操作规程(SOP)与动物实验技术

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操作规程(SOP)与动物实验技术

操作规程(SOP)与动物实验技术
兔:100-150Lx 树立无菌观念,严格管理,规范操作
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4、屏障环境设施运行模式图

经初、中、高效

三级过滤后进入
耐高温物品经高压灭菌进入


饲料等经渡槽消毒进入
不耐高温物品经传递窗消毒进入


经传递窗外包装消毒后进入

经穿戴无菌防护服、

口罩、手套后进入
高压锅

渡槽 障

过滤
除臭

排放
传递窗
工作人员在饲养管理中发现死亡动物后,应通知实验人员。 如实验人员无特殊要求,本中心将动物尸体作废弃尸体处理。
实验中产生的动物尸体应由实验人员集中后放置于塑料袋内, 自行带出,放到动物尸体冰柜内。注射针头、针管:放置锐 器盒内;
淘汰实验动物:经缓冲间出屏障(屏障内禁止处死动物), 在指定地点经安乐死方式处置,动物尸体及残留物要经塑料 袋密封后,存放在专用冰柜内。并填写《实验动物处死记录》
有效的检测措施
环境设施的检测 日常消毒灭菌物品的检测
环境设施的检测
主要参数包括温度、湿度、噪音、光照、室内风 速、氨浓度、室内换气次数、各区域压力差等。 要根据检测的指标调整或适时更换维护系统的设 备, 对多项环境参数的正常维持都有着重要的作用
温、湿度和压差需每日记录,根据它们的变化,需要 对风阀或空气过滤器进行更换处理。环境指标的 全面系统检测一般每季度检测一次。
每天检查饲养间内的温度、湿度、压差、噪声; 准备好灭菌拖鞋、手套、口罩、防护服等用品; 及时清理、清洗、干燥、消毒灭菌防护服等用品; 每周更换垫料,保证动物饮水、饲料充足,维护饲养环
境清洁、整齐,不留死角; 每天对屏障内地面、走廊消毒,预防交叉感染; 将消毒灭菌后的笼具、饲料、垫料、饮水储备充足; 每天对设备、实验动物状态进行观察并做好记录; 如发现异常,及时通知相关研究组实验人员。

实验动物使用操作规程

实验动物使用操作规程

实验动物使用操作规程1.目的和原则(1)最小化对动物的痛苦和不适;(2)使用合适数量的动物样本来得到可靠的实验结果;(3)保护实验动物的福利和健康;(4)尊重实验动物的权益,并进行相关伦理审查。

2.实验动物的选取与养殖(1)选择适合的动物种类和品系,以满足实验的需要,并减少对动物的痛苦和伤害;(2)根据动物实验项目的要求,选择符合条件的动物个体,如性别、年龄、体重等;(3)实验动物的养殖应符合动物福利要求,提供适宜的环境,保证其健康和舒适。

3.实验动物的处置(1)实验结束后,对于有生存力的实验动物,可以重新投入科学研究或用于教学等目的;(2)对于实验结束后不再需要的动物,应采取安全和安乐的方式处置,如人道处死、人道安乐死或安全地回收利用。

4.实验动物的饲养和管理(1)提供适合的饲料,满足动物的营养需求,并确保饮用水的供应;(2)提供适宜的饲养环境,控制温度、湿度和通风等参数,保持良好的空气质量;(3)定期对实验动物进行健康监测和疾病预防,注重动物的生理和心理福利。

5.实验动物使用的伦理审查(1)在进行实验动物使用前,应进行相关伦理审查,确保实验设计合理,符合科学和伦理的要求;(2)伦理审查应考虑到实验动物的福利和权益,并确保任何可能对动物造成痛苦或不适的实验项目得到充分评估和批准。

6.实验操作和技术(1)实验操作人员应经过充分的培训,熟悉实验操作的流程和技术,以减少实验中的风险和误差;(2)实验操作应具有可靠性和重复性,在操作过程中应注意动物的福利和安全。

7.实验动物的疼痛和不适的评估和减轻(1)在实验中,应对动物可能产生的疼痛和不适进行评估,采取措施减轻其痛苦;(2)如有必要,在实验中使用镇痛、麻醉药物或正当的处置方法来减轻动物的痛苦。

8.结果的记录和分析(1)对实验结果进行详细记录,包括实验设计、操作过程和结果等;(2)分析实验结果并进行数据处理,确保结果的准确性和可靠性。

9.实验动物的替代方法(1)开发和推广替代方法,减少对实验动物的使用;(2)鼓励使用无动物实验方法,如体外实验、计算机模拟等。

动物实验操作规程

动物实验操作规程

动物实验操作规程一、引言动物实验是科学研究中不可或缺的一环,通过动物实验可以更好地理解生物学、医学和药理学等领域的知识。

然而,为了保护动物权益和确保实验结果的可靠性,我们需要制定一套严格的动物实验操作规程,建立科学、规范、公正的实验环境。

二、实验前的准备1. 确定实验目的和计划,明确实验所需的动物种类和数量,并做好相应的实验预算。

2. 选择适当的实验动物,应考虑到动物的生理特征、敏感性和实验目的。

3. 获取合法的实验动物,选择有资质和信誉的供应商,确保动物的健康和纯种性。

4. 设计和准备实验所需的实验设备、仪器和药剂,在保证安全的基础上选择合适的材料和试剂。

三、动物饲养与保健1. 提供适宜的饲养环境,包括温度、湿度、通风等因素,以及合适的光照和噪声水平。

2. 提供适宜的饲料和水源,确保动物获得均衡和营养丰富的饮食。

3. 定期检查动物的健康状况,关注饲养环境对动物的影响,如感染、寄生虫等问题及时处理。

4. 严禁对实验动物进行虐待和草率处理,确保动物的福利和尊严。

四、实验操作与观察1. 实验人员应接受相关培训,熟悉实验流程和操作规程,保证实验的准确性和可重复性。

2. 严格按照实验设计和程序进行实验操作,避免对动物产生不必要的伤害。

3. 仔细记录实验数据和观察结果,确保数据的真实可靠。

4. 在实验过程中密切关注动物的行为和生理指标变化,确保实验结果的准确性。

五、实验后的处理与评估1. 实验结束后,根据实验设计和程序对动物进行合理处理。

如需要人道安乐死,应确保施行过程无痛苦和折磨。

2. 对实验所产生的数据进行统计和分析,评估实验结果的可靠性和统计学意义。

3. 根据实验结果撰写实验报告,包括实验目的、方法、结果和结论等内容。

4. 在实验结束后评估实验的科学和伦理价值,总结经验教训并作出改进措施,提高实验质量和动物福利。

六、动物实验伦理1. 尊重动物权益,严格遵守动物防虐待法律法规,确保动物实验的合法性和道德性。

实验室标准操作规程 sop

实验室标准操作规程 sop

实验室标准操作规程 sop实验室标准操作规程(SOP)是为了确保实验室工作的安全、有效进行而制定的一套规范和操作指南。

一、实验室基本安全规定1. 实验室进出口限制只允许经过授权人员进入,并确保所有人员都佩戴个人防护装备,如实验手套、防护眼镜和实验服等。

2. 禁止在实验室内进食、饮水或吸烟。

必要时,可以在专门指定的区域进行这些活动。

3. 所有设备和仪器必须正确安装并定期检查维护。

在使用之前,操作人员应对设备进行必要的清洁和消毒。

4. 实验室工作台面应保持整洁干净。

实验结束后,应立即清理工作台面和仪器设备,并将废弃物和化学品妥善处理。

5. 实验室必须配备必要的急救设施和应急联系信息,以便在发生意外或紧急情况时能够及时采取必要的措施。

二、实验室个人防护规定1. 所有人员必须正确佩戴个人防护装备,包括实验手套、实验服、防护眼镜和呼吸面罩等。

在实验开始之前,应检查个人防护装备的完整性和可用性。

2. 在进行有害化学药品操作时,必须佩戴适当的防护手套和防护眼镜。

根据实验操作的具体要求,可能还需要佩戴防护面罩或全面罩等。

3. 在进行火焰操作时,必须佩戴耐火手套,并确保工作区域周围没有易燃物体。

实验室必须配备灭火器,并定期进行灭火器的检查和维护。

4. 当进行有害气体操作时,必须配备适当的通风设备,以确保实验室内的空气质量符合安全标准。

三、化学品操作规定1. 所有化学品必须正确标记和储存,并遵循相关的安全规定和储存要求。

2. 所有化学品的使用必须在通风良好的实验室内进行,并遵守相关的操作指南。

3. 所有化学品的使用必须经过授权人员的审批,并严格按照操作指南进行操作。

4. 具有刺激性、腐蚀性或毒性的化学品操作必须在化学抽风柜内进行,以避免直接接触。

5. 所有化学品的废弃物必须经过正确的分类和处理,不能倾倒在普通垃圾桶中。

四、实验室仪器操作规定1. 在使用实验室仪器之前,必须进行必要的培训,并了解仪器操作的基本原理和步骤。

动物实验操作安全操作规程

动物实验操作安全操作规程

动物实验操作安全操作规程一、实验室准备1. 实验室必须保持清洁整齐,地面干燥洁净,并且定期消毒。

2. 确保实验室内通风良好,避免有害气体积聚。

3. 存放在实验室内的实验动物必须有充足的饲养空间,以及足够的饮水、饲料。

二、实验操作前的准备1. 实验人员必须穿戴好相应的实验服、手套、口罩、护目镜等个人防护用品。

2. 实验仪器设备必须经过检查和测试,确保其正常工作。

3. 实验人员必须对实验目的和操作步骤进行充分了解,并做好相应的准备工作。

三、动物安全操作规程1. 在实验操作前,必须对实验动物进行观察和检查,确保其健康状况良好,无任何疾病症状。

2. 在处理动物时,应轻拿轻放,避免受到伤害,同时也要尽量减少对动物的伤害。

3. 需要注射药物或采集样品时,实验人员必须掌握相应的操作技巧,并确保操作的准确性和安全性。

4. 在实验过程中,必须注重对动物的观察,发现任何异常情况,应及时进行记录并采取相应的措施。

5. 实验操作结束后,实验人员必须对实验动物进行适当的处置,如安置到相应的饲养区域等。

四、实验室设备操作规范1. 实验室内的设备必须经过合理的保养和维护,确保其正常工作。

2. 对于需要使用的设备,实验人员必须熟悉其使用方法,并按照操作手册进行正确操作。

3. 在使用高温设备时,实验人员应注意防止烫伤,必要时可以佩戴防热手套。

4. 实验室内的电气设备和线路需要特别注意安全,实验人员在操作时应遵守相应的操作规定。

5. 在使用刀具或锐利器械时,实验人员必须小心谨慎,以免发生意外伤害。

五、实验废料处置1. 实验过程中产生的废料必须分类存放,如实验动物的排泄物要单独收集。

2. 废料的处理要符合环保要求,不能随意丢弃到自然环境中。

3. 实验废料必须按照相应的规定进行安全处理,以防止对环境和人体带来危害。

六、实验安全意识培养1. 实验人员必须具备一定的实验安全知识,了解实验操作的风险和应对措施。

2. 实验人员在实验过程中发现安全隐患时,必须及时报告,并采取相应的措施消除隐患。

标准操作规程(SOP)——实验动物的麻醉

标准操作规程(SOP)——实验动物的麻醉

标准操作规程(SOP)——一、目的该文件用以说明实验动物麻醉的具体操作以及操作规范,以保证麻醉剂量准确,使实验动物处于麻醉状态,实验顺利进行。

同时保证操作人员的安全。

二、范围适用于中国国家流感中心的所有技术人员对实验动物进行麻醉。

三、程序(一)生物安全要求动物实验涉及到H5、H7亚型高致病性禽流感病毒,H2N2亚型流感病毒的时候,动物麻醉操作需要在ABSL-3级实验室进行操作。

操作其他病毒的时候,动物麻醉操作需要在ABSL-2级实验室中进行。

(二)材料1.实验动物:中小型实验动物,如:小鼠、大鼠、豚鼠、兔及雪貂等。

2.动物实验中常用的麻醉剂分为三类,即挥发性麻醉剂、非挥发性麻醉剂和中药麻醉剂。

(1)挥发性麻醉剂这类麻药包括乙醚、氯仿等。

乙醚吸入麻醉适用于各种动物,其麻醉量和致死量差距大,所发安全度亦大,动物麻醉深度容易掌握,而且麻后苏醒较快。

其缺点是对局部刺激作用大,可引起上呼吸道粘膜液体分泌增多,再通过神经反射可影响呼吸、血压和心跳活动,并且容易引起窒息,故在乙醚吸入麻醚时必须有人照看,以防麻醉过深而出现上情况。

(2)非挥发性麻醉剂这类麻醉剂种类较多,包括苯巴比妥钠、戊巴比妥钠、硫喷妥钠等巴比妥类的衍生物,氨基甲酸乙脂和水合氯醛。

这些麻醉剂使用方便,一次给药可维持较长的麻醉时间,麻醉过程较平衡,动物无明显挣扎现象。

但缺点是苏醒较慢。

(3)中药麻醉剂动物实验时有时也用到象洋金花和氢溴酸东莨菪碱等中药麻醉剂,但由于其作用不够稳定,而且常需加佐剂麻醉效果才能理想,故在使用过程中不能得到普及,因而,多数实验室不选用这类麻醉剂进行麻醉。

(三)实验步骤1.吸入法用一块圆玻璃板和一个钟罩或一个密闭的玻璃箱作为挥发性麻醉剂的容器,多选用乙醚作麻醉药。

麻醉时用几个棉球,将乙醚倒可其中,迅速转入钟罩或箱内,让其挥发,然后把待麻醉动物投入,约隔4-6min即可麻醉,麻醉后应立即取出,并准备一个蘸有乙醚的棉球小烧杯,在动物麻醚变浅时给套在鼻上使其补吸麻醉药。

SOP-001标准操作规程(SOP)的制定、管理及使用规程

SOP-001标准操作规程(SOP)的制定、管理及使用规程

标准操作规程(SOP)的制定、管理及使用规程
编写/修订记录
1、目的
规范SOP的制定、管理、使用、修订及取消等过程,保障SOP的统一性和完整性。

2、适用范围
实验动物饲养管理和动物实验SOP的制定、管理、使用、修订及取消等过程。

3、职责
严格按照操作执行。

4、规程
4.1 制定
4.1.1 撰写:由实验动物中心负责具体SOP的起草、修改、校对。

撰写的SOP
应符合国家实验动物标准和管理的要求。

4.1.2 审核:由中心主任负责审定SOP的形式、内容。

4.1.3 批准:由实验动物管理委员会负责审批SOP。

4.1.4 修订:修订后的SOP要注明取代的SOP编码。

4.2 管理:实验动物中心负责对审批后的SOP进行印制、分发,并做好原始文件
的归档等工作;确保各工作人员在工作中认真执行。

4.3 使用:本标准操作规程供进入动物实验设施的动物饲养管理人员和动物实验
操作人员使用。

4.4 取消:由于仪器、设备的更换和其它原因,应取消SOP时,首先写出报告,
说明取消原因和日期,经机构负责人同意,签字后移交档案室保存,备查。

4.5 对标准操作规程进行取消和修订,需填写《B-SOP-001-1标准操作规程(SOP)
的管理及使用记录表》。

动物实验操作规程

动物实验操作规程

动物实验操作规程1.实验目的和背景动物实验是科学研究的重要手段之一,为了确保实验的准确性和可靠性,制定一套严格的操作规程至关重要。

本文将详细介绍动物实验操作规程,确保实验过程的规范性和实验结果的可信度。

2.实验材料和设备在进行动物实验之前,需要准备以下材料和设备:2.1. 动物实验对象:根据实验目的选择适当的动物,如小鼠、大鼠、兔子等。

2.2. 动物饲料和水:确保给动物提供合适的饲料和饮水,以满足它们的基本需求。

2.3. 实验器械:根据实验需要准备各种实验器械,如手术器械、注射器、天平等。

2.4. 试剂和药物:根据实验设计准备所需的试剂和药物,确保其纯度和质量。

3.实验前准备在进行动物实验之前,需要做好以下准备工作:3.1. 实验环境准备:确保实验室环境的整洁和安静,维持适宜的温度、湿度和光照条件。

3.2. 动物饲养和适应:提前将实验动物饲养在实验室环境中,让它们适应新的环境,保证实验结果的可靠性。

3.3. 实验材料和设备核对:核对所需材料和设备,确保其完整和准备充分。

3.4. 实验方案制定:针对具体实验目的,制定详细的实验方案,包括实验步骤、操作要点等。

4.实验操作步骤根据实验方案和操作规程,按照以下步骤进行实验操作:4.1. 实验前记录:记录实验前动物的基本信息,包括动物种类、数量、性别、体重等。

4.2. 动物准备:根据实验需求,对动物进行体表消毒、麻醉或固定等操作。

4.3. 实验操作:按照实验方案进行具体的实验操作,如注射、取样、观察等。

4.4. 数据记录:在实验过程中,及时记录相关数据和观察结果,确保实验数据的准确性和完整性。

4.5. 实验结束:完成实验后,做好对实验动物的后续处理,如恢复麻醉、放回饲养箱等。

5.实验安全和伦理在进行动物实验过程中,应确保实验操作的安全和伦理合规性:5.1. 安全措施:在实验操作中,严格遵守安全操作规程,做好个人防护,如佩戴手套、口罩等。

5.2. 实验伦理:遵循相关法律法规和伦理原则,确保对动物实验的合理性和必要性评估,并尽量减少对动物的痛苦和伤害。

实验动物操作SOP

实验动物操作SOP

实验动物尿液采集的标准操作规程(SOP)
小鼠肺泡灌洗标准操作规程
屏障动物房中IVC的标准操作规程(SOP)
净化工作工作台标准操作规程(SOP)
生物样品的采集及实验动物的解剖和脏器系数测定标准操作规程(SOP) 小鼠腹腔注射LD50的测定
___实验动物注射(包括皮下、肌注和腹腔)__ 标准操作规程(SOP) 实验动物的取血
动物实验过程中的急救措施
豚鼠饲育管理标准操作规程(SOP)
实验动物处死(鼠,兔类)标准操作规程(SOP)
动物实验用CJ-1F型超净工作台清洗、消毒标准操作规程。

(SOP)
实验动物细菌学监测标准操作规程(SOP)
实验动物真菌监测标准操作规程(SOP)
实验动物病毒监测标准操作规程(SOP)
实验动物寄生虫监测标准操作规程(SOP)
实验动物环境监测标准操作规程(SOP)
实验动物的给药途径
实验动物的给药剂量及药量计算
实验动物的采血和采尿
实验动物管理制度。

动物实验标准操作规程

动物实验标准操作规程

动物实验标准‎操作规程一、人流线路工作人员进入‎第一更衣室→脱去个人外衣‎(饰品)放入衣柜→脱去蓝色拖鞋‎后(→淋浴室)进入第二更衣‎室→穿上红色拖鞋‎→手消毒(0.1%新洁尔灭)→按操作规范穿‎上无菌连体衣‎,戴上一次性无‎菌口罩、手套→进入缓冲间→风淋→进入清洁走廊‎→进入洁净区域‎工作→进入饲养室或‎检疫室→所有工作结束‎后→进入污物走廊‎、脱掉红色拖鞋‎→进入缓冲间→穿上蓝色拖鞋‎,进入洗刷、消毒区域,取掉手套、口罩、连体衣,分别放入指定‎的回收桶中→进入第一更衣‎室,穿上个人衣(饰)→出屏障系统。

二、物流线路物品→高压蒸汽灭菌‎器或传递窗或‎渡槽→消毒传递间→清洁准备室→清洁走廊→饲养室或动物‎实验室→污物经包装处‎理→(后室缓冲间)→次清洁走廊→气闸(缓冲间)→清洗消毒室→外部区域。

三、动物流线路外‎来S PF级实‎验动物→传递窗→消毒传递间→清洁准备室→清洁走廊→饲养室或动物‎实验室→生产繁殖或实‎验处理后→(后室缓冲间)→次清洁走廊→气闸(缓冲间)→清洗消毒室→外部区域。

四、空气(压力)流程新风口→空气初效过滤‎器→空气中效过滤‎器→空气高效过滤‎器→屏障系统内各‎区域并产生压‎力梯度: ①清洁走廊→饲养室或动物‎实验室→(后室缓冲间)→次清洁走廊→气闸(缓冲间)→室外。

②(进入屏障系统‎内)气闸(缓冲间)→第2更衣室→淋浴室→第1更衣室→室外。

③(离开屏障系统‎内)气闸(缓冲间)→清洗准备间(消毒室)→外部区域。

④消毒传递间→传递窗→清洗消毒室→外部区域。

五、注意事项为了防止空气‎倒流,必须调节并保‎持4.4中各区域间‎的压力梯度,同时,必须时刻保证‎2更衣室、消毒传递间、气闸(缓冲间)至少20Pa‎的正压。

六、质量记录动物/物品传递管理‎记录表、动物饲养环境‎参数与异常情‎况记录表。

标准操作规程(SOP)——实验动物的处死和处置

标准操作规程(SOP)——实验动物的处死和处置

一、目的实验动物的处死和处置是进行动物试验的重要步骤。

在许多动物实验中,必须处死的实验动物应采用安死术,以减少动物不必要的痛苦。

二、适用范围适用于中国国家流感中心的所有技术人员对实验动物进行处死和处置。

三、程序(一)生物安全要求接种过H5、H7亚型高致病性禽流感病毒,H2N2亚型流感病毒的动物处死和处置操作需要在动物生物安全三级实验室(ABSL-3)进行。

其它动物处死和处置操作需要在动物生物安全二级实验室(ABSL-2)中进行。

(二)材料1.实验动物:中小型实验动物,如:小鼠、大鼠、豚鼠、兔等。

2.其他:注射器、手术刀、药物等。

(三)实验步骤1.大鼠和小鼠的处死(1)颈椎脱臼法1)操作者穿上工作服,戴上口罩和手套,将小鼠或大鼠放在表面粗糙的台面上,用左手拇指、食指按住鼠的头部。

2)右手将鼠尾根部用力向后上方拉,导致颈椎脱臼,动物立即死亡。

3)实验完成后将动物尸体放入生物安全袋中,集中焚烧处置。

(2)击打法1)实验者穿上工作服,戴上口罩及手套。

2)右手抓住鼠尾,提起,用力摔击其头部,鼠痉挛后立即死亡。

3)用小木锤用力击打鼠头部也可致死。

4)实验完成后将动物尸体放入生物安全袋中,集中焚烧处置。

标准操作规程(SOP )——死和处置(3)急性大量放血法1)实验者穿上工作服,戴上口罩及手套。

2)将动物麻醉后,在股动脉、股静脉处切开血管,并保持通畅,大量失血后,动物迅速死亡。

3)用于大鼠时可将颈动脉、颈静脉切开放血。

4)实验完成后将动物尸体放入生物安全袋中,集中焚烧处置。

2.豚鼠、家兔的处死(1)空气栓塞法:常用于兔的处死。

(2)实验者穿上工作服,戴上口罩及手套。

(3)左手持兔耳,用酒精棉球擦拭耳缘静脉,使血管暴露出来。

(4)右手持注射器,在兔的耳缘静脉处注射一定量空气(20-40mL)。

(5)处死大鼠时,可在尾静脉或颈静脉血管中注入一定量的空气。

(6)当空气注入静脉后,可在右心随着心脏的跳动使空气与血液相混致血液成泡沫状,随血液循环到全身。

2024动物房SOP操作规程完整

2024动物房SOP操作规程完整

2024动物房SOP操作规程完整2024年动物房SOP(Standard Operating Procedure,标准操作规程)操作规程是为了确保动物实验室的运作符合标准,并保护动物福利而制定的。

下面是一个1200字以上的完整的2024年动物房SOP操作规程:1.引言1.1目的:本操作规程旨在确保动物实验室的运作符合国际标准,保护动物福利,并提高实验结果的可靠性。

1.2适用范围:本操作规程适用于所有在动物实验室进行实验的人员。

2.总则2.1动物使用原则:动物实验必须符合伦理原则,并尽可能减少使用动物的数量。

2.2动物福利保护:所有动物必须得到适当的照顾和保护,包括提供适宜的饲料、水和环境,以及必要的医疗保健。

2.3数据记录和报告:所有实验数据必须准确记录,并及时报告给相关人员和部门。

3.动物修养3.1动物供应和标识:动物供应必须来自合法的渠道,并按照国家法规进行标识。

3.2动物健康检查:新进动物必须进行健康检查,确保没有任何传染性或遗传性疾病。

3.3饲养条件:动物必须提供适宜的饲料和饮水,并保持适宜的温度、湿度和光照条件。

4.动物实验4.1实验方案:所有实验必须有详细的实验方案,包括实验目的、方法、动物数量、实验期限等。

4.2实验操作:实验操作必须符合相关原则和规定,并在有资质的人员指导下进行。

4.3动物监测:对动物进行定期监测,包括观察其行为、体重、体温等,及时发现异常并采取相应措施。

4.4使用药物和化学物质:使用药物和化学物质必须符合相关法规,并在有资质人员的指导下进行。

5.安全措施5.1个人防护:所有从事动物实验的人员必须佩戴适当的个人防护装备,包括口罩、手套和实验服。

5.2消毒措施:动物实验设备和空间必须定期进行消毒,以防止交叉感染。

5.3废物处理:废物必须按照相关法规进行分类和处理,以防止环境污染。

6.质量控制6.1校验和标准曲线:使用仪器必须进行校验和标准曲线的制作,以确保测量结果的准确性和可靠性。

动物实验安全操作规程

动物实验安全操作规程

动物实验安全操作规程动物实验是科学研究和医学进步的重要手段之一,然而,在进行动物实验时,确保实验过程的安全性十分重要。

本文将介绍动物实验中的安全操作规程,以确保实验人员和实验动物的安全。

1. 实验环境的准备和维护在进行动物实验前,需要做好实验环境的准备和维护工作。

首先,实验室应当具备良好的通风设备和消防设施,以确保空气的流通和防火安全。

其次,实验室应当保持整洁,避免实验台面上的杂物和堆积物。

实验器材需要定期检查和维护,如实验仪器的电线和管道的接头是否牢固,以防止漏电或泄漏事故的发生。

2. 安全防护措施实验人员在进行动物实验时,需要采取一系列的安全防护措施,以降低实验风险。

首先,实验人员应当佩戴适当的个人防护用品,如实验手套、实验面罩、实验服等,以防止对实验物质的直接暴露。

其次,实验人员应注意洗手卫生,避免污染其他实验器材或传播病原体。

此外,实验人员还应该定期注射防疫疫苗,以确保自身的免疫系统健康。

3. 动物实验操作规范在进行动物实验操作时,实验人员需要严格遵守操作规范,确保实验的安全进行。

首先,实验人员应当在进行实验之前仔细阅读实验方案,并了解实验目的和操作流程。

其次,在实验过程中,实验人员应当注意实验样本的数量和剂量,以避免实验物质过量使用或误伤动物。

此外,实验人员应当及时清理实验台面和工作区域的残留物,防止交叉感染和污染。

4. 紧急处理措施无论在实验中或实验后,突发意外事件时,实验人员需要掌握紧急处理措施,保障人员的安全。

例如,实验人员在观察实验动物时,如遇到实验动物突然反常或表现异常时,应立即找到实验主持人或实验室负责人。

另外,在实验过程中如遇到火灾、泄漏等紧急情况,实验人员应立即按照实验室的应急预案进行处置,确保实验室和实验人员的安全。

总之,动物实验是科学研究和医学进步的重要手段,但我们也要时刻关注实验安全。

通过本文介绍的动物实验安全操作规程,实验人员能够更加安全地进行实验,同时保护实验动物的福利。

动物实验基本操作技术

动物实验基本操作技术

动物实验中的化学安全防护
化学试剂的储存:分类存放远离火源和热源
化学试剂的使用:严格按照操作规程使用避免直接接触皮肤和眼睛
化学废液的处理:分类收集妥善处理避免污染环境 化学防护设备的使用:佩戴防护眼镜、手套、口罩等避免吸入或接触有害 物质
动物实验中的放射性安全防护
放射性物质的分 类和特性
放射性防护的基 本原则和方法
提供适当的活动空间:确保动物有足够的活动空间避免过 度限制活动
记录动物状态:记录动物的行为、食欲、排便等情况以便 及时发现问题并采取措施
实验动物的组织取材与处理
组织取材:选择合适的组织进行取材如心脏、肝脏、肾脏等 固定:使用固定液对组织进行固定如福尔马林、乙醇等 切片:将固定后的组织切成薄片便于显微镜观察 染色:使用染色液对切片进行染色如苏木精、伊红等 观察:使用显微镜对染色后的切片进行观察记录组织形态和结构 保存:将组织切片保存在适当的环境中如冰箱、干燥器等
科学性:实验设计必须科学 合理符合伦理要求
尊重动物生命:尊重动物的 生命权避免不必要的伤害和 痛苦
知情同意:实验人员必须了 解实验的目的、方法和可能
的风险并同意参与实验
监管与监督:实验必须遵守 相关法律法规接受监管和监

教育与培训:实验人员必须 接受相关伦理教育和培训提
高伦理意识
动物实验的法律法规与标准
采血与注射的常 用工具:注射器、 采血针、止血带 等
采血与注射的常 见问题及解决方 法:出血、感染、 动物应激反应等
实验动物的观察指标与数据记录
数据记录:记录观察指标的 变化包括时间、地点、观察 人员等信息
数据分析:对观察数据进行 统计分析得出结论
观察指标:体重、体温、呼 吸、心跳、行为、饮食、排 泄等

实验动物专业技术人员分工和职责sop

实验动物专业技术人员分工和职责sop

实验动物专业技术人员分工和职责SOP1. 背景介绍实验动物专业技术人员是指在科研实验室或相关机构从事实验动物管理和实验操作的专业人员。

他们负责确保实验动物的健康和福利,同时协助科研人员进行实验操作和数据收集。

为了保证实验的可靠性和结果的准确性,实验动物专业技术人员需要具备一定的专业知识和技能,并且按照一定的分工和职责进行工作。

2. 分工与职责2.1 动物饲养与管理•职责:负责实验动物的饲养与管理,确保其健康、安全以及福利。

•分工:–饲料配制与供应:根据不同种类和生理状态的实验动物需求,准备合适的饲料,并定期供应。

–水质管理:监测并维护实验动物饮用水的质量,确保水源清洁、无污染。

–环境控制:调节温度、湿度、光照等环境因素,提供适宜的生存条件。

–疾病预防与处理:定期进行健康检查,及时发现和处理实验动物的疾病问题。

–遗传管理:负责实验动物的配对、交配和繁殖管理,确保实验动物种群的稳定和纯净。

2.2 实验操作与技术支持•职责:协助科研人员进行实验操作,提供技术支持和服务。

•分工:–动物标记与识别:使用合适的标记方法(如耳标、纹身等)对实验动物进行标记,以便于个体识别和追踪。

–动物手术操作:根据科研需求,进行动物手术操作,并提供相关技术支持,如麻醉、消毒、缝合等。

–样本采集与处理:负责收集实验动物的样本(如血液、组织等),并按要求进行处理和保存,以供后续分析使用。

–实验设备维护与校准:负责实验设备的日常维护和校准工作,确保设备正常运行并符合要求。

2.3 数据记录与分析•职责:负责记录实验过程中的数据和结果,并进行初步的数据分析。

•分工:–数据记录与整理:及时准确地记录实验过程中的各项数据,并进行整理和归档,以备后续使用和分析。

–统计分析与图表绘制:根据实验设计和科研需求,对实验数据进行统计分析,并通过图表的形式展示结果。

–结果解读与报告撰写:根据数据分析结果,协助科研人员进行结果解读,并参与相关报告的撰写工作。

动物实验基本操作技术手册

动物实验基本操作技术手册

动物实验是一项敏感和复杂的工作,必须在合乎伦理的前提下进行,且需要遵循相关法规和指南。

以下是一个基本的动物实验操作技术手册大纲,但请注意,实施动物实验前,确保已经获得了合适的伦理批准和遵循当地法规。

1. 实验前准备:-获取伦理委员会的批准。

-确保实验室和设备符合标准。

-训练实验人员,确保其了解实验目的和操作流程。

2. 动物选择和养护:-选择适当的实验动物种类。

-确保动物的健康状况和遗传背景。

-提供适当的饲料、水和住房条件。

3. 实验设计:-制定明确的实验计划和协议。

-随机分组和安排实验。

-控制实验变量,确保结果的可靠性。

4. 麻醉和手术技术:-使用适当的麻醉剂和疼痛缓解措施。

-实施外科手术时,保持严格的无菌操作。

-确保手术室环境符合标准。

5. 实验操作和数据收集:-严格遵循实验方案的步骤。

-使用精确的测量工具。

-记录和存储实验数据。

6. 动物监测:-定期监测实验动物的生理指标。

-观察动物行为和外观。

-确保动物福祉和及时干预。

7. 实验结束和处理:-完成实验后,安全地结束动物的参与。

-对实验动物进行适当的处置或重返饲养环境。

-清理和消毒实验设备和环境。

8. 数据分析和报告:-使用统计工具对数据进行分析。

-撰写实验报告,详细描述实验设计、方法和结果。

-提交实验结果给相关的科研机构或期刊。

9. 废弃物处理:-安全处理动物实验产生的废弃物。

-符合相关环境法规,确保废弃物不对环境造成污染。

10. 纪录保存和档案管理:-确保实验记录和数据的安全存储。

-遵循机构和法规的档案保存要求。

11. 反馈和改进:-定期进行实验室审核和评估。

-根据实验结果和经验,改进实验设计和操作流程。

请注意,这只是一个基本的手册大纲,具体的操作流程和技术要求可能根据实验的具体内容和动物种类而有所不同。

在进行任何动物实验之前,请确保阅读并遵循相关法规和伦理指南,以确保实验的合法性和伦理性。

perkinelmer活体光学成像操作规程sop

perkinelmer活体光学成像操作规程sop

perkinelmer活体光学成像操作规程sopperkinelmer是一家全球领先的生命科学与分析技术公司,其产品广泛应用于生命科学、诊断、食品安全等领域。

其中,perkinelmer活体光学成像技术(in vivo optical imaging)是一项创新的技术,可以用于研究动物的生理功能和疾病模型。

但是,使用这项技术需要严格遵守操作规程(SOP)以确保实验的安全性和有效性。

以下是perkinelmer活体光学成像操作规程SOP的步骤:第一步:实验前准备1. 确保实验室环境干净、整洁,减少任何可能对实验造成干扰的因素;2. 准备好所需的仪器和试剂,包括活体成像仪、小动物(如小鼠、大鼠)等;3. 穿戴实验室工作服、手套、口罩等个人防护用品,避免因为环境中的污染物造成实验结果的影响;4. 检查活体成像仪的电源、灯光等是否正常,确保仪器工作正常。

第二步:动物实验1. 选择适合的动物模型,如选择能够表达荧光标记分子的小鼠等;2. 在动物体内注射相应的分子探针,如荧光探针、放射性探针等;3. 根据实验需要,选择相应的成像方法,如荧光成像、放射性成像等;4. 通过活体成像仪对注射荧光探针/放射性探针的动物进行成像,记录相应的数据。

第三步:数据处理与分析1. 将活体成像仪采集到的数据导出到计算机上,进行相应的图像处理;2. 对成像结果进行分析,如鉴定特定的荧光信号、计算放射性标记的数量等;3. 保存数据、图像和分析结果,以备后续参考或分享。

需要注意的是,在进行perkinelmer活体光学成像实验过程中,应严格控制实验环境,避免任何可能影响实验结果的干扰,如温度、噪音、光线和振动等,同时,还要遵守相关的伦理、法律法规。

每位实验人员在进行实验前,应该熟悉并遵守规定的实验操作规程(SOP),确保实验的安全性和有效性。

标准操作规程(SOP)——小鼠脾细胞收集和保存

标准操作规程(SOP)——小鼠脾细胞收集和保存
标准操作规程(SOP)——小鼠脾细胞收集 和保存
一、目的
小鼠是常用的动物模型之一,小鼠脾细胞的收集是进行免疫细胞分离和免疫 细胞功能评价的必须步骤,因此,正确收集和保存小鼠的脾细胞,为后续试验提 供保证。
二、范围
适用于中国国家流感中心的所有技术人员进行小鼠脾细胞收集和保存的操 作。
三、程序
(一)生物安全要求 实验室生物安全级别:根据使用病原微生物的危害性,分别选择 ABSL-2、
2.脾细胞的保存 将脾细胞按每 1×107 个细胞中加入 1mL 冻存液的比例,分装于冻
存管中,放入冻存盒,-80℃冰箱过夜后转入液氮罐中长期保存。
(三)实验步骤 1.脾细胞收集
(1)将小鼠颈椎脱位处死,置于 75%酒精中浸泡 3~5min,取出后右侧卧位 放置,消毒其左侧背腹交界处的皮肤。
(2)无菌条件下取脾脏置于盛有 RPMI1Байду номын сангаас40 培养基的平皿中,洗去血迹, 剪去脂肪及筋膜组织,于 100 目的金属筛上研压,收集细胞悬液,注入 无菌离心管中,用 RPMI1640 培养基洗两次后重新悬浮,备用。
ABSL-3 或 ABSL-4 条件操作。 (二)材料
1.实验动物 BALB/C 小鼠、C57BL/6J 小鼠、昆明小鼠
2.实验器械和耗材 眼科剪刀,眼科镊子,平皿,筛网(100目),研磨棒,离心管,冻存管
3.实验试剂 75%酒精 RPMI 1640 液体培养基 胎牛血清 小牛血清 冻存液的配制:在 9mL 胎牛血清中加入 1mL 二甲基亚砜
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实验动物微生物学检测方法(系列标准共55项) SPF鸡微生物学检测方法(系列标准共10项)
实验动物寄生虫学检测方法(系列标准共10项) 实验动物近交系小鼠、大鼠生化标记检测方法
实验动物近交系小鼠、大鼠皮肤移植法 实验动物配合饲料常规营养成分的测定
实验动物配合饲料氨基酸的测定 实验动物配合饲料维生素的测定 实验动物配合饲料矿物质和微量元素的测定
动物实验室。 • 本中心不接受实验人员自行采购的来源不清的动物。
在一般情况下,本中心在双方协定的时间内将实验人员 要求的实验动物(品种、品系、性别及年龄或体重)运 到指定的动物实验车间,由实验人员分组安置动物。
29
7、动物的检疫
动物领用后,本中心通知实验人员对动物进行验收。 如有核不对合项格目或:有实疑验义动,物实品验种人品员系须、第性一别时、间数通量知、饲体养 人重员。。
动物食用饲料采用放射性照射(60Co ) 的消毒方法;
工作人员用的拖鞋等采用浸泡的方法(0.1 %新洁 尔灭或1%84消毒溶液、0.2%-0.5%过氧乙酸) 消 毒;
对于不耐热、不耐水、不耐酸碱和不能进行放射 性照射的物品采用传递窗紫外线消毒。
积极开展各项指标的检测工作
经常对空调通风系统进行保养,每1~2 周更换排风 口过滤膜,每天更换新风口过滤膜,每2-3个月更 换一次初效和中效过滤袋,每年更换一次高效过滤 器;
操作规程(SOP)与动物实验技术
1
主要内容
一 • 我国实验动物管理体制简介 二 • 相关SOP和程序 三 • 动物实验技术
2
一、我国实验动物的管理体制
3
我国实验动物的管理体制
我国实验动物质量保障体系
实验动物质量保障体系
许可证管理 五年换发 每年年检 国家级种子中心 (动物种子供应) 质量监测
实验动物质量管理国家标准
强制性标准(共12项) 哺乳类实验动物遗传控制质量标准
实验动物微生物学等级及监测 实验动物寄生虫学等级及监测
实验动物环境及设施 实验动物配合饲料通用质量标准
实验动物配合饲料卫生标准
实验动物大鼠、小鼠、地鼠、地鼠、 兔、猴、犬配合饲料(系列标 准共6项)
推荐性标准(共81项)
3% -5%苦味酸溶液(黄色) 0.5%中性红或碱性品红溶液(红色) 2%硝酸银溶液(咖啡色,涂后光照10分钟) 煤焦油酒精溶液(黑色) 龙胆紫溶液(紫色)
动物实验操作技术:是实施动物实验的重要手段,在 不同的研究领域有其不同的目的和应用,一些基本操 作技术是共同的。
40
各种动物特点比较
实验项目
传染病 寄生虫 实验结果 应用动物数 统计价值 长期实验 自然死亡率 长期实验存活率 实验的准确设计 实验结果的讨论
价值
无菌动物
无 无 明确 少数 很好 可能好 很少 约100% 可能 高
无特殊病原体动物
无 无 明确 少数 可能好 可能好 少 约90% 可能 中
普通动物
有或可能有 有或可能有
有疑问 多(或大量)
不准确 困难 高
约40% 不可能

(一)动物抓取固定
1、大、小鼠的抓取固定
小鼠比较温顺,抓取时先用右手抓取鼠尾提取,置于鼠笼和实验台 向后拉,在其向前爬行时,用左手拇指和食指抓住小鼠的两耳和颈部 的皮肤,将鼠体置于左手心中,把后肢拉直,以无名指按住鼠尾,小 指按住鼠尾即可。
兔:100-150Lx 树立无菌观念,严格管理,规范操作
16
4、屏障环境设施运行模式图

经初、中、高效

三级过滤后进入
耐高温物品经高压灭菌进入


饲料等经渡槽消毒进入
不耐高温物品经传递窗消毒进入


经传递窗外包装消毒后进入

经穿戴无菌防护服、

口罩、手套后进入
高压锅

渡槽 障

过滤
除臭

排放
传递窗
31
9、动物实验场所的安排
在本中心进行动物实验时,由动物饲养人员负责动物实 验场所的安排。 清洁级以上大小鼠实验场所的安排,原则上依据制品类 别及科研分区。
32
10、动物实验操作规范
抓取实验动物:要小心,不能粗暴,防止被动物咬伤; 如被咬伤,立即用纯净流水冲洗,通知工作人员用外用 消毒药局部应急处理、登记,并尽快前往医院处置
日常消毒灭菌ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ品的检测
双扉高压真空灭菌器,用于所有可经高压灭菌的物 品;
消毒液渡槽,用于可浸泡消毒的物品; 传递窗用于不能高压,又不能浸泡的物品。
加强人员队伍建设和管理
加强 人员污染是洁净动物设施失败的重要人原员因培。训 人与动物直接接触之间的防护仅仅是洗澡和穿上
灭菌衣、戴上手套和口罩。裸露部分很容易对环 境造成污染。 工作人员容易出汗,偶尔也打喷嚏,但灭菌衣、 口罩并不具备初、中、高效过滤功能,也容易对 环境造成污染。

人员

通道
出口
人员 物品 动物
缓冲
缓冲 退出
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5、屏障设施的运行管理规范
严格规定人员、物品、动物的流向 合理选择消毒方法 积极开展各项指标的检测工作 认真做好屏障环境内外的清洁消毒工作 加强人员队伍建设和管理 有效的检测措施
SPF级车间人员流动路线
外区
办公室/ 休息间
更外衣
更衣间
缓冲间
二更间
每年的10月提交下一年度的实验动物使用计划,交生产 技术部,由生产技术部统一向实验动物中心下达下年度 的生产任务。
每月25日前,各使用部门(科室)填写下月的动物使用 计划交实验动物中心。
在本中心做动物实验实行至少提前一天预约登记制。 详细填写:课题名称、动物的品种、品系、性别、数量、
动物中心提供更换笼盒、给水给料等服务。 实验人员和饲养人员共同担任实验动物的观察。 工作完毕必须及时清场,并按废弃物分类别放入垃圾桶类。 实验人员与本中心工作人员之间应及时沟通,可在白板上
留言。
35
11、实验人员应注意的事项
实验人员应在实验记录卡片上记载分组编号情况,禁 止用记号笔在笼盒上作记号。
每天检查饲养间内的温度、湿度、压差、噪声; 准备好灭菌拖鞋、手套、口罩、防护服等用品; 及时清理、清洗、干燥、消毒灭菌防护服等用品; 每周更换垫料,保证动物饮水、饲料充足,维护饲养环
境清洁、整齐,不留死角; 每天对屏障内地面、走廊消毒,预防交叉感染; 将消毒灭菌后的笼具、饲料、垫料、饮水储备充足; 每天对设备、实验动物状态进行观察并做好记录; 如发现异常,及时通知相关研究组实验人员。
谨防动物逃逸:随时盖好笼盖,及时捉回逃逸动物淘汰 处置
回送笼盒:还原到位(确保IVC笼具通气) 应急处理:实验人员如发现动物有异常情况,应立即告
知有关管理人员应急处理 环境整洁:清洁工作台和地面;将使用过的笼具放置规
定区域,传至洗刷间;屏障内走廊禁止摆放实验用品
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10、动物实验操作规范
人员的培训
岗前接受实验动物专业培训 了解实验设施的特点和要求 实验动物饲养管理方法 熟悉操作程序和操作规范 工作中接受实验动物管理员的技术指导
6、动物的供应和确认
本动物实验室所用的实验动物原则上必须 • 本单位供应的 • 向有动物生产许可证的单位购买。 • 没有清洁级和SPF级质量合格证的动物禁止进入本SPF级
实验开始的日期、预计实验结束的日期、实验材料中有 无有毒、有害、感染性、放射性物质以及实验的特殊条 件、有无大型仪器设备搬入等。经本中心审核后,即安 排动物的供应,落实动物实验场所。
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2、网上平台管理的管控
三天内登录
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3、屏障环境设施环境指标控制
控制人员、物品、动物和空气 温度:20-26℃ 湿度:40-70% 换气:≥ 15次/h 噪声:≤ 60dB 工作照度:≥ 200lx 动物照度(小鼠、地鼠、豚鼠):≥ 15-20Lx
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11、实验人员应注意的事项
进出屏障系统应按指定的路线走,穿无菌衣帽、戴口罩手 套,不得随意闯进入,并及时登记人员进出车间记录。
在屏障系统内进出各区域应随手关门,保持压差和气流方 向,不得敞开洁净区内各门。
共用的动物实验用具,如实验台、电子秤、固定器、解剖 板等,用后应清理干净,放回原处。
7
《湖北省实验动物管理条例》
《湖北省实验动物管理条例》,2005 年10月1日施行。
许可证有效 期五年
必须取得湖北省实验动物生产或使用许可证
9
湖北省实验动物公共服务平台
/
实时登记 在线监控
二、如何在实验动物中心做实验
11
实验动物品种
SFP级实验动物
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13、动物实验结束
实验结束时,实验人员应及时通知中心工作人员,便 于及时清理、消毒,并做好一切准备工作。
如课题验收、鉴定、评奖等需要,实验人员可向动物 中心索要: ① 实验动物使用许可证, ② 实验动物质量合格证,
③ 实验动物设施使用合格证等。
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三、动物实验技术
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动物实验:是用实验动物作为人的替身进行各种生命 科学实验的过程。 以实验动物为材料,采用各种方法在实验动物身上做 试验,研究动物在实验过程中的反应、表现及发生、 发展规律和有关技术问题。
1、转基因小鼠 2、KM小鼠、NIH小鼠、BALB/C小鼠、地鼠
普通级实验动物
兔、豚鼠
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动物实验室开放时间
本中心动物实验室开放时间为周一~周五8:40~16: 00。双休日有人值班。
动物饲养室内动物照明时间设定为7:00~17:00, 即10h明14h暗。
13
1、年度计划和预约登记
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