玉露组织培养方案

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玉露组织培养与快速繁殖技术研究方案

一、实验目的

1、探究玉露组织培养的最适培养基的配置;

2、利用探究出来的最适培养基进行玉露的快速繁殖。

二、仪器与用具

1、仪器:超净工作台,光照培养箱;

2、用具:酒精灯1个、打火机1个、酒精棉球、长镊子1把、培养皿5套、滤纸、烧杯2个、量筒、记号笔1支、剪刀1把、刀子1把、小喷壶1个、电子天平、电炉、玻棒、PH试纸等;

3、试剂:75%酒精,0.1%HgCI2 ,无菌水,工业酒精、蔗糖、琼脂、1.0mg/L的KT,不同浓度的NAA,不同浓度的6-BA,NaOH溶液;

4、实验材料:玉露的幼嫩花茎。

三、实验方法

1.培养基的配置及灭菌。

2.无菌材料的获得:将选取的培养材料小心剥去苞叶,流水冲洗2 h,75%酒精浸泡3~5 S,无菌水漂洗3~5次,0.1%HgCl2:浸泡8 min,无菌水冲洗3~4次。将消毒后的材料剪切成1 cm左右的小段置于无菌滤纸上,备用。

3.培养基的筛选

Ⅰ、诱导培养基的筛选:切取1cm左右的玉露花茎接种在:

⑴MS+NAA0.1mg/L+6-BA1.0mg/L;⑵MS+NAA0.1mg/L+KT1.0mg/L;

⑶MS+6-BA1.0mg/L+KT1.0mg/L;

⑷MS+NAA0.1mg/L+6-BA0.5mg/L+KT1.0mg/L培养基上,每个处理4瓶,每瓶3个外植体,隔天观察花茎生长状况,并记录,约15天后统计愈伤组织数目。

Ⅱ、增殖培养基的筛选:将诱导出的愈伤组织或带有芽的愈伤组织团进行切割接种在:

⑸MS+NAA0.1mg/L+KT1.0mg/L;MS+6-BA0.5mg/L+KT1.0mg/L;

⑺MS+NAA0.1mg/L+6-BA0.5mg/L;

⑻MS+NAA0.1mg/L+6-BA0.5mg/L+KT0.5mg/L四种培养基上,每个处理4瓶,每瓶3个外植体,约15天后,观察其生长发育及成株情况。

Ⅲ、生根培养基的筛选:选再生植株接种在:⑼1/2MS+NAA0.1mg/L; ⑽MS+ NAA0.1mg/L两种培养基上,观察其生根情况。

以上培养基均添加3%的蔗糖,6%的琼脂,pH 5.8~6.0,培养温度(25±2)℃,光照强度2 000~3 000 Ix,光照时间12 h/d。4.炼苗:在生根培养基上生长30-40d后,植株逐渐长大。移出培养室,置于常温室内,利用自然光照培养1周,打开瓶盖,苗2~3 d。取出带有4~5条根系的小苗。

5.移栽:用清水洗掉附着的培养基,用1 000倍多菌灵溶液浸泡20 min,置于报纸上晾干,在炼苗后,适当风干后,移栽到经灭菌的培养基质上(腐殖土:细沙:蛭石=1:1:1)再用塑料薄膜盖住,不要让植株与薄膜直接接触。每天放风2~3次,每3~4 d浇少量水。2周后揭去薄膜,让其自然生长。成活后,每个月喷洒一次杀菌剂。待其重新发出新根后,再移栽到苗床上。

四、现象记录

1、观察外植体接种2-6d的污染情况;

2、观察并逐日记录外植体出芽的情况,包括外植体的形态变化,芽

出现的时间以及芽的形态特征,并计算每种培养基外植体的诱导情况,增殖情况及生根情况,确定最适诱导培养基、增殖培养基、生根培养基。

参考文献:

许继勇,麦瑜玲,郑添群,黄伟雄,夏时云. “高地"截形瓦苇的组织培养与快速

繁殖技术研究[天津农业科]2006,12(2)

陈红刚,高素芳,杨韬. 玉露的组织培养与快速扩繁[北方园艺学]—甘肃中医学

院2011(12): 101~102

黄清俊,丁雨龙,唐晓英.珍奇罗肉植物万象微型繁殖[北方园艺]- (上海农林职

业技术学院,南京林业大学)2007 (5):191~193

李德森, 孙涛.截形十二卷的组织培养与快速繁殖[期刊论文]-植物生理学通讯2012,38(6)

宋晓涛,沈萌,左志宇,安晓云,尹晓爽,孙涛,杨雪,李德森.十二卷属植物

西山寿的组织培养与快速繁殖[期刊论文]-植物生理学通讯2007,43(5)

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