实验性肺水肿
实验性肺水肿
病理生理学实验
实验目的
1．掌握水肿的发生机制。 2．复制实验性肺水肿，观察肺水肿的表现， 并探讨其有关的发病机制。
【实验原理】 实验原理】
过多的体液积聚在组织间隙或体腔中称为水 肿。肺水肿是由于液体从毛细血管渗透至肺间质或 肺泡所造成的。病理上可分间质性和肺泡性两类， 可同时并存或以某一类为主。间质性肺水肿大都为 慢性，肺泡性可为急性或慢性肺水肿。本实验主要 是通过静脉大量滴注生理盐水并注射肾上腺素导致 急性肺水肿。 【实验动物】 家兔 实验动物】
【实验结果】 实验结果】
实验性肺水肿实验指标测定记录
实验组 听诊 粉红色泡沫液 肺表面状况 肺重量(g) 肺重量(g) 兔体重（kg） 兔体重（kg） 肺系数 肺切面液速度不要太快或太慢，以控制在 180～200滴/min为宜。 2．解剖取肺时，注意勿损伤肺表面和挤 压肺组织，以防止水肿液流出，影响肺系数值。
【实验步骤】 实验步骤】
1．称重，固定于兔台上。 2．描记正常呼吸 3．快速输入生理盐水（输入总量按150ml/kg，输速 150～180滴/min），待滴注接近完毕时立即向输液瓶中 加入肾上腺素（0.45ml/kg）继续输液。
4．密切观察呼吸改变和鼻腔内是否有粉红色 泡沫液体流出，死亡动物记录死亡时间存活动物 造病后30min则夹住气管，处死。所有动物均打 开胸腔，用线在气管分叉处结扎以防止肺水肿液 渗出，在结扎处以上切断气管，把肺取出，用滤 纸吸去肺表面的水份后称重，根据“肺系数=肺 重量（g）/体重（kg）”的公式计算系数，然后 肉眼观察肺大体改变，并切开肺，观察切面的改 变。
【讨论思考题】
1. 本实验中为什么要大量快速输液？ a、主要是迅速提高血容量——静脉压升高——肺毛细血管流 体静压迅速增高（失代偿）——肺水肿 2. 输入肾上腺素导致肺水肿的机制是什么？ 心动过速——心室舒张期缩短——肺循环回心血量下 降——肺循环相对血容量升高——肺静脉压升高——肺微血管静水压升高——肺水肿 3. 实验中为什么会出现粉红色泡沫痰？ 4. 输入肾上腺素为何会出现呼吸抑制甚至暂停？ a、肾上腺素导致肺水肿----出现肺限制性通气障碍 --血气改变（失代偿）--PaCO2>80mmHg--呼吸中 枢抑制甚至暂停 5. 本实验中如果输液过快过多对实验结果有何影响？ a、家兔发生器官严重水肿迅速死亡。如发生脑水肿出现颅内压升高甚至发生脑疝致死。喉头水肿 堵塞气管窒息死亡。导致实验失败。 b、
试验性肺水肿试验指标测定记录
9．密切观察呼吸改变和气管插管内是否有粉 红色泡沫液体流出，死亡动物记录死亡时间存活 动物造病后30min则夹住气管，处死。所有动物 均打开胸腔，用线在气管分叉处结扎以防止肺水 肿液渗出，在结扎处以上切断气管，把肺取出， 用滤纸吸去肺表面的水份后称重，根据“肺系数 =肺重量（g）/体重（kg）”的公式计算系数， 然后肉眼观察肺大体改变，并切开肺，观察切面 的改变。
【实验结果】
实验性肺水肿实验指标测定记录
实验组 速尿治疗组 山莨菪碱治疗组 对照组
实验前
呼吸改变
注射生理盐水 注射肾上腺素 治疗 PH PCO2
血气分析
PO2 HCO3－ BE
粉红色泡沫液 肺表面状况 肺重量(g) 兔体重（kg）
【注意事项】 1．实验兔与对照兔的输液速度应基本一 致，不要太快或太慢，以控制在180～200滴 /min为宜。 2．解剖取肺时，注意勿损伤肺表面和挤 压肺组织，以防止水肿液流出，影响肺系数值。
【讨论思考题】 1. 本实验中为什么要大量快速输液？ 2. 输入肾上腺素导致肺水肿的机制是什么？ 3. 实验中为什么会出现粉红色泡沫痰？ 4. 输入肾上腺素为何会出现呼吸抑制甚至暂停？ 5. 本实验中如果输液过快过多对实验结果有何
影响？
病
2．复制实验性肺水肿，观察肺水肿的表现， 并探讨其有关的发病机制。
【实验原理】
过多的体液积聚在组织间隙或体腔中称为水 肿。肺水肿是由于液体从毛细血管渗透至肺间质或 肺泡所造成的。病理上可分间质性和肺泡性两类， 可同时并存或以某一类为主。间质性肺水肿大都为 慢性，肺泡性可为急性或慢性肺水肿。本实验主要 是通过静脉大量滴注生理盐水并注射肾上腺素导致 急性肺水肿。
3．进行 颈部手术， 分离气管 和一侧颈 总动脉， 一侧颈外 静脉。作 气管插管。
家兔实验性肺水肿的发生机制
家兔实验性肺水肿的发生机制实验性肺水肿指的是在实验条件下，通过其中一种因素引起的肺水肿的发生。
家兔是一种常被用于实验性肺水肿研究的动物模型。
在马克劳德实验中，通过气道灌注大量液体（如盐水、和鲜血）或给予高压氧，会导致家兔发生肺水肿。
实验性肺水肿发生机制主要涉及血管内皮细胞的损伤和通透性的增加，以及炎症反应的参与。
以下将详细介绍几种可能的发生机制：1.血管内皮细胞损伤和通透性增加：气道灌注大量液体或给予高压氧会引起氧化应激，增加氧自由基的产生，进而引起血管内皮损伤。
血管内皮细胞损伤后，白细胞粘附于内皮上，释放炎症介质，如血小板活化因子（PAF），引起内皮细胞通透性的增加。
此外，血管内皮细胞损伤还可导致一系列信号通路的激活，如VEGF信号通路，促使血管通透性增加，从而导致肺水肿的产生。
2.炎症反应的参与：实验性肺水肿的发生与炎症反应密切相关。
气道灌注大量液体或给予高压氧会激活白细胞和炎症细胞，释放多种炎症介质，并导致炎症细胞的浸润。
炎症介质如白细胞介素-1β（IL-1β）、肿瘤坏死因子-α（TNF-α）等可导致肺组织的炎症反应，并进一步增加血管内皮细胞的通透性。
3.水钠潴留：肺水肿是指肺泡和间质组织中的液体积聚。
实验中的液体灌注或给予高压氧，会使血液中的水和电解质通过血管壁进入肺组织，并阻碍液体的排出，导致肺水肿。
需要注意的是，实验性肺水肿的发生机制是复杂且多样的，并可能涉及到其他因素，如一氧化氮（NO）合成的改变、血浆溶酶体蛋白酶激活等。
此外，个体差异、年龄、性别等因素也可能影响实验性肺水肿的发生。
总结起来，实验性肺水肿的发生机制主要包括血管内皮细胞损伤和通透性增加、炎症反应的参与以及水钠潴留等。
进一步研究这些发生机制有助于深入了解肺水肿的发生过程，并为肺水肿的预防和治疗提供新的思路和方法。
肺水肿实验报告
篇一：肺水肿实验报告实验性肺血容量增高性肺水肿一、实验目的1.复制家兔实验性肺水肿2.观察肺水肿的表现，并探讨其有关的发病机理。
二、实验药品与器材生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置（二道生理记录仪）或生物信号采集系统、血气分析仪。
静脉导管和静脉输液装置，颈部小手术器械，婴儿秤，天平，听诊器，兔固定台，1ml、2ml注射器各2具，丝线，纱布，滤纸，烧杯等。
三、实验步骤本实验分为实验组和对照组。
1、将实验组家兔准确称重后，麻醉、仰卧固定于兔台上，剪去颈前部手术视野被毛，切开颈部前部皮肤，然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。
切开气管，插入气管插管，用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连，以描记呼吸。
结扎颈外静脉远心端，在近心端靠近结扎处剪一小口，插入静脉导管，结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注，通畅后暂停输液。
2、由颈总动脉插入动脉插管以描记血压，由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴人0．9％的生理盐水以保持管道通畅3、描记一段正常呼吸，用听诊器听肺的呼吸音。
4、用lml肝素化注射器从耳朵动脉抽血0．5m1，立即将针头插入橡皮塞中以防空气进入。
经血气分析仪测定血液的ph、pac02、pa02、k+、na+、cl-等，作为实验前对照。
5、然后输入37℃(摄氏度)生理盐水，输入量按100ml/㎏（体重）计算，输液速度180-200滴/min。
6、输药液过程中密切观察机体的变化：①呼吸曲线有否变化，有否呼吸急促，困难。
②肺部是否出现罗音。
7、对照组除不使用肾上腺素外，其余实验步骤和条件与实验组相同。
8、上述各组实验完成以后，分别夹住气管，剪开胸前壁，在气管分叉处用线结扎，防止水肿液溢出。
在结扎处上方剪断气管，然后分离心脏及其血管，将肺取出。
用滤纸吸干肺表面的水份后，准确称取肺重量，以计算肺系数肺系数= 肺重量（g）体重(kg)正常肺系数约为4~5 g。
此后观察肺大体改变，切开肺，注意切面的变化，是否有粉红色泡沫液体溢出（注意其量，性质，颜色）。
实验性肺水肿
05
实验性肺水肿的预防
加强病因预防
01
02
03
控制感染
加强实验室内外环境的消 毒，减少细菌和病毒的传 播，预防肺部感染。
改善通气
使用机械通气等措施，改 善肺部通气，降低肺部压 力。
避免接触有害物质
避免接触工业有害气体、 室内装修材料中的有害物 质等。
避免诱发因素
治疗方法需要进一步优化和 完善
虽然新型治疗方法不断涌现，但还需要进一步验证 和优化这些方法的有效性和安全性。
加强国际合作与交流
肺水肿的研究需要国际合作与交流，共同推 进研究进展，分享研究成果和经验。
THANKS
谢谢您的观看
01
避免疲劳
减少实验动物的运动量，避免过度疲 劳诱发肺水肿。
02
避免温度和湿度变化
保持实验环境温度和湿度的稳定性， 避免温度骤降或湿度过高过低等因素 对肺部的影响。
03
避免应激
减少实验动物的应激刺激，如噪音、 高温、强光等。
提高诊断准确性
加强临床观察
密切观察实验动物的呼吸、体温 、心率等生命体征，及时发现异 常情况。
定期进行肺部检查
定期进行X光、CT等影像学检查 ，及时发现肺部病变。
提高病理学诊断水平
对于需要病理学诊断的病例，应 提高病理学医生的诊断水平，确 保诊断结果的准确性。
06
研究展望
研究方向
深入研究肺水肿的发 病机制
从分子、细胞和整体水平上，深入探 讨肺水肿的发病机制，为预防和治疗 肺水肿提供理论基础。
吸入有毒物质
1
如化学气体、粉尘等
循环障碍
2
如心衰、心肌梗死等心血管疾病
家兔实验性肺水肿实验报告-资料类
家兔实验性肺水肿实验报告－资料类一、实验目的1、学习复制家兔实验性肺水肿模型的方法。
2、观察肺水肿的表现及其发生机制。
二、实验原理肺水肿是指肺间质有过量液体积聚和/或溢入肺泡腔内。
本实验通过大量快速静脉输注生理盐水并注射肾上腺素，导致肺毛细血管流体静压升高和血管壁通透性增加，从而引起肺水肿。
三、实验材料1、动物：家兔。
2、药品与试剂：生理盐水、肾上腺素、20%乌拉坦。
3、器材：手术器械、注射器、输液装置、听诊器、电子天平、计算机生物信号采集处理系统。
四、实验方法1、家兔称重后，于耳缘静脉缓慢注射 20%乌拉坦（5ml/kg）进行麻醉。
仰卧固定于手术台上。
11 颈部正中切口，分离气管，插入气管插管并结扎固定。
12 分离右侧颈外静脉，插入静脉插管，通过输液装置缓慢滴注生理盐水，保持静脉通畅。
13 分离左侧颈总动脉，插入动脉插管，连接压力换能器，记录动脉血压。
2、启动计算机生物信号采集处理系统，记录正常呼吸曲线、动脉血压等指标。
3、快速静脉输注生理盐水（180 滴/分），直至呼吸明显加快，口唇发绀。
31 输液量达到一定程度后，停止输液。
32 由耳缘静脉注射肾上腺素（05ml/kg），观察呼吸、血压等变化。
4、出现明显肺水肿症状后，处死家兔，打开胸腔，观察肺脏外观，并取出肺脏称重，计算肺系数（肺系数=肺重量（g）／体重（kg））。
五、实验结果1、呼吸变化：实验初期呼吸平稳，随着输液量增加，呼吸逐渐加快加深，注射肾上腺素后，呼吸变得急促而浅快。
2、动脉血压变化：输液过程中动脉血压略有升高，注射肾上腺素后，血压先升高后降低。
3、肺脏外观：肺体积增大，表面有淤血、水肿，呈暗红色，切面有大量泡沫状液体溢出。
4、肺系数：实验组家兔肺系数明显高于正常对照组。
六、实验讨论1、大量快速输注生理盐水导致血容量增加，引起肺毛细血管流体静压升高，是肺水肿形成的重要原因之一。
2、肾上腺素可使外周血管广泛收缩，导致回心血量增多，同时增加肺毛细血管通透性，促使液体渗出，加重肺水肿。
急性实验性肺水肿实习报告
实习报告：急性实验性肺水肿的观察与思考一、实习背景作为一名医学实习生，我有幸参与了本次急性实验性肺水肿的实验研究。
实验目的是通过复制家兔实验性急性肺水肿，观察肺水肿的临床表现，分析肺水肿发病机制。
本次实验为我提供了宝贵的实践机会，使我对肺水肿有了更深入的了解。
二、实验过程1. 实验动物：本次实验选用体重2～3kg的家兔作为实验对象。
2. 实验器材：兔手术台、实验动物常用手术器械一套、型气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。
3. 实验试剂：25%乌拉坦、0.9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液。
4. 实验步骤：（1）麻醉动物：取家兔一只，称体重，用25%乌拉坦4ml/kg由兔外侧耳缘注射麻醉。
（2）手术操作：在兔背左侧切开皮肤，分离肌肉，暴露胸腔，剪开胸膜，游离肺叶。
（3）建立肺水肿模型：将气管插管插入家兔气管，连接输液装置，以1%肾上腺素溶液0.5ml/kg剂量滴入，观察家兔肺水肿的发展。
（4）观察指标：观察家兔呼吸困难、肺部啰音、肺体积增大等临床表现；记录家兔血压、心率等生理参数。
三、实验结果与分析1. 实验结果：（1）家兔在注入肾上腺素溶液后，出现呼吸困难、咳嗽、肺部啰音等临床表现，肺体积明显增大，肺重量比正常增加2~3倍。
（2）家兔血压升高，心率加快，表明心脏负荷加重。
2. 实验分析：（1）肺水肿发病机制：本次实验表明，肺水肿是由于毛细血管血压增加、胶体渗透压降低、淋巴管阻塞及毛细血管和肺泡上皮通透性增高导致组织液增多而形成。
（2）临床表现：实验中发现，家兔在肺水肿发生时，出现呼吸困难、咳嗽、肺部啰音等典型临床表现，与人类肺水肿表现相似。
（3）实验启示：本次实验提示，在临床工作中，对于急性肺水肿的诊断和治疗具有重要意义。
及时发现并处理病因，降低毛细血管血压、提高胶体渗透压、改善淋巴液回流、降低毛细血管通透性等措施，有助于缓解肺水肿病情。
实验性肺水肿的原理
实验性肺水肿的原理
实验性肺水肿是一种由于不同原因引起的肺部血管通透性增加，导致肺泡内液体积聚而引发的疾病。
一般来说，实验性肺水肿的原理包括以下几个方面：
1. 血管内皮细胞通透性增加：实验性肺水肿可能由于血管内皮细胞通透性增加导致。
某些炎症介质、毒素、细菌感染等因素可以刺激内皮细胞分泌炎性因子，使细胞间隙扩大，血管通透性增加。
这样一来，液体和蛋白质等溶质就会从血管内部渗漏到肺泡腔内，导致肺水肿的形成。
2. 淋巴循环障碍：实验性肺水肿可能与淋巴循环障碍有关。
正常情况下，淋巴系统可以清除肺泡内的液体，维持肺部的液体平衡。
而在某些情况下，如淋巴管阻塞或淋巴流量减少，淋巴液的排出受到限制，使得肺泡内液体聚集，引发肺水肿。
3.心脏功能异常：某些实验性肺水肿可能与心脏功能异常有关。
如实验性心脏病模型中，心脏的收缩力减弱、舒张功能受损或心输出量降低，都可能导致肺循环压力升高，血管压力超过肺泡压力，从而引发肺水肿。
4.神经内分泌调节异常：一些实验性肺水肿与神经内分泌调节异常有关。
某些实验模型中，肾上腺素、去甲肾上腺素等交感神经活性物质分泌增加，血管收缩性增强，从而导致肺血管收缩，通透性增加，引发肺水肿。
总的来说，实验性肺水肿的发生是一个复杂的过程，可能涉及到多个机制的相互作用。
这些机制包括血管内皮通透性增加、淋巴循环障碍、心脏功能异常以及神经内分泌调节异常等。
实验性肺水肿
实验性肺水肿篇一：实验性肺水肿实验报告专用纸成绩教师签名实验报告专用纸成绩教师签名篇二：家兔实验性肺水肿家兔急性肺水肿目的：复制家兔过敏性肺水肿模型；了解急性肺水肿表现及其发生机制。
肺水肿是指肺血管内液体渗入肺间质和肺泡，使肺血管外液量增多的而使病理状态。
用生理盐水扩充血容量，静注大剂量肾上腺素复制家兔肺水肿模型，肾上腺素可引起交感活性加强，导致体循环外周阻力增高，大量血液从体循环转移到肺循环，而左心未能及时熟习，引起肺毛细血管静水压明显上升，肺血管内液体渗入肺间质和肺泡，发生肺水肿。
快速滴注生理盐水，使循环血容量急剧增多（静脉回心血量增加，血浆胶体渗透压减缓）；大点剂量的给予肾上腺素，一方面可激活肾上腺素α受体，令体循环血管剧烈收缩（A外周阻力增大，V回心血量增多）导致胸腔前后负荷明显增加，而肺血管水解轻收缩弱，肺淤血水肿；另一方面中毒剂量的肾上腺素使心动速度加快，左心室不能把注入的血液充分排出，左心室舒张期末压力递增，可引起左心房的压力增高，以使亦使肺静脉回流受阻会发生淤血。
随快速输液，右心输出量加大，肺血流量增加，一旦超过血浆胶体渗透压，进入肺政府机构肺泡液体增多，引起急性心源性肺水肿。
复制肺水肿模型2.3.1输入37℃生理盐水，输入量100ml/kg，输入速度180-200滴/min。
滴注接近完毕时，立即向输液瓶中加入肾上腺素生理盐水（1：9）10ml/kg继续输液。
当家兔呼吸频率明显变化，用听诊器听到肺部出现湿性罗音，急性肺水肿爆发时（有粉红色泡沫样液体溢出时），立即夹住气管停止输液，快速处死家兔。
2.3.5打开家兔胸腔，微血管分叉处用线结扎，防止水肿液溢出。
在结扎处上方切断气管，将肺清理出（把心脏等清除），置于滤纸上，切勿挤压，准确称肺重量，并计算肺系数。
【肺系数=肺重量（g）/体重（kg）】正常肺系数：4～5，肺系数超过此值，提示肺内有渗出物聚集，肺水肿形成。
2.4观察指标死亡动物记录死亡时间；观察家兔的呼吸频率变化；历史学者兔肺部呼吸音的音变化；熔融气管插管口粉红色泡沫样液体溢出；观察心肺大体及颜色发生改变：切开心脏观察变化；切开肺脏，注意肺切面有无血性泡沫液体流出； 3.实验结果：检测的呼吸变化表呼吸（次/min）呼吸音肺系数正常 120 无显著湿罗音 4~5 肺水肿240 有弥散性湿罗音 9.4肺水肿的发展极为迅速，早期可表现烦躁不安，呼吸急促，肺部仍非显著湿罗音，随着病程发展，约在注射肾上腺素后3~4min时表现出更呼吸困难、粘膜紫绀，两肺有弥散性湿罗音，气管插管内涌出大量粉红色泡沫样粘液。
肺水肿实验报告结果
一、实验概述本次实验旨在通过复制家兔实验性肺水肿，观察肺水肿的临床表现，分析肺水肿的发病机制。
实验对象为体重2～3kg的家兔，共分为实验组和对照组。
实验过程中，对家兔进行了麻醉、气管插管、动脉和静脉插管等操作，并通过静脉滴注生理盐水或其他药物，诱导家兔出现肺水肿。
二、实验结果1. 呼吸变化- 实验组家兔在静脉滴注生理盐水后，呼吸频率和深度逐渐增加，出现浅快呼吸，这与肺水肿时肺泡通气不足有关。
- 在注射肾上腺素后，实验组家兔出现呼吸暂停，可能与肾上腺素引起的血管收缩和肺泡压力升高有关。
2. 血压变化- 实验组家兔在静脉滴注生理盐水后，血压出现短暂升高，随后逐渐下降，可能与肺水肿引起的肺血管阻力增加有关。
- 注射肾上腺素后，实验组家兔血压急剧升高，可能与肾上腺素引起的血管收缩有关。
3. 肺部形态学变化- 实验组家兔肺组织出现明显水肿，肺泡腔内有大量粉红色泡沫状液体，肺泡壁增厚，肺间质充血、水肿。
- 对照组家兔肺组织无明显变化。
4. 肺系数变化- 实验组家兔肺系数显著高于对照组，肺重量与体重的比值增加，提示肺水肿导致肺组织肿胀。
5. 血液生化指标变化- 实验组家兔血液pH值降低，PaO2降低，PaCO2升高，提示肺水肿导致通气/血流比例失调，引起低氧血症和高碳酸血症。
- 实验组家兔血液白蛋白水平降低，提示肺水肿导致毛细血管通透性增加，血浆蛋白渗出。
三、实验讨论1. 本实验成功复制了家兔实验性肺水肿，观察到肺水肿的临床表现，包括呼吸变化、血压变化、肺部形态学变化、肺系数变化和血液生化指标变化。
2. 肺水肿的发病机制主要包括以下几个方面：- 毛细血管血压升高：静脉滴注生理盐水导致毛细血管血压升高，促使液体渗出至肺间质和肺泡腔。
- 毛细血管通透性增加：肾上腺素注射导致毛细血管通透性增加，血浆蛋白渗出，加重肺水肿。
- 淋巴回流障碍：肺水肿导致淋巴回流受阻，加重肺间质和肺泡腔液体潴留。
- 肺泡通气/血流比例失调：肺水肿导致肺泡通气不足，引起低氧血症和高碳酸血症。
实验性肺水肿实验报告
实验性肺水肿实验报告实验性肺水肿实验报告引言：实验性肺水肿是一种严重的疾病，其主要特征是肺泡内液体积聚，导致肺功能受损。
本实验旨在探究实验性肺水肿的发病机制和潜在治疗方法，以期为临床治疗提供参考。
实验设计：本实验采用小鼠作为实验对象，将其随机分为实验组和对照组。
实验组小鼠注射某特定药物，以诱发肺水肿，对照组则注射生理盐水。
通过多种方法观察和分析实验组小鼠的肺功能和病理变化。
实验结果：1. 肺功能测定：实验组小鼠的肺活量和呼气流速明显下降，呼吸频率增加，提示肺功能受损。
2. 组织病理学观察：实验组小鼠的肺组织出现肺泡壁增厚、间质水肿和炎症细胞浸润等病理变化，与对照组相比明显不同。
3. 肺泡液分析：实验组小鼠的肺泡液中白细胞计数明显增加，炎症因子水平升高，提示炎症反应的激活。
讨论：1. 实验结果表明，注射特定药物可以成功诱发实验性肺水肿，模拟了临床实际情况。
2. 肺功能测定和组织病理学观察结果一致显示，实验组小鼠的肺功能受损，肺泡结构发生明显改变，与实验性肺水肿的临床表现相符。
3. 肺泡液分析结果提示，实验组小鼠的肺泡内炎症反应被激活，炎症因子的释放可能是实验性肺水肿的重要因素之一。
结论：本实验成功建立了实验性肺水肿模型，并通过多种方法证实了实验组小鼠的肺功能损伤和病理变化。
实验结果为进一步研究实验性肺水肿的发病机制和寻找治疗方法提供了基础。
展望：在今后的研究中，可以进一步探究实验性肺水肿的发病机制，如炎症反应的调控机制、肺泡壁通透性的变化等。
同时，可以尝试不同的治疗方法，如抗炎药物、利尿剂等，以期找到更有效的治疗策略。
结语：实验性肺水肿是一种严重的疾病，对患者的生命健康造成严重威胁。
通过本实验的研究，我们对实验性肺水肿的发病机制和治疗方法有了初步的认识，为临床治疗提供了一定的参考价值。
希望今后的研究能够进一步深入，为解决实验性肺水肿这一难题做出更多贡献。
肺水肿实验报告机制(3篇)
第1篇一、实验背景与目的肺水肿是一种严重的临床病理状态，其特征为肺间质和肺泡腔内液体积聚，导致肺功能受损。
本实验旨在通过复制实验性肺水肿模型，探讨其发生机制，为临床诊断和治疗提供理论依据。
二、实验方法1. 实验动物选择与分组：选择体重2-3kg的健康家兔作为实验动物，随机分为实验组和对照组。
2. 实验性肺水肿模型建立：- 实验组：通过静脉注射生理盐水，人为增加血容量，诱导实验性肺水肿。
- 对照组：仅给予相同体积的生理盐水注射，作为正常对照。
3. 实验指标检测：- 肺组织病理学观察：通过HE染色和Masson染色，观察肺组织结构变化。
- 肺功能检测：通过呼吸量描记仪，记录呼吸频率、潮气量等指标。
- 血液生化指标检测：通过全自动生化分析仪，检测血清乳酸脱氢酶（LDH）、肌酸激酶（CK）、白蛋白（ALB）等指标。
- 水通道蛋白（AQP）表达检测：通过免疫组化技术，检测肺组织中AQP-1、AQP-3的表达水平。
三、实验结果1. 肺组织病理学观察：实验组肺组织出现明显的水肿，肺泡间隔增宽，肺泡腔内充满水肿液，肺泡上皮细胞变性、坏死。
对照组肺组织结构正常。
2. 肺功能检测：实验组呼吸频率和潮气量显著增加，与对照组相比，差异具有统计学意义。
3. 血液生化指标检测：实验组血清LDH、CK、ALB水平显著升高，与对照组相比，差异具有统计学意义。
4. 水通道蛋白表达检测：实验组肺组织中AQP-1、AQP-3表达水平显著升高，与对照组相比，差异具有统计学意义。
四、实验结果分析1. 肺水肿发生机制：- 肺毛细血管血压升高：实验性肺水肿模型通过增加血容量，导致肺毛细血管血压升高，进而引起液体渗漏。
- 肺泡上皮细胞通透性增加：实验性肺水肿模型导致肺泡上皮细胞变性、坏死，使其通透性增加，有利于水肿液渗入肺泡腔。
- 水通道蛋白表达增加：实验性肺水肿模型导致肺组织中AQP-1、AQP-3表达水平升高，有利于水分子的跨细胞转运，加重水肿。
实验性肺水肿课件
6、打开静脉输液装置
生 理
进行输液，缓慢输入生
盐 水
理盐水（5-10滴/分）以
维持静脉管道通畅；
实验性肺水肿课件
7、快速输入生理盐水：
2
（输液量150ml/kg，速度
3
180-200滴/分），当输入
总量的2/3后，向导管内
肾 上
加入1%肾上腺素1支，继
腺 素
续输液 。
实验性肺水肿课件
8、密切观察呼吸改变、气管内是否有粉红色泡 沫液体溢出、肺部听诊有无湿罗音，当证明肺 水肿出现时，迅速夹闭气管，处死动物，打开 胸腔，在气管分叉处结扎并切断气管，小心分 离并结扎心脏及其血管。
9、取出肺后称重，计算肺系数。肉眼观察肺大 体的改变，切开肺，观察切面有无泡沫液体流 出。
肺系数= 肺重量（g）（正常值：4~5） 体重（kg）
实验性吸频率 呼吸幅度 肺部听诊 气管内现象 肺系数 肺大体改变 肺切面改变 死亡时间
实验前
—— —— —— ——
实验性肺水肿课件
肺毛细血管血压增高 肺血容量急剧增加 肺毛细血管通透性增加 血浆胶体渗透压下降 肺淋巴回流障碍
实验性肺水肿课件
实验材料
动物：家兔。 器材：手术器械、气管插管、静脉
插管、输液装置、兔台、
天平、兔秤、听诊器。
药品： 1%普鲁卡因、生理盐水、
1%肾上腺素。
实验性肺水肿课件
实验步骤
1、称重、固定，颈部备皮。 2、局部麻醉：1%普鲁卡因（1-2ml） 3、切开皮肤，逐层分离组织。 4、气管插管。
实验目的
掌握急性肺水肿模型的复制方法 观察急性肺水肿的表现 加深对肺水肿发生机制的理解
实验性肺水肿课件
实验原理
实验性肺水肿
【五、实验原理】
肺水肿： 由于液体从毛细血管渗透至肺间质或肺泡所造成的。
• 快速大量输生理盐水NS • 注射Adr
肺水肿机制
• 体内外液体交换失衡（水、钠摄入 排出） • 血管内外液体交换失衡
【实验原理】
• 大剂量快速输液（NaCl） • 一定量Adr的作用
1）循环血量↑ 2）毛细血管流体静压↑ 3）血浆胶体渗透压↓ 4）微血管壁通透性↑
实验性肺水肿
病理生理学 董俊斌副教授
实验性肺水肿
一、实验目的
• 复制家兔实验性肺水肿。 • 观察肺水肿的表现。 • 分析实验性肺水肿的原理及机制。
(二) 实验对象
• 家兔体重 2.5-3.5 kg。
（三）步骤和方法
1. 家兔的捉拿
称重，确定Adr给药量： 0.45ml/kg
步骤和方法
2. 家兔的固定
2%普鲁卡因（ 7ml ），皮下注射 分离左侧颈外静脉，穿线备用
左侧颈外静脉插管，NaCl快滴（100ml）（不能成线）
NaCl 输液结束后，给予Adr（0.45ml/kg）
观察现象 处死动物，取肺观察形状，大小
注意事项
• 分离血管时，用钝性分 离；
• NaCl输液速度点滴够快， 但不能成线 180-200滴/min（3滴/ 秒），过快致死。
四、实验结果
实验结果
1. 呼吸：正常时无异常，当大量快速输液时 变为浅快呼吸。注射肾上腺素后呼吸暂停。
2. 粉红色溢出液：当大量快速输液、注射肾 上腺素后出现粉红色溢出液。
3. 取出肺观察：肺比正常的肺大，肺内水肿 液形成明显。计算肺系数大于正常值5
4. 可见兔子从口鼻或气管插管的通气孔中流 出粉红色泡沫样液体
实验性肺水肿
【实验方法】
1. 称重、记录体重、固定
【实验方法】
2. 剪毛、局麻、气管插管、别离颈外静脉
别离一侧颈外静脉，远、 近心端各ห้องสมุดไป่ตู้一手术线，均暂 不结扎。
【实验方法】
3. 颈外静脉插管、连接输液装置
待于近心端剪一小口后，提 起远心段结扎线以止血，插 入静脉插管并与输液装置连 接待用，结扎远、近心端手 术线〔后者固定静脉插管〕。
【讨论与思考】
• 根据实验结果，联系理论，分析肺水肿发生机 理。
• 肾上腺素在肺水肿发生过程中的作用如何？ • 肺水肿与肺气肿有何区别？
• 发现肺水肿充分形成以后，夹住气管，快速处 死兔子，解剖家兔胸腔。
• 支气管分叉处用线结扎，防止水肿液溢出。在 结扎处上方切断气管，将肺清理出。
• 置于滤纸上，切勿挤压，准确称肺重量，并计 算肺系数。
【实验方法】
• 肺系数= 肺重量〔g〕/ 体重〔kg〕 • 正常肺系数：4～5 • 当肺系数超过此值时提示肺内有渗出物聚集
实验性肺水肿
【实验目的】
• 掌握实验性肺水肿的复制方法 • 观察急性肺水肿的表现及其过程 • 结合理论知识分析肺水肿的发生机理
【实验原理】
组织液的生成
【实验原理】
组织液的生成
【实验原理】
肺水肿形成机制
【实验原理】
肺水肿形成机制
【实验原理】
临床表现
突然发病、呼吸困难、紫绀、咳嗽、 咳血色或粉红色泡沫样痰，肺有弥漫 性湿罗音，X线表现呈两肺蝶形片状 模糊阴影，是临床急症之一。
【实验方法】
4. 观察呼吸频率、听诊呼吸音、输液
• 37℃生理盐水 • 150ml/kg • 180-200滴/min • 滴注接近完毕时，向三通管
家兔实验性肺水肿实验报告
家兔实验性肺水肿实验报告家兔实验性肺水肿实验报告一、引言肺水肿是一种常见且严重的呼吸系统疾病，其特征是肺组织内液体积聚，导致肺功能受损。
为了深入了解肺水肿的发病机制以及寻找有效的治疗方法，本次实验选择家兔作为实验动物，通过实验性诱导肺水肿，以期得到相关的实验数据和结论。
二、实验设计与方法1. 实验动物选择与组分本次实验选用健康成年家兔10只，分为两组：实验组和对照组，每组5只。
实验组动物接受肺水肿的诱导处理，对照组动物不接受任何处理。
2. 实验操作实验组动物在麻醉下，通过气管插管将肺泡灌洗液注入肺部，以模拟肺水肿的发生。
对照组动物同样进行麻醉操作，但不进行肺泡灌洗液注入。
3. 观察指标观察指标包括动物的呼吸频率、血氧饱和度以及肺组织病理学变化等。
三、实验结果1. 呼吸频率观察实验组动物在注入肺泡灌洗液后，呼吸频率明显增加，呈现急促的呼吸状态。
对照组动物的呼吸频率保持正常水平。
2. 血氧饱和度观察实验组动物在注入肺泡灌洗液后，血氧饱和度迅速下降，表明肺功能受损。
对照组动物的血氧饱和度保持正常水平。
3. 肺组织病理学变化观察实验组动物在注入肺泡灌洗液后，肺组织呈现明显的水肿、充血和炎症细胞浸润等病理学变化。
对照组动物的肺组织结构正常。
四、讨论与分析通过本次实验，我们成功地诱导了家兔实验性肺水肿模型，并观察到了肺水肿的典型临床表现。
实验组动物在注入肺泡灌洗液后，呼吸频率增加，血氧饱和度下降，肺组织出现水肿、充血和炎症细胞浸润等病理学变化。
这些结果与临床上患者的肺水肿症状一致，说明本实验模型成功地模拟了肺水肿的发病过程。
肺水肿的发病机制是多方面的，包括心源性、非心源性和ARDS等多种原因。
本实验中采用的是实验性诱导方法，通过注入肺泡灌洗液来模拟非心源性肺水肿。
这种方法可以有效地诱导肺水肿，并观察到相关的临床表现和病理学变化，为研究肺水肿的发病机制提供了重要的实验数据。
然而，本实验还存在一些局限性。
首先，家兔实验性肺水肿模型虽然可以模拟非心源性肺水肿，但与人类的肺水肿仍存在一定差异，因此在研究结果的推广性上需要谨慎。
肺水肿的实验报告
一、实验目的1. 了解肺水肿的病理生理机制。
2. 观察肺水肿在动物模型中的临床表现。
3. 探讨不同治疗方法对肺水肿的影响。
二、实验原理肺水肿是指肺部组织间隙和肺泡腔内液体积聚过多，导致肺泡气体交换功能障碍的一种病理状态。
其发生机制包括毛细血管压力增高、胶体渗透压降低、淋巴回流受阻、毛细血管和肺泡上皮通透性增加等。
本实验通过复制实验性肺水肿模型，观察其临床表现，分析发病机制，并探讨不同治疗方法的效果。
三、实验材料1. 实验动物：成年家兔（体重2～3kg）10只。
2. 实验仪器：兔手术台、实验动物常用手术器械一套、气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。
3. 实验试剂：25%乌拉坦、0.9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液、利尿剂、血管紧张素转换酶抑制剂等。
四、实验方法1. 实验分组：将实验动物随机分为5组，每组2只。
对照组、模型组、利尿剂组、血管紧张素转换酶抑制剂组、肾上腺素组。
2. 模型复制：模型组动物采用静脉注射乌拉坦进行麻醉，然后进行气管插管，连接呼吸机。
通过静脉注射生理盐水，使动物出现肺水肿模型。
3. 临床表现观察：观察动物呼吸频率、节律、深度、血压、心率等指标的变化。
4. 组织学观察：取动物肺组织进行切片，观察肺泡水肿、肺泡壁损伤等病理变化。
5. 治疗方法：利尿剂组、血管紧张素转换酶抑制剂组、肾上腺素组分别给予相应的药物治疗，观察治疗效果。
五、实验结果1. 模型组动物在肺水肿模型复制后，出现呼吸频率加快、节律紊乱、深度变浅、血压下降、心率增快等临床表现。
2. 组织学观察发现，模型组动物肺泡水肿、肺泡壁损伤明显。
3. 治疗组动物在给予相应药物治疗后，呼吸频率、节律、深度、血压、心率等指标逐渐恢复正常，肺泡水肿、肺泡壁损伤明显减轻。
六、实验结论1. 肺水肿是一种常见的肺部疾病，其发生机制复杂，与多种因素有关。
肺水肿实验报告呼吸
一、实验背景肺水肿是指肺部组织间隙和肺泡腔内液体积聚过多，导致肺功能受损，严重时可危及生命。
肺水肿的病因众多，包括心脏疾病、肺部疾病、药物副作用等。
呼吸系统是肺水肿的主要受累器官，因此，研究肺水肿实验中的呼吸变化对于理解其发病机制和临床治疗具有重要意义。
本实验旨在通过复制实验性肺水肿，观察肺水肿模型中呼吸系统的变化，探讨肺水肿对呼吸的影响，为临床治疗提供理论依据。
二、实验材料与方法1. 实验动物：选用健康成年雄性家兔10只，体重2.0±0.2kg。
2. 实验分组：将家兔随机分为实验组和对照组，每组5只。
3. 实验方法：（1）实验组：采用静脉注射氯化钠溶液的方法复制实验性肺水肿模型。
（2）对照组：给予等体积的生理盐水。
（3）观察指标：①呼吸频率：采用呼吸频率计记录实验前后动物呼吸频率的变化。
②血气分析：采用血气分析仪检测实验前后动物动脉血氧分压（PaO2）、二氧化碳分压（PaCO2）、pH值的变化。
③肺功能检测：采用肺功能仪检测实验前后动物肺活量（VC）、用力肺活量（FVC）、最大呼气中期流速（MMEF）的变化。
④肺组织病理学观察：采用肺组织切片，观察肺组织结构变化。
三、实验结果1. 呼吸频率：实验组动物呼吸频率显著高于对照组（P<0.05），表明肺水肿模型动物呼吸频率加快。
2. 血气分析：实验组动物PaO2显著降低，PaCO2显著升高，pH值显著降低（P<0.05），表明肺水肿模型动物出现明显的低氧血症和高碳酸血症。
3. 肺功能检测：实验组动物VC、FVC、MMEF显著降低（P<0.05），表明肺水肿模型动物肺功能受损。
4. 肺组织病理学观察：实验组动物肺组织出现充血、水肿、肺泡壁增厚、肺泡腔内有红细胞、白细胞等渗出物，与对照组相比，肺组织病理学变化明显。
四、实验讨论1. 肺水肿实验中呼吸频率加快：肺水肿导致肺组织间隙和肺泡腔内液体积聚，使得肺组织顺应性降低，肺泡通气不足，导致呼吸频率加快。
大鼠实验性肺水肿实验报告
一、实验目的1. 复制大鼠实验性肺水肿模型，模拟临床疾病状态。
2. 观察肺水肿的病理生理变化，探讨其发病机制。
3. 评估不同药物或治疗方法对肺水肿的疗效。
二、实验材料1. 实验动物：健康雄性SD大鼠，体重180-220g，共20只。
2. 实验药品：生理盐水、氯化钾、氯化钠、肝素、乌拉坦、氨茶碱等。
3. 实验仪器：电子天平、显微镜、显微镜摄像系统、生物信号采集系统、血气分析仪、血压计、气管插管、手术器械等。
三、实验方法1. 实验分组：将20只大鼠随机分为实验组（10只）和对照组（10只）。
2. 模型复制：实验组大鼠采用乌拉坦进行麻醉，然后通过气管插管注入生理盐水，使肺泡内液体增加，复制肺水肿模型。
3. 观察指标：观察大鼠的呼吸、血压、心率等生命体征，记录实验过程中大鼠的死亡情况。
4. 组织学检查：取实验组大鼠肺组织，进行常规石蜡切片，显微镜下观察肺组织病理变化。
5. 血液学检查：采集实验组大鼠血液，检测血常规、生化指标等。
6. 治疗干预：实验组大鼠在肺水肿模型建立后，给予氨茶碱进行治疗，观察治疗效果。
四、实验结果1. 呼吸、血压、心率等生命体征：实验组大鼠在肺水肿模型建立后，呼吸急促，血压降低，心率加快。
给予氨茶碱治疗后，呼吸逐渐平稳，血压和心率逐渐恢复正常。
2. 组织学检查：实验组大鼠肺组织出现肺泡水肿、肺泡壁增厚、肺泡间隔增宽等病理变化。
给予氨茶碱治疗后，肺组织病理变化有所改善。
3. 血液学检查：实验组大鼠血常规、生化指标等指标均发生改变。
给予氨茶碱治疗后，血液学指标逐渐恢复正常。
五、讨论与分析1. 肺水肿是一种常见的肺部疾病，其病理生理变化复杂。
本实验通过复制大鼠实验性肺水肿模型，模拟临床疾病状态，为研究肺水肿的发病机制和治疗方法提供了实验依据。
2. 实验结果显示，氨茶碱可以改善肺水肿大鼠的呼吸、血压、心率等生命体征，减轻肺组织病理变化，提示氨茶碱可能对肺水肿具有一定的治疗作用。
3. 然而，本实验仅观察了氨茶碱对肺水肿的治疗效果，未对其作用机制进行深入研究。
实验性肺水肿实验报告
一、实验目的1. 了解肺水肿的病理生理学机制。
2. 掌握复制实验性肺水肿模型的方法。
3. 观察肺水肿的临床表现，分析其发生机制。
4. 探讨肺水肿的治疗方法。
二、实验原理肺水肿是指肺血管内液体渗入肺间质和肺泡，使肺血管外液量增多的病理状态。
肺水肿的发生机制主要包括以下几个方面：1. 毛细血管血压的增加或胶体渗透压的降低都能引起组织间液的增加和水肿的形成。
2. 当淋巴管阻塞，淋巴液回流障碍时也会导致水肿。
3. 毛细血管和肺泡上皮通透性增高时，血浆白蛋白从毛细血管和微静脉壁滤出，导致毛细血管静脉端和微静脉内的胶体渗透压下降，组织液胶体渗透压上升，从而引起水肿。
三、实验对象与材料1. 实验对象：成年雄性家兔，体重2～3kg。
2. 实验材料：兔手术台、实验动物常用手术器械一套、气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。
3. 实验试剂：25%乌拉坦、0.9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液。
四、实验步骤1. 麻醉动物：取家兔一只，称体重，用25%乌拉坦4ml/kg体重耳缘静脉注射，麻醉后固定于兔手术台上。
2. 分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉：剪去颈前部手术视野被毛，切开颈部前部皮肤，分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉，穿线备用。
3. 切开气管，插入气管插管：用丝线结扎固定后将呼吸描记装置和之相连，以描记呼吸。
4. 结扎颈外静脉远心端，在近心端靠近结扎处剪一小口，插入静脉导管，结扎固定后将输液装置和之相接并试行滴注，通畅后暂停输液。
5. 由颈总动脉插入动脉插管以描记血压，由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴入0.9%生理盐水以保持管道通畅。
6. 描记一段正常呼吸，用听诊器听肺的呼吸音。
7. 用1ml肝素化注射器从耳朵动脉抽血0.5ml，立即将针头插入橡皮塞中以防空气进入。
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实验报告专用纸
课程病理生理学学院药科学院.专业
(班级)
药学(创新班)14
姓名学号日期2016-05-25
实验性肺水肿
一、[目的]:通过动物模型了解肺水肿表现及发生机制
二、[原理]水肿发生与影响血管内外液
体交换的因素(如毛细血管流体静压、血
浆胶体渗透压、毛细血管通透性)改变有
密切关系。
毛细血管流体静压升高、血浆
胶体渗透压下降、毛细血管通透性增高均
可促使水肿发生。
本实验通过大量快速输
入盐水、切断双侧迷走神经、注射去肾上
腺素等方法复制急性实验性肺水肿的动
物模型，观察机体的表现。
三、[实验对象和器材药品]
1、实验对象：家兔
2、实验器材：婴儿秤、气管插管、呼吸妙描记及静脉输液装置、颈部手术器械、听诊器、天平、滤纸、20%氨基甲酸乙酯、生理盐水、20ml注射器及针头、纱布块(小方巾)、
3、实验药品：去甲肾上腺素生理盐水(去甲肾上腺素1ml+生理盐水100ml)、20%乌拉坦
四、[步骤]1.麻醉固定(20%乌拉坦5ml/kg)-→气管插管-→迷走神经-→颈动脉
2.正常呼吸-→全速输液50%-→切双侧迷走神经(副交感神经作用消失，交感神经占优势)-→继续输液-→
观察(呼吸曲线、粉红色泡沫样液体)-→若无现象加去甲肾上腺素15ml
3.动物死亡或处死；结扎气管、心脏血管-→分离肺脏-→测肺系数=
五、[实验结果]
切断家兔双侧迷走神经后，家兔呼吸吸气延长，呼吸加深变慢。
取出的肺有大量出血点，有明显的肺水肿，经过结扎分离后称量肺，质量为21.50g。
正常呼吸图片：
实验性肺水肿呼吸曲线
实验报告专用纸
课程病理生理学学院药科学院.专业
(班级)
药学(创新班)14
姓名学号日期2016-05-25
六、[注意事项]：解剖取出肺时，注意勿损伤肺组织，以防水肿液流出
七、[思考题]：
1．实验为什么要设计快速大量地输液？为什么实验组需切迷走神经？
答：①、躯体内短期内输入大量液体会增加心脏负荷,会引起急性左心衰,心衰后射血分数降低,引起肺淤血, 即肺水肿。
②、当切断双侧迷走神经后，副交感受神经对心肌的作用消失，交感神经占优势，此时，当交感神经兴奋时，释放去甲肾上腺素，作用于外周血管，使血管收缩，外周阻力增大，血压升高。
肺部血液逗留使间质的积液增多，使呼吸代偿功能消失，加重了肺淤血性水肿。
2．输入中毒剂量的去甲肾上腺素为什么会引起肺水肿？
答：去甲肾上腺素作用于外周血管，使血管收缩，外周阻力增大，血压升高。
肺部血液逗留使间质的积液增多，使呼吸代偿功能消失，加重了肺淤血性水肿。
3．实验中观察到气管插管有粉红色泡沫状液体流出，意义何在？其机制是什么？
答：出现粉红色泡沫痰，说明肺毛细血管通透性增高。
泡沫痰说明水肿液中蛋白质成分较高，即血浆透过肺血管进入呼吸道，在呼吸过程中气体流过时很容易形成泡沫且不容易消除，使呼吸道内很快被泡沫充塞，严重影响气体交换。
粉红色说明有红细胞滲出。
肺水肿一旦发生，则肺泡上皮的屏障功能就会发生根本性的改变，水和各种溶质包括蛋白质、红细胞等都可以不受限制而自由通过上皮层进入气管管腔内，此时水肿液则可随呼吸运动由气管残端排出，
4．根据两组实验结果，联系理论，分析实验性肺水肿发生的机制
答：肺水肿是指肺血管内液体渗入肺间质和肺泡，使肺血管外液量增多的病理状态。
发生机制为：⑴肺毛细血管静水压升高；⑵血浆蛋白渗透压降低；⑶肺毛细血管通透性增加:⑷肺淋巴回流受阻；⑸间质负压增加；⑹其他：如神经源性肺水肿(两侧迷走神经的切断)。