小鼠腹腔巨噬细胞原代培养实验具体步骤及方法
小鼠原代腹腔巨噬细胞提取方法(超详细~)
小鼠原代腹腔巨噬细胞提取方法（超详细）
实验前准备：
超净工作台、水平式低速离心机、10ml离心管、2.5mL注射器、细胞吸管、3％肉汤淀粉溶液、无菌眼科剪、无菌眼科镊、75％酒精溶液、无菌PBS溶液、DMEM细胞培养基、胎牛血清、细胞计数版、倒置显微镜等。
实验操作步骤
（1）我们对健康雄性C57BL/6小鼠腹腔注射3％肉汤淀粉溶液1 mL，持续3d，以便刺激腹腔巨噬细胞产生。
注：3％肉汤淀粉溶液提前配制，高温除菌后使用。
（2）小鼠颈椎脱臼处死，用75％酒精溶液对其充分消毒。
（3）固定小鼠，暴露腹腔。
（4）无菌条件下用剪刀沿腹中线剪开皮肤，暴露腹膜，切记勿伤及腹膜壁。
（5）向腹膜腔注射DMEM培养基3mL，并轻柔小鼠腹部片刻。
（6）用吸管反复冲洗腹膜腔并回收灌洗液。
（7）移入无菌的10ml的离心管中，以1000r/min，离心 5min，弃上清液。
（8）加入 5ml DMEM 培养基重悬细胞，上述步骤重复两次。
（9）加入含有10% FBS的DMEM培养液重悬细胞，细胞计数，调整细胞浓度为1×106 个/mL。
（10）将细胞悬液接种于 6 孔培养板中，放于37℃、5％二氧化碳
饱培养箱中培养，待后续实验研究。
巨噬细胞小鼠实验报告
一、实验目的1. 观察小鼠腹腔巨噬细胞的吞噬功能。
2. 研究巨噬细胞在小鼠非特异性免疫中的作用。
3. 探讨不同刺激条件下巨噬细胞吞噬功能的变化。
二、实验原理巨噬细胞是机体免疫系统中的重要组成部分，具有强大的吞噬和清除病原微生物、衰老细胞和坏死组织的能力。
吞噬作用是巨噬细胞识别、结合并摄取病原微生物或异物的重要机制。
本实验通过观察小鼠腹腔巨噬细胞对鸡红细胞的吞噬作用，评估其吞噬功能。
三、实验材料与试剂1. 实验动物：6-8周龄健康小白鼠。
2. 实验试剂：鸡红细胞悬液、无菌生理盐水、冷亚甲蓝染色液、甲醇、橄榄油等。
3. 实验仪器：显微镜、离心机、恒温水浴箱、计时器等。
四、实验方法1. 实验分组：将小白鼠随机分为实验组和对照组，每组10只。
2. 实验操作：（1）实验组：每只小鼠腹腔注射1ml鸡红细胞悬液，对照组腹腔注射1ml无菌生理盐水。
（2）注射后30分钟，将小鼠处死，无菌操作取出腹腔液。
（3）将腹腔液离心，弃去上清液，加入适量冷亚甲蓝染色液，混匀后制片。
（4）显微镜下观察巨噬细胞对鸡红细胞的吞噬情况。
3. 数据统计：计算吞噬鸡红细胞的巨噬细胞百分比和吞噬指数。
五、实验结果1. 实验组小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞的百分比和吞噬指数均显著高于对照组（P<0.05）。
2. 在不同刺激条件下，巨噬细胞吞噬鸡红细胞的百分比和吞噬指数存在差异，其中以脂多糖（LPS）刺激组的吞噬功能最强（P<0.05）。
六、实验分析1. 实验结果表明，小鼠腹腔巨噬细胞具有吞噬鸡红细胞的能力，且吞噬功能受到LPS等刺激因素的影响。
2. 巨噬细胞在小鼠非特异性免疫中发挥重要作用，其吞噬功能与机体抵抗力密切相关。
3. 本实验为研究巨噬细胞在免疫调节中的作用提供了实验依据。
七、实验讨论1. 巨噬细胞在小鼠非特异性免疫中的重要作用：巨噬细胞具有广泛的免疫调节功能，不仅能吞噬和清除病原微生物，还能分泌多种细胞因子，参与免疫应答和免疫调节。
巨噬细胞的实验报告
一、实验目的1. 了解巨噬细胞的基本生物学特性；2. 掌握巨噬细胞吞噬功能实验的操作方法；3. 分析巨噬细胞吞噬功能的影响因素。
二、实验原理巨噬细胞是免疫系统中的一种重要细胞，具有吞噬、清除病原体、分泌细胞因子等生物学功能。
本实验通过观察巨噬细胞对鸡红细胞的吞噬作用，评估巨噬细胞的吞噬功能。
三、实验材料与试剂1. 实验动物：小鼠；2. 实验试剂：鸡红细胞、生理盐水、冷亚甲蓝染色液、培养皿、显微镜、移液器等。
四、实验方法1. 实验动物处理：取健康小鼠，腹腔注射6%无菌淀粉液1ml，诱导腹腔巨噬细胞产生。
2. 巨噬细胞收获：实验前3小时，将小鼠处死，无菌操作下取出腹腔液，加入等体积生理盐水，混匀后离心（1000r/min，10min），弃上清，用生理盐水洗涤2次，沉淀即为巨噬细胞。
3. 巨噬细胞吞噬实验：将收获的巨噬细胞加入培养皿中，加入适量鸡红细胞，37℃培养1小时。
4. 巨噬细胞染色：将培养好的巨噬细胞加入冷亚甲蓝染色液，染色5分钟。
5. 巨噬细胞观察：用显微镜观察巨噬细胞吞噬鸡红细胞的情况，计算吞噬百分率和吞噬指数。
五、实验结果与分析1. 实验结果：显微镜下观察到巨噬细胞吞噬鸡红细胞的现象，部分鸡红细胞被吞噬细胞包裹。
2. 实验分析：（1）吞噬百分率：吞噬鸡红细胞的巨噬细胞数/巨噬细胞总数×100%；（2）吞噬指数：吞噬的鸡红细胞总数/吞噬鸡红细胞的巨噬细胞数。
六、实验结论本实验成功观察到了巨噬细胞吞噬鸡红细胞的现象，说明巨噬细胞具有吞噬功能。
吞噬百分率和吞噬指数可以作为评估巨噬细胞吞噬功能的重要指标。
七、实验讨论1. 巨噬细胞在免疫系统中具有重要作用，吞噬功能是其重要生物学特性之一。
2. 本实验采用腹腔巨噬细胞，操作简便，结果可靠。
3. 影响巨噬细胞吞噬功能的主要因素包括：巨噬细胞的来源、成熟度、环境因素等。
4. 本实验为后续研究巨噬细胞吞噬功能的影响因素提供了基础。
八、实验总结本实验通过观察巨噬细胞吞噬鸡红细胞的现象，成功评估了巨噬细胞的吞噬功能。
小鼠巨噬细胞实验报告
小鼠巨噬细胞实验报告实验报告: 小鼠巨噬细胞实验引言：巨噬细胞是免疫系统中重要的细胞类型，对于清除细菌、病毒和其他病原体起着关键作用。
小鼠巨噬细胞是研究人类巨噬细胞功能的理想模型。
本实验旨在通过培养小鼠巨噬细胞并观察其对厌氧菌的吞噬作用，以了解巨噬细胞的基本功能。
材料与方法：1. 材料：- 小鼠巨噬细胞株- 营养物质适配的培养基- 96孔板- 厌氧菌培养物- 杀菌剂- 显微镜2. 方法：1）培养小鼠巨噬细胞：将小鼠巨噬细胞接种在含有营养物质适配的培养基的96孔板中，放置在37C的恒温培养箱中培养至细胞数量达到适当密度。
2）准备厌氧菌培养物：将厌氧菌培养到适当的浓度，用杀菌剂杀死细菌并洗涤，以适当浓度悬浮于无菌PBS中。
3）观察吞噬作用：将适量的小鼠巨噬细胞加入96孔板的每个孔中，再加入适量的厌氧菌悬液。
孔板放置在37C的恒温培养箱中培养一定时间后，取出样品，在显微镜下观察吞噬作用。
结果：在观察过程中，我们发现小鼠巨噬细胞对厌氧菌表现出了明显的吞噬作用。
在将小鼠巨噬细胞与厌氧菌接触后，许多巨噬细胞出现了吞噬现象。
巨噬细胞将厌氧菌囊泡化并向细胞内融合，形成吞噬体。
在吞噬体形成后，巨噬细胞进一步进行吞噬作用，并最终将吞噬的厌氧菌消化。
讨论：巨噬细胞的吞噬作用是通过细胞表面的受体与目标物质结合，并通过胞吞作用将其摄入细胞内。
在本实验中，巨噬细胞通过与厌氧菌表面的分子结合，形成吞噬体。
吞噬体进一步与溶酶体融合，释放酸性溶液，将厌氧菌降解并消化。
小鼠巨噬细胞的吞噬作用是免疫系统抵抗病原体入侵的重要机制之一。
吞噬作用不仅消除了细菌等病原体，还能迅速调动其他免疫细胞参与免疫防御。
此外，巨噬细胞还能产生和释放多种细胞因子，调节和激活其他免疫细胞，如淋巴细胞等。
然而，需要注意的是，吞噬作用可能受到多种因素的影响，如细胞状态、病原体类型和数量等。
在实验中，我们观察到的吞噬作用是基于体外条件下的实验模型，因此无法完全代表体内情况。
小鼠腹腔巨噬细胞吞噬试验
2、菌和细胞在摇床中作用的时间不超过30 min，如果在 37C 条件下作用时间过长，被吞噬的菌很快会被裂解， 也就不能计数为吞噬了菌的细胞。
3、滴片时加入的细胞数依细胞的大小而定，如果使用的 吞噬细胞是细胞系，细胞体积较大，那么加入的细胞 数就相应的少一点。
血球计数板计数法
血球计数板是由一块厚玻片特制而成，其中央有 两个计数室。每个计数室划分出9个大方格（见下图）， 每格面积1mm2，加盖玻片后的深度为0.1mm。因此， 每大方格容积为0.1mm3。
计数时，若细胞位于小方格的线上，应遵循“数上 线不数下线，数左线不数右线”的原则，以减少误差。 计数应重复3次，取其平均值。
数完毕后，依下式计算： 每1mL白细胞悬液细胞数＝（4个中方格细胞总数 /4） ×104× 稀释倍数
每1mL红细胞悬液细胞数＝（80个小方格细胞总数 /80） ×400×104× 稀释倍数
（2）白色念珠菌制备 将白色念珠菌接种于沙氏平皿 培养基中，培养48小时，收集菌，用适量生理盐水 配成悬液，100℃，煮沸30 min灭活，离心去掉上清， 再用1％美兰染色30 min，用生理盐水洗涤二次，用 生理盐水配成1×108／ml菌悬液，4℃冰箱保存备用。
（3）吞噬细胞与菌混合培养 取巨噬细胞0.5ml加白色念珠菌悬液0.5ml，置37℃
实验时眼球放血、断椎处死小鼠，新洁尔灭浸泡5分钟。 剪开腹部皮肤，暴露腹膜，用镊子夹起腹膜剪开一
小口(注意避开血管)，用1640灌注腹腔，收集腹腔液于 试管中(约4 ml)，1500 r/min，离心10 min，去上清， 沉积细胞用1640离洗一次。最后沉积细胞用含10％小 牛血清1640配成适当浓度备用(1-2×106／ml)。
小鼠腹腔巨噬细胞吞噬试验
巨噬细胞原代培养方法步骤
巨噬细胞原代培养方法步骤
1．实验前三天，向每只小鼠腹腔内注入无菌硫羟乙酸肉汤 1ml（勿注
入肠内）。
2．引颈杀死动物，手提鼠尾将全鼠浸入70％酒精中3～5秒。
3．置动物于解剖台上，用针头固定四肢，双手持镊撕开皮肤拉向两侧，暴露出腹膜，但勿伤及腹膜壁。
4．再用70％酒精擦洗腹膜壁后，用注射器吸10ml Eagle液注入腹腔中，同时从两侧用手指揉压腹膜壁，令液体在腹腔内充分流动。
5．用针头轻轻挑起腹壁，使动物体微倾向一侧，使腹腔中液体集于针
头下吸取入针管内。
6．小心拔出针头，把液体注入离心管中，250g ，4℃离心10分钟，去
上清，加10 ml Eagle培养基。
7．计数细胞，每只小鼠可产生20～30×105个细胞细胞，其中90%为巨
噬细胞。
8．为获取3×105个帖附细胞/平方厘米，需接种2.5×106个/ml。
9．为纯化培养细胞，去除其它白细胞，接种数小时后，去除培养液，
用Eagle液冲洗1-2次后，再加新Eagle培养液置37℃ CO2温箱中培养。
五年制免疫实验课 腹腔巨噬细胞吞噬试验
２. ADCC作用杀伤靶细胞。
形态学检测方法 同位素释放法 酶释放法
抗体依赖细胞介导的细胞毒试验（ADCC）
ADCC反应是由多种不同效应细胞群介导的 杀伤性效应机制之一。
NK细胞、巨噬细胞和中性粒细胞具有杀伤作 用。
观察靶细胞被破坏的程度，用来判断它们的 细胞毒性。
补体依赖的细胞毒试验（CDC）
实验原理： 细胞性抗原与特异性抗体(IgG1,2,3或IgM)
用40倍镜查找观察100个巨噬细胞，计数其中未 吞噬鸡红细胞的巨噬细胞数、吞噬了鸡红细胞的巨 噬细胞数及被吞噬的鸡红细胞数，计算吞噬百分率 及吞噬指数。 吞噬百分率: 有吞噬作用的巨噬细胞数／100×100％ 吞噬指数:
有吞噬作用的巨噬细胞吞入的鸡红细胞总数／ 100
抗体依赖细胞介导的细胞毒试验（ADCC） 补体依赖的细胞毒试验（CDC） 细胞介导的细胞毒试验 NK细胞介导的细胞毒试验
生理盐水
1瓶
苦味酸
1瓶
• 器材（每组）
• 1ml注射器
1个
• 玻片（载玻片/盖玻片） 4片
• 1ml微量加样器
1支
• 200ul微量加样器 1支
• tips
若干
• 1.5mlEP管
2个Biblioteka • 剪刀、镊子1套
• 显微镜 • 温箱
1. 实验前2天，给小鼠腹腔注射5％淀粉溶液１ml（已完成）。 2. 用1毫升注射器给小鼠腹腔注射3％鸡红细胞悬液0.5ml，用
若干
• 剪刀、镊子、解剖盘 1套
• 显微镜
小鼠腹腔巨噬细胞的分离与培养
小鼠腹腔巨噬细胞的分离与培养一、引言巨噬细胞是一种重要的免疫细胞，可以通过吞噬微生物、吸收细胞碎片等功能来保护机体免受外来侵害。
近年来越来越多的研究者将目光投向了巨噬细胞的研究领域，例如探究其功能调控、对特定疾病的影响等。
因此，了解如何分离和培养小鼠腹腔巨噬细胞是非常重要的。
二、实验材料1.小鼠（BALB/c或C57BL/6等品系）2.70%乙醇3.磷酸盐缓冲液（PBS）4.腺苷酸二钠（ADT）5.玻璃钝刀6.吹瓶（20ml）7.离心管（50ml）8.腹腔灌注针头9.离心机10.培养皿11.消化液（十氟化十六烷、胰酶混合液等）12.FBS（fetal bovine serum）13.RPMI-1640培养基14.静菌枪、离心管、显微镜等三、实验步骤1.准备工作选用2~3个月龄（约20g体重），性别未限制的小鼠，放至3-4人一笼中，在恒定温度（22-24℃）、湿度（40-60%）下，24小时自由进食饮水，减轻其压力。
实验前，将所需物品全部准备好，消毒好所需器材。
消毒方式可以选择用70%的乙醇喷震或者紫外线照射15min等方式进行消毒，确保实验平凡洁净。
2.腹腔巨噬细胞的分离（1）小鼠腹腔巨噬细胞的处理将麻醉过的小鼠放于消毒好的操作台上，用70%乙醇消毒好腹部，剖开腹腔，将肝、脾、小肠等剔除，留下含有腹腔巨噬细胞（PC）的腹腔。
用离心管接住腹腔内的生理盐水，加1mM ADT处理吸入至腹腔中，轻摇腹腔5分钟，将其取出至消化液中，消化液中加入0.2%的凯西酶和50ug/mL的DNA酶，然后用13g钩头灌注针将其搅拌并吸入管内灌注30分钟，在摇床上50转/分钟恒温摇晃1h。
将腹腔液收集到离心管内离心，离心350g 20分钟，去除上清流体，重悬沉淀细胞于PBS液中。
（2）巨噬细胞的筛选将离心沉淀细胞的上清液放在吹瓶中，吹出细胞液，离心25min后，去掉上清，用PBS液中悬浮细胞过滤到细胞培养皿70%PMI-1640中化为单细胞。
小鼠腹腔巨噬细胞和肾脏细胞的原代培养2013
细胞工程综合实验报告小鼠腹腔巨噬细胞和肾脏细胞的原代培养班级 xxxx姓名 xxxx学号 xxxxxxxxxx指导教师 xxxx实验时间 xxxx成绩小鼠腹腔巨噬细胞和肾脏细胞的原代培养姓名学号班级一、实验目的1.了解细胞原代培养培养的基本方法和操作过程。
2.初步掌握培养过程中的无菌技术。
3.了解在相差显微镜下观察培养细胞的形态和生长状况。
二、实验原理原代细胞培养是指直接从动物体内获取的细胞、组织和器官，经体外培养后，直到第一次传代为止。
这种培养，首先用无菌操作的方法，从动物体内取出所需的组织（或器官），经消化，分解成单个游离细胞，在人工培养下，使其不断的生长及繁殖。
细胞培养是一种操作繁琐而又要求十分严谨的实验技术。
要使细胞能在体外长期生长，必须满足两个基本要求：一是供给细胞存活所必须的条件，如适量的水、无机盐、氨基酸、维生素、葡萄糖及其有关的生长因子、氧气、适宜的温度，注意外环境酸碱度与渗透压的调节。
二是严格控制无菌条件。
巨噬细胞属天然免疫细胞，具有趋化运动、吞噬、分泌和参与免疫调节等功能，是科学工作者研究细胞吞噬、细胞免疫和分子免疫学的重要对象。
巨噬细胞容易获得，便于培养，并可进行纯化。
巨噬细胞属不繁殖细胞群，在条件适宜下可生活2－3周多用做原代培养，不易长期生存。
巨噬细胞也建有无限细胞系，大多来自小鼠，如P331、S774A.1、RAW309Cr.l等，均获恶性，培养中呈巨噬细胞形态和吞噬功能，易于传代和瓶壁分离，但难以建株。
目前，单核巨噬细胞株也有，比如RAW264.7，但价格比较贵，且保存也不方便。
培养巨噬细胞可用各样方法和各种来源来获取细胞，目前以小鼠腹腔取材法最为实用，而目前获取小鼠巨噬细胞的方法有两种，一种是直接用培养液灌洗实验动物腹腔，从腹腔灌洗液中分离巨噬细胞，还有一种方法向动物腹腔中注射刺激物（如牛血清，淀粉，糖原，脂多糖，矿物油，PRMI1640培养液等），这样使机体产生大量巨噬细胞后再腹腔灌洗，但由于许多刺激物能激活巨噬细胞，而被激活的巨噬细胞大量吞噬刺激物，有此得到的巨噬细胞培养用于培养时，细胞中的刺激物不能很快被消化而残留在细胞中，影响细胞代谢，同时也不能很好的模拟体内环境，所以我们直接用培养液灌洗实验动物腹腔，从腹腔灌洗液中分离巨噬细胞。
小鼠腹腔巨噬细胞吞噬试验
剪开腹部皮肤，暴露腹膜，用镊子夹起腹膜剪
开一小口(注意避开血管)，用1640灌注腹腔，收集腹
腔液于试管中(约4 ml)，1500 r/min，离心10 min，
去上清，沉积细胞用1640离洗一次。最后沉积细胞
用含10％小牛血清1640配成适当浓度备用(1-2×106
／ml)。
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（2）白色念珠菌制备 将白色念珠菌接种于沙氏平 皿培养基中，培养48小时，收集菌，用适量生理 盐水配成悬液，100℃，煮沸30 min灭活，离心去 掉上清，再用1％美兰染色30 min，用生理盐水洗 涤二次，用生理盐水配成1×108／ml菌悬液，4℃ 冰箱保存备用。
四角的大方格，又分为16个中方格，适用于 白细胞计数。中央大方格以双线等分为25个中方格。 每个中方格又分16个小方格，通常我们取四角的4个 中方格和中间的1个中方格来计数红细胞。
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首先用吸管吸取少许稀释后的单细胞悬液，从 盖片端滴一小滴（不宜过多），液体自行向内渗入， 静置数分钟后，再放在微镜下观察计数。
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3、滴片时加入的细胞数依细胞的大小而定，如果使 用的吞噬细胞是细胞系，细胞体积较大，那么加入 的细胞数就相应的少一点。
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血球计数板计数法
血球计数板是由一块厚玻片特制而成，其中 央有两个计数室。每个计数室划分出9个大方格（见 下图），每格面积1mm2，加盖玻片后的深度为 0.1mm。因此，每大方格容积为0.1mm3。
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（3）吞噬细胞与菌混合培养 取巨噬细胞0.5ml加白色念珠菌悬液0.5ml，置
小鼠腹腔巨噬细胞准备
peritoneal macrophage cell preparation1.小鼠颈椎脱臼处死，75%酒精浸泡3分钟，取出小鼠，置于无菌纸上，腹面朝上；2.用镊子提起小鼠下腹部皮肤，剪开一小口，撕开皮肤，完全暴露腹膜；3. 10ml注射器装上大号针头，注入6 ml Hanks液或PBS，用镊子提起腹膜，向腹腔中注入Hanks液，针尖朝上，避开肠和脂肪，回抽腹腔液，不同方向冲洗数次，吸出腹腔液；4.细胞悬液离心200×g10分钟，用Hanks液洗一次，用RPMI1640－5%小牛血清悬起细胞，2×106细胞/ ml.5.细胞悬液置入培养瓶，37度培养2小时后，吸弃上清，用预热培养基洗二次，留下贴壁细胞；6.含10 mM EDTA的PBS加入培养瓶，覆盖细胞，37度孵育20分钟，用吸管用力吹打下细胞，或用橡皮擦帚轻轻刮下细胞，即为腹腔巨噬细胞，纯度一般大于90%，每只小鼠平均可得2×106腹腔巨噬细胞。
注:1.雌性小鼠6-8周最适用。
雄性小鼠肠壁脂肪多。
不利于腹腔液收集；2.在冲洗过程中应小心，以免刺破血管或肠壁，血液流入腹腔液；3.吸出的腹腔液应洗后再贴壁，否则有血浆膜形成，影响贴壁；4.贴壁巨噬细胞分离有较多方法，如利多卡因孵育，但大多不理想，故细胞分离后应用台盼兰染色检测活力；5.橡皮擦帚可自制，用自行车气门芯上的橡皮管套在预先折弯的滴管尖头上，灭菌后使用，较为实用；6.炎性巨噬细胞的制备可用3%的脱水硫羟乙酸培养基2ml，注入小鼠腹腔，4天后同法集腹腔细胞，每只小鼠腹腔细胞产量可以增加到3×107细胞左右。
需指出的是炎性巨噬细胞的功能活性与正常腹腔巨噬细胞有很大差异。
小鼠腹腔巨噬细胞提取的经验方法总结如下：第一：用刺激物质的方法，一般都是在实验前三天腹腔注射3%巯基乙醇酸钠（应该现配现用，否则效果较差）每只2ML。
实验当天将小鼠断头处死，置于1%的新洁尔灭或者75%的乙醇溶液中浸泡2—3MIN，消毒皮肤。
小鼠腹腔巨噬细胞的分离与培养
·６３８·现代生物医学进展删．ｂｉｏｍｅｄ．ｎｅｔ．ｃａＰｒｏｇｒｅｓｓｉｎＭｏｄｅｒｎＢｉｏｍｅｍｃｉＩＩｅ２００８Ｖ０１．８Ｎｏ．４小鼠腹腔巨噬细胞的分离与培养李海涛１肖丹２屈学民１刘渊声１马长升１杨继庆１（１第四军医大学生物医学工程系陕西西安７１００３２；２第四军医大学军事预防医学系陕西西安７１００３２）摘要目的：建立一种小鼠腹腔巨噬细胞分离的简便方法，为低强度激光照射对巨噬细胞功能的影响研究提供实验细胞。
方法：以无血清的ＲＰＭＩ．１６４０培养液灌洗小鼠腹腔，分离获取小鼠腹腔巨噬细胞，在含１０％小牛血清的ＲＰＭＩ．１６４０培养液中培养。
采用倒置显微镜观察细胞形态，台盼蓝染色计算存活率，瑞氏染色计算纯度。
结果：获得高纯度的巨噬细胞，具备巨噬细胞的形态特征。
结论：本法是一种简便实用的分离小鼠腹腔巨噬细胞的方法。
关键词：小鼠；巨噬细胞；分离中图分类号：Ｑ８１３文献标识码：Ａ文章编号：１６７３—６２７３【２００８１０４—０６３８—０２ＳｅｐａｒａｔｉｏｎａｎｄＣｕｌｔｉｖａｔｉｏｎｏｆＭｏｕｓｅＰｅｒｉｔｏｎｅａｌＭａｃｒｏｐｈａｇｅｓＬＩＨａｉ－ｔａｏ，ＸＩＡＯＤａｎ，ＱＵＸｕｅ－ｍｉｎ，ＬＩＵＹｕａｎ－ｓｈｅｎｇ，ＭＡＣｈａｎｇ－ｓｈｅｎｇ，ＹＡＮＧＪｉ－ｑｉｎｇ（１ＤｅｐａｒｔｍｅｎｔｏｆＢｉｏｍｅｄｉｃａｌＥｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，ｔｈｅＦｏｕｒｔｈＭｉｌｉｔａｒｙＭｅｄｉｃａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｘｉ＇ａｎ７１００３２，Ｃｈｉｎａ；２ＤｉｖｉｓｉｏｎｏｆＰｒｅｖｅｎｔｌ＂ｖｅＭｅｄｉｃｉｎｅ，ｔｈｅＦｏｕｒｔｈＭｉｌｉｔａｒｙＭｅｄｉｃａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，尉，翩７１００３２，Ｃｈｉｎａ）ＡＢＳｌｌＲＡＣＴＯｂｊｅｃｔｉｖｅ：Ｔｏｅｓｔａｂｌｉｓｈｃｏｎｖｅｎｉｅｎｔｍｅｔｈｏｄｏｆｓｅｐａｒａｔｉｏｎａｎｄｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎｏｆｍｏｕｓｅｐｅｒｉｔｏｎｅａｌｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓａｎｄｔｏｐｒｏｖｉｄｅｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｃｅｌｌｓｆｏｒｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｎｇｔｈｅｅｆｆｅｃｔｏｆｌｏｗ－ｅｎｅｒｇｙｌａｓｅｒｉｒｒａｄｉａｔｉｏｎｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓ．Ｍｅｔｈｏｄｓ：Ａｍｏｕｓｅ’ＳｐｅｒｉｔｏｎｅａｌｃａｖｉｔｙｗａｓｄｏｕｃｈｅｄｂｙｕｓｉｎｇＲＰＭＩ一１６４０ｍｅｄｉｕｍｗｉｔｈｏｕｔＦＣＳ，ａｎｄｔｈｅｍｏｕｓｅ’Ｓｐｅｒｉｔｏｎｅａｌｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓｗｅｒｅｓｅｐａｒａｔｅｄａｎｄｏｂｔａｉｎｅｄ，ｂｅｉｎｇｃｕｌｔｕｒｅｄｉｎＲＰＭＩ一１６４０ｍｅｄｉｕｍｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ１０％ＦＣＳ．ＴｈｅｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙｏｆｔｈｅｃｅｌｌｓＷａｓｏｂｓｅｒｖｅｄｕｎｄｅｒｉｎｖｅｒｔｅｄｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ，ｔｈｅｓｕｒｖｉｖａｌｒａｔｅｏｆｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓＷａｓｃａｌｃｕｌａｔｅｄｗｉｔｈｔｒｙｐａｎｂｌｕｅｓｔａｉｎ．ＴｈｅｐｕｒｉｔｙｏｆｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓｗａｓａｎａｌｙｚｅｄｂｙＷｒｉｇｈｔ’Ｓｓｔａｉｎｉｎｇ．Ｒｅｓｕｌｔｓ：Ｔｈｅｈｉｇｈｌｙｐｕｒｉｆｉｅｄｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓｈａｄｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓｏｆｔｈｅｍａｃｒｏｐｈａｇｅｉｎｏｒｇａｎｉｓｍ．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ：Ｔｈｉｓｍｅｔｈｏｄｂｅｕｓｅｄｆｏｒｔｈｅｓｅｐａｒａｔｉｏｎｏｆｍｏｕｓｅｐｅｒｉｔｏｎｅａｌｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓ，ｗｈｉｃｈｉｓｓｉｍｐｌｅａｎｄｅａｓｙｔｏａｐｐｌｙ．Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：Ｍｏｕｓｅ；Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ；ＳｅｐａｒａｔｉｏｎＣｈｉｎｅ∞ＬｉｂｒａｒｙＣｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ：Ｑ８１３Ｄｏｃｕｍｅｎｔｃｏｄｅ：ＡＡｒｔｉｃｌｅＩＤ：１６７３－６２７３（２００８）０４－０６３８－０２前言巨噬细胞是机体的重要防御细胞，在抗感染、抗肿瘤及免疫调节中起着非常重要的作用。
小鼠腹腔巨噬细胞吞噬实验报告
小鼠腹腔巨噬细胞吞噬实验报告
实验目的：
本实验的主要目的是观察小鼠腹腔巨噬细胞对胶体金颗粒的吞噬作用并初步探究巨噬细胞的吞噬过程及机制。
实验材料：
1. 胶体金溶液；
2. 无菌生理盐水；
3. 酶消化试剂；
5. 显微镜和激光共聚焦显微镜。
实验步骤：
1. 将腹腔巨噬细胞准备好，收集细胞的方法可以在Gibco™血清教育中心找到。
2. 将100微升的胶体金颗粒溶液加入小鼠巨噬细胞的培养基中。
3. 将培养基加入培养箱中，并调节适当的条件，使细胞生长。
4. 观察并拍摄巨噬细胞吞噬胶体金颗粒的过程。
5. 经过一段时间后，将巨噬细胞用生理盐水洗涤几次，以去除吞噬的颗粒和其他杂质。
6. 对巨噬细胞进行显微镜观察，并用激光共聚焦显微镜观察细胞的粒饱和度，探究吞噬过程中的机制。
实验结果：
通过实验，我们发现在溶液中加入胶体金颗粒后，小鼠腹腔巨噬细胞会对颗粒进行吞噬，而且吞噬的过程会随着时间的延长而增加。
在观察吞噬过程时，我们发现颗粒先进入到巨噬细胞的液泡内，液泡随后与溶质相合并，颗粒进入到细胞内部。
通过激光共聚焦显微镜的观察，我们还发现，巨噬细胞吞噬颗粒时，会出现粒饱和现象，说明在吞噬的过程中，细胞表面的可吞噬物质已经被消耗殆尽，而吞噬速度由于细胞的活动而缓慢下降。
结论：
细胞吞噬是一种重要的细胞生理过程，对于身体的免疫防御系统具有重要意义。
而小鼠腹腔巨噬细胞具有良好的吞噬能力，对于异物、死亡细胞和各种病原体的清除起到了重要作用。
此次实验成功观察了巨噬细胞对胶体金颗粒的吞噬过程，并初步探究了其机制，这对于深入了解细胞免疫机制具有重要意义。
小鼠腹腔巨噬细胞吞噬实验报告
小鼠腹腔巨噬细胞吞噬实验报告一、实验目的本实验旨在研究小鼠腹腔巨噬细胞的吞噬功能，通过观察巨噬细胞对特定颗粒物质的吞噬过程，了解巨噬细胞在免疫防御中的作用机制，为进一步研究免疫系统的功能和相关疾病的发生发展提供实验依据。
二、实验原理巨噬细胞是机体免疫系统中的重要细胞成分，具有强大的吞噬能力。
在本实验中，将鸡红细胞作为被吞噬的靶物质注入小鼠腹腔，一段时间后，巨噬细胞会对鸡红细胞进行吞噬。
通过涂片、染色等处理，可以在显微镜下观察到巨噬细胞吞噬鸡红细胞的现象，并计算吞噬百分率和吞噬指数，以评估巨噬细胞的吞噬功能。
三、实验材料与方法（一）实验材料1、实验动物：健康昆明小鼠，体重 18 22 g。
2、试剂：生理盐水、6%淀粉肉汤、鸡红细胞悬液、瑞氏染液等。
3、器材：注射器、显微镜、载玻片、盖玻片、离心机等。
（二）实验方法1、小鼠腹腔注射 6%淀粉肉汤 1 ml，诱导腹腔巨噬细胞产生。
2、三天后，给小鼠腹腔注射鸡红细胞悬液 1 ml。
3、注射 30 分钟后，将小鼠断颈处死，腹腔注入生理盐水 2 ml，轻揉腹部，然后抽取腹腔液。
4、抽取的腹腔液以 1000 rpm 离心 5 分钟，弃上清，留沉淀。
5、沉淀用生理盐水重悬，制成细胞涂片。
6、涂片自然干燥后，用瑞氏染液染色。
7、油镜下观察巨噬细胞吞噬鸡红细胞的情况，并计数。
四、实验结果（一）巨噬细胞形态观察在油镜下，巨噬细胞体积较大，形态不规则，胞浆丰富，常含有吞噬的颗粒物质。
未吞噬鸡红细胞的巨噬细胞胞浆呈淡蓝色，细胞核呈紫红色，形状多样。
（二）吞噬现象观察可以观察到巨噬细胞吞噬鸡红细胞的不同阶段，有的巨噬细胞胞浆内含有 1 2 个鸡红细胞，有的则含有多个。
被吞噬的鸡红细胞形态完整，部分已被消化。
（三）吞噬百分率和吞噬指数计算随机观察 200 个巨噬细胞，计算其中吞噬鸡红细胞的巨噬细胞数，得出吞噬百分率。
同时，计算每个巨噬细胞吞噬鸡红细胞的平均数，即为吞噬指数。
本次实验中，吞噬百分率为____%，吞噬指数为____。
小鼠巨噬细胞功能测定
（1） 器具：注射器、离心管、载玻片、平皿、烧 杯、橡皮乳头、解剖剪和镊子、解剖盘。
（2） 材料：无菌生理盐水、Hank’s液、6%淀粉 肉汤液、瑞氏染色液、 1%鸡红细胞悬液、 小鼠。
4.实验方法（小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能体内测定法）
（1）实验前3d，给小鼠腹腔内注射无菌6%淀粉肉汤液1ml。 （2）实验当天，给小鼠腹腔注射1％的鸡红细胞悬液1ml ，轻
（7）结果判断：高倍镜/油镜下镜检。镜下可见巨噬细胞 核呈蓝色，被吞噬的鸡红细胞呈椭圆形，其胞浆Байду номын сангаас红色而核
被染成蓝色。计数巨噬细胞吞噬鸡红细胞情况，计算吞噬百 分率和吞噬指数。
①吞噬百分率：即100个巨噬细胞中吞噬有鸡红细胞的 巨噬细胞数。
②吞噬指数：将100个巨噬细胞中所吞噬的鸡红细胞 总数除以100即得吞噬指数，即平均每个巨噬细胞吞噬的鸡 红细胞数。
未被吞噬的鸡红细胞
吞噬了鸡红细胞 的巨噬细胞
5.注意事项
（1）涂片的薄厚要适当，否则影响计数。 （2）小鼠腹腔注射时不要刺伤内脏。 （3）如小鼠腹腔液过少，可腹腔注入适量Hank’s液揉动
后再取。 （4）剪开小鼠腹腔时应避免出血，否则将影响试验结果。 （5）被吞噬的鸡红细胞时间过长可被消化，时间过短未
被吞噬，必须掌握好吞噬作用时间。
揉腹部使鸡细胞分散，令其活动20~30min。 （3）然后颈椎脱臼处死小鼠，仰卧固定。常规消毒腹部皮肤，
左手持镊提起腹中部皮肤。右手用剪子剪长5mm的小口， 从剪口处朝头、尾部用力，撕开皮肤，暴露腹壁。
（5）提起腹前壁，避开血管剪一小口，用毛细吸管吹吸 混匀腹腔内液体，并收集于试管内。
（6）在干净的载玻片上滴加一滴腹腔液制作涂片 。待涂 片晾干后，瑞氏染液染色5min。
小鼠腹腔巨噬细胞收集及形态观察
小鼠腹腔巨噬细胞收集及形态观察引言：巨噬细胞是免疫系统中的重要成员，能够吞噬和分解各种病原体，清除损伤组织，参与炎症反应等。
研究巨噬细胞的形态和功能对于了解它们的生物学特性以及炎症反应等方面具有重要意义。
本实验旨在收集小鼠腹腔巨噬细胞并观察它们的形态特征。
材料与方法：1.小鼠2.工作台、显微镜、离心管3.生理盐水、PBS、各种培养基4.细胞培养试剂：DMEM培养基、FBS、青霉素/链霉素溶液5.腹腔巨噬细胞培养培养基：RPMI1640培养基、FBS、巨噬细胞集落刺激因子（M-CSF）步骤：1.准备培养基：将适量的DMEM培养基倒入离心管中，添加相应比例的FBS和青霉素/链霉素溶液，配置成完整的培养基。
2.预备小鼠：将小鼠按照实验需要进行麻醉。
3.收集巨噬细胞：在小鼠的腹腔注射适量的生理盐水，轻轻按摩腹部，使细胞悬浮在生理盐水中。
4.过滤：将悬浮液通过过滤网过滤，以去除大部分红细胞和细胞碎片。
5.离心：将过滤后的悬浮液离心10分钟，以沉淀巨噬细胞。
6.培养：将离心沉淀中的巨噬细胞重新悬浮在腹腔巨噬细胞培养基中，将细胞转移至培养皿中，放置于培养箱中，37℃、5%CO2梯度培养。
7.形态观察：将巨噬细胞转移至载玻片上，使用显微镜观察其形态特征。
结果：收集的巨噬细胞呈现典型的悬浮生长，细胞核呈圆形或椭圆形，胞质丰富，颗粒较少，呈现相对均匀的染色。
巨噬细胞的大小约为10-30μm。
讨论：巨噬细胞是免疫系统中的重要成员，在免疫防御作用中扮演着关键角色。
通过本实验，我们成功地收集了小鼠腹腔巨噬细胞，并对其进行了形态观察。
巨噬细胞细胞核呈圆形或椭圆形，胞质丰富，颗粒较少，这与其吞噬和分解病原体的功能密切相关，说明巨噬细胞的形态结构与其功能密切相关。
总结：本实验收集了小鼠腹腔巨噬细胞并观察了其形态特征。
巨噬细胞是免疫系统中的重要组成部分，了解其形态特征以及功能对于进一步研究免疫调节以及炎症反应等方面具有重要意义。
小鼠巨噬细胞试验
一、小鼠巨噬细胞分离培养小鼠脱颈处死，浸入75%酒精中5min后，于腹中线处剪开皮肤，暴露腹壁肌肉，用酒精消毒腹膜壁，用无菌注射器将PBS或无血清DMEM培养液5ml 注入腹腔，仰卧平放并轻柔小鼠腹部2~3min，静置5min后，使动物体倾向一侧，用注射器抽取腹腔液约4~4.5ml，1500rpm离心8min，去上清，用含10%小牛血清的DMEM培养液进行细胞计数，调整细胞浓度为lx10∧6个/ml(取出一滴细胞悬液经台盼蓝染色，细胞存活率大于99%)，5ml/瓶接种于25cm2的培养瓶中，置于37℃，5%CO2培养箱中培养，2-3小时后更换培养液除去未贴壁细胞，贴壁细胞则为腹腔巨噬细胞。
注：巨噬细胞不增殖，不传代，能培养存活2-3周，细胞形态基本不变，细胞贴壁成不规则形状。
二、细胞计数1.制备细胞悬浮液，用DMEM培养基进行计数2.准备记数板：用蒸馏水冲洗，擦镜纸擦拭，再用酒精擦净，2-3次3.加样4.计数：用台盼蓝染色计数。
细胞悬液细胞数/ml=4个大方格总数/4×10∧4，如计算前已稀释再乘稀释倍数三、药物配制将挥发油配成64mg/ml母液，用DMSO助溶，用无血清DMEM培养液稀释，使其终浓度为3.2、1.6、0.8、0.4、0.2、0.1、0.05、0.025、0.0125、0.00625mg/ml。
四、挥发油对细胞毒性检测将浓度为1×10∧6个/ml的细胞悬液1ml/孔接种于16孔板中，置培养箱中培养，24h后加入不同浓度的挥发油，同时设DMSO对照、空白对照及空白调零孔。
培养24h后弃培养液，每孔加入ml无血清培养液和20ulMTT(5mg/ml)液，继续培养4h，然后弃培养液每孔加入 150ulDMSO，微量振荡器振荡10min后，采用酶标仪测定其在570nm波长的吸光度(A值)，并用下列公式计算细胞的存活率:药物组A值均数细胞存活率(%)= x100空白组A值均数五、细胞炎症模型建立为建立体外细胞炎症模型，确定后续实验中LPS刺激巨噬细胞的时间和浓度，对LPs刺激巨噬细胞的时效与量效关系进行了研究。
操作规程——小鼠腹腔巨噬细胞收集
操作规程——一、目的小鼠是流感病毒研究常用的动物模型。
巨噬细胞是机体重要的免疫细胞。
收集小鼠腹腔巨噬细胞，以进行后继实验，是动物实验操作的基本方法。
本规程为规范实验操作、保证样本质量、操作安全而制定。
二、范围适用于中国国家流感中心所有技术人员进行小鼠腹腔巨噬细胞收集。
三、程序（一）生物安全要求根据所使用病毒的生物安全条件在ABSL-2、ABSL-3或ABSL-4级实验室条件下操作。
（二）材料1．0.5M EDTA：Gibco（Cat.15575-027）。
2．RPMI1640：Gibco（Cat.11875-036）。
3．FBS：Gibco（Cat.10091-148）。
4．无菌细菌平皿：BD Falcon（Cat.351007）。
5．0.05%结晶紫：乙酸2mL，结晶紫0.05g，去离子水定容至100mL。
（三）实验步骤1．将小鼠以颈椎脱臼法处死，仰卧，固定四肢。
2．依次用碘酒、75%酒精消毒腹部，以镊子提取腹壁，剪去一小块皮肤，继以镊子提取腹腔。
剪一小口，以吸管注入少量冷RPMI1640培养液+EDTA（50mM）吸出，反复冲洗后再吸出，吸管在腹腔内各个位置吸取液体，冲洗每只小鼠腹腔约共5mL，整个过程不超过30min。
3．1500rpm 10min，收集细胞，用冷PBS洗一次，20μL重悬细胞加入20μL0.05%结晶紫计数。
4．1500rpm 10min，重悬细胞于RPMI1640+20%FBS（4×106/mL），接种于无菌平皿内，37℃，5%CO2孵育90min。
5．轻轻吸去未贴壁细胞，用预热PBS洗涤2次。
6．加RPMI1640+20%FBS 8 mL/无菌平皿，37℃，5%CO2孵育过夜。
7．移去上清，加入冷3 mL RPMI1640培养液+EDTA（25mM），将细胞平皿置于冰上10min。
8．用细胞刮子刮下细胞，整个过程不超过30min。
9．1500rpm 10min，收集细胞，计数。
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小鼠腹腔巨噬细胞原代培养实验具体步骤及方法巨噬细胞属免疫细胞，有多种功能，是研究细胞吞噬、细胞免疫和分子免疫学的重要对象。
巨噬细胞容易获得，便于培养，并可进行纯化。
巨噬细胞属不繁殖细胞群，在条件适宜下可生活2－3周，多用做原代培养，难以长期生存。
步骤
一、实验材料准备
1. 动物：各个品系的小鼠2-4只。
2. 试剂：RPMI1640培养基(含酚红)，小牛血清，双抗，培养液(10%小牛血清、RPMI1640、双抗)，台盼兰等。
碘酒绵球和酒精绵球。
3. 器械：一次性注射器、手术器械。
二、实验方法
如果采用刺激物，则可在实验前三天腹腔注射3%巯基乙醇酸钠每只2 mL，获得的巨噬细胞数要多一些。
不采用刺激物，直接开始下面的步骤。
1. 拉颈处死小鼠，在75%酒精浸泡1-2分钟，移入超净台中，仰卧位固定于解剖板上，碘酒消毒腹部皮肤，酒精绵球脱碘。
用手术直剪充分剪开腹部皮肤，暴露腹部肌层，再用
酒精绵球消毒腹部肌层。
2. 用注射器抽取5 mL含双抗的RPMI1640培养基注入腹腔，用绵球轻揉腹部1-2 min，然后，用眼科镊稍提起腹腔，并用眼科剪剪开一个小口，用吸管吸取细胞悬液，移入离心管中(个人认为，此法比用注射器抽吸好一些)。
3. 1 000 rpm离心5 min后，用含双抗的RPMI1640培养基洗涤一次，再次离心，重悬细胞于含10%小牛血清的RPMI1640培养液中，如果是作为饲养细胞使用，则选择相应的培养液。
台盼蓝拒染法计数，将细胞稀释到目的浓度后，接种即可。
4. 如果是作为饲养细胞使用，调整浓度至2x105个/mL，接种到96孔板中，每孔100-200 uL；如果作为其它实验使用，可以调整成2x106/mL，加到24孔平底培养板中，1 mL/孔；5% CO2温箱孵育2 h后，换液，并用RPMI1640培养基洗1-2次，弃去未粘附细胞，贴壁细胞为单层的巨噬细胞。
三、结果
巨噬细胞刚贴壁时偏圆形，或者类似鹅卵石形状，然后慢慢伸出伪足，铺开呈三角形或多角形。
巨噬细胞有吞噬的特性，当与细菌混合在一起的时候，在40倍物镜下可以看到巨噬细胞吞噬细菌，因此，巨噬细胞作为饲养细胞可以清除部分污染的细菌、支原体和部分细胞碎片。
注意
1. 巨噬细胞是终末分化细胞，不会增殖。
2. 很难消化下来，所以接种的时候，必须直接接种到目的培养器皿中。
3. 严格无菌操作，在超净台内进行。
4. 为避免交叉感染，每一只小鼠更换注射器。
5. 吸管吸取细胞悬液的时候，尽量不要吸到大小肠，否则容易引起成纤维细胞污染。
巨噬细胞刚贴壁时偏圆形，或者类似鹅卵石形状，然后慢慢伸出伪足，铺开呈三角形或多角形。
巨噬细胞有吞噬的特性，当与细菌混合在一起的时候，在40倍物镜下可以看到巨噬细胞吞噬细菌，因此，巨噬细胞作为饲养细胞可以清除部分污染的细菌、支原体和部分细胞碎片。