡胚接种培养病毒高100倍以上(传统鸡胚毒效价小于10TCID/ml)。
这一血清4型禽腺病毒悬浮培养扩增方法为研制血清4型禽腺病毒疫苗提供了技术,具有很好的应用价值。
申请人:国药集团扬州威克生物工程有限公司,扬州大学,福建圣维生物科技有限公司
地址:225012 江苏省扬州市邗江工业园牧羊路15号
国籍:CN
代理机构:南京钟山专利代理有限公司
代理人:戴朝荣
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一种鸡传染性法氏囊病毒的全悬浮培养方法[发明专利]
专利名称:一种鸡传染性法氏囊病毒的全悬浮培养方法专利类型:发明专利
发明人:李阳,沈建军,张秀文
申请号:CN202010813439.1
申请日:20200813
公开号:CN112094819A
公开日:
20201218
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明涉及疫苗制备技术领域,公开了一种鸡传染性法氏囊病毒的全悬浮培养方法,包括以下步骤:S1、取冷冻复苏的鸡胚细胞,离心;S2、将细胞悬液置入到培养瓶中,并将培养瓶放置于轨道摇床上;S3、对步骤S2中的鸡胚细胞每间隔3h取样一次进行细胞计数,监测细胞生长情况;
S4、鸡传染性法氏囊病病毒的接种,接毒完成后,将培养瓶放置于CO培养箱中,补加牛血清,并放回到CO培养箱中,在混合培养液中插入阳极电极板和阴极电极板并通第二直流电,并在搅拌状态下进行继续培养;S5、接毒后,每隔6h取样测定病毒的TCID,在病毒TCID达到最高时收获病毒并保存。
本发明能够能够在更短的时间培养出悬浮培养鸡传染性法氏囊病病毒,利于工厂化的大规模生产。
申请人:浙江美保龙生物技术有限公司
地址:321000 浙江省金华市婺城区宾虹西路308号
国籍:CN
代理机构:广州市华学知识产权代理有限公司
代理人:张晨
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一种禽偏肺病毒的无血清全悬浮培养方法及其在疫苗中的应用[发明专利]
专利名称:一种禽偏肺病毒的无血清全悬浮培养方法及其在疫苗中的应用
专利类型:发明专利
发明人:蒋天华,周庆丰,严专强,温燕兰,靖宇
申请号:CN202010659116.1
申请日:20200709
公开号:CN111961652A
公开日:
20201120
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明涉及一种禽偏肺病毒的无血清全悬浮培养方法及其在疫苗中的应用。
包括以下步骤:将禽偏肺病毒毒株在悬浮BHK‑21细胞系中连续传代至病毒适应细胞,取病毒含量最高的适应毒株作为基础种毒株;将悬浮BHK‑21细胞复苏后使用无血清培养液在三角摇瓶中培养;在生物反应器内加入无血清培养液,将种细胞接种至生物反应器;将悬浮BHK‑21细胞基础种毒株,继续培养;接毒后每天进行葡萄糖监测,当培养液中葡萄糖为1~5mmol/L时,补充营养包;接种病毒72小时后取样计算细胞活率,细胞活率低于60%时收获病毒培养液;将病毒液反复冻融、离心后保存。
本发明采用悬浮BHK‑21细胞培养,病毒适应性好,病毒含量高;操作成本低,产品质量稳定;易操作,具备工业化大生产可行性。
申请人:温氏食品集团股份有限公司
地址:527400 广东省云浮市新兴县新城镇东堤北路9号
国籍:CN
代理机构:广州容大知识产权代理事务所(普通合伙)
代理人:何雪霞
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基于悬浮培养技术的高效血清4型禽腺病毒灭活疫苗的创制
基于悬浮培养技术的高效血清4型禽腺病毒灭活疫苗的创制周玉双;糜飞;张伟;谢松桦;谢泉;张建军;叶建强;吴艳涛【期刊名称】《中国兽医科学》【年(卷),期】2022(52)8【摘要】为制备高效血清4型禽腺病毒(FAdV-4)JH株灭活疫苗,首先利用激流式生物反应器的培养参数进行优化,并扩增获得大量JH株FAdV-4。
经检验;收获的JH株的病毒滴度大于1×10^(8.5)TCID_(50)/m L,且灭活检验及无菌检验的结果均符合标准。
将检验合格的JH株病毒液乳化制备了3批FAdV-4灭活疫苗成品,此灭活疫苗为油包水型,黏度在30 cP左右,性状稳定,离心后无水相析出,并且能够在2~8℃条件下保存长达15个月。
将本研究制备的灭活疫苗接种给SPF鸡后鸡群无不良反应,并且在免疫后第21天能够产生高水平的中和抗体,平均效价大于1∶75;在致死剂量FAdV-4攻毒情况下,FAdV-4灭活疫苗能对免疫鸡群提供高达100%的保护率。
进一步对疫苗的最低免疫剂量和免疫持续期进行测定,结果,采用皮下或肌注免疫方式对14日龄和120日龄鸡群接种的最低免疫剂量分别为0.3 m L和0.5 m L,免疫后疫苗免疫持续期可长达5月。
结果证实,本研究研制的FAdV-4灭活疫苗安全有效,可为FAdV-4的防控提供有力技术支撑。
【总页数】9页(P1014-1022)【作者】周玉双;糜飞;张伟;谢松桦;谢泉;张建军;叶建强;吴艳涛【作者单位】扬州大学兽医学院;国药集团扬州威克生物工程有限公司【正文语种】中文【中图分类】S852.659.6【相关文献】1.禽Ⅰ群腺病毒血清1型株灭活疫苗的研制2.鸡新城疫、禽流感(H9亚型)、禽腺病毒(Ⅰ群,4型)三联灭活疫苗(La Sota株+TJ株+HY株)抗体产生期和免疫持续期试验3.鸡新城疫、禽流感(H9亚型)、禽腺病毒(Ⅰ群,4型)三联灭活疫苗(La Sota 株+TJ株+HY株)经皮下和肌肉接种鸡的效力试验4.4型禽腺病毒HLJ1701株灭活疫苗的研制5.PCR-RFLP技术对Ⅰ群禽腺病毒12个血清型毒株的分型鉴定因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。
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VaccineNew avian suspension cell lines provide production of influenza virus and MV A in serum-free media: Studies on growth, metabolism and virus propagation.新的禽流感悬浮细胞系提供生产的流感病毒和MVA无血清媒体:研究生长、新陈代谢和病毒传播。
1.IntroductionSeveral vaccine viruses ,including most of the human influenza vaccines,are still produced in the allantoic cavity of embryonated hen’s eggs or in primary chickenfibroblasts(CEF). Main draw-backs of this method are limited scalability of the process, possible shortage of material in case of an avian pandemic and occasional difficulties in amplification of certain strains with required seasonal antigenicity[1]. Continuous cell lines to replace primary material for robust industrial production especially of influenza A and B are therefore highly desirable. MDCK and Vero cells can be used for production of vaccines. However,due to inherent genetic instability of Vero cells a production processis usually limited to only 20pas-sages[2]. Scale-up is limited by their requirement for an attachment surface and cultivation typically is performed in mediaContaining serum. Serum even of pharmaceutical grade suffers from lot-to-lot variations and is a potential source for contamination with adventitious agents.Contrary to influenza vaccines, modified vaccinia Ankara viruses(MV A,recombinant or wild type)are strongly host restricted so that most mammalian cells(including MDCK and Veroc ells) are not fully permissive.For this reason production of MV A requires CEF cultures, again limiting the scalability and robustness of the process.MV A vectors against complex infectious diseases will be required at high titres so that efficient production processes are highly desirable.In order to overcome the problems in influenza and MV A production new cell lines were developed recently[3–5].Development and documentation of these cell lines was performed to meet current regulatory requirements. The cell lines were designed and optimized for a particular production process and typically proliferate with an indefinite life span in suspension in serum-free medium with zero or low protein content.The best known example of adesigner cell is the human PER.C6 line which was derived from a primary culture of human fetal retinoblasts immortalized by transfection with the E1expression cassette of adenovirus type 5[5].Cell densities ofup to 1.0×107 cells/mL and influenza virus yields up to 2100HA units/mL are described [6].However, the human PER.C6 cells cannot be productively inf ected by MVA.On the other hand, the avian EB14 cells are permissive not only for influenza but also forMV A[7]. Derived from spontaneous immortalization of embryonic chicken cells,they grow to cell densities of up to 1.0–2.0×107 cells/mL and provide MV A virus titres up to 1.0×108pfu/mL[4]. However, the detection of endogenous retroviral particles in chicken embryo-derived yellow fever vaccines affects the safety of this cell line for vaccine manufacturing[8]. As ana lternative,the avian cell line AGE1.CR(CR)was created by immortalizing cells from duck retina with adenovirus type 5E1 genes[3].Ducks as opposed to chickens carry significantly fewer endogenous retroviral inserts and noactive elements have been described[9]. The CR line was further modified for constitutive expression of the adenoviral pIX gene(to obtain CR.pIX) that encodes for a structural protein involved in capsid stabilization of cognate adenovirus.This protein was stably inserted because pIX is also implicated in biochemical processes that may confer new properties to thecell line[10].CR and CR.pIX cell lines proliferate ins uspension in serum-free media. Exceptional genetic stability wasdemonstrated for more than 90 passages. The cells can be productively infected with viruses of diverse families including different influenza strains and MV A.Here, we present data for the cultivation of CR and CR.pIX cells in T-flasks,roller bottles and small scale bioreactors(stirred tank and wave bioreactor) and infection with influenza virus and MV A.In vestigations of cell growth and metabolism in non-infected cells and infection experiments were done.Various influenza virus subtypes were tested and the impact of the pIX gene on MV A yield was evaluated.Titres obtained with either influenza A or MV A demonstrate that these suspension cell lines are promising candid ates for large-scale manufacturing of vaccines in serum-free media.翻译:一些疫苗病毒主要分心的方法是有限的可伸缩性的过程,可能缺少材料,以防禽流感大流行和偶尔的困难与需要放大某些菌株的季节性抗原性。