最新芳香脂肪族共聚酯的制备和表征精编版

2020年芳香脂肪族共聚酯的制备和表征精编版基于对苯二甲酸双酚A酯，对苯二甲酸己二醇酯，乳酸基的芳香/脂肪族共聚酯的制备和表征摘要：为获得在组织工程方面具有潜在价值并且具有可加工性的高分子聚酯，以对苯二甲酰氯、双酚A、1，6-己二醇及乳酸低聚物为原料，采用直接缩聚方法合成一系列具有生物可降解性的脂肪族/芳香族聚酯-PBHTL。

最终得到的聚酯PBHTL采用1H NMR、GPC、DSC、TG、WAXS方法进行表征，得Tg和Td。

PBHTL聚酯呈现两段热分解，分别对应聚酯中BAT段，HT段以及乳酸段。

由于聚酯链段中嵌有脂肪族柔性链段，因此PBHTL聚酯具有较低的玻璃化转变温度Tg，同时，在生理条件下随着乳酸基和己二醇基的增加，聚酯的水降解性增强。

通过生物植入实验及微观现象的初步试验表明该聚酯具有良好的生物相容性。

关键词：共聚酯、生物降解、乳酸、芳香族、脂肪族1、引言芳香族聚酯是具有良好物理性能的材料。

这类聚酯具有较强的抗水解性，耐细菌和真菌侵蚀，及良好的环境耐候性。

与此相反，大多数合成的生物可降解高分子为脂肪族类聚酯，如聚己内酯、聚乳酸、聚羟基丁酸酯、聚琥珀酸丁二醇酯。

遗憾的是，由于脂肪族聚酯的高成本，低物理和机械性能，使其在工业和农业领域的应用受到极大的限制。

曾试图采用共混和共聚技术获得性能提高的生物可降解聚合物。

然而，一般的脂肪族聚酯的机械力学性能及熔融温度相对较低。

很长一段时间，人们试想将芳香族和脂肪族单元结合在同一聚酯链中，这是一种很具有吸引力获得生物降解性和高性能新产品的方法。

一些研究表明，当与脂肪族聚酯共聚时，这些芳香族聚酯具有可降解性。

为了获得性能优良且可降解性的廉价生物可降解型聚酯，共聚酯中包含脂肪族和芳香族单元成为研究目标。

各种各样的无规共聚物采用熔融聚合方法制得，该共聚物由对苯二甲酸和一些脂肪二酸，二醇混合构成，他们的结构和性能被详细的检测。

一种新型的生物可降解聚酯已经被制备，拉伸性能和弹性都有所提高。

共聚物的韧性和断裂应变随着组成中聚四亚甲基醚含量的增长而增加。

生物可降解聚醚酯以对苯二甲酸，1，4-丁二醇，等为原料，采用Ti(OC4H9)4作为催化剂被合成。

巴斯夫公司已经商品化一种新的生物降解型聚酯，Ecoflex，由一些聚酯单元组成，其中包含1，4-丁二醇，二元酸（己二酸）和对苯二甲酸。

此外，对现有的均聚聚酯进行反应性共混，被证明是一种成功且廉价的方法，生产具有两者性能的脂肪族、芳香族聚酯。

事实上，这项技术已经应用在聚（1，4-丁二酸丁二醇酯）/聚（1，4-对苯二甲酸丁二醇酯），聚（1，4-丁二醇己二酸-丁二酸）/聚（1，4-对苯二甲酸丁二醇酯）和聚（1，4-丁二醇戊二酸-己二酸-丁二酸酯）/聚（1，4-对苯二甲酸丁二醇酯）共聚酯。

聚对苯二甲酸丁二醇酯/聚己内酯的制备是将聚对苯二甲酸丁二醇酯和聚己内酯共混后，在257℃条件下进行酯交换。

共聚物PBEST是由丁二酸丁二醇酯，丁二酸乙二醇酯，对苯二甲酸乙二醇酯预聚物为原料，采用直接缩合法制备的。

聚己内酯/聚对苯二甲酸乙二醇酯，聚丁二酸酐环氧乙烷/聚对苯二甲酸乙二醇酯，聚己二酸乙二醇酯/聚对苯二甲酸乙二醇酯和聚对苯二甲酸乙二醇酯/聚（丁二酸1，4-丁二醇酯）的共聚酯已经有所报道。

目前，这些共聚酯已经用已有的均聚物采用熔融共混酯交换的方法制备而成。

目前，应用于生物医学方面的生物可降解脂肪族/芳香族多单元共聚酯引起很大的兴趣。

在过去的十年中，有PEGT/PBT共混而成的共聚酯作为组织工程和药物传递系统材料被广泛研究。

为了提高芳香族聚酯的可降解性，部分或全部采用脂肪族替代芳香族的方法正被开发。

酚类衍生物的脂肪酸被认为是合成高力学性能的生物可降解/生物高分子的一个重要的策略。

羟苯基脂肪酸的共聚酯如3-（4-羟基苯基）乙酸和3-（4-羟基苯基）丙酸与4-羟基苯甲酸是无毒，在动植物体内。

由双酚A，Greiner等与对苯二甲酰氯和乳酸共聚合得到的聚酯的一个重要研究部分，聚合，性能和体外分解等被报道。

本文侧重于一种新型共聚酯（PBHTL）的合成，分子结构以及性能，在无催化剂条件下，以TPC，BPA，HDO，PLA为原料，采用直接缩聚和原位酯交换法制备。

热性能和力学性能以及体外生物降解及生物相容性与共聚酯组成方面关系被研究。

双酚A被怀疑作为一种内分泌干扰物，合成的脂肪族/芳香族共聚酯在降解时可能不产生双酚A，因为芳香酯就有抗水解性。

通过引入脂肪族酯到芳香族聚酯中，芳香单元的序列长度减少。

先前的研究表明，芳香族单元的序列长度少于3个时，是可吸收或代谢的。

合成的共聚酯被认为是可以接受的用在体外种子细胞的组织重建。

2、实验部分2.1 原料与合成对苯二甲酰氯（TPC 分析级）双酚A （BPA 分析级）1，6-己二醇（HDO 分析级）上海试剂厂纯化结晶（甲苯和石油醚）90 ％水溶液消旋DL-乳酸逐步加热至200℃，真空恒温4h。

这个过程产生α—羟基—ω—羧基预聚乳酸（PLA Mw = 4500, Mn = 1700, Mw/Mn = 2.60）。

2.2 共聚酯的合成该共聚酯的合成方法参照参考文献中所描述的方法，以适当比例的对苯二甲酰氯，1，6-己二醇和双酚A，以及各种含量的聚乳酸。

具体步骤如下。

在装有磁力搅拌的火焰干燥反应器中加入4.0606g（20mmol）的对苯二甲酰氯，1.1818g（10mmol）的1，6-己二醇，2.2830g（10mmol）的双酚A和0.0720g（1mmol）的聚乳酸，通入氮气保护。

经过30分钟的蒸发，反应器中充满氮气，然后安装鼓泡器。

氮气通过鼓泡器进入反应体系。

反应混合物被缓慢的加热到100℃，此时观察到有HCl生成。

体系粘度变得越来越粘随着体系形成均匀熔化状态。

1-2h后反应混合物凝固然后在100℃条件下，保持12h。

反应温度升到230℃在常压下保持4h，然后在10mba压力下保持4h。

聚合物冷却到20℃，溶于50ml氯仿，在800ml甲醇中沉析分离，过滤收集。

白色聚合物在氯仿和甲醇中重新沉淀纯化，然后再40℃真空条件下干燥。

2.3 检测共聚酯的组成采用质子核磁共振1H NMR 以CDCl3为溶剂使用Brucker ARX技术的400MHz的核磁共振光谱仪。

GPC，SEC检测分析在Waters 2414折射仪Breeze Waters系统上进行。

SEC检测在氯仿中进行。

200μL溶液（3% w/v）注射到两个柱子中，Styragel Waters HT3和HT4，注射流速为1.0ml/min，分离范围Mw102-106。

分离柱的温度保持在40℃，同时折射仪探测器的温度设定为40℃。

该仪器采用单分散聚苯乙烯进行校准。

接触角检测JC2000A用来测定静态水域聚合物膜的接触角在25℃和60%相对湿度条件下采用静滴法。

每个接触角的获得至少五个样品不同表面位置读数的平均值。

测量角的误差为±1°。

热重法在Perkin–Elmer TGA 7氮气保护下进行（升温速率20℃/min，样品大小8-10mg）。

Td(-1.5 wt.%)由于热分解样品失去原重的1.5wt.%时的温度被初步作为表征其热稳定性的指数。

DSC检测在装有液氮冷却系统的Perkin–Elmer DSC 7的仪器上进行，氮气速率为40ml/min。

大约8-10mg 的样品在DSC铝盘中压制成型，然后进行热处理。

在进行DSC表征之前，先对样品进行热历史的消除，样品被放置在室温下数天使他们达到结晶平衡。

DSC热力学曲线是在以10℃/min的速率从50℃-300℃升温时记录的，从所记录的加热段曲线中可以确定Tg，Tm，△Hm。

Tc和△Hc在记录在冷却段(冷却速率20℃/min) 。

在Edwards Auto 306上进行金气相沉淀后，所得降解样品的表面采用Philips 535型SEM进行观察。

进行XRD研究的样品在Bede C1型衍射仪上进行，采用40KV和30mA的铜靶，扫描速率为0.5°/min。

力学性能在WDW通用测试系统采电子数据评估进行的，所测样品为100mm长，15mm宽的标准哑铃型样品，样品为溶液浇铸产品重新熔融成膜。

标准伸长率为2mm/min，测试在室温条件下进行。

2.4 水解和吸水性聚酯膜采用溶液浇铸法制备。

通常，将聚合物的氯仿溶液浇到玻璃板上，在室温条件下使溶剂缓慢蒸发。

所形成的膜与玻璃板进行分离。

残余溶剂在常压下蒸发24h，然后在40℃真空条件下蒸发48h。

聚酯的水解实验在37℃的磷酸盐缓冲溶液中进行的（pH=7.413，25℃）。

从各种膜上切下的面积为1×4mm 的正方形样品分别置于装有20ml缓冲溶液的小瓶中。

按照预定的降解时间，样本在降解中期取出，用蒸馏水冲洗，室温真空干燥一周并称重。

共聚酯的重量损失百分率根据下列关系而得：（重量损失%）=（W0—Wr）×100/ W0 其中：W0为原始重量，Wr为样品降解干燥后的质量。

样品在去离子水中的吸水量是样品在37℃条件下保持一个礼拜共聚酯的质量增加，根据等式（吸水率%）=（W—W0）×100/ W0其中：W样品达到吸水平衡时的质量。

2.5 细胞成年大白鼠的脂肪干细胞采用下列方法培养。

无菌条件下，从12周龄的大白鼠的解剖皮下脂肪组织，将其置于含有20mg/ml牛血清白蛋白（BSA）的磷酸盐缓冲液（PBS）中。

血管和纤维物质被切断清除，将组织样品反复清洗除去剩余的血。

该组织样品被切成小块然后消化。

样本培养，在含有钙，镁自由基的磷酸盐缓冲液中每隔50min进行间歇搅拌，PH为7.4，包含2mg/ml的胶原酶。

脂肪组织与培养液的比率大概为1g/3ml。

经过分散，细胞采用250μm的过滤网进行过滤，然后以1500r/min的转速离心分离10分钟。

胶原酶消化脂肪组织产生两种不同的部分：漂浮的成熟脂肪细胞和沉积的基质血管细胞。

后者来源于ADSCs，并包含了纤维细胞，内皮细胞等物质。

按期望除去漂浮的脂肪细胞，沉积细胞在160mmol/L的氯化铵进行悬浮，室温条件下10分钟，目的溶解染菌血红细胞。

离心分离重复上述过程，产生的溶液用100μm的过滤网进行过滤除去细胞碎片，然后转移到75cm2的瓶中，然后在CO2为5%，95%空气，37℃条件下培养。

24h后，培养物清洗两次除去非粘附细胞（血红和细胞碎片）。

培养液和胎牛血清从美国Gibco/BRL获得。

ADSCs被植到实验材料上10天，最初的细胞浓度为105/cm2在DMEM/10%胎牛血清培养介质。

培养基介质每三天更换一次。

培养细胞采用奥林巴斯倒置显微镜进行对比观察。

2.6 样品的制备薄膜的制备，将聚合物/氯仿溶液浇铸到玻璃板线框上，通过旋转涂层或刮胶的方式获得。